大鼠一般操作技术
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动物实验的一般操作实验过程中技术及生物材料的收集是否恰当,直接影响实验结果的质量。
因此,实验人员必须正确地掌握动物实验中的一般操作技术,包括动物的捉拿、固定、性别鉴定、标记、生物材料的收集、处死方法和解剖检查,这是保证实验工作成功的基本条件之一。
一、实验动物的捉拿固定实验动物的正确捉拿和固定,不但可以避免由于过强的刺激和动物的损伤而影响观测结果的正确性,而且还可防止被动物咬伤,从而保证实验的顺利进行。
常用的小鼠、大鼠及家兔的捉拿固定方法如下:(1)小鼠用右手抓住鼠尾,提出后立即放在铁丝笼或粗糙的板面上,而后右手将小鼠缓缓后拉,恰好与鼠要向前爬行的力相反而使其固定,此时可用左手的姆指和食指捏住小鼠耳后枕颈部皮肤即可提起,掌心向上而将鼠体置于掌心中,用无名指和小指将鼠尾压住。
此时小鼠即被固定好,可以进行各种实验操作。
操作熟练后,可采用左手一手抓取法,更为方便,右手可不必放下注射器等器具。
(2)大鼠捉取大鼠时,不宜突然袭击式地去抓它,这样手指容易被咬伤。
取用时,应轻轻抓住其尾巴后提起,置于实验台上,将其放入大鼠固定盒将鼠固定,这样可进行尾静脉取血或注射。
如要作腹腔注射或灌胃操作时,实验者应戴上帆布手套,右手轻轻抓住大鼠的尾巴向后拉,左手抓紧鼠二耳和头颈部的皮肤,并将鼠固定在左手中,右手即可进行操作。
(3)家兔家兔性情一般较温顺而胆小,捉拿动作要轻。
家兔二耳较长,但并不能承担全身重量,因此捕捉家兔不能抓其两耳,使它疼痛而挣扎。
从笼内捉兔时,先轻轻打开笼门,勿使受惊,随之将手伸入宠内,从头前阻拦它跑动,兔便匍伏不动,此时用右手把二耳轻轻地压于手心内,抓住颈部的被毛与皮,提起兔,然后用左手托住它的臂部,兔身的重量大部分落于左手上。
家兔的固定按实验要求而定,如在耳血管采血、注射、观察瞳孔及呼吸变化时,可将家兔装入能使头部露出的特制木箱。
做心脏抽血时,可将其仰卧固定在简易木质手术台上,头部用特制兔头夹固定,四肢用活结粗棉扁带缚在台边。
复旦大学实验动物学实验报告实验报告一小鼠的一般技术操作一、实验目的和要求:通过实际操作,掌握小鼠实验的一般操作方法,包括动物的抓取和保定、性别鉴定、编号、给药、麻醉、采血、处死、解剖等方法。
二、实验基本步骤:(一)抓取和保定先用右手将小鼠的尾巴提起,至于鼠笼或粗糙的平面上,当小鼠向前挣扎行进时,再用左手的拇指和示指捏住小鼠两耳后颈部皮肤,翻转小鼠至于掌心,拉直后肢。
以小指拉住小鼠尾巴即可。
在一些特殊的实验中,如进行尾静脉注射时,可使用专门的小鼠固定器进行保定。
(二)性别鉴定将小鼠抓取后,观察其肛门及生殖器之间的距离,距离远的为雄性,距离近的为雌性。
另外翻转小鼠观察生殖器附近,性成熟的雄性小鼠的睾丸降至阴囊内,会有明显的突起;雌性小鼠的肛门至会阴处有一条无毛覆盖的细线。
(三)编号方法常用的有染色法、耳缘打孔法、烙印法、挂牌法。
此外还有断趾法、剪尾法、被毛剪号法、笼子编号法等。
在本次实验中,我们小组使用的是染色法。
(四)去毛方法常用的有拔毛法、剪毛法、剃毛法、脱毛法。
(五)给药方法常用的有经口灌胃法、经呼吸道吸入、经皮肤吸收和注射给药法。
1.经口给药法(1)灌胃法:左手固定小鼠,右手持灌胃器,将灌胃针从小鼠的一侧犬齿缺失处插入口中,灌胃针竖起靠向口腔后壁,使小鼠消化道成直线,沿咽喉壁缓慢插入食管,使其前段到达膈肌位置,灌胃针插入时应无阻力,如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出,以免损伤、穿破食管或误入气管。
(2)口服法在本次实验中,我们小组使用的是灌胃法。
2.注射给药法(1)皮下注射(2)肌肉注射(3)腹腔注射(4)静脉注射在本次实验中,我们使用的是皮下注射、腹腔注射、静脉注射。
(六)采血方法1.断头取血2.眼眶后静脉丛穿刺采血3.尾静脉切割采血法4.摘眼球采血法5.心脏采血在本次实验中,我们小组使用的是眼眶后静脉丛穿刺采血、尾静脉切割采血、摘眼球采血法、心脏采血。
(七)麻醉方法1.常用局部麻醉剂:普鲁卡因、利多卡因2.常用全身麻醉剂:乙醚、苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠、巴比妥钠、氨基甲酸乙酯。
实验三大、小鼠的基本操作技术[实验目的]:通过大鼠、小鼠的抓取固定、性别辨认、灌胃、注射、采血、麻醉、标记、安乐死、动物剖检、脏器摘除与检查等实际操作,掌握大、小鼠动物实验的基本操作技术。
[实验动物]:大鼠、小鼠[材料与器材]:大、小鼠饲养盒(带面罩)、大鼠和小鼠手术固定台,常规手术器械、大鼠灌胃针、小鼠灌胃针、lml注射器、5ml注射器、l0ml注射器、烧杯、75%酒精及酒精棉,干棉球。
生理盐水、20%乌拉坦溶液(或3%戊巴比妥钠)、乙醚、新洁尔灭、3—5%苦味酸溶液、0.5%中性红或品红溶液、[实验内容]:一、实验动物标记编号的方法一染色法(一)被毛染色法1、单色涂染法;(3—5%苦味酸溶液,可染成黄色)。
2、双色涂染法:苦味酸(黄色)—为个位数;品红(红色)—为十位数.(二)耳缘打孔法:适于做长期实验用。
、(三)刺数钳烙印法:适用于长期或慢性实验的大动物编号。
(四)号牌法:用于大动物实验。
二、实验动物被毛的去除方法(一)剪毛法;(二)拔毛法;(三)剃毛法;(四)脱毛法;三、大鼠、小鼠性别的鉴定方法步骤:1、将动物抓取后,腹部朝上,观察肛门与生殖器之间的距离,距离近的为雌性,距离远的为雄性,2、成年雌性大小鼠有12个乳头。
3、天热时或性成熟后,雄性动物的睾丸一般会从腹腔降至阴囊内,此时易于区别。
四、大鼠、小鼠的抓取和固定(一)小鼠的抓取固定:[实验器材]:小鼠饲养盒(带面罩)1套,小鼠防护手套若干。
[方法步骤]:1、用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将小鼠提起,放在饲养盒面罩上。
2、用左手拇指和食指迅速、准确地捏住小鼠的两耳后、颈背部的皮肤,将小鼠提起。
3、翻转左手掌,以左手掌心和中指夹小鼠背部的皮肤,使小鼠整个呈一条直线。
4、用左手无名指压住小鼠背部的皮肤,小指压住小鼠的尾巴根部。
5、松开捏住小鼠尾巴的右手拇指和食指。
[注意事项]:1、在抓取动物时,禁止对动物采取突然、粗暴的方法。
2、抓取时注意,过分用力,会使动物窒息或颈椎脱臼,用力过小,动物头部能反转过来咬伤实验者的手,必须熟练掌握。
青海大学生态环境工程学院环境毒理学实验报告科目:环境毒理学姓名:田成龙学号:1200602036实验一动物试验的一般操作技术一、目的与要求毒理学的许多试验研究,主要通过动物实验来进行。
而实验过程中技术及生物材料的收集是否恰当,直接影响实验结果的质量。
因此,毒理学实验工作者必须正确地掌握动物实验中的一般操作技术,这是保证试验工作成功的基本条件之一。
本实验要求掌握动物的捉拿、固定、麻醉、编号、采血、处死方法和解剖检查。
二、实验内容和方法(一)实验动物的捉拿和固定方法1、小鼠:捉拿时先用右手将鼠尾抓住提起,放在较粗糙的台面或鼠笼上,在其向前爬行时,右手向后拉尾,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和头颈部皮肤,将其固定于左手手心中,拉直四肢并用左手无名指压紧尾和后肢,右手即可作注射或其他实验操作。
取尾血及尾静脉注射时,可将小鼠固定在金属或木制的固定器上。
2、大鼠:大鼠抓取方法基本同小鼠,抓大鼠时若操作者不熟练,或者大鼠特别凶猛,操作者最好戴上防护手套(帆布或硬皮质均可)。
如若是灌胃、腹腔注射、肌肉和皮下注射时,可采用与小鼠相同的手法,即拇、食指捏住鼠的耳朵及头颈皮肤,余下三指紧捏住背部皮肤,置于掌心中,调整大鼠在手中的姿势后即可操作。
3、豚鼠:豚鼠性情温和,胆小易惊,一般不易伤人,抓取时,先用手掌扣住豚鼠背部,抓住其肩胛上方,拇、食指环握颈部,另一只手托住臀部。
如果在实验时豚鼠频繁挣扎,不宜采用此方法,因为操作者的拇、食指会随动物的挣扎越抓越紧而引起豚鼠窒息。
另外,有时可用纱布将豚鼠头部轻轻盖住,操作人员轻扶住其背部或者让其头部钻到实验人员的臂下,然后进行实验操作。
4、家兔:一手抓住兔颈部的被毛与皮肤,另一手托其臀部或腹部,使其躯干的重量大部分集中在手上。
(二)实验动物的编号、标记和去毛方法1、编号和标记方法:在动物实验中,为了使实验动物个体间或组间区别开来,便于对每个实验动物的反应情况进行观察,必须对实验动物进行编号、标记。
第二章动物实验的基本操作与技术动物实验方法是多种多样的,在医学的各个领域内都有其不同的应用,其中一些基本方法都是共同性的,如动物的选择、抓取、固定、麻醉、脱毛、给药、采血、采尿、急救、处死、尸检等,不管是从事何种课题的医学研究都要用这套基本方法,因此,动物实验基本方法,已成为医学科技工作者必须掌握的一项基本功。
第一节实验动物的抓取固定方法一、小鼠抓取固定方法小鼠温顺,一般不会咬人,抓取时先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤(见图2-1之一),将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可(图2-1之二)。
有经验者可直接用左手小指钩起鼠尾,迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。
这种在手中固定方式,能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时,则需将小鼠作一定形式的固定,解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位(必要时先行麻醉),再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。
尾静脉注射时,可用小鼠尾静脉注射架固定(图2-2),先根据动物大小选择好合适的固定架,并打开鼠筒盖,手提鼠尾巴,让动物头对准鼠筒口并送入筒内,调节鼠筒长短合适后,露出尾巴,固定筒盖即可进行尾静脉注射或尾静脉采血等操作。
图2-1 小鼠的抓取固定方法图2-2 小鼠尾静脉注射方法二、大鼠的抓取固定方法大鼠的抓取方法基本同小鼠,只不过大鼠比小鼠牙尖性猛,不易用袭击方式抓取,否则会被咬伤手指。
抓取时为避免咬伤,可带上帆布手套。
如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时,同样可采用左手固定法,只是用拇指和食指捏住鼠耳,余下三指紧捏鼠背皮肤,置于左掌心中,这样右手即可进行各种实验操作。
也可伸开左手之虎口,敏捷地从后一把抓住。
若做手术或解剖等,则需事先麻醉或处死,然后用细棉线绳活结缚腿,背卧位绑在大鼠固定板上;尾静脉注射时的固定同小鼠(只需将固定架改为大鼠固定盒)。
一、实验目的本实验旨在通过操作医学大小鼠,掌握动物实验的基本操作技能,包括抓取与固定、性别鉴定、给药、采血等,并观察动物在不同实验条件下的生理反应。
二、实验动物与材料1. 实验动物:昆明小鼠4只,大鼠4只。
2. 实验材料:灌胃器2个,注射器4个,酒精,棉球,生理盐水,小鼠固定器1个,大鼠固定器1个。
三、实验步骤1. 抓取与固定- 抓取:左手抓取小鼠的尾根部,用右手拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
- 固定:将抓取好的小鼠放在粗糙平面上,让其在平面上爬行,然后拉住尾跟部,使小鼠腹部朝上,颈部拉直。
用同样的方法固定大鼠。
2. 性别鉴定- 观察小鼠肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性:距离长,毛发密;雌性:距离短,毛发稀疏。
- 用相同的方法鉴别大鼠的性别。
3. 给药- 灌胃法:左手抓取和固定小鼠,使腹部朝上,颈部拉直。
右手持接灌胃针的注射器吸取药液,将针头从口角插入口腔内,然后用灌胃针头压其头部,使口腔与食管成一直线,再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入,转动针头刺激动物吞咽,然后沿咽后壁慢慢插入食道。
当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内,向外抽动注射器活塞,感觉有负压,此时可将药液灌入。
用同样的方法对大鼠进行灌胃。
- 注射给药:皮下注射,用左手抓取和固定小鼠,使腹部朝上,颈部拉直。
右手持注射器吸取药液,将针头刺入皮下,注入药液。
用同样的方法对大鼠进行皮下注射。
4. 采血- 颈动脉采血:左手抓取和固定小鼠,使颈部暴露。
右手持采血针,在颈动脉处刺入,收集血液。
用同样的方法对大鼠进行颈动脉采血。
四、实验结果1. 成功完成小鼠和大鼠的抓取、固定、性别鉴定、给药和采血等操作。
2. 观察到动物在不同实验条件下的生理反应,如呼吸、心率、血压等。
五、实验讨论1. 在实验过程中,应注意操作规范,避免对动物造成伤害。
2. 给药和采血等操作要准确、迅速,以免影响实验结果。
3. 实验过程中要密切观察动物的反应,确保实验安全。
实验动物学课程实验报告实验内容:1. 小鼠的基本实验操作2. 小鼠皮肤移植试验、睾丸(或卵巢摘除术3. 豚鼠和兔的一般操作技术4. 大鼠实验的基本操作5. 大鼠性周期观察和大鼠急性肺水肿模型建立6. 小鼠无菌取胎术7. Beagle犬的一般操作和沙鼠、金黄地鼠、裸小鼠的特性实验一小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓取和固定、性别鉴定、编号、去毛、给药、采血、麻醉、处死,尤其是染色法编号、灌胃、眼球摘除法采血、腹腔注射、脊椎脱臼法处死。
二、实验动物:昆明小鼠4只(2雌2雄三、实验步骤1、抓取和固定2、性别鉴定3、编号(染色法4、去毛(脱毛剂法5、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射6、采血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法7、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉8、处死:脊椎脱臼法、过量麻醉9、解剖:9.1 生殖系统:9.1.1雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明9.1.2雌性:双角子宫、卵巢9.2 肾上腺、胰腺、胆囊、甲状腺四、实验结果1、抓取和固定:抓取:抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
2、性别鉴定:观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性:距离长,毛发密(和其他部位一样;雌性:距离短,毛发稀疏。
3、编号:3.1染色法:3.1.1用苦味酸(黄色在小鼠背面染色3.1.2逆毛发生长方向染色,自毛根开始3.1.3可编1-10号(10号为不编号3.2去毛:脱毛剂:8% Na2S,自毛发根部涂抹3.3 给药:3.3.1 灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针, 紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0.5ml3.3.2 注射给药:3.3.2.1腹腔注射:3.3.2.1.1从下腹部的两侧进针3.3.2.1.2进针时针与腹部成45°。
动物实验的一般操作实验过程中技术及生物材料的收集是否恰当,直接影响实验结果的质量。
因此,实验人员必须正确地掌握动物实验中的一般操作技术,包括动物的捉拿、固定、性别鉴定、标记、生物材料的收集、处死方法和解剖检查,这是保证实验工作成功的基本条件之一。
一、实验动物的捉拿固定实验动物的正确捉拿和固定,不但可以避免由于过强的刺激和动物的损伤而影响观测结果的正确性,而且还可防止被动物咬伤,从而保证实验的顺利进行。
常用的小鼠、大鼠及家兔的捉拿固定方法如下:(1)小鼠用右手抓住鼠尾,提出后立即放在铁丝笼或粗糙的板面上,而后右手将小鼠缓缓后拉,恰好与鼠要向前爬行的力相反而使其固定,此时可用左手的姆指和食指捏住小鼠耳后枕颈部皮肤即可提起,掌心向上而将鼠体置于掌心中,用无名指和小指将鼠尾压住。
此时小鼠即被固定好,可以进行各种实验操作。
操作熟练后,可采用左手一手抓取法,更为方便,右手可不必放下注射器等器具。
(2)大鼠捉取大鼠时,不宜突然袭击式地去抓它,这样手指容易被咬伤。
取用时,应轻轻抓住其尾巴后提起,置于实验台上,将其放入大鼠固定盒将鼠固定,这样可进行尾静脉取血或注射。
如要作腹腔注射或灌胃操作时,实验者应戴上帆布手套,右手轻轻抓住大鼠的尾巴向后拉,左手抓紧鼠二耳和头颈部的皮肤,并将鼠固定在左手中,右手即可进行操作。
(3)家兔家兔性情一般较温顺而胆小,捉拿动作要轻。
家兔二耳较长,但并不能承担全身重量,因此捕捉家兔不能抓其两耳,使它疼痛而挣扎。
从笼内捉兔时,先轻轻打开笼门,勿使受惊,随之将手伸入宠内,从头前阻拦它跑动,兔便匍伏不动,此时用右手把二耳轻轻地压于手心内,抓住颈部的被毛与皮,提起兔,然后用左手托住它的臂部,兔身的重量大部分落于左手上。
家兔的固定按实验要求而定,如在耳血管采血、注射、观察瞳孔及呼吸变化时,可将家兔装入能使头部露出的特制木箱。
做心脏抽血时,可将其仰卧固定在简易木质手术台上,头部用特制兔头夹固定,四肢用活结粗棉扁带缚在台边。
《食品毒理学》实验动物一般操作技术及生物材料采集一、实验目的和要求毒理学研究需要用实验动物来进行各种实验,通过对动物的实验观察和分析来研究毒作用,获得毒物的毒性、剂量—反应关系、毒作用机制等方面的资料,因此动物实验是毒理学研究中重要的手段之一。
通过本次学习,熟悉并掌握毒理学实验中有关动物实验的基本操作技术,掌握实验动物的选择、动物抓取、动物分组、采血及处死等技术。
二、主要仪器设备实验动物:成年昆明系实验小鼠(SPF级别)。
器材:解剖剪刀、血色素吸管、干棉球、注射器、镊子、玻璃毛细管、电子分析天平、动物体重秤、酒精棉球、棉签、鼠笼、一次性手术手套、一次性口罩、注射器。
试剂:医用酒精、脱脂棉、苦味酸酒精饱和液。
三、实验内容(一)健康动物的选择无论选择哪种种属品系的动物进行实验,均要求选择健康的实验动物。
健康动物检查时要求达到:外观体形丰满,被毛浓密有光泽、紧贴体表,眼睛明亮,行动迅速,反应灵活,食欲及营养状况良好。
选择时重点检查以下几项:l.眼睛:明亮,瞳孔双侧等圆,无分泌物。
2.耳:耳道无分泌物溢出,耳壳无脓疮。
3.鼻:无喷嚏,无浆性粘液分泌物。
4.皮肤:无创伤、无脓疮、疥癣、湿疹。
5.颈部:要求颈项端正,如有歪斜提示可能存在内耳疾患,不应选作实验动物。
6.消化道:无呕吐、腹泻,粪便成形,肛门附近被毛洁净。
7.神经系统:无震颤、麻痹。
若动物(大鼠、小鼠)出现圆圈动作或提尾倒置呈圆圈摆动,应放弃该动物。
8.四肢及尾:四肢、趾及尾无红肿及溃疡。
(二)实验动物的性别鉴定小鼠:主要依据肛门与生殖孔间的距离区分,间距大者为雄鼠,小者为雌性。
成年雄鼠卧位可见睾丸,雌性在腹部可见乳头。
(三)抓取方法正确地抓取固定动物,是为了在不损害动物健康、不影响观察指标、并防止被动物咬伤的前提下,确保实验顺利进行,小鼠的抓取方法:先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台上向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可。
动物实验基本操作一(固定、性别判定、标识)【实验目的】在做动物试验时,为确保给药、实验顺利进行,防止被动物咬伤、准确辨别动物性别、准确标识动物,要学会用正确方法捉拿实验动物、掌握辨别动物性别的方法以及掌握标识动物的方法。
【实验对象】SD大鼠,KM小鼠,雌雄各半,体重180-250g。
【实验器材和药品】器材:鼠笼、大小鼠固定器、方木板、美式图钉、细绳、防护手套药品:苦味酸80%~90%酒精饱和溶液、20%乌拉坦【实验步骤】一、小鼠的捉拿1、徒手固定:用右手提起尾巴中部,放在鼠笼盖或其他粗糙面上。
向后上方轻拉,此时,小鼠前肢紧紧抓住粗糙表面。
左手拇指和食指迅速捏住小鼠颈背部皮肤,再置小鼠于左手心,并以左手掌心和中指夹住小鼠背部皮肤,无名指压住小鼠尾根部,将其固定于手中。
右手可行注射或其它操作。
2、固定器固定:尾静脉注射或给药时,将小鼠放进固定器中或者大小和重量适当的容器(如烧杯),只露出尾巴,该类容器能够压住尾部,避免其活动。
勿固定过紧造成窒息死亡。
进行腹腔手术或心脏采血时,先准备一个15-20cm的方木板,边缘钉入五颗钉子。
将小鼠四肢分别用20-30cm的线绳捆绑,线的另一头分别绑在方木板的钉子上,并且在头部上颚切齿牵引一根线绳,也固定在钉子上,达到完全固定。
二、大鼠的捉拿4-5周内的大鼠,方法同小鼠。
周龄较大的,则:1、首先戴好防护手套。
2、用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将大鼠提起,放在大鼠饲养盒的面罩上。
3、左手顺势按、卡在大鼠躯干背部,稍加压力向头颈部滑行。
4、以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤,其余三指和手掌握住大鼠背部皮肤,完成抓取保定。
三、性别判定小鼠、大鼠性别判定(1)幼鼠外生殖器与肛门间隔短的是♀,外生殖器与肛门间隔长的是♂。
(2)成年动物可直接肉眼辨认,雄性有膨起的阴囊和阴茎,雌性动物有阴道口。
四、动物的标记小鼠的短期标记法:苦味酸80%~90%酒精饱和溶液(黄色),标出属于自己的编号【注意事项】1、实验人员要有精神准备:掌握方法,胆大心细,做好防护。
实验⼤⿏相关操作技术⼀、保定技术保定的定义,是指使⽤⼿或以器械对动物个体之活动作部分或完全之限制,以便进⾏检查、采样、投药、治疗或进⾏实验操作等之⼿段⽽⾔。
保定⽆疑是进⾏所有动物实验前的基本步骤,但在进⾏实验的过程中也需避免使动物产⽣不必要的伤害,以下为进⾏实验动物保定时之重要须知:(⼀) 不可将保定装置视为正常之饲养⽅式。
(⼆) 不可仅仅为处理或控制上图⽅便,⽽恣意使⽤保定装置。
(三) 在可完成实验⽬的为前提下,需尽量缩短保定之时间。
(四) 在进⾏保定之前,应训练动物去适应保定设备与进⾏保定的⼈员,保定⼈员也应预先熟练保定相关之技术。
(五) 保定期间若动物有受伤或不适之情形时,则应将动物暂时性或永久性移离保定装置,并进⾏必要之治疗。
⼆、⼤⿏的保定体型较⼩、未达120 g的⼤⿏,可以采⽤类似保定⼩⿏的⽅式。
体型较⼤的⼤⿏,则应双⼿保定,由⼀⼈执⾏保定,⼀⼈双⼿采样或投药。
也可以采⽤保定架保定。
抓取⼤⿏时穿戴橡胶⼿套,可以避免因直接接触⼤⿏所引起的过敏。
尽量避免从⼤⿏的前⽅来接触他们,可避免受⼤⿏咬伤。
1.抓取⼤⿏时可以握住⼤⿏尾根部,以此对⼤⿏进⾏简单的搬运或移动。
不可抓取⼤⿏尾巴末端,抓取末端可能会造成⼤⿏尾巴的脱落。
如将⼤⿏尾巴提起后⼤⿏剧烈摇晃反抗,不可突然将抓着尾巴的⼿放开,⼤⿏可能会因此⽽摔伤。
2.由⼤⿏后⽅慢慢接近,单⼿轻握住其胸部,再将其提起,另⼀⼿可再抓住其尾根部、两只后脚或下腹部。
抓起后如⼤⿏剧烈挣扎,可轻微摇晃,⼤⿏的挣扎会稍微和缓。
抓取时避免将⼿指⾄于⼤⿏嘴巴可及之处,可避免被⼤⿏咬伤。
3.⼤⿏保定架三、⼤⿏的采⾎采⾎对⾮专职实验动物从业⼈员⽽⾔,是⼀门难度颇⾼的技术。
采⾎的技术只能靠熟能⽣巧与细⼼的摸索正确的⼿感来精进。
采⾎会造成实验动物较严重的紧迫,因此建议给予适当的⿇醉或镇静,可以有助于采⾎过程的顺畅。
成年⼤⿏的总⾎量是20⾄40 ml,单次采⾎的建议量为2⾄3 ml,放⾎可得之总⾎量是8⾄12 ml。