实验2-植物组织水势的测定(小液流法).

植物组织水势的测定（小液流法）实验目的：1. 了解测定植物组织水势的方法及其优缺点2. 学习用小液流法测定植物组织水势的方法实验原理：实验原理1、当植物组织与外液接触时发生水分交换：植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水，外液浓度变大；ψ植物<ψS植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势），组织失水，外液浓度变小；ψ植物> ψS若两者相等，则水分交换保持动态平衡，外液浓度保持不变；ψ植物＝ψS2、同一种物质浓度不同时其比重不一样，浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。

3、根据外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度实验仪器与试剂试管架试管打孔器毛细管镊子青霉素瓶蔗糖溶液甲烯蓝粉末操作步骤1. 配制不同浓度的蔗糖溶液2.用打孔器在绣球花的不同部位打100-200片，混匀，每个青霉素瓶各放入15-20片，（打孔要迅速，避开叶脉，选边缘整齐无破损的叶片）3.从配制好的试管中各取2ml（量准确？）到相应的青霉素瓶或称量瓶中（用一只移液管由低高，不要润洗）。

放置20—30min，期间摇动数次，以加速水分平衡。

4. 染色：用接种针沾入微量甲烯蓝粉末加入青霉素瓶中，摇匀，溶液变蓝。

（干燥针头先用蒸馏水湿润，加入的甲烯蓝量一定少，使各瓶中颜色基本一致）5.观察液滴升降：用毛细吸管取青霉素瓶有色液插入相应试管中部缓慢从毛细吸管尖端横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色液滴的移动方向并记录。

（用白纸划一直线置于试管背面，方便观察）6.分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出与组织水分势相当的浓度，根据原理公式计算出组织的水势。

实验结果测定植物组织的水势实验记录水势计算ψs=-iCRT实验讨论如果小液流滴在对照溶液中全部上升或下降说明什么问题，应如何改变试验溶液浓度？答：“全部上升”说明实验溶液的浓度都高于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度降低再做；“全部下降”说明实验溶液的浓度都低于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度调高再做。

实验一植物组织水势的测定（小液流法）一、原理当植物组织与外液接触时，如果植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水、重量增大而使外液浓度变大；反之，则组织失水、重量减小而外液浓度变小；若两者相等，则水分交换保持动态平衡，组织重量及外液浓度保持不变。

根据组织重量或外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度，然后根据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。

溶液渗透势的计算：Ψ s = - iCRT式中：Ψ s ——溶液的渗透势，以MPa为单位。

R ——气体常数，为0.008314MPa·L/（mol·K）。

T ——绝对温度，即273+ t℃。

C ——溶液的质量摩尔浓度，以mol/kg为单位。

i ——为解离系数，CaCl2为2.6。

二、实验目的了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和优缺点。

三、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料植物叶片或洋葱鳞茎。

（二）试剂1、甲烯蓝粉末。

2、CaCl2溶液：包括0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35、0.40、0.45 mol/kg 8 种不同质量摩尔浓度的溶液。

（三）仪器设备大试管8支，小试管8支，青霉素小瓶8支，移液管（5ml），毛细吸管8支，培养皿，打孔器，剪刀l把，镊子1把，解剖针1支。

四、实验步骤1、编号贴标签取干燥洁净的大试管8支，小试管8支，青霉素小瓶8支，毛细吸管8支，编号贴标签，按序号排好。

2、打取、浸泡叶片取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约60片，放在培养皿中，混合均匀。

用镊子分别把5-8个小圆片放到盛有4 ml不同质量摩尔浓度CaCl 2 溶液的青霉素小瓶中，浸没叶片，盖紧瓶塞，放置30 min，并不断轻摇小瓶，以加速水分平衡（如温度低时可延长放置时间）。

3、染色到预定时间后，用解剖针尖蘸取微量甲烯蓝粉末，加入各青霉素小瓶中，并摇动，使溶液染色均匀。

4、测定把试管中的不同浓度的系列标准液分别倒入相同编号的小试管中，用毛细吸管吸取相同编号青霉素小瓶内的有色溶液少许，插入相同编号的小试管溶液中部，轻轻挤出有色溶液一小滴，小心取出毛细管（勿搅动有色液滴），观察有色液滴的升降情况，并记录于表中。

小液流法测定植物组织水势【实验意义】作物水分状况的表现指标中，生理指标的变化先于形态指标的出现。

形态指标的出现时之后的，当植物出现缺水的形态指标时，植物已经收到伤害。

小液流法测定植物组织水势可以测定一个科的一种植物，通过测定结果可以预知整个科属植物的水势，从而有力农肥的合理使用。

【实验原理】测定植物组织水势的方法较多，小液流法是其中一种。

本法是将植物组织置于不同浓度（也即不同水势）的蔗糖溶液中，寻找到一种浓度的蔗糖溶液，其水势与植物组织的水势相等，然后计算该浓度蔗糖溶液的水势，从而知道植物组织的水势。

表1 小液流法原理表测定蔗糖溶液比重的变化，可采用如下简便的方法：即利用毛细管吸取已浸过植物组织的蔗糖溶液（为便于观察，可用甲烯蓝先染上颜色），放一小滴到与其对应的相同浓度的蔗糖溶液中，然后观察滴出的小液滴（蓝色）的移动方向，即可知道浸过植物组织的蔗糖溶液比重的变化（“小液流法”即由此而来）。

【实验材料】：女贞叶片【仪器设备】：试管架、6支带盖小药瓶（容积不大于5mL）、10mL带塞试管6 支、毛细管1支、叶模、镊子、移液管、吸球等、温度计.【试剂药品】0.5mol/L 蔗糖溶液，亚甲烯蓝粉溶液【实验步骤】1．标准梯度浓度蔗糖溶液的配置将0.5mol/L蔗糖溶液的母液分别配成0.05、0.1、0.2、0.3、0 4、0.5mol/L的蔗糖溶液各10ml.从上述的大试管中各取2ml溶液，分别放到另6支编号带盖小药瓶中，盖上盖子。

2．材料处理取3片叶子重叠，用叶模分别在叶脉两侧各取5*1cm，然后把取出的五厘米长得叶分成10等分，最后得到60等分混匀，依次分别在小试管的蔗糖溶液中各放入叶圆片10片叶圆片要全部浸在溶液中，塞上塞子，每隔5分钟摇动一次。

40分钟后，用镊子取出在小药瓶中德叶片，分别向6支小药瓶中滴入2滴亚甲烯蓝粉溶液。

3、测定取干燥毛细管6支，分别从编号的带盖小药瓶中吸取蓝色溶液，当毛细管不在上升以后，用吸水纸将毛细管外壁的蓝色溶液擦干净，然后插入与编号的小药瓶相对应的10m 1 试管中，使毛细管内的液面高于试管内的液面约 1 -2cm ，然后缓慢放出蓝色溶液一小滴，保持毛细管静止不动（可将毛细管壁靠在试管口上），观察蓝色小液滴的移动方向, 然后缓慢取出毛细管插回5mL 试管中。

实验题目：植物组织水势的测定(小液流法)教师：XXX实验类型：基础学时：4 (参考)内容：一、实验目的1.学习用小液流法测定植物组织水势的方法2.了解不同组织的水势的大小。

二、实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。

植物体细胞之间、组织之间以及植物体和环境之间的水分移动方向都由水势差决定。

当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势，则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡。

当植物材料浸入不同浓度的溶液中时，由于细胞与溶液之间发生水分交换，使原来的溶液浓度发生改变，浓度的改变又引起了溶液比重的改变。

若将已浸过植物材料的溶液用毛细管吸入一部分，然后移入与原来浓度相同的溶液时，由于其溶液比重的改变。

就会使移入的小液流向上或向下移动或者不移动。

这样，就可以根据小液流的移动情况，求出植物组织的水势。

三、试剂与器材1.材料：菠菜叶片或马铃薯2.试剂：1mol／L蔗糖溶液、甲烯蓝。

3.器材：试管、移液管、毛细滴管(出口处弯成直角)、打孔器。

四、操作方法1.配制不同浓度的蔗糖溶液。

2.试验组8支试管，对照组8支试管,分别编好号。

3.选取实验材料进行实验。

4.观察现象，记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度。

5.计算水势：фW =-RTiC式中фW为细胞水势，R为气体常数0．083×105L·Pa／mol·K，T为绝对温度即273℃+ t(t为实验温度)，i为解离系数(蔗糖为1)，C为等渗溶液的浓度。

五、关键步骤与注意事项1.毛细管尖端弯成直角，试验时从尖端缓慢地横向放出一滴蓝色试验溶液，这样才能观察小液滴上下移动的方向，否则有时小液滴无法从直的毛细滴管尖端放出。

2.不同浓度的溶液都要使用不同的移液管和毛细滴管，微小的浓度变化都会对实验结果造成严重影响。

实验2 植物组织水势的测定（小液流法）一、实验目的1、学习和掌握植物水势测定的原理和意义2、掌握水势测定方法和原理二、原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。

因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）（waterpotential）。

ψw＝ψπ＝－P＝－CRT（大气压）三、材料、仪器设备及试剂1、材料：小白菜或其它作物叶片2、仪器设备：.试管；带有橡皮管的注射针头；镊子；.打孔器；.培养皿。

3、试剂：.0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8mol/L蔗糖溶液；.甲烯蓝粉末。

四、实验步骤1、取干燥洁净的试管8个为甲组，各瓶中分别加入0.1～0.8mol/L蔗糖溶液约10ml，另取8个干燥洁净的试管为乙组，各瓶中分别加入0.1～0.8mol/L蔗糖溶液4ml和微量甲烯蓝粉末着色，上述各瓶加标签注明浓度。

2、取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片，放至培养皿中，混合均匀。

用镊子分别夹入5～8个小圆片到盛有不同浓度的甲烯蓝蔗糖溶液的试管中（乙组）。

盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。

放置约30～60min，为加速水分平衡，应经常摇动小瓶。

3、经一定时间后，用注射针头吸取乙组各瓶蓝色糖液少许，将针头插入对应浓度甲组试管溶液中部，小心地放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向。

（每次测定均要用待测浓度的甲烯蓝蔗糖溶液清洗几次注射针头）。

如此方法检查各瓶中液流的升降动向。

若液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水）；表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势，若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度。

小液流法测定植物水势实验综述报告植物水势是指植物细胞内水分与外部水分的势差，是一个应用广泛的植物生理指标。

测量植物水势的方法有很多种，而小液流法则是其中一种常用的方法。

下面我们将对小液流法测定植物水势实验进行综述。

一、小液流法的原理小液流法是利用数学模型来计算植物组织内的水势，需要用到植物细胞内的水分波动曲线。

在小液流法中，将植物叶片或果实样品上的水瓶与气密桶相连，由水珠自由滴落的速度和数量确定组织水势，并由计算机计算水势的值。

1.选择植物组织样品：一般选择无色透明、新鲜的植物叶片或果实作为样品。

2.准备小液流仪器：小液流仪器包括气密桶、水注射器、密封导管、液压式细管、真空泵等。

3.组织样品处理：将植物样品切成小片或小块，保持其表面清洁和湿润，避免样品受污染和干燥影响实验结果。

4.装配实验装置：将样品放置在液压式细管上，使其插入样品中心。

将密封导管插入液压式细管中央，并紧密密封。

5.调节系统状态：使用真空泵抽出系统中的气体直到气密桶内的压力与外界压力相等，此时用水注射器补充水珠，调整水滴大小，控制固定间隔时间内的滴数。

然后再将气密桶与密封导管相连，使组织样品受到水珠落在其上的作用力。

6.测量水珠滴落速度：在测定固定间隔时间内水滴数量的同时，可以测量水珠的直径和滴落速度。

7.计算水势值：通过测量得到的水滴数量、直径和滴落速度，可以计算出样品的水势值。

三、小液流法实验的优点和限制小液流法测定植物水势，其主要优点在于精度高、速度快，对样品的处理和条件控制较为简单。

但是，该方法有一些限制，如需要使用昂贵的仪器设备、只适用于透明的植物组织样品、所测量的结果可能受到环境因素的影响等。

四、小液流法在植物生理研究中的应用小液流法广泛应用于植物水分逆境适应机制、植物生长发育过程中水势变化的研究、植物抗旱性、耐盐性、耐寒性等方面。

小液流法测定的水势值可作为评价植物应对水分胁迫能力的重要指标，有助于研究胁迫下植物生长发育和相关基因表达的调控机制。

实验二植物组织水势的测定(小液流法)本实验主要是采用小液流法，测定植物组织的水势变化。

水势是植物体内水分分布和转运的重要指标，能够反映植物的水分状态。

实验所需材料：1. 水压传感器2. 水分压力平衡仪3. 测压管4. 接头5. 试管6. 植物组织（如茎片）实验步骤：1. 准备实验材料，组装实验装置。

将水压传感器与水分平衡仪相连接，然后使用接头连接测压管。

2. 准备植物组织。

选择一片新鲜的植物茎片，用刀片将其切成5mm*5mm大小的块，一边切去树皮，并且保持其在水中5分钟，让其吸水。

3. 用细小的刀片将块的表面切成一段长度为约1mm的平面，使其减少压力下的机械性损伤。

同样处理它们对立面的中央一小段，将其口服、用勺子将其取下，直接将其放入小试管中，并迅速加上2ml的浸透液。

4. 手持试管，用尺度计测定柳树片与水之间的高度差，在水分压力平衡仪中设置对应值来调节水平衡仪。

然后将试管放入测压管中，并在水平衡仪中恢复平衡。

5. 记录水压传感器显示的数值，这相当于植物组织的水势大小。

然后将试管拿出，将茎片拿出，称重，测算其相对水分含量。

将茎片重新放回封装好的试管中，并加入2ml 浸透液溶液，重复以上步骤，直至植物组织水势的测定值变化不大。

实验注意事项：1. 选择新鲜的植物组织，避免机械性损伤和水分损失。

2. 手持试管时应迅速测定高度差，避免高度差变化导致的误差。

3. 测量需重复多次来确定准确的水势值。

实验结果：通过实验可以得到植物组织的初始水势变化值，并通过多次测量，得到稳定的水势值。

这可以反映植物的水分状态，比较不同植物组织的水分含量和水势变化，可以进一步研究植物的生长发育和环境适应性。

实验2 植物组织水势的测定(小液流法)一实验目的1、用小液流法测定植物组织水势；2、理解小液流法测定植物组织水势的原理及注意事项。

二实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。

植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定。

当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的水势．可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液浓度的变化，然后根据公式计算渗透势．三仪器药品试管、毛细滴管、烧杯、移液管、刀片、打孔器、镊子土豆、甲烯蓝、蔗糖溶液(1mol/L)四操作步骤1、配制一系列不同浓度的蔗糖溶液：0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5 mol/l 各10ml，注入9支试管，并编号，按编号顺序在试管架上排成一列，作为对照组。

2、另取9支试管，编好号,按顺序放在试管架上，作为试验组。

然后从对照组的各试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管中。

3、用打孔器在马铃薯上打孔，然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。

向试验组的每一试管中加20片马铃薯小块，放置30分钟，在这段时间内摇动数次，到时间后，向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许，并振荡，此时溶液变成蓝色。

4、用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，观察小液滴移动的方向。

如果小液滴向上移动，说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了；如果有色液滴向下移动，则说明细胞从溶液中吸了水，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动(扩散均匀)，则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。

植物组织水势的测定(小液流法)一、目的学会用小液流法来测定植物组织水势。

二、原理当植物组织浸入外界溶液中时，若植物的水势小于外液的水势，则细胞吸水,使外液浓度变大；反之,植物细胞失水，外液浓度变小，若细胞和外液的浓度相等，则外液浓度不发生变化。

溶液浓度不同其比重也不同，不同浓度的两溶液相遇，稀溶液比重小而会上升，浓溶液比重大而会下降。

根据此理,把浸过植物组织的各浓度液滴滴回原相应浓度的各溶液中，液滴会发生上升、下降或基本不动的现象。

如果液滴不动，说明外液在浸过组织后浓度未变，那么就可根据该溶液的浓度计算出其水势。

此水势值也就是待测植物组织水势。

小液流法就根据这个原理，把植物组织浸人一系列不同浓度的煎糖液中,由于比重发生了变化，通过观察滴出小液滴在原相应浓度中的反应而找出等渗浓度，从而就可算出溶液的水势。

三、材料指管木架、指形管(带软木塞)、弯头毛细吸管(带橡皮头)、小镊子、移液管、温度计、打孔器、不同浓度的蔗糖液(0.2～0.6mol/L)、甲烯蓝(亚甲基蓝)、叶片。

四、方法与步骤1、配制一系列不同浓度的蔗糖溶液0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6mol/l各10ml注入7支试管编号按顺序排列作为对照组。

2、另取7支试管编号按顺序排列作为试验组。

然后从对照组的各试管中分别取溶液5ml移入相同编号的试验组试管中。

3、用打孔器在马铃薯上打孔然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。

向试验组的每一试管中加20片马铃薯小块，摇动数次放置30分钟，后向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许并振荡此时溶液变成蓝色。

4、用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取蓝色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部。

缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液观察小液滴移动的方向。

如果小液滴向上移动说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了。

如果有色液滴向下移动则说明细胞从溶液中吸了，水溶液变浓比重变大。

实验一植物组织水势的测定（小液流法）1．实验目的掌握植物组织水势的组成；掌握小液流法测定植物组织水势的方法。

2．实验内容成熟细胞水势主要决定于压力势（ψp）和渗透势（ψs）。

对于外液（如蔗糖溶液）而言，只具有水势或渗透势ψs=-iCRT，R、T均为常数，先要知道蔗糖重量摩尔浓度C，则可知蔗糖溶液水势。

该实验的目的是求得细胞水势，其中的ψp很难测定，故只有把细胞水势与蔗糖溶液水势联系起来，间接利用蔗糖溶液的渗透势计算公式求出细胞水势。

怎样将两者联系起来是该实验的关键。

将已知浓度的蔗糖溶液分装于两个容器中，在其中一个加入植物材料，这样就将植物细胞与蔗糖溶液处于一个系统之中，依水分总是从水势高的区域向水势低的区域移动的原理，当植物细胞水势与蔗糖溶液水势不相等时，它们之间就有水分移动，主要有以下三种情形：因此，如果液滴在原处扩散，即表示浓度不变，此溶液浓度的水势就等于植物组织的水势，而蔗糖溶液的水势ψw = iCRT，只要知道蔗糖溶液的重量摩尔浓度C，即可知其水势，我们观察时，如没有原处扩散现象，则取上升与下降的两相邻试管所对应的蔗糖浓度的平均值作为公式中的C。

3．需用的仪器或试剂（1）仪器设备：带刻度试管；弯头滴管；镊子；打孔器；培养皿。

（2）试剂：0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6mol/L蔗糖溶液；甲烯蓝粉末。

4．实验步骤（1）取0.1～0.6m蔗糖溶液各10ml于大试管中；分取2ml于对应的青霉素瓶和分取3ml 于对应指形管。

（2）在每个青霉素瓶中各放20片叶圆片，不时摇动，30min后，各加微量的甲烯兰充分摇匀，显浅兰色。

（3）用弯头毛细管吸一小滴溶液挤入对应的指形管中，同时观察液滴移动情况，记录结果于下表：（4）结果计算：ψw =－iCRT（巴）其中i=1，R=0.008MPa·Kg·mol-1·K-1，C为等渗浓度（mol/L）。

C=(下沉最高浓度+上升最低浓度)/25．教学方式：室内实验6．考核要求掌握植物组织水势的测定方法。

植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告一、实验目的和要求了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。

二、实验原理小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。

植物细胞是一个渗透系统。

当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。

当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。

当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。

压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。

导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。

因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。

当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。

将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。

三、主要仪器设备小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室四、操作方法和实验步骤小液流法：1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。

2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。

每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。

期间晃动（3-4次）。

3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。

4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。

Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+toC) ×浓度压力室法：根据植物材料选取枝条（或叶片）型的压力室盖→将试样装入压力室盖的孔（或槽）中夹紧，压入压力室并顺时针旋转紧固。

打开钢瓶阀门，使控制阀朝向加压，缓慢打开测定阀，使加压速率达0.1bar,仔细观察伸出压力室盖的植物样品，一发现木质部转湿润液体溢出，立即关闭测定阀，记录压力表读数。

小液流法测定植物组织水势实验心得人们常用不同的方法来测定植物组织中的含水量，最常见的有测定含水量、叶片含水量和茎段含水量等，今天我们要测定植物茎段的含水量。

小液流法实验器材：长2~5cm的无锈钢刀、刻度吸管、双面胶带、空心铜管、酒精灯、锥形瓶、烧杯、毛玻璃片、温度计、酒精灯、水槽。

一、原理：用酒精灯加热，通过温度计将酒精灯的火焰温度与组织中水势之间的关系，使水的汽化热转变成内能，然后通过实验确定合适的加热温度与时间。

方法步骤： 1、取水稻茎段两端切成圆柱形，用一个直径1厘米左右的细铜管固定在两端； 2、制备待测水稻茎段的三部分含水量，即用酒精灯分别对茎段两端进行加热，并做好标记； 3、将装有待测水稻茎段的铜管的其中一端用双面胶带封住，另一端插入盛水的烧杯中，再将装有茎段的铜管的另一端塞紧，铜管口用细绳扎紧； 4、用锥形瓶收集茎段加热产生的气泡，注意调整好气压的大小，当气泡数目较多时，应适当减少压力； 5、用温度计测量加热前铜管内的水的温度和水沸腾后到冷却至室温这段时间内，铜管内水的温度，用以校正测得的温度； 6、计算每分钟收集到的气泡数目N； 7、从而可根据公式：μ=Ntrb1-2计算出每分钟内在茎段内产生的气泡数目； 8、如果某时刻气泡数目N为50，则t为50/ μ； 9、根据公式： C水= 0.012u气n，可计算出待测植物茎段的含水量。

二、注意事项： 1、在保证安全的情况下尽可能选择大的烧杯，实验结束后及时将铜管移出； 2、铜管内的水量应适当，并保证在加热过程中水不会蒸发掉；3、加热前铜管口塞子要密封，防止水蒸气逃逸；4、试验完毕后应把铜管从烧杯中取出，并将烧杯倒置；5、加热过程中，气泡都会产生，但是不同类型的组织产生的气泡数目不同，茎段由于含水量比较低，所以水泡很难达到明显；6、取水时，不要碰到铜管，防止铜管破裂。

水势高是因为细胞原生质里的水分增多而导致，在实验过程中一定要密封加热的铜管口，防止加热过程中的水蒸气逃逸。

植物组织水势的测定小液流法植物组织的水势测定在植物生理学研究中起着重要的作用。

小液流法是一种常用的测定植物组织水势的方法。

本文将介绍小液流法的原理、操作步骤和注意事项，帮助读者了解和掌握这一方法。

小液流法是通过测量植物组织的液体流动速度，来推断组织水势的高低。

其原理基于渗透压的作用。

渗透压是物质在溶液中扩散过程中产生的压力差，植物细胞内高浓度的溶液会吸引水分进入细胞，形成渗透压差。

根据渗透压差的大小，可以推断出细胞内部的水势。

液体在细胞内的扩散速度与细胞内水势成反比，因此，测量液体扩散速度可以间接得到组织水势的大小。

进行小液流法测定前，首先需要准备好实验所需的材料和仪器。

主要包括：测量液体（一般为含有示踪剂的染液）、试管、玻璃棒、显微镜和计时器等。

接下来，按照以下步骤进行实验：1. 取一根新鲜的植物茎段，并将其放入试管中。

2. 在试管内注入适量的测量液体，确保茎段完全浸泡其中。

3. 用玻璃棒轻轻搅拌试管内的液体，使其均匀分布。

4. 使用显微镜观察试管内液体的流动情况。

5. 同时启动计时器，并记录液体从茎段内向外扩散的时间。

6. 根据液体扩散的速度和时间，计算出液体的扩散速率。

7. 根据扩散速率，推断出植物组织的水势大小。

在进行小液流法测定时，需要注意以下几点：1. 选择合适的测量液体和示踪剂，以保证实验结果的准确性和可重复性。

2. 保证试管内液体的温度和浓度稳定，避免影响液体扩散速率的因素。

3. 在观察和记录液体扩散速度时，要尽量减小误差，可以多次进行实验并取平均值。

4. 当观察的茎段比较短时，可以考虑将茎段剪成一定长度，以增加实验的精确性。

5. 在实验过程中，要保持实验环境的稳定，避免外界因素对实验结果的干扰。

小液流法是测定植物组织水势的一种有效方法，其操作相对简单，结果可靠。

通过掌握这一方法，可以更好地理解植物的生理过程，为进一步研究植物的水分平衡和调节机制提供有力的支持。

小液流法测定植物组织水势实验心得一、实验目的和原理植物组织水势是测量细胞渗透压大小的重要指标，也是水势计算的基础。

通常采用毛细管法进行测定。

用浸入生理盐水的毛细管来测量植物的组织水势，称为毛细管小液流法。

利用该法可以测定植物各种器官的组织水势，包括花、果实等，尤其适用于测定低浓度水溶液。

由于毛细管只能随着植物细胞内外的液体体积变化而发生相应的变化，所以，植物组织水势是利用植物组织中水分扩散和运动的规律进行测定的。

在实验过程中，为了使电极与被测材料紧密接触，避免产生大量气泡，导致实验数据不准确，就必须选择合适的毛细管，最好在注射器内加一定浓度的缓冲溶液，使得在反复吸取少量液体时不至于损坏毛细管。

另外，植物组织内部的水分及环境的影响都将直接影响到实验结果，因此，这一实验应当在无菌条件下进行，以避免杂菌污染。

由于毛细管的直径非常小，且毛细管管壁很薄，对液体蒸发非常敏感，故应尽可能地在一个单位面积上均匀滴加试液，使试液与组织充分接触。

为此需要调整反应时间和温度。

这样可以减少水分蒸发。

同时应注意反应时间不宜过长，否则会引起附加误差。

这样既可以保证准确性，又可以提高实验效率。

二、实验内容三、思考与体会通过这次实验，我们熟悉了毛细管小液流法的基本操作和注意事项，更深刻的认识到掌握水势的概念及正确测定植物组织水势的重要性。

实验中使用的各种仪器、器皿都必须干净，这是由于植物组织中含有许多纤维素、半纤维素和果胶质等成分，在某些环境条件下，特别是在酸碱介质中这些物质极易吸收空气中的二氧化碳，并将其固定下来，成为一些沉淀物，这些沉淀物对毛细管造成了较大的阻力。

当沉淀物越积越多时，毛细管的孔径逐渐被堵塞，结果使毛细管中的液流中断，使毛细管无法继续滴液。

为此，必须对毛细管进行酸洗或碱洗。

所谓酸洗，就是在浓度为0。

5%盐酸的水溶液中浸泡30分钟；所谓碱洗，就是在浓度为5%氢氧化钠的水溶液中浸泡30分钟。

然后进行酸洗、碱洗后的毛细管放置1～2分钟，待沉淀物重新变为可移动状态，再进行下一步测定。

( 实验报告)姓名：____________________单位：____________________日期：____________________编号：YB-BH-054212植物组织水势的测定实验报告Experimental report on measuring water potential of plant tissue植物组织水势的测定实验报告一、实验目的和要求了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。

二、实验原理小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。

植物细胞是一个渗透系统。

当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。

当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。

当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。

压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。

导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。

因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。

当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。

将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。

三、主要仪器设备小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L 蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室四、操作方法和实验步骤小液流法：1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。

2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。

每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。

期间晃动（3-4次）。

3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。

4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。