蓝白斑筛选步骤
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简述蓝白斑筛选原理蓝白斑筛选(Blue-WhiteScreening)是一种分子生物学方法,它用于鉴定具有特定基因的细菌株。
蓝白斑筛选的最初想法是从一种确定的细菌介质中检测特定基因的存在,该介质受到结合的载体(如DNA或细菌DNA的封闭抗体)的支配。
其基本原理是将细菌介质中的细菌冲洗悬浮,并加入一种特定的抗性素(例如培养基中的抗生素),使得只有携带具有抗性基因的细菌才能生存,而未携带这样基因的细菌死亡。
这种方法可以快速准确地检测出细菌株中具有抗性基因的细菌株,而无需耗费大量的时间进行实验。
蓝白斑筛选的过程主要包括四个步骤:(1)细菌介质中的细菌悬浮被加入到一种细胞毒性物质(如抗生素)中;(2)悬浮物经过一定时间和条件后,只有携带具有抗毒性基因的细菌存活,没有携带这样基因的细菌死亡;(3)将抗毒性素从细菌介质中洗掉;(4)通过比较死亡和存活的细菌,从而可以将具有特定抗毒性基因的细菌株辨别出来。
在蓝白斑筛选的实验中,抗毒性素可以是任何特定的化合物,例如抗生素,甲基红,乙醛等。
从抗毒性素的效果来看,它不能完全消灭整个细菌群,而是将这些细菌分为两组:一组是抗毒性素不易受到影响的细菌,即携带有特定抗毒性基因的细菌;另一组是抗毒性素很容易受到影响的细菌,即没有携带特定抗毒性基因的细菌。
然后,洗掉抗毒性素后,可以通过观察实验中死亡和存活的细菌,从而将那些携带特定抗毒性基因的细菌株辨别出来。
蓝白斑筛选法的优点在于它比其他基因组学技术更加快速,也比其他基因筛选方法更加简单,可以在不到一个月的时间内,快速准确地检测出携带特定基因的细菌株。
另外,由于它只需要很少的实验操作,因此可以大大节省实验时间和成本。
但是,蓝白斑筛选也有一些缺点,其中最重要的是,它只可以检测携带一个特定基因的细菌株,而无法检测其余的基因。
其次,对抗毒性的效果也不一定非常稳定,在抗毒性素的浓度较低的情况下,有时会出现抗毒性不足的情况。
总的来说,蓝白斑筛选是一种简单有效的基因筛选方法,它可以有效地检测携带特定基因的细菌株,从而节约大量的实验时间和成本。
1载体连接及蓝白筛选1、在微量离心管中配置下列DNA溶液,全量5ul。
pMD 19-T Vector 1 0.5ulInsert DNA 3 2ulSolution 1 2.5ul2、16℃反应过夜。
3、(提前打开水浴锅,打开超净工作台,同时灭上1ml的枪和枪头)全量5ul,加入50ul 感受态细胞。
(加感受态细胞要慢慢吸取慢慢打出,同时不要离开冰太长时间)4、冰中放置30min。
5、42℃加热45s后,在冰中放置2-3min。
6、加入890ul SOC(LB+Amp)培养基,37℃振荡(180)培养60min。
7、取出,先用酒精擦拭手,操作台和管子,点燃酒精灯,打开培养皿,将边沿在酒精灯上烤一下,将混合液倒入培养皿中,摇动培养皿铺匀,然后拿起推子,在酒精中灭菌,放在酒精灯上烤一下,冷却后在培养皿中来回推上几次,以混匀,之后凉10min左右,再次推匀,凉一会。
8、封口,放在37℃下培养过夜,不摇。
大约需要培养24小时。
9、提前准备好(LB+Amp)培养基,和灭菌的锥形瓶,蓝白菌落长出来后,先用酒精灯擦拭手,桌面,及锥形瓶表明,LB+Amp倒入锥形瓶中适量,打开板子,酒精稍瓶口和镊子,用镊子夹起牙签,挑单独的,长得较圆的菌落斑,放入锥形瓶中,封口,标记。
10、摇菌,37℃振荡(180),过夜,然后做菌液PCR。
溶液配置1、配置200ml LB 培养基Tryphone(蛋白胨/胰蛋白胨)2gYeast Extract(酵母菌提取物)1gNaCL 2g加入200ml蒸馏水,加40ul 5N 的NaOH ,称取3g Agar 加入锥形瓶中,提前用报纸包好10-12个培养皿,放在高压蒸汽锅中121℃21min。
2、配置Ampicillin (氨苄青霉素) 5ml取0.5g Ampicillin 倒入10ml离心管中,用5ml蒸馏水溶解。
用0.22um过滤膜过滤至2ml离心管中(在超净工作台上进行)3、X-Gal 5ml取0.1gX-Gal溶于5ml DMF(二甲基甲酰胺)用用0.22um过滤膜过滤至2ml离心管中(在超净工作台上进行)4、IPTG 5ml取0.12g 溶于蒸馏水中。
蓝白斑筛选法
蓝白斑筛选是一种基因工程常用的细菌重组子的筛选方法。
其原理是利用野生型埃希氏大肠杆菌(E.Coli)产生的β-半乳糖苷酶可以将无色化合物X-gal(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷)切割成半乳糖和深蓝色的物质5-溴-4-靛蓝。
5-溴-4-靛蓝可使整个菌落产生蓝色变化。
在经人工插入外源基因后,突变型大肠杆菌的β半乳糖苷酶基因被插入的外源基因切断,无法形成完整的β半乳糖苷酶,故不能对无色化合物X-gal进行切割,菌落呈白色。
蓝白斑筛选在指示培养基上,未转化质粒的菌落因无抗生素抗性而不能生长,重组质粒的菌落是白色的,非重组质粒的菌落是蓝色的,以颜色不同为依据直接筛选重组克隆的方法。
这种重组子的筛选,称为蓝白斑筛选。
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蓝白斑筛选操作步骤
《蓝白斑筛选操作步骤》
蓝白斑筛选技术非常受欢迎,因为它可以让图像和文本变得更加清晰。
那么,蓝白斑筛选操作步骤又是什么呢?答案就在下文中。
首先,蓝白斑筛选操作的步骤如下:
1)选择正确的斑点:在开始蓝白斑筛选之前,第一步就是选择正确的斑点,这些斑点会最大化图案细节,使其更加清晰。
2)调整斑点大小:在确定斑点位置后,接下来就要调整斑点的大小,以使图案更加清楚可见。
3)调整斑点强度:根据需要,可以调整斑点的强度,以突出图案中的重要信息。
4)选择颜色模式:最后,在图像完成编辑后,选择适合图像的颜色模式,以更好的表现出图像的效果。
以上就是蓝白斑筛选操作步骤,正确的操作可以有效提高图像和文字的可视化效果,从而让图像更加精美了。
蓝白斑筛选的原理及应用1. 前言蓝白斑筛选(Blue-white screening)是一种常用的分子生物学技术,用于检测DNA重组是否成功。
通过该技术,可以筛选出含有重组DNA的菌落,从而实现对目标基因的定位和表达。
2. 原理蓝白斑筛选的原理基于β-半乳糖苷酶(β-galactosidase)的活性差异。
在该筛选系统中,包含有DNA重组产物的细菌表型为蓝色,未重组的细菌表型为白色。
具体的实验步骤如下:1.在含有相应选择性抗生素的培养基上培养细菌。
2.通过转化技术将重组的质粒DNA导入细菌宿主中。
3.将转化后的细菌涂布在含有X-半乳糖苷(X-Gal)的琼脂糖平板上。
4.在琼脂糖平板上,转化成功的细菌会表现为蓝色的菌落,未转化的细菌则为白色。
3. 应用蓝白斑筛选广泛应用于基因克隆、基因工程、蛋白质表达等研究领域。
3.1 基因克隆在基因克隆中,蓝白斑筛选常用于检测重组质粒的构建是否成功。
通过筛选出蓝色的菌落,可以快速确定重组质粒中是否含有目标基因。
3.2 基因工程在基因工程中,蓝白斑筛选被用于定位和筛选带有特定序列的质粒。
通过构建含有目标基因的质粒,将其导入细菌中,可以筛选出含有目标基因的蓝色菌落,从而实现对基因的定位和表达。
3.3 蛋白质表达蓝白斑筛选还可以用于蛋白质表达的研究。
通过将目标蛋白基因插入表达载体中,并导入细菌中进行表达,可以通过蓝白斑筛选系统筛选出表达目标蛋白的菌落。
4. 优势和局限性4.1 优势•简单易行:蓝白斑筛选是一种简单易行的筛选方法,无需复杂的仪器设备,只需要琼脂糖平板和相应的培养基。
•高效性:通过蓝白斑筛选系统,可以快速筛选出重组细菌,提高工作效率。
•直观可视化:转化成功的细菌会在琼脂糖平板上形成蓝色的菌落,使得检测结果可以直观地通过肉眼观察。
4.2 局限性•假阳性筛选:由于β-半乳糖苷酶活性的变异性,部分非重组菌落也可能呈现蓝色。
因此,在分析筛选结果时需采取其他方法进行验证。
简述蓝白斑筛选原理蓝白斑筛选原理是一种遗传学技术,用于检测杂合(复合)体中基因突变的位点,或者在遗传研究中用于突变型定位。
它可以有效地排除数量性状的遗传研究中的隐性基因位点,更重要的是,它可以作为一种有效的基因突变检测工具,用于检测罕见的基因多态性,以及潜在的功能性突变。
蓝白斑筛选原理主要利用特殊处理后的哺乳动物细胞,用一定量的蓝色和白色染料将复制有基因突变的杂合子的DNA进行染色,成为蓝白斑染色的DNA片段,并将其进行筛选。
与普通DNA结构相比,蓝白斑染色的DNA片段外表有明显的蓝白色斑点,且其含量较普通DNA 片段有所差异。
这种差异代表的是在突变的位点上发生的变异,从而形成了蓝白斑染色的DNA片段。
蓝白斑筛选原理的基本操作步骤包括:(1)获取细胞样品,通常用于获取杂合子DNA样本;(2)将样本中的染色体分离出来,并将染色体发生变异的基因突变位点的DNA片段进行染色;(3)确定染色体的变异位点(如基因突变等),并将其进行筛选;(4)根据筛选结果,对不同类型的 DNA段进行分类;(5)根据筛选结果,进一步确定突变位点,并进行基因定位及功能分析。
由于蓝白斑筛选原理可以有效检测杂合子中基因突变的位点,因此在基因突变检测方面被广泛应用,如在遗传研究中,用于诊断染色体突变及重组,检测遗传性疾病的致病基因,以及研究罕见的变异位点的含义,等等。
此外,由于蓝白斑筛选原理不需要使用复杂的基因工程技术,操作简便。
同时,它也具有很高的灵敏度和特异性,可以有效的排除多态性筛选中的假阳性,从而提高基因多态性筛选的准确性。
因此,在遗传学研究方面,蓝白斑筛选原理具有重要意义,不仅可以有效检测杂合子中基因突变的位点,而且还可以用于检测罕见的基因多态性,以及潜在的功能性突变。
因此,未来蓝白斑筛选原理应用于基因突变检测,对遗传学研究和潜在功能突变位点定位具有重要的意义。
蓝白斑筛选标准操作规程(编号:009)
1、目的及适用范围
pGEM-T载体有多克隆区具有编码β-半乳糖苷酶的基因,插入失活的α-肽可在指示平板上通过蓝,白菌落直接筛选重组菌落。
2、主要仪器及试剂
微量移液器、玻璃涂布器、0.22µM滤器、恒温培养箱、x-gal(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖甘)、IPTG(异丙基硫代-β-D-半乳糖甘)
3、操作步骤
3.1 制备含相应抗生素(Amp+等)的琼脂平板。
3.2 于平板表面加x-gal 40µl和IPTG 4µL,用无菌玻璃涂布器将试剂均匀涂布于整个平板表面,37℃,1h,至所有液体都消失。
3.3 将200µL转化的菌液涂布于平板表面,37℃,20min后,倒置平板继续培养12-16h。
3.4 终止培养,将平板置4℃,1-4h,观察确定蓝白斑。
3.5 挑取白色菌落置3-5mL LB(含相应抗生素)液体培养基中,37℃,震荡培养8-12h,提取质粒,限制酶酶切分析进一步鉴定。
附:
1、x-gal:20mg/mL
20mg x-gal 溶于1mL二甲基甲酰胺,-20℃避光保存。
2、IPTG:200mg/mL
1g IPTG 溶于4mL去离子双蒸水,定容至5mL,0.22µm滤器过滤除菌,-20℃避光保存。
25。
简述蓝白斑筛选原理
蓝白斑筛选原理是一种用于分析基因突变影响的非常有用的方法。
它利用蓝白斑DNA探针和含有基因突变的DNA样本,可以快速准确地检测出受影响的基因。
蓝白斑筛选技术主要分为四个步骤,分别是构建DNA探针库、选择合适的探针、进行杂交扩增和电泳分析。
首先,构建DNA探针库。
蓝白斑筛选技术所用的探针是根据受检测的基因突变特异性的集合,只有当基因突变发生时,才会出现该特异性。
为了确保提取出合理的特异性,通常采用多个探针,以确保提取出足够合理的特异性,这样就可以最精确地反映基因突变的结果。
其次,选择合适的探针。
当DNA探针库构建完成之后,需要根据检测的基因突变,筛选出最能够特异性反映这种基因突变的基因突变探针。
为了确保正确性,一般会使用多个探针,并且进行大量的多次试验,以确保精确性,最终确定最佳的探针。
第三,进行杂交扩增。
包含基因突变的DNA样本和被选择的探针库被混合放在一起,当探针和DNA配对时,就可以在质粒中复制出特异性的基因突变,该现象被称为杂交扩增。
最后,进行电泳分析。
当杂交扩增完成之后,混合物被放入电泳槽中,通过电泳技术把复制出来的特异性基因突变分离出来,最终得到特异性的基因突变。
总之,蓝白斑筛选原理是一种基因突变分析的优秀方法,它可以快速准确反映基因突变的结果,使得分析基因变异的过程变得容易得多。
它的使用广泛,已经发挥出重要作用,在基因编辑、基因疾病和
药物开发等领域都发挥了重要作用。
一、实验目的1. 掌握蓝白斑筛选的原理和方法。
2. 学会使用蓝白斑筛选法筛选含有重组质粒的细菌。
二、实验原理蓝白斑筛选是基因工程操作中常用的一种重组子筛选方法。
该实验基于大肠杆菌的乳糖操纵子结构,其中含有-半乳糖苷酶基因(lacZ)的调控序列和前146个氨基酸的编码信息。
当外源DNA插入到质粒的多克隆位点后,会导致无-互补能力的氨基端片段,使得带有重组质粒的细菌形成白色菌落,而未发生重组的细菌形成蓝色菌落。
三、实验材料1. 大肠杆菌菌株(如DH5α)2. 载体(如pUC19)3. 目的基因片段4. X-gal(5-溴-4-氯-3-吲哚--D-半乳糖苷)5. IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷)6. LB培养基7. 琼脂糖8. 灭菌工具(如剪刀、镊子、移液枪等)9. 紫外灯四、实验步骤1. 预备工作(1)将LB培养基和琼脂糖在100℃下煮沸5分钟,待冷却至60℃左右加入适量抗生素,充分混匀后倒入培养皿中,待凝固。
(2)用无菌移液枪吸取适量转化液,涂布在含有抗生素的琼脂糖平板上。
(3)将平板放入37℃温箱中倒置培养12-16小时。
2. 蓝白斑筛选(1)在平板中加入适量X-gal和IPTG,充分混匀。
(2)将平板放入37℃温箱中倒置培养12-16小时。
3. 观察结果(1)观察平板上的菌落,根据菌落颜色判断是否为重组子。
(2)白色菌落表示可能含有重组质粒,蓝色菌落表示未发生重组。
五、实验结果与分析1. 实验结果在实验过程中,我们观察到平板上出现了白色和蓝色菌落。
其中,白色菌落较多,蓝色菌落较少。
2. 结果分析根据实验原理,白色菌落可能含有重组质粒,蓝色菌落表示未发生重组。
这可能是因为外源DNA插入到质粒的多克隆位点后,导致无-互补能力的氨基端片段,使得带有重组质粒的细菌形成白色菌落。
六、实验总结1. 本实验成功掌握了蓝白斑筛选的原理和方法,学会了使用蓝白斑筛选法筛选含有重组质粒的细菌。
2. 在实验过程中,我们注意到以下几点:(1)操作过程中要严格无菌,避免污染。
1.取目的基因DNA10ul,加入到100ul的感受态细胞中,轻轻混匀,并置于冰上放置30min。
2.将感受态细胞于42 ℃水浴中热休克90s后迅速置于冰上放置2min。
3.加入800ulLB液体培养基(-AMP),37 ℃,200r/min摇菌液60min。
4.将摇菌后的转化菌液3000rpm离心3min,吸取LB液体上清液700ul弃除,留200ul液体在离心管内,轻轻吹打沉淀,然后取每组连接反应转化原液取200μl+40ul X-gal溶液+4ulIPTG溶液混匀,用无菌玻棒均匀涂布于筛选培养基上,37℃下培养半小时以上,直至液体被完全吸收。
5.倒置平板于37℃继续培养12-16小时,待出现明显而又未相互重叠的单菌落时拿出平板。
放于4℃数小时,使显色完全。
6.用无菌枪头挑取白色单菌落接种于含Amp 50μg/ml的5ml LB液体培养基中,37℃下振荡培养12小时。