免疫组化常用方法介绍及个人经验总结

检验科免疫组化常见检测与分析方法免疫组化技术是一种利用免疫学原理，通过检测和定位特定蛋白质在组织或细胞中的表达水平和位置的方法。

在医学检验科中，免疫组化技术被广泛应用于疾病的诊断、治疗及预后评估。

本文将介绍一些常见的免疫组化检测与分析方法。

一、免疫组化染色法免疫组化染色法是免疫组化技术中最常用的方法之一。

它通过采用免疫荧光、酶标记、金标记或放射性标记等技术，将特定抗原与特异性抗体结合，并通过染色或荧光的方式来显示其位置和表达水平。

免疫组化染色法广泛应用于各种疾病的诊断，如肿瘤标记物的检测、感染性疾病的诊断等。

二、免疫组织化学法免疫组织化学法是一种在组织切片上进行免疫组化染色的方法。

它通过对切片进行蛋白质抗原的恢复处理和抗体的特异性结合，来检测和显示抗原在组织中的位置和表达水平。

免疫组织化学法主要应用于病理学领域，帮助医生确定疾病的类型和分级。

三、免疫荧光法免疫荧光法是利用特异性抗体与抗原结合后，在显微镜下观察抗原在组织或细胞中的分布情况和表达水平的技术。

免疫荧光法具有高灵敏度和高特异性的优点，被广泛应用于自身免疫性疾病、感染性疾病等的诊断。

四、免疫电镜法免疫电镜法是一种在电镜下观察和检测抗体与抗原结合的方法。

它通过在样品上标记抗体或抗原，然后利用电镜来观察并获得高分辨率的图像。

免疫电镜法主要用于对超微结构进行研究和观察，是研究细胞和组织的重要手段。

五、免疫组化信号放大技术免疫组化信号放大技术是一种能够放大免疫染色信号并提高染色效果的方法。

常见的免疫组化信号放大技术包括多聚酶法、银增强法、酶蛋白复合物法等。

这些技术在免疫组化检测中可以提高检测的灵敏度和准确性。

免疫组化技术因其高度敏感、高特异性和定量分析的优势，成为了疾病诊断与治疗中不可或缺的重要方法。

随着技术的发展和创新，免疫组化技术将在临床医学中发挥越来越重要的作用。

综上所述，本文介绍了免疫组化检测与分析的常见方法，包括免疫组化染色法、免疫组织化学法、免疫荧光法、免疫电镜法以及免疫组化信号放大技术。

免疫组化原理、步骤及要注意的事项免疫组化一，免疫组织化学简介免疫组织化学又称免疫细胞化学，是指带显色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应，对相应炕原进行定性、定位、定量测定的一项新技术。

它把免疫反应的特异性、组织化学的可见性巧妙地结合起来，借助显微镜(包括荧光显微镜、电子显微镜)的显像和放大作用，在细胞、亚细胞水平检测各种抗原物质(如蛋白质、多肽、酶、激素、病原体以及受体等)。

二，免疫组化技术的基本原理免疫组化技术是一种综合定性、定位和定量；形态、机能和代谢密切结合为一体的研究和检测技术。

在原位检测出病原的同时，还能观察到组织病变与该病原的关系，确认受染细胞类型，从而有助于了解疾病的发病机理和病理过程。

免疫酶组化技术是通过共价键将酶连接在抗体上，制成酶标抗体，再借酶对底物的特异催化作用，生成有色的不溶性产物或具有一定电子密度的颗粒，于普通显微镜或电镜下进行细胞表面及细胞内各种抗原成分的定位，根据酶标记的部位可将其分为直接法（一步法）、间接法（二步法）、桥联法（多步法）等，用于标记的抗体可以是用免疫动物制备的多克隆抗体或特异性单克隆抗体，最好是特异性强的高效价的单克隆抗体。

直接法是将酶直接标记在第一抗体上，间接法是将酶标记在第二抗体上，检测组织细胞内的特定抗原物质。

目前通常选用免疫酶组化间接染色法。

三，免疫组化步骤1，切片，烤片60℃，1h；2，脱蜡及复水二甲苯10min，100％乙醇5min，95％乙醇5min，90％乙醇5min，85％乙醇5min，80％乙醇5min，75％乙醇5min，60％乙醇5min，50％乙醇5min，30％乙醇5min，自来水1min，双氧水1min；3，1份30％H2O2加10份蒸馏水，室温10min，蒸馏水洗3次，每次3min；4，微波修复将切片浸入0.01M枸橼酸缓冲液，微波中最大火力（98℃-100℃）加热至沸腾，冷却（约5-10min），反复两次；5，将切片自然冷却至室温，PBS洗涤3次，每次5min；6，封闭，5％BSA，室温20min，甩去多余液体；7，滴加一抗，37℃，1h，或者4℃过夜；8，PBS洗涤3次，每次3min；9，滴加二抗，37℃，15-30min；10，PBS洗涤3次，每次3min；11，滴加SABC，37℃， 30min；12，PBS洗涤3次，每次5min；13，1ml蒸馏水中分别滴加显色剂，混匀；14，DAB显色剂配置好后，滴加于切片，室温，镜下检测反应时间（约5min）；15，自来水冲洗干净，过蒸馏水；16，苏木素复染2min，自来水冲洗；17，脱水30％乙醇3min，50％乙醇3min，70％乙醇3min，80％乙醇3min，90％乙醇3min，95％乙醇3min，100％乙醇3min，二甲苯20min；18，树胶封片，镜检。

免疫组化操作方法、原理、步骤以及常见问题处理大总结免疫组化操作方法、原理、步骤以及常见问题处理大总结1、方法操作不难，最大的难处是出现异常结果时如何解决？这就需要掌握免疫组化实验原理，每一步知道为什么这样做，这样你才敢大胆地改革先前的不对的方法步骤。

如抗体孵育条件主要是抗体浓度、温度、时间，这三者一般是相互成反比的（相对），其中浓度是最重要的先决条件，温度决定反应的速度、时间决定反应的量。

就拿温度来说，可以有4 度、室温、37度，我推荐4度最佳，反应最温和，背景较浅；而37度反应速度较快，时间较短；室温我不太提倡，除非你每次都把环境温度控制在一定的范围，否则，尽量选择前两者。

2、免疫组化最大的优势是定位和定性。

相比于其他蛋白检测方法，免疫组化具有定性灵敏度高、定位较直接准确，是定位检测分析首选方法。

尤其对于有些因子的转位研究十分有用。

3、免疫组化结果定量分析的前提是高质量的染色切片。

免疫组化结果也能定量分析，但必须是背景染色浅而特异性染色较深的情况下，分析最为准确，这种原则可能也是我们日常审稿时判定研究结果的必备条件。

4、免疫组化实验一定要设置阳性对照和阴性对照。

阳性对照一般是用肯定表达这种抗原的切片来做；阴性对照一般是用PBS或非一抗替代一抗来进行反应，其余步骤均一致。

前者是排除方法和实验系统有无问题；后者是排除有无一抗外的非特异性染色。

5、免疫组化的应用广泛，是当前实验研究的最重要方法之一。

如今发SCI论文时，明显感觉仅靠量化的数据来发文章很难，加一些形态学数据或图片，老外十分欢迎，可能是怕你学术造假吧。

当然也不能做假阳性或假阴性结果。

6、免疫组化技术掌握与否的鉴定标准是同一切片或不同切片中不同抗原均从摸索浓度或条件而做出优良的染色切片。

我在平时带教中就发现许多研究生把我已经摸索很成熟的反应条件、浓度、方法步骤，重复运用于同一性质的切片和同一种抗体，做出来后就觉得自己已经掌握了免疫组化方法，更换一种抗体后，居然连二抗的种属来源都拿错了。

免疫组化原理步骤及要注意的事项免疫组化是一种常用的细胞和组织学检测方法，通过利用免疫学原理，使用特异性抗体对目标分子进行检测，主要应用于分析蛋白质分子的表达，可以帮助研究者了解不同细胞和组织中蛋白质的分布和功能，对于疾病的诊断和治疗也具有重要意义。

下面将介绍免疫组化的原理、步骤及要注意的事项。

原理：免疫组化是利用特异性抗体与抗原发生特异性反应的原理来进行的。

主要包括两种反应：免疫定位反应和信号测定反应。

-免疫定位反应：通过组织抗原表面与抗体的结合，将目标分子定位于细胞或组织的特定位置。

-信号测定反应：将已定位的抗原-抗体复合物进行颜色或荧光标记，发出可见信号，用于检测和记录。

步骤：免疫组化的主要步骤包括标本制备、抗原修复、非特异性反应阻断、一抗染色、二抗染色和显微镜观察。

1.标本制备：选择合适的组织样本，常用的样本有组织切片、细胞涂片和细胞悬液。

样本制备主要包括取材、固定、包埋等步骤，其中固定是关键步骤，常用的固定剂有福尔马林、乙酸乙酯和交联剂等。

2.抗原修复：组织样本在固定过程中往往会导致抗原的空间结构改变和蛋白质交联，使其成为免疫组化的目标结构。

为了恢复抗原的免疫反应性，常常需要进行抗原修复，包括酶解法、消化法、热解法等。

3.非特异性反应阻断：为了减少非特异性结合，需要采取一些措施来阻断非特异性背景信号。

常用的方法包括用蛋白质阻断剂进行封闭、用牛血清白蛋白或BSA预处理等。

4.一抗染色：在经过上述步骤之后，用特异性抗体与目标抗原结合，构成抗原-抗体复合物。

为了增强抗原-抗体的结合力，常采用多种放大手段，如辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶或二级抗体等。

5.二抗染色：一抗与抗原结合后，用特异性二级抗体进行检测，二级抗体上带有标记物（如荧光素、酶等），对抗原-抗体复合物进行定位。

6.显微镜观察：通过显微镜观察，检测特定信号的强度和位置，同时进行结果的记录和分析。

注意事项：-选择合适的抗体：免疫组化的关键在于合适的抗体选择，需要选择高度特异性和高亲和力的抗体。

免疫组化的完整步骤及各步原理免疫组化是一种非常神奇的实验技术，它可以帮助我们更好地了解细胞的结构和功能。

那么，免疫组化的完整步骤及各步原理究竟是什么呢？别着急，让我来给大家一一道来。

我们要了解一下什么是免疫组化。

简单来说，免疫组化就是利用特定的抗体去寻找目标蛋白，然后通过化学染色的方式将这些蛋白标记出来，这样我们就可以更加清晰地看到它们在细胞中的分布情况了。

那么，免疫组化的第一步是什么呢？没错，就是要准备好实验所需的材料和设备。

这包括：抗体、抗原、酶标板、洗涤缓冲液、PBS缓冲液、DAB染色剂等等。

当然啦，这些材料和设备都是非常珍贵的，所以我们在使用的时候一定要小心谨慎哦！接下来，我们就要开始进行免疫组化实验了。

我们需要将抗原加入到酶标板中，然后用洗涤缓冲液将其充分稀释。

接着，我们就可以将待检测的细胞涂布到酶标板上了。

这里需要注意的是，涂布的时候一定要均匀涂抹，否则就可能会影响后续的实验结果哦！涂布好细胞之后，我们就需要让它们休息一会儿了。

这个过程叫做“孵育”。

在孵育的过程中，抗体会自己找到抗原并与之结合。

这个过程通常需要几个小时的时间，具体时间取决于所使用的抗体和抗原的性质。

孵育完毕之后，我们就可以进行下一步操作了——洗涤。

洗涤的目的是去除未结合的抗原和未被抗体识别的细胞残留物。

这个过程通常需要用到PBS缓冲液或洗涤缓冲液，并且要反复洗几次才能彻底清除所有的残留物。

洗完之后，我们就可以进行染色了。

这个过程叫做“DAB染色”。

DAB染色剂可以与抗体结合产生紫色的颜色反应，从而使我们能够清晰地看到被标记出来的目标蛋白。

染色的时间通常也只需要几分钟左右就可以了。

我们还需要进行一个叫做“复染”的操作。

复染的目的是让细胞核也被染上颜色，这样我们就可以看到细胞的整体结构了。

复染通常需要用到碱性染料，比如伊红染料。

不过复染的时间也要控制好哦，过度染色可能会影响到后续的实验结果。

好了，以上就是免疫组化的完整步骤及各步原理了。

免疫组化方法范文引言：免疫组化（Immunohistochemistry，IHC）是一种应用免疫学理论研究细胞和组织内免疫反应的重要方法。

它通过使用特异性抗体与组织中的抗原发生特异性稳定的结合，从而实现对细胞和组织中抗原分布和表达量的检测。

本文将介绍免疫组化的原理、方法和应用，并以乳腺癌为例，探讨免疫组化在肿瘤病理诊断中的应用。

一、免疫组化的原理免疫组化原理主要基于抗原-抗体的特异性结合原理。

当抗原通过化学固定、冷冻等方法固定在组织切片上后，通过激活的二抗结合位点与组织中的抗原发生特异性稳定的结合，形成抗原-抗体复合物。

通常，这种复合物会通过染色反应显示出来，可通过显微镜观察细胞的抗原分布情况。

二、免疫组化的方法1.抗原获取：首先需要从组织样本中获得抗原。

组织样本可以通过剖析术、活组织检查、活检等方法获得。

为了保持抗原的原始性，一般需要对组织样本进行适当的处理，如缓冲液定型、冷冻保存等。

2.抗体选择：根据所要检测的抗原类型和特异性，选择相应的抗体。

可以根据已有的文献和实验室的经验选择商业化的抗体，也可以通过自己制备或订制特异性抗体来进行研究。

3.免疫反应：将抗体与组织样本接触，使其发生特异性结合反应。

通常，为了增强信号，需要使用带有酶、荧光素、金颗粒等标记物的二抗进行增强。

4.染色和观察：根据标记物的不同，可以使用染色方法，如免疫酶染色法、免疫荧光染色法等，以显示出抗原-抗体复合物的分布情况。

通过显微镜观察，可以对样本进行定性和定量分析。

三、免疫组化的应用免疫组化在病理学中有着重要的应用价值。

它可以用来鉴别组织类型、分析肿瘤的分子特征、评估疾病的预后和预测疾病的发展趋势等。

以乳腺癌为例，以下将探讨免疫组化在乳腺癌诊断和预后评估中的应用。

1.乳腺癌组织类型鉴别：乳腺癌的组织类型有多种，包括浸润性导管癌、乳腺导管内癌、乳腺导管外癌等。

通过免疫组化染色，可以针对不同的抗原进行检测，如细胞角蛋白（CK）、雌激素受体（ER）和孕激素受体（PR），以帮助鉴别乳腺癌的组织类型。

免疫组化技术自我总结一、实验步骤（SABC法）1．动物准备成年SD大鼠用1％戊巴比妥腹腔注射麻醉(剂量1ml/100g)。

2．取材、固定（以取脑组织为例）1) 将麻醉后的动物仰面固定，用水湿润毛皮，暴露心脏。

2) 用剪刀在左心室剪开一道小口，插入灌注针头至主动脉，用止血钳自心室钳紧。

3) 用37℃生理盐水灌注，剪开右心耳，至流出液体变清亮为止。

4) 立即注入Zamboni’s固定液300-400ml(灌注时先快后慢，约15分钟结束。

5) 灌注后剥离脑组织并修块后置于固定液中(6-18h)。

3．玻片处理（可直接购买包被好的防脱载玻片）新的载玻片和盖玻片须经清洁液浸泡12-14h，流水充分冲洗后，蒸馏水清洗5次，入95％乙醇2h以上，用精白布擦干，置切片盒内备用。

用前用硌钒明胶包被或者用0.01％多聚赖氨酸等均匀涂在载玻片上，贴片后入烘箱中烤1-2小时，取出置-20℃冰箱内储存。

4．制片切片前将标本移入30％蔗糖溶液中(用固定液配)，直到标本沉入瓶底。

在标本上滴上OCT，于-70℃快速冻5分钟，后放入-20℃冰冻切片机内50分钟后准备切片，切片后收集在固定液中或0.01M PBS 4℃保存备用，或贴于载玻片上。

5. 抗体特异性检测及阴性对照运用1：50、1：100、1：200、1：300、1：400、1：500的兔来源的一抗、1：200生物素标记的二抗以及SABC复合物进行免疫细胞化学实验。

一抗对照采用抗原吸收肽、0.01MPBS，二抗对照采用未用生物素标记的IgG以及0.01MPBS。

6．免疫组化1) 贴片或捞片经0.01M PBS漂洗5分钟×3次。

2) 0.3％H2O2，15分钟。

3) 滴加封闭用山羊血清或者0.3% Triton X-100 / 4% BSA封闭液37℃孵育30分钟。

4) 用滤纸吸去多余血清，滴加不同浓度一抗，37℃ 2小时，后入4℃冰箱过夜。

5) 0.01M PBS漂洗5分钟×3次。

免疫组化步骤总结免疫组化是一种常用的实验技术，用于检测和定位特定分子在组织和细胞中的表达情况。

本文将对免疫组化的步骤进行总结，以帮助读者更好地了解和应用这一技术。

免疫组化步骤主要包括样本制备、抗原修复、阻断非特异性结合、一抗孵育、二抗孵育、信号放大、显色与染色、显微镜观察和结果分析等环节。

下面将对这些步骤进行详细介绍。

1. 样本制备：首先，需要选择合适的组织样本或细胞，可以通过切片、细胞培养等方法获得。

然后，将样本固定在载玻片上，常用的固定剂有福尔马林和乙醛等。

固定后，需要进行脱水和透明化处理，使样本适合于免疫组化的进一步步骤。

2. 抗原修复：有些抗原在固定和加工过程中可能会丧失免疫反应性，需要进行抗原修复。

常用的方法有热处理、酶解等，目的是使抗原恢复其免疫原性，提高抗体的特异性和敏感性。

3. 阻断非特异性结合：在进行免疫反应之前，需要阻断非特异性结合位点，减少假阳性结果。

可使用一些蛋白质，如牛血清蛋白、牛血清、小鼠血清等，进行预处理，将其涂覆在样本上，阻断不特异性结合位点。

4. 一抗孵育：将特异性抗体（一抗）与样本接触，孵育一定的时间，使抗体与靶分子发生特异性结合。

一抗可以是单克隆抗体或多克隆抗体，具体选择要根据实验需求和抗体的特异性来确定。

5. 二抗孵育：一抗与抗原结合后，需要加入与一抗来源物种不同的二抗。

二抗是与一抗来源物种的免疫球蛋白发生反应的抗体。

二抗可以标记有荧光物质、酶物质等，以便于后续的信号放大和显色。

二抗的选择要根据一抗的来源物种和实验需要来确定。

6. 信号放大：为了增强免疫反应的信号，可以使用一些信号放大的技术。

常用的信号放大方法有生物素-链霉亲和素系统(Biotin-Streptavidin System)、酶联免疫吸附试验(ELISA)等。

这些方法可以使目标物质的信号增强，提高实验的灵敏度和准确性。

7. 显色与染色：信号放大后，需要进行显色与染色步骤。

这一步骤可以根据实验需要选择适当的染色剂，如荧光染料、酶标记物等。

免疫组化方法
免疫组化是一种常用的实验技术，用于检测组织或细胞中特定蛋白质
的表达和定位。

其基本原理是利用特异性抗体与目标蛋白质结合，再通过
染色或荧光标记等方法来检测抗体与蛋白质的结合情况。

免疫组化方法主
要包括以下几个步骤：1.样品制备：将组织或细胞样品固定、切片或涂片
等处理，以便于后续的抗体结合和检测。

2.抗原修复：对于某些抗原易于
失活或难以检测的样品，需要进行抗原修复处理，如加热、酶解等，以恢
复抗原的结构和活性。

3.抗体结合：将特异性抗体加入样品中，与目标蛋
白质结合形成免疫复合物。

抗体可以是单克隆或多克隆，也可以是直接标
记或间接标记的。

4.洗涤：用缓冲液洗涤样品，去除未结合的抗体和杂质，以减少假阳性的干扰。

5.检测标记：将荧光标记、酶标记或金标记等标记
物加入样品中，与免疫复合物结合，以便于检测和定位。

6.显色或荧光：
通过染色或荧光显微镜等设备，观察样品中的免疫复合物的分布和定位，
以确定目标蛋白质的表达和定位情况。

总之，免疫组化方法是一种高灵敏度、高特异性的实验技术，广泛应用于生物医学研究、临床诊断和药物开
发等领域。

6年免疫组化经验总结做过病理实验的人都知道，实验看似容易，但真想把它做好，还是需要花上很长一段时间去积累和摸索经验。

我从事病理实验已有6 年多了，在这段时间里，我做过许许多多病理相关实验，刚开始啥也不懂，一味按照网上操作流程来做，但做的结果往往并不是十分理想，最终结果未能达到预期的效果。

经过一段时间的浏览和学习，在论坛内学习、请教，并结合实践操作，我经历了初级——查找资料和摸索方法；中级——问题求助和不断总结；高级——难题解答和经验分享这三个阶段，也学到了不少知识，积累了很多宝贵经验，与大家一起分享。

1.要求做冰冻切片的不一定能做石蜡切片，这是我向一老师请教得出的结论。

因为作石蜡切片时要高温烤片，可能会破坏组织的抗原性，如果组织的抗原性较稳定，则可作石蜡切片；但是要求做石蜡切片的，可作冰冻切片。

2.冰冻切片的优点是能够较好的保存组织的抗原免疫活性，做免疫组化时不需抗原修复这一步。

缺点是细胞内易形成冰晶而破坏细胞结构，可能会使抗原弥散；切片厚度较石蜡的厚，做的片子没石蜡的漂亮。

当你买一抗时，目录上都写着做什么样的切片，如果它写着只能做冰冻，就不能做石蜡，如写着两者都可，那就都能做。

3.石蜡切片的优点是可以保持组织细胞的形态结构，且容易存放在室温，而冰冻切片比较麻烦，一定要存在-80oC 的低温冰箱中，尤其是用来做原位杂交的切片，为了防止 RNA 降解，保存一贯很重要。

由于石蜡切片可以切到4 μm 左右，所以原位杂交探针容易渗透到组织中去，容易成功，而且得到的颜色/形态都较冰冻切片好。

1.单克隆和多克隆抗体的选择。

由一种克隆产生的特异性抗体叫做单克隆抗体。

单克隆抗体能目标明确地与单一的特异抗原决定簇结合，就像导弹精确地命中目标一样。

另一方面，即使是同一个抗原决定簇，在机体内也可以由好几种克隆来产生抗体，形成好几种单克隆抗体混杂物，称为多克隆抗体。

在抗原抗体反应中，一般单克隆抗体特异性强，但亲和力相对小，检测抗原灵敏度相对就低；而多克隆抗体特异性稍弱，但抗体的亲和力强，灵敏度高，但易出现非特异性染色（可以通过封闭等避免）。