免疫组化操作注意事项

免疫组化原理、步骤及要注意的事项免疫组化一，免疫组织化学简介免疫组织化学又称免疫细胞化学，是指带显色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应，对相应炕原进行定性、定位、定量测定的一项新技术。

它把免疫反应的特异性、组织化学的可见性巧妙地结合起来，借助显微镜(包括荧光显微镜、电子显微镜)的显像和放大作用，在细胞、亚细胞水平检测各种抗原物质(如蛋白质、多肽、酶、激素、病原体以及受体等)。

二，免疫组化技术的基本原理免疫组化技术是一种综合定性、定位和定量；形态、机能和代谢密切结合为一体的研究和检测技术。

在原位检测出病原的同时，还能观察到组织病变与该病原的关系，确认受染细胞类型，从而有助于了解疾病的发病机理和病理过程。

免疫酶组化技术是通过共价键将酶连接在抗体上，制成酶标抗体，再借酶对底物的特异催化作用，生成有色的不溶性产物或具有一定电子密度的颗粒，于普通显微镜或电镜下进行细胞表面及细胞内各种抗原成分的定位，根据酶标记的部位可将其分为直接法（一步法）、间接法（二步法）、桥联法（多步法）等，用于标记的抗体可以是用免疫动物制备的多克隆抗体或特异性单克隆抗体，最好是特异性强的高效价的单克隆抗体。

直接法是将酶直接标记在第一抗体上，间接法是将酶标记在第二抗体上，检测组织细胞内的特定抗原物质。

目前通常选用免疫酶组化间接染色法。

三，免疫组化步骤1，切片，烤片60℃，1h；2，脱蜡及复水二甲苯10min，100％乙醇5min，95％乙醇5min，90％乙醇5min，85％乙醇5min，80％乙醇5min，75％乙醇5min，60％乙醇5min，50％乙醇5min，30％乙醇5min，自来水1min，双氧水1min；3，1份30％H2O2加10份蒸馏水，室温10min，蒸馏水洗3次，每次3min；4，微波修复将切片浸入0.01M枸橼酸缓冲液，微波中最大火力（98℃-100℃）加热至沸腾，冷却（约5-10min），反复两次；5，将切片自然冷却至室温，PBS洗涤3次，每次5min；6，封闭，5％BSA，室温20min，甩去多余液体；7，滴加一抗，37℃，1h，或者4℃过夜；8，PBS洗涤3次，每次3min；9，滴加二抗，37℃，15-30min；10，PBS洗涤3次，每次3min；11，滴加SABC，37℃， 30min；12，PBS洗涤3次，每次5min；13，1ml蒸馏水中分别滴加显色剂，混匀；14，DAB显色剂配置好后，滴加于切片，室温，镜下检测反应时间（约5min）；15，自来水冲洗干净，过蒸馏水；16，苏木素复染2min，自来水冲洗；17，脱水30％乙醇3min，50％乙醇3min，70％乙醇3min，80％乙醇3min，90％乙醇3min，95％乙醇3min，100％乙醇3min，二甲苯20min；18，树胶封片，镜检。

免疫组化流程免疫组化是一种利用抗体与特定抗原结合的技术，用于检测细胞或组织中特定分子的存在和分布。

其流程包括标本制备、脱脂、抗原修复、抗体处理、染色和显微镜观察等步骤。

本文将以免疫组化的流程为主线，介绍各个步骤的具体操作方法和注意事项。

第一步是标本制备。

要制备免疫组化的标本，可以使用细胞悬液、细胞刮片、冰冻切片或石蜡切片等。

标本制备的关键是保持细胞和组织的完整性和形态。

对于固定的细胞和组织，需要将其处理成适合免疫组化的形式，例如通过冰冻切片或石蜡切片的方法。

第二步是脱脂。

脱脂是将细胞或组织中的脂肪和非脂肪物质去除的过程，以便更好地显示目标分子的分布。

通常可以使用乙醇、醚或甲醇等有机溶剂进行脱脂处理。

需要注意的是，脱脂时间不宜过长，否则可能导致抗原失活。

第三步是抗原修复。

抗原修复是为了使被固定的细胞或组织中的抗原恢复或暴露出来，以便与相应的抗体结合。

常用的抗原修复方法包括煮沸法、酶解法和酸碱解法等。

不同的抗原修复方法适用于不同的标本类型和抗原性质。

第四步是抗体处理。

在免疫组化中，需要使用一种与目标分子特异性结合的抗体。

通常可以使用一抗和二抗的结合用于检测。

一抗是与目标分子特异性结合的主抗体，而二抗则与一抗结合，用于产生荧光或酶标信号。

在抗体处理过程中，需要进行固定、洗涤和孵育等步骤。

第五步是染色。

染色是将经过抗体处理的样本显色或标记的过程，以便更好地观察目标分子的分布。

染色的方法可以根据需要选择，常用的有免疫荧光染色、酶标染色和银染等。

在染色过程中，需要根据实验要求和标本特点进行适当的控制，以获得准确的染色结果。

最后一步是显微镜观察。

经过以上的操作，样本已经准备好进行显微镜观察和分析。

观察时需要注意光线的调节和对焦的正确，以获得清晰和准确的图像。

同时，还需要根据实验要求和预定的结果指标进行分析和解读。

总结起来，免疫组化的流程包括标本制备、脱脂、抗原修复、抗体处理、染色和显微镜观察等步骤。

每个步骤都需要精确控制和注意细节，以确保实验结果的准确性和可靠性。

免疫组化的标准化和质量控制免疫组化是一项综合性的操作技术，是病理诊断的主要辅助手段之一，其影响因素复杂，包括技术人员是否熟练掌握整个实验的操作程序，抗体的特异性，检测方法的敏感性,组织的固定，抗原的修复及修复液的PH值等众多因素。

步骤较多,且环环相扣,加强质量管理和可信性尤为重要。

现就我科近年来免疫组化染色和具体操作过程中进行精细而有效的全程质控，具体操作规程和质控事项综述如下：一、标本的固定：标本的及时固定是最重要的环节,也是不可逆的，我科要求手术室设立专人专管制度,普通标本离体后要求手术室及时固定，特殊标本离体后及时送我科当天由取材医师及时剖开固定，淋巴结切开固定，乳腺标本每隔一厘米切开固定，胃肠标本剖开固定，首选10%的中性缓冲福尔马林固定液固定，由于中性缓冲福尔马林液渗透力强，组织收缩小，能够使大多数抗原物质保存较好,提高免疫组织化学检测的阳性率。

固定液的量一般为组织块体积的5—10倍，小标本固定时间为4-6小时，大标本固定时间为18-24小时，固定后水洗10—20分,利用蜡块内抗原的长期保存.二、脱水：我科在脱水程序中设置一个后固定步骤,弥补病理标本取材时固定不良造成的组织形态缺陷和抗原定位不良现象。

同时建立以处理组织标本块数2000块为标准的组织脱水试剂规范化更换制度，保证脱水质量是保证组织切片质量的前题，这一点对免疫组化染色尤为重要.三、切片、烤片、脱蜡:切片厚度3-4个微米之间，淋巴结更薄些,切片完整，厚薄均匀，无皱褶和刀痕，烤片温度60摄氏度温箱烤片1—2小时，暂不染色的切片放置4摄氏度的冰箱，短时间保存，脱蜡必须干净。

四、选择优质的抗体及检测系统是优秀染片质量的保证，我科每月的组化切片为500左右，一直是手工操作，严格的操作规程非常重要,每一步细化到人，我科一直沿用中杉金桥的工作液试剂盒,效果稳定，参加多次省质控及全国质控都获得合格证书.五、抗原修复：我科一直采用高压修复，用大功率加热至沸腾后，将功率调至中档，再放入切片，加盖，加减压阀继续加热至冒气并维持2分钟后，撤火缓慢冷却。

免疫组化检查要注意点什么免疫组化检查是一种常见的临床化验技术，主要用于检测体内免疫系统的功能和免疫相关疾病的发生及发展情况。

免疫组化检查的主要原理是利用抗原与抗体的特异性结合来检测样本中的分子，以达到诊断和评估疾病的目的。

在进行免疫组化检查时，有一些注意事项需要关注。

首先，样本采集和保存非常重要。

样本采集的质量直接影响到后续检测结果的准确性。

对于不同的免疫组化检测项目，样本的要求也不尽相同。

比如，某些检测要求新鲜样本，不能冷冻，而另一些则需要冷冻保存。

因此，在采集样本前，需要了解具体检测项目的要求，并按照要求进行适当的处理和保存。

其次，在进行免疫组化检查时，需要正确选择和识别抗原与抗体。

不同的免疫组化检测方法所用到的抗原和抗体可能存在差异，因此，在进行检测前需要准确选择所需的试剂和抗体。

同时，为了保证检测结果的准确性和可靠性，必须进行负对照和阳性对照的设定。

负对照用于排除假阳性结果的干扰，阳性对照用于确认试剂和仪器的灵敏度和准确性。

第三，免疫组化检查中的标本制备和处理也非常重要。

对于不同类型的标本，如血液、组织、细胞等，其制备和处理方法也各有不同。

在制备标本时，要注意避免样本的污染和破坏，同时要保证标本中目标分子的完整性。

常见的标本处理方法包括切片、固定、脱水、染色等，这些步骤的操作必须严格按照标准操作程序进行，以保证结果的可靠性。

此外，免疫组化检查中的实验条件控制也非常重要。

例如，温度、湿度、阴离子或阳离子含量、光照等因素都可能对结果产生影响。

因此，在进行检测时，需要严格控制这些条件，并在合适的环境中进行实验操作。

最后，对于检测结果的解读也需要谨慎。

免疫组化检查并不是绝对的诊断依据，而仅仅是一种辅助诊断方法。

结果的解读需要结合病史、临床表现和其他辅助检查结果来进行，必须进行全面综合分析。

总之，免疫组化检查作为一种重要的实验室技术，对于诊断和评估免疫相关疾病具有重要的意义。

在进行检测时，需要关注样本的采集和保存、正确选择和识别抗原与抗体、标本的制备和处理、实验条件的控制以及检测结果的解读等方面的注意事项。

免疫组化需注意的问题一、为达到免疫组织化学技术的要求，组织固定越新鲜越好。

为达到免疫组织化学染色的要求，对于离体的组织尽量快的进行固定，有条件的应将其剖开，早取材，早固定。

二、组织脱水必须彻底干净组织块取材不能太大过厚，才能较好地完成脱水的过程。

如果取材太厚，在较短的时间内脱水不完全，将可引起一系列的问题，比如浸蜡不彻底，切片不好完成，切不完整。

由于先天不足，导致后来切片染色的脱落，造成染色的失败，或者由此反复操作，造成人力物力的浪费，造成病理报告的延期发出等。

因此，对取材的要求是除了要求要有艺术性外，即平整、外观好看，还要求适中。

三、切片必须完整、均匀、平展、无邹折应用于免疫组织化学染色的切片，对切片的质量要求较高，切片必须完整，平展、无汽泡，无邹折，这样有利在染色时的冲洗，有利于切片的牢固附贴。

如果切片不平展，免疫组化染色后，可出现染色不均匀的现象，颜色深浅不一，不平。

如果切片有汽泡切片在烘烤时，由于汽泡的破裂影响了汽泡周围的组织，在其周围可观察到深浅不一的染色。

如果切片有邹折，免疫组化染色后，在邹折的地方有深浅不一的颜色，这是一种假阳性，容易引走混淆。

四、切片的附贴必须牢固，必须使用合适的粘贴剂。

免疫组织化学染色前的前期准备工作，就是必须对新的载玻片进行处理，新的载玻片表面看起来很干净，有人认为不需要进行任何的处理，都能够适合使用，这是一种错误的想法。

新出厂的载玻片，表面复盖着开一层油脂样的物质，如果不加以处理，对切片的附贴是极为不利的。

我们的做法是：新的载玻片，放于玻璃清洗液中浸泡4小时甚至过夜，然后取出，经自来水彻底冲洗后，浸入酒精中达2小时以上，取出擦干备用或烘干也可。

然后再将载玻片浸入了－氨基－三乙氧基－硅烷（3－Aminopropyl triethoxy-silane）的稀释液（1：50用丙酮或无水乙醇稀释都可以）中硅化10分钟，后经无水乙醇洗2次，烘干即可使用。

五、切片必须烘烤附贴牢固，既要经得起抗原修复时高温的作用而不使轻易脱片，又不至于破坏抗原。

免疫组化操作规程及操作流程免疫组化技术是一种常用的细胞和组织学研究方法，广泛应用于病理学、生物学、药理学等领域。

下面将详细介绍免疫组化操作规程及操作流程。

一、实验前准备1.准备实验所需的试剂和试验设备，包括抗体、缓冲液、加标物、显色剂等。

2.检查免疫组化试剂的有效期，确保试剂的质量。

二、标本处理1.收集组织标本，如活检样本或动物组织。

2.快速处理标本，迅速取出，并选择适当的处理方法，如固定、包埋等。

3.处理过程中要避免标本的冻融、干燥等。

三、抗原回复1.对于经过固定的组织标本，使用抗原回复方法来恢复组织标本中的抗原活性。

2.选择适当的抗原回复方法，如热处理、酶解等。

四、非特异性结合阻断1.使用非特异性抗血清或蛋白质来阻断非特异性结合位点。

2.使非特异结合抗体活性降低，减少假阳性结果。

五、抗体处理2.优化抗体浓度，确保抗体与标本中的抗原结合。

3.对于特定抗体，可以进行荧光标记或酶标记等。

六、免疫组织染色1.用适当的缓冲液稀释抗体，并将其应用于组织标本上。

2.根据实验需求选择适当的孵育时间和温度。

3.利用显色剂或荧光显像剂对标本进行染色。

七、显微镜观察与分析1.将染色后的标本放置在显微镜下观察，并选择适当的增强荧光信号方法。

2.结合相关的正对照和负对照进行结果分析，确定一些蛋白质在组织中的表达情况。

3.分析结果并记录数据。

八、结果分析与报告1.根据观察结果，分析样本中目标抗原的表达情况。

2.比较不同样本之间的差异，得出结论并撰写实验报告。

九、实验后处理1.清洗使用过的实验工具和材料，避免交叉污染。

2.妥善处理废弃物和化学品，根据实验室内相应的安全操作规范进行处理。

免疫组化实验安全操作及保养规程免疫组化实验是一种常见的生物实验方法，适用于研究细胞、组织和生物分子中的蛋白质、抗原、受体等成分。

由于实验过程中使用的试剂和仪器具有一定危险性，因此必须遵守严格的操作规程，保证实验过程的安全性。

实验前的准备工作在进行免疫组化实验之前，需要对操作环境和实验材料进行准备工作，以保证实验结果的可靠性和安全性。

1. 操作环境准备实验操作室应该保持干净、整洁，照明充足，通风良好，避免有光、霉、水等因素影响实验。

实验室的桌面、器皿、设备和工具等应当进行彻底清洁和消毒，以避免杂质和污染对实验结果的影响。

2. 实验材料准备实验中需要使用的试剂、仪器和材料等应当选择高质量、纯度高、新鲜的。

对于已经开启的试剂或精制纯化的试剂，需要进行贴标签、标注到访日期及有效期等细节行政工作，并存储在恰当的环境中。

对于易燃、危险、腐蚀性等试剂，应当按照标签上的提示来使用和储存。

实验操作规程1. 实验前的准备工作在进行实验的过程中，需要进行一些准备工作，以确保实验操作的安全性和效果。

1.1 确认工作计划。

在进行实验之前，需要准确确认各项工作任务及操作步骤，制定完备的计划；1.2 了解操作材料。

事先应该对实验所用材料进行充分的了解，确认试剂品牌、浓度、储存条件等；1.3 安全措施准备。

事先做好实验操作中可能出现的事故应急预案，并准备好包括防护手套、防护面罩、实验室长袍、安全鞋等安全防护设备；1.4 操作台面准备。

在操作过程中，准备好所需的实验器皿（包括台盘、离心管等）、显微镜镜片、吸管等等。

2. 操作注意事项在进行免疫组化实验过程中，需要注意如下事项：2.1 严格保持操作技能的标准. 实验人员应当具备一定的实验操作技能，并开展专业工作前进行技能测评；2.2 实验室的基本卫生防护：实验人员每日早晚必须进行体温检测，佩戴口罩，严格按照个人防护要求操作。

实验器材的消毒和洗涤。

对于特殊实验室要求的实验操作，需要进行进一步的防护措施；2.3 操作前的试剂准备. 在进行实验之前，需要先将需要使用的试剂进行准备、调配、稀释等操作，并严格遵守生物实验室规定的标准操作；2.4 仪器的维护。

免疫组化需注意的问题一、为达到免疫组织化学技术的要求，组织固定越新鲜越好。

为达到免疫组织化学染色的要求，对于离体的组织尽量快的进行固定，有条件的应将其剖开，早取材，早固定。

二、组织脱水必须彻底干净组织块取材不能太大过厚，才能较好地完成脱水的过程。

如果取材太厚，在较短的时间内脱水不完全，将可引起一系列的问题，比如浸蜡不彻底，切片不好完成，切不完整。

由于先天不足，导致后来切片染色的脱落，造成染色的失败，或者由此反复操作，造成人力物力的浪费，造成病理报告的延期发出等。

因此，对取材的要求是除了要求要有艺术性外，即平整、外观好看，还要求适中。

三、切片必须完整、均匀、平展、无邹折应用于免疫组织化学染色的切片，对切片的质量要求较高，切片必须完整，平展、无汽泡，无邹折，这样有利在染色时的冲洗，有利于切片的牢固附贴。

如果切片不平展，免疫组化染色后，可出现染色不均匀的现象，颜色深浅不一，不平。

如果切片有汽泡切片在烘烤时，由于汽泡的破裂影响了汽泡周围的组织，在其周围可观察到深浅不一的染色。

如果切片有邹折，免疫组化染色后，在邹折的地方有深浅不一的颜色，这是一种假阳性，容易引走混淆。

四、切片的附贴必须牢固，必须使用合适的粘贴剂。

免疫组织化学染色前的前期准备工作，就是必须对新的载玻片进行处理，新的载玻片表面看起来很干净，有人认为不需要进行任何的处理，都能够适合使用，这是一种错误的想法。

新出厂的载玻片，表面复盖着开一层油脂样的物质，如果不加以处理，对切片的附贴是极为不利的。

我们的做法是：新的载玻片，放于玻璃清洗液中浸泡4小时甚至过夜，然后取出，经自来水彻底冲洗后，浸入酒精中达2小时以上，取出擦干备用或烘干也可。

然后再将载玻片浸入了－氨基－三乙氧基－硅烷（3－Aminopropyl triethoxy-silane）的稀释液（1：50用丙酮或无水乙醇稀释都可以）中硅化10分钟，后经无水乙醇洗2次，烘干即可使用。

五、切片必须烘烤附贴牢固，既要经得起抗原修复时高温的作用而不使轻易脱片，又不至于破坏抗原。

免疫组化操作方法、原理、步骤以及常见问题处理大总结１、方法操作不难,最大得难处就是出现异常结果时如何解决？这就需要掌握免疫组化实验原理,每一步知道为什么这样做,这样您才敢大胆地改革先前得不对得方法步骤。

如抗体孵育条件主要就是抗体浓度、温度、时间,这三者一般就是相互成反比得(相对),其中浓度就是最重要得先决条件,温度决定反应得速度、时间决定反应得量。

就拿温度来说,可以有4度、室温、37度,我推荐4度最佳,反应最温与,背景较浅;而３７度反应速度较快,时间较短;室温我不太提倡,除非您每次都把环境温度控制在一定得范围,否则,尽量选择前两者。

２、免疫组化最大得优势就是定位与定性。

相比于其她蛋白检测方法,免疫组化具有定性灵敏度高、定位较直接准确,就是定位检测分析首选方法、尤其对于有些因子得转位研究十分有用。

３、免疫组化结果定量分析得前提就是高质量得染色切片。

免疫组化结果也能定量分析,但必须就是背景染色浅而特异性染色较深得情况下,分析最为准确,这种原则可能也4、免疫组化实验一定要设置阳就是我们日常审稿时判定研究结果得必备条件。

ﻫ性对照与阴性对照。

阳性对照一般就是用肯定表达这种抗原得切片来做;阴性对照一般就是用ＰＢS或非一抗替代一抗来进行反应,其余步骤均一致。

前者就是排除方法与实验系统有无问题;后者就是排除有无一抗外得非特异性染色、5、免疫组化得应用广泛,就是当前实验研究得最重要方法之一、如今发SCI论文时,明显感觉仅靠量化得数据来发文章很难,加一些形态学数据或图片,老外十分欢迎,可能就是怕您学术造假吧、当然也不能做假阳性或假阴性结果。

6、免疫组化技术掌握与否得鉴定标准就是同一切片或不同切片中不同抗原均从摸索浓度或条件而做出优良得染色切片、我在平时带教中就发现许多研究生把我已经摸索很成熟得反应条件、浓度、方法步骤,重复运用于同一性质得切片与同一种抗体,做出来后就觉得自己已经掌握了免疫组化方法,更换一种抗体后,居然连二抗得种属来源都拿错了。

免疫组化操作规程
《免疫组化操作规程》
免疫组化（Immunohistochemistry, IHC）是一种广泛应用于生物医学研究和临床诊断中的技术，其操作规程的严谨性和标准化对于获得准确可靠的结果至关重要。

下面是一份免疫组化操作规程供参考：
1. 样本处理：将组织标本固定在适当的条件下，然后进行蜡包埋并切片。

注意保护好标本的完整性和质量。

2. 抗原修复：对标本进行适当的热处理或酶处理，以修复由于固定等步骤导致的抗原构象变化。

3. 抗体选择：选择适当的一抗和二抗，确保一抗的特异性和敏感性，二抗的来源和标记物的稳定性。

4. 标本处理：将切片标本进行脱脂、脱水和透明化处理，确保标本的透明度和形态保持完好。

5. 抗体染色：将标本与一抗和二抗分别反应，通过荧光标记或酶标记来检测靶标记的位置和强度。

6. 阅读结果：采用专业显微镜观察标本的染色结果，进行定量分析或者定性分析。

7. 结果验证：通过对照组和阳性对照进行染色结果的验证，确
保结果的准确性。

8. 结果分析：根据染色结果和临床信息进行综合分析，作出科学可靠的结论。

以上是一份免疫组化操作规程的基本内容，但在实际操作中还需要根据具体的实验室条件和要求进行进一步的细化和规范化。

希望这份规程能为从事免疫组化工作的科研人员和临床检验人员提供一些帮助。

免疫组化操作程序免疫组化操作程序是一种用于检测特定蛋白质在细胞或组织中的表达及定位的方法。

它是一种广泛应用于生物医学研究和诊断中的技术，可以帮助我们了解细胞和组织中的分子机制并在疾病诊断中起到重要的作用。

本文将详细介绍免疫组化操作程序的步骤和注意事项。

一、实验前准备：1.样本准备：收集并固定适当的组织样本，使用适当的方法固定样本，如福尔马林或酒精。

2.抗体选择：根据所需研究的蛋白质，选择合适的一抗和二抗。

同时，选择用于检测的标记物，如酶、荧光物质等。

3.条件优化：根据本实验的具体情况，优化实验条件，包括温度、时间和浓度等。

二、免疫组织染色步骤：1.切片制备：将固定的组织样本切片，厚度约为4-6微米。

2.抗原修复：根据实验需求，选择适当的方法进行抗原修复，如高温加热、酶解或酸解等。

3.阻断非特异性结合：将组织切片加入阻断液，如10%牛血清蛋白（BSA）或5%牛血清中所含的非离子阻断剂。

封闭其非特异性结合位点。

4.一抗孵育：将选择的一抗溶液滴于组织切片上，孵育在适当的温度和时间下，让一抗与目标蛋白结合。

5.洗涤：用缓冲液清洗切片，去除未结合的一抗。

6.二抗孵育：将选择的针对一抗的二抗溶液滴于切片上，孵育在适当的温度和时间下，让二抗结合到一抗上。

7.洗涤：用缓冲液清洗切片，去除未结合的二抗。

8.标记物检测：根据选择的标记物，使用适当的方法检测其在切片上的存在，如化学染色、荧光显微镜等。

9.涂覆封片：将固定和染色好的切片放置在玻璃片上，并用适当的封片溶液覆盖切片。

三、实验注意事项：1.样本处理：合适的样本处理和固定方法对实验结果至关重要。

选择适当的固定剂并注意固定时间。

2.抗原修复：不同的抗原修复方法适用于不同的蛋白质，需要根据实验要求选择适当的方法。

3.阻断非特异性结合：添加适当的非特异性结合阻断剂能够减少非特异性结合。

4.孵育温度和时间：根据抗体和样本的特性选择适当的孵育温度和时间，以提高特异性和灵敏度。

免疫组化的注意事项、操作要点和技巧一些教训：1、对于多甲灌注固定的标本，如要长期保存，要先脱水后冻存，此法对于采用漂片法IHC 较适合。

正确操作：多甲灌注固定一一多甲或甲醛后固定一一蔗糖梯度脱水一一负70度保存一一冰冻切片错误操作：多甲灌注固定一一多甲或甲醛后固定一一负70度保存一一蔗糖梯度脱水一一冰冻切片，结果是会有大量冰晶形成。

J2、如果能确认使用石蜡切片并使用贴片法进行下一步IHC，多甲或甲醛后固定后应尽快脱水并石蜡包埋。

要点和操作技巧：1•固定：最好用4%的多聚甲醛固定液。

对于冰冻切片，甲醛固定有时比冰冻丙酮好；但对于不同的组织和抗原，可选用不同的固定液。

有时候商品化的抗体会有比较适合而推荐的固定液，请于购置前注意说明书。

」Bouin S固定液：饱和苦味酸750ml，甲醛250ml，冰醋酸50ml，其对组织的穿透力较强，固定较好，结构完整，但因偏酸，对抗原有一定损害，且组织收缩明显，不适于组织标本的长期保存。

PLP液：即高碘酸钠-赖氨酸-多聚甲醛，适于固定石蜡切片。

适于富含糖类组织，对超微结构及许多抗原的抗原性保存较好。

2 •组织脱水，透明：时间不能太长，否则在切片时容易碎片，切不完整。

3 •切片时展片：有些组织在切片后难以在水中展开，这时可适当地在水中加入几滴乙醇。

4 •烤片：60 C 30分钟或37 C过夜，温度太高或时间太长，抗原容易丢失。

5 .蜡块及切片的保存：最好在 4 C保存6.脱片问题：Poly-L-Lysine（多聚赖氨酸）为目前免疫组化染色工作中最常用的一种防脱片剂，6ml 的多聚赖氨酸溶液可按1:10稀释成60ml的工作液，适合于需要酶消化、微波、高温高压的防脱片处理。

如不行，可用双重处理（APES和Poly-L-Lysine ）的切片。

在以上两种条件都行不通的情况下，可用如下方法：切片在脱蜡前，放在APES 1 : 50丙酮溶液中浸泡3分钟，晾干，即可进行下一步。

7 .灭活内源性酶：HRP系统：3%双氧水灭活；AP系统：3%HAc灭活。

免疫组化实验没学好？来看CST中国为你整理的操作要点免疫组化，简称IHC，是应用抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂（荧光素、酶、金属离子、同位素）显色，对组织细胞内抗原进行定位、定性及相对定量研究的实验方法。

包括石蜡切片的免疫组化技术（IHC-P）和冰冻切片的免疫组化技术（IHC-F），今天主要讲的是IHC-P。

免疫组化操作要点①标本固定——不仅仅是“切一切”和“泡一泡”温柔地取材：大刀阔斧取材的同时，视组织如珍宝，莫挤压组织，轻柔取材和镊取。

尽量避开坏死区域。

太大太厚的组织不利于均匀一致的固定，实质组织取材厚度应小于5mm。

新鲜的固定液：固定液10%中性缓冲福尔马林(NBF) 需新鲜配置，商用型固定液注意其标注的有效期，避免使用过期变质的固定液。

充分及时地固定：固定液要充足，其与组织的体积比最好大于等于20倍；取材后即刻固定。

固定时需将瓶口封住，避免甲醛挥发。

组织的固定时间不宜过长，一般过夜（12-24h）即可。

免疫组化操作要点②修复大法——不仅仅是“煮一煮”微波炉修复：简单易行效果好，CST推荐使用微波炉完成修复。

合适的修复液：根据抗体说明书使用合适的修复液。

用柠檬酸修复后，切片需浸泡在修复液中，自然冷却；而用EDTA修复后，切片可直接从修复缸中取出，直接进行下一步。

注：使用不同的修复方式和不同生产商的抗体检测人肺癌组织中EGFR的表达。

第一排为CST 的EGF Receptor (D38B1) XP® Rabbit mAb（#4267），EDTA的修复方式明显优于柠檬酸盐及胃蛋白酶，故在该抗体说明书中，标注了使用EDTA修复进行免疫组化实验。

免疫组化操作要点③对的抗体，对的使用——不仅仅是“买买买和加加加”种属和应用范围：确定该抗体可检测所需种属（Reactivity）的石蜡切片上完成组化实验（Application：IHC-P）。

稀释液和稀释比：查看抗体说明书，使用正确的一抗稀释液和稀释比。

免疫组化操作流程及注意事项免疫组化是一种常用的生物技术方法，在医学、药物研发、疾病诊断等领域有着广泛的应用。

在进行免疫组化实验时，需要遵循一定的操作流程和注意事项，以确保实验结果的准确性和可靠性。

一、实验前准备1.检查仪器和试剂：在进行实验前，需要检查使用的仪器和试剂是否正常工作，以避免实验出现错误。

2.样本处理：选择合适的样本来源，并根据实验要求进行样本处理和处理，如组织切片、蛋白抽提等操作。

3.实验区域准备：为了避免实验中的交叉污染，需要保持实验区域的清洁和干净，避免灰尘、细菌等干扰实验结果。

二、抗体处理1.抗体选择：根据实验需要选择合适的抗体，包括一抗和二抗，并进行正确的防止步骤。

2.抗体稀释：需要根据实验所需稀释抗体浓度，以确保实验中的可靠性和准确性。

3.透析：透析是为了去除抗体中的杂质和保持抗体的活性，可以使用多种透析方法，如葡萄糖、盐溶液透析等。

三、标记和显色1.标记：将选择好的一抗和二抗进行标记，例如利用荧光标记、酵素标记等。

2.显色：根据实验需要，将标记好的抗体显色，可以使用多种方法，如荧光染色、染色素染色、酶标记染色等。

四、防止步骤1.防止非特异性结合：在实验过程中需要使用防止多余的非特异性结合，如使用BSA、牛奶等进行防止。

2.防止地基自身活性：在实验中需要使用防止地基自身活性的方法，如将地基胶体蛋白进行处理。

3.防止非特异性染色：在实验中需要使用防止非特异性染色的方法，如对实验组和对照组进行多次染色。

五、实验数据分析1.图像采集：采用高清数码系统进行图像采集。

2.数据分析：使用统计软件进行实验数据的处理，进行可靠性检测、误差范围的确定、结果的图表化呈现等等。

以上就是免疫组化操作流程及注意事项的一些基本介绍，虽然操作流程较为复杂，但是只有遵循操作流程和注意事项，才能够稳定的获得实验结果并进行进一步的研究分析。

免疫组化实验注意事项
1.实验前要注意仪器和试剂的准备，确保实验所需的材料完整、干净，无污染。

2.实验过程中要注意实验操作的无菌技术，避免细菌和其他微
生物的污染。

3.实验人员需要佩戴实验服和手套，以防止实验样品的污染和
交叉污染。

4.实验室环境要保持干净整洁，避免灰尘和其他杂物的干扰。

5.实验人员要掌握实验步骤和操作技巧，确保实验操作的准确
性和可重复性。

6.实验过程中要严格遵守实验室安全操作规范，使用化学品时
要戴好防护眼镜和口罩，避免化学品溅到皮肤。

7.实验样品的处理要妥善，及时清理实验台和实验仪器，避免
污染和交叉污染。

8.实验结果的解读要谨慎，需要参考相关文献和实验室经验，
避免误判和错误结论。

9.实验数据要及时记录和整理，确保实验结果的可靠性和可复
制性。

10.实验完后要将实验台和实验仪器清洗干净，归位整理，确保实验室的卫生和安全。

免疫组化笔（通常称为PAP笔或免疫组化标记笔）是一种用于标记特定抗原的精密工具，它通常用于病理学实验室中的免疫组化染色过程。

使用免疫组化笔时，需要注意以下几点以确保实验的准确性和可靠性：1. 操作前的准备：-确保免疫组化笔是干净的，并且已经正确地装载了所需的抗体。

-准备好所有必要的试剂和设备，包括标记笔、抗体、显色剂、洗涤缓冲液等。

-阅读并理解免疫组化实验的说明书，确保熟悉实验步骤和注意事项。

2. 样本的准备：-确保组织样本已经正确固定、切片并进行了适当的抗原修复。

-样本应在无菌条件下处理，以避免污染和交叉反应。

3. 标记过程：-使用免疫组化笔时，要均匀、轻柔地涂抹抗体，避免过度压力导致笔尖损坏或样本损伤。

-标记时，笔尖应与组织保持适当的距离，以防止油性墨水渗入组织或染色区域。

-标记后的样本应在适当的温度和湿度的环境中孵育，以便抗体与抗原充分结合。

4. 洗涤和染色：-标记后，根据实验步骤进行适当的洗涤，以去除未结合的抗体和减少背景染色。

-使用适当的显色剂和洗涤缓冲液，确保染色过程的准确性和重复性。

5. 结果分析：-染色完成后，对结果进行显微镜检查和分析，确保标记的准确性和染色的质量。

-对照样本应与实验样本同时处理，以比较和验证结果。

6. 清洁和存储：-实验结束后，应清洁免疫组化笔，去除残留的抗体和染料，以备下次使用。

-存放时应避免笔尖受到损坏，确保下次使用时仍能保持良好的性能。

7. 质量控制：-定期进行质量控制检查，确保免疫组化笔的性能和染色的准确性。

-如有异常，应及时调整实验步骤或更换设备。

遵循这些注意事项可以帮助确保免疫组化实验的准确性和可重复性，从而得到可靠的研究结果。

组织免疫组化安全操作及保养规程前言组织免疫组化技术是一种广泛应用于生物医学领域的实验方法。

然而，在进行免疫组化实验时，操作不当会带来潜在的安全隐患，甚至会威胁实验人员的个人健康。

为了保证实验室操作的安全性和保养实验仪器的功能，我们制定了以下组织免疫组化安全操作及保养规程。

操作规程1. 实验操作前的准备在进行组织免疫组化实验前，实验人员需要做好以下准备：•穿戴防护服和口罩。

•确认工作区域内光线充足，环境清洁。

•将化学品储存在专用储藏柜中。

•检查实验所需仪器设备的运行状态，确保所有仪器设备能够正常运行。

•检查标本切片和试剂盒是否符合质量要求。

若存在损坏或过期试剂，应及时更换。

2. 样本切片处理在手持切片或使用切片仪时，实验人员应注意安全问题：•将镊子、匕首等手持物品放置在实验台上，并放置于防护纱网内。

•将切割刀片固定在切片仪上，并正确选择刀片大小。

•软组织样本需要将未固定的切片贴在蛋白质和等的带电的玻片上。

•检查切片是否正常切割：如出现压痕、凹痕、裂痕、切出黑点等异常情况，应及时更换切片或刀片。

3. 免疫组化试剂处理在使用免疫组化试剂盒进行实验时，实验人员应注意以下事项：•确认试剂盒是否符合质量要求。

如有瓶盖松动、泡沫产生或未经贮存的盒子，应及时更换或破坏。

•确认试剂是否符合标签中说明的有效期限。

•确认试剂标签上的化学品品名和规格及时被记录下来。

•避免不必要的接触。

如有外伤，不可对样本进行接触。

4. 仪器设备启动和停止顺序在使用免疫组化仪器设备时，实验人员应按以下步骤启动和停止仪器：启动设备：1.打开配电箱电源;2.打开电源（暂停（。