大鼠尾静脉注射

实验动物的给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。

给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。

（一）注射给药法1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。

①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；③兔在背部或耳根部注射；④蛙可在脊背部淋巴囊注射；⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。

2. 皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。

如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。

方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。

注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

3. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，常采用肌肉注射。

肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。

注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。

给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。

4. 腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。

此法大小鼠用的较多。

5. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效。

但排泄较快，作用时间较短。

①小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。

鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。

操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。

如果我没记错的话大鼠静脉注射最大给药量是5mL/kg（貌似是错了）1、大鼠灌胃大鼠灌胃是最多见的给药方法之一。

灌胃所用的针头可以从市场上采办，操作方法和小鼠灌胃神肖酷似，只是因为大鼠体积较大，抓大鼠的伎俩和小鼠有所差别。

大鼠灌胃是在清醒状况下举行的，不需要麻醉。

大鼠的灌胃针长约6～8cm，直径约1.2mm。

大鼠灌胃时，右首持灌胃打针器，左手拇指和食中二指相对于，捉住大鼠颈部皮肤，使大鼠的头部和颈部及躯干呈一直线，不需要固定大鼠的尾巴，就可以实行灌胃操作了，其余的操作均和小鼠一样。

大鼠一般灌胃量为1ml/100g身体的重量，是以一般大鼠灌入2ml是可以的。

大鼠的灌胃给药体积通常是5～10ml/kg。

但是药物的液体浓度是需要自己按照动物实验方法学的方法举行换算：200g大鼠对应70kg人的折算系数为0.018。

二、大鼠腹腔打针腹腔打针是常见的给药方式，尤其是在麻醉时。

常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔打针。

大鼠腹腔打针的方法和小鼠基本相同。

1.大鼠腹腔打针可以用5ml的打针器，配合5.5～7号针头。

2.腹腔打针时右首持打针器，左手的小拇哥儿和无名指捉住大鼠的尾巴，别的三个手指头捉住大鼠的颈部，使大鼠的头部向下。

如许腹腔中的器官就会天然倒向胸部，防止打针器刺时髦毁伤大肠、小肠等器官。

进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。

3.尤其是对身体的重量较小的大鼠，腹腔打针时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿行腹中线后在腹部的另外一侧步入腹腔，打针完药物后，徐徐拔出针头，并轻细扭转针头，防止漏液。

4.大鼠腹腔打针的给药容积通常是5～10ml/kg。

3、大鼠尾静脉打针这也是常见的操作，稍微有点难度，没有指导的话，一开始有可能会感觉有点惊惶失措。

但是可以肯定的说，只要掌握了方法，大鼠的尾静脉打针照旧很容易的。

总的来说，大小鼠的尾静脉打针难度至关，谙练后，大鼠应该比小鼠打针更易，因为大鼠的尾巴较粗，而且血管也较粗，进针的手感比较好找。

大鼠尾静脉注射方法的比较彭艳;姚吉龙【摘要】目的比较24号套管针尾静脉注射法和0.5号针头尾静脉注射法的注射成功率,建立一种准确可靠的大鼠尾静脉注射方法.方法 Wistar大鼠60只分别采用24号套管针和0.5号针头进行尾静脉注射,观察针头置入成功率和注射成功率.结果套管针置入成功率和0.5号针头置入成功率差异无统计学意义,套管针尾静脉注射成功率高于0.5号针头.结论大鼠套管针尾静脉注射法优于0.5号针头尾静脉注射法.【期刊名称】《海南医学》【年(卷),期】2012(023)002【总页数】2页(P112-113)【关键词】套管针;Wistar大鼠;尾静脉;注射法【作者】彭艳;姚吉龙【作者单位】南方医科大学附属深圳市妇幼保健院,广东深圳518028;南方医科大学附属深圳市妇幼保健院,广东深圳518028【正文语种】中文【中图分类】R-332大鼠尾静脉注射是动物实验中药物干预的常用途径。

一般在清醒状态予以尾静脉注射，要求注射液入量准确。

传统的采用1 ml注射器(0.5号针头)在回抽见血后予以注射，但是由于注射过程中大鼠挣扎尾部摆动易使针头移位，导致注射失败，难以估算注射液有效入量，影响最终的实验结果。

因此需要寻找一种可靠的尾静脉注射法，保证注射液完全注入静脉。

套管针不仅适用于连续、间断、随时静脉输液用药，而且也可用于烦躁不安、四肢躁动、神志不清的患者或者是产时分娩的孕妇，可以有效减少针头的移位和脱出血管[1]。

我们在动物实验技能操作中，采用24号套管针尾静脉注射法，可以取得较好的注射效果。

现将24号套管针尾静脉注射法和0.5号针头尾静脉注射法进行比较。

1.1 用物准备选用体重在150 g左右的健康Wistar大鼠60只，1 ml一次性注射器(0.5号针头)，24号套管针。

1.2 固定和血管准备大鼠置于固定器内，鼠尾在外，呈头朝上的45°倾斜状体位10 min，使尾静脉充盈。

大鼠尾静脉有3根，左右两侧和背部各1根，左右两侧静脉较表浅且容易显露和固定，常作为尾静脉注射的首选。

实验动物学考试题（附答案）一、单选题（共60题，每题1分，共60分）1、寄生虫的成虫和幼虫往往寄生于不同的宿主，我们把成虫寄生的宿主称作________。

( )A、终末宿主B、带虫宿主C、中间宿主D、第一宿主正确答案：A2、小鼠与大鼠尾静脉注射时，不恰当的方法是 ______。

( )A、尾部用70~80℃的热水浸润几分钟使血管扩张B、用75%酒精棉球反复擦拭，使血管充盈C、针头尽量采取与尾部平等的角度进针D、要从尾末端处刺入正确答案：A3、操作简便，麻醉过程较平稳，常用的麻醉方法是 ______。

( )A、肌肉注射B、腹腔和静脉给药法C、皮下注射法D、吸入法正确答案：B4、细菌的化学组成中，________占主要成分。

( )A、碳水化合物B、蛋白C、水D、脂肪正确答案：C5、环境中________浓度过高可促进支原体的生长，继而促进肺炎和中耳炎的发生。

( )A、二氧化硫B、二氧化碳C、氧D、氨正确答案：D6、适合观察药物对循环系统的作用机制分析的实验动物 ______。

( )A、小鼠B、豚鼠C、兔D、猫正确答案：D7、研究人类基因功能最理想的模式动物是 ______。

( )A、小鼠B、豚鼠C、大鼠D、犬正确答案：A8、豚鼠属于________。

( )A、扁形动物门B、环节动物门C、脊椎动物门D、节肢动物门正确答案：C9、哪个不是通常认为的模式动物 ______。

( )A、大鼠B、小鼠C、班马鱼D、果蝇正确答案：A10、一般小鼠的寿命为______年。

( )A、6B、4C、5D、1-2正确答案：D11、长期毒性试验大动物一般选 ______。

( )A、猴B、猪C、兔D、Beagle犬正确答案：D12、羊属于______。

( )A、爬行纲B、哺乳纲C、食肉目D、奇蹄目正确答案：B13、普通级实验猴需要排除的病毒是______。

( )A、淋巴细胞脉络丛脑膜炎病毒B、仙台病毒C、猴B病毒D、汉坦病毒正确答案：C14、专用于新药临床前安全性评价的法规是 ______。

大鼠取血方法1.割(剪)尾采血：当所需血量很少时采用本法。

每鼠一般可采血10余次以上。

小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。

2.鼠尾刺血法：大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。

先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。

用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。

如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。

3.眼眶静脉丛采血：体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml；体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。

4.断头取血：采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。

右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。

小鼠可采用约0.8～1.2ml;大鼠约5-10ml。

5.心脏采血：鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。

若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。

小鼠约0.5-0.6ml；大鼠约0.8-1.2ml。

1.浅麻醉大鼠2.四肢展开固定在平板上3.按常规碘酒、酒精消毒后4.用食指感觉心博最动处5.大约在胸骨下缘1/3处、稍偏左0.2-0.5左右的地方垂直进针（1/4号）6.针头抵心脏有明显的搏动感，再稍进针，有空虚感，血液跳跃而上针腔7.从血液的颜色很容易判断在心室还是心房，一般都在心室8.多次同一大鼠的心脏采血，切记初次进针的位置及深度，不要随意更换固定姿势！9.我每次取1ml血液，大约可操作4-5次（200g大鼠）6.颈动静脉采血：先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。

在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。

离心取上清后，余下的红细胞加适量生理盐水从尾静脉中回输给大鼠，这样可能对大鼠的血量、体内药物的浓度等影响均小些。

尾静脉注射技巧
尾静脉注射是指将药物注射入小鼠、大鼠尾部的静脉，通常用于实验室动物的药理研究、毒理研究和生物学实验等研究领域。

以下是尾静脉注射的技巧：
1.准备好注射器、药物和针头。

注射器选择0.5毫升或1毫升的，针头可以选择30号或32号。

2.将小鼠或大鼠置于实验台上，用70%乙醇清洁尾部。

3.可以用温水浸泡尾巴5-10分钟，使尾巴血管扩张，易于找到尾静脉。

4.用手指轻轻压迫尾部，将血液推至尾的远端，找到尾的基部，可以在尾基部用光镜找到明显的血管。

5.用消毒的针头轻轻扎破皮肤，针头与血管成约45度角度插入尾静脉，向远端轻轻推进，直到看到血液。

6.吸取药液，将药物注入尾静脉内。

7.拔出针头，用棉球或压迫止血器压迫注射部位，避免流血。

8.观察研究动物的反应状态，如有异常情况及时处理。

注射完毕后，可以将小鼠或大鼠放回笼子内，并留意其情况，通常注射后应保持动物安静，24小时内不给予水和食物。

需要注意的是，尾静脉注射对动物可能存在一定的刺激和压迫，应根据具体实验需要和动物功能状态选择注射液量和注射频率，避免超量或过
度注射导致动物伤害和严重不良反应。

同时也要严格按照实验室动物合法管理要求进行操作，减少对动物的伤害。

大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得- -大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。

小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。

通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。

在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。

如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。

或者用这个方法：1 小鼠要固定好，自制一个笼子，前面通气，中间最好有一个挡板，让小鼠不能后退，筒子后面开一个口，尾巴从这里出来，这样固定牢靠；2、注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟，有利于注射；3、先远后尽，不要一开始就从尾根部，那样失败了不好办；4、进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。

至于能否穿进，个人手感如何，全靠自己啦。

多练习，一定很快掌握的，不难，绝对不难！我练习10余只小鼠就比较熟练了2. 用酒精棉球擦拭尾巴,使血管扩张;或者用热水或者热毛巾焐热，使静脉扩张；选用适当的针头，越细越好；在尾部较靠近上段的地方注射，这里血管比较大。

用酒精或热水擦拭，擦拭的时候，可把尾巴用力扯在桌面上。

注射状态为尾巴发白，紧靠白色的尾骨两侧清晰可见两根红色静脉。

3.用左手的食指,中指,无名指及大拇指将小鼠尾巴固定,; 手法：握住1ml注射器前面0.1ml处。

右手小指搭在拽着鼠尾的左手拇指处按此手形进针；看针尖前面那个斜面有3/4（关键），如果血管充盈则进1/2，进入，停，上挑针头，进针；左右轻摆动，如可动，可注射。

原则是：把你第一次打进的手形，完全固定下来，每次都重复。

4.注射:注射时左手扯尾，使尾巴紧贴桌面，尾巴与桌边紧贴转弯处为进针部位，一般选择距尾尖1/4或1/3处进针，此处皮肤较薄，血管清晰，进针容易。

（1）天之饺子:→首先将大鼠的尾巴拉直，绷紧。

（关键）进针时不要太深，针头入皮肤后马上把针头略往上，平行进针。

（用4号针头）针扎入时有落空感，推液时无阻力则说明成功了！如针头处出现皮丘则说明在皮下，推出重来。

进针处最好在尾巴的1/3-1/2处，甚至可以更下一点。

这样一次失败了还可以往上再来，不要马上在最高处打，因为你们要打这么多天。

要为以后作准备。

用热水、酒精、红外都可以扩张血管。

可以视情况而用。

总而言之，最重要的是“熟能生巧”。

你最好先练习一下或请高手相助。

不然到了最后几天，真的很难打的。

希望这些对你有用。

我觉得大鼠的尾巴比小鼠长且粗，有左，右两根。

我想打的好应该没问题的。

→你的是什么细胞？一定要尽量把细胞打散，不然很容易引起栓塞！（2）小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。

通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。

在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。

如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行（3）ycr一定要用热水或者热毛巾焐热，使静脉扩张；选用适当的针头，越细越好；在尾部较靠近上段的地方注射，这里血管比较大（4）winson建议你先用蓝墨水练手，因为新手往往看不出打入的是皮下还是静脉其实真的只能熟能生巧一般推荐在尾下1/3处进针，但是我觉得1/2处准确度较好，个人经验针头可以插深入些，防止意外摆动戳破静脉而注入皮下，很多时候你觉得进了血管打的却是皮下，就是因为这个原因（5）hjpkf本人练尾静脉注射已经有一段时间了，经常是失败的机会比成功的几率高得多，但也有一些感受：动物越小越好操作，小鼠比大鼠容易，幼年大鼠比成年大鼠容易；对于小鼠最好还是尾静脉注射，这样损伤最小；成年大鼠实在不行可以选股静脉注射，相对要容易一些；最重要的一点，必须多练，进针时的那种感觉必须自己好好体会，熟能生巧，这是常识。