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1. 掌握腹腔注射和灌胃的操作方法；2. 了解腹腔注射和灌胃的优缺点；3. 掌握实验动物的基本操作技术。
二、实验材料1. 实验动物：大鼠（体重约200-300g）；2. 实验药品：生理盐水、葡萄糖、抗生素等；3. 实验器材：注射器、针头、酒精棉球、镊子、剪刀、解剖盘、剪刀、纱布等；4. 实验环境：实验室。
三、实验方法1. 腹腔注射实验（1）准备工作：将实验动物固定在解剖盘上，用酒精棉球消毒实验动物腹部皮肤。
（2）注射操作：左手抓取大鼠腹部皮肤，右手持注射器，针头斜向上，沿腹中线方向进针，进入腹腔后回抽无血液，缓慢注入药物。
（3）注射完毕，用纱布覆盖注射部位，观察动物反应。
2. 灌胃实验（1）准备工作：将实验动物固定在解剖盘上，用酒精棉球消毒实验动物口腔及咽部皮肤。
（2）灌胃操作：左手抓住大鼠头部，右手持注射器，针头沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，缓慢注入药物。
（3）注射完毕，用纱布覆盖注射部位，观察动物反应。
四、实验结果1. 腹腔注射实验：注射过程中，大鼠无不良反应，注射完毕后，动物精神状态良好。
2. 灌胃实验：注射过程中，大鼠无明显不适，注射完毕后，动物精神状态良好。
1. 腹腔注射和灌胃是两种常见的实验动物给药方式，各有优缺点。
2. 腹腔注射的优点是操作简便，药物吸收迅速，但可能引起动物应激反应，且部分药物不适宜腹腔注射。
3. 灌胃的优点是给药量准确，适用于多种药物，但操作过程中可能损伤动物，且药物吸收速度较慢。
4. 在实验过程中，应严格遵守操作规程，确保动物安全。
六、实验结论1. 通过本次实验，掌握了腹腔注射和灌胃的操作方法。
2. 了解腹腔注射和灌胃的优缺点，为今后的实验研究提供参考。
3. 提高了实验动物的基本操作技能，为科研工作奠定基础。
怎么进行猪腹腔注射
1、腹腔注射的原因：
腹腔注射适用于仔猪。
腹腔能容纳大量药液并有较的吸收能力，故可一次注入多量药液。
但必须是无刺激性的药液，天气寒冷又注入药液量较多时，需将药液加温到38 ℃~39℃。
如果较大的猪，因病致耳部发绀，无法看清血管时，也可作腹腔注射。
2、保定：
仔猪可提起两后肢保定，较大的猪可使其仰卧，呈后高前低姿势。
注前先抖动猪后肢，使肠管向前部移。
然后剪毛消毒。
3、注射位置：
注射部位在倒数第二乳头外侧约1.5cm处。
针头**好选用细长针头，注射前先将皮向一侧移开点点，再与皮肤呈垂直刺入针头，这样皮肤上的针孔与腹肌。
腹膜上的针孔就不在一直线上，可防腹腔感染。
针头刺入腹腔后，回抽针心，看是否有肠内容物，若没有即可注入药液，速度不宜过快，注后拨出针头，消毒。
一、小鼠腹腔注射：腹腔注射是常见的给药方式，尤其是在麻醉时。
常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用2. 腹腔注射时右手持注射器，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔，注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
液体外漏的主要原因是抓取小鼠时，腹部过紧而致腹内压过高所致，应该紧抓颈部但使其腹部皮肤松软，此时进针注射，不会外漏。
4. 小鼠腹腔注射的给药容积一般为5～10ml/kg二、皮下注射给药将药液推入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环的过程。
作皮下注射常选项背或大腿内侧的皮肤。
操作时，常规消毒注射部位皮肤，然后将皮肤提起，注射针头取一钝角角度刺入皮下，把针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如无回血，可缓慢地将药物注入皮下。
拔针时左手拇、食指捏住进针部位片刻，以防止药物外漏。
注射量约为0.1～0.3ml/10g体重。
三、皮内注射给药将药液注入皮肤的表皮河真皮之间，观察皮肤血管的通透性变化或皮内反应，接种、过敏实验等一般作皮内注射。
先将注射部位的被毛剪掉，局部常规消毒，左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连接4.5针头穿刺，针头进入皮肤浅层，再向上挑起并梢刺入，将药液注入皮内。
注射后皮肤出现一白色小皮丘，而皮肤上的毛孔极为明显。
注射量为0.1ml/次。
四、肌肉注射给药小鼠体积小，肌肉少，很少采用肌肉注射。
当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，采用肌肉注射。
操作时1人固定小鼠，另一人用左手抓住小鼠的1条后肢，右手拿注射器。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法腹腔注射是生物医学实验中常用的一种操作方法，它可以用于给小鼠、大鼠等实验动物进行药物注射、细胞悬液注射等操作。
正确的腹腔注射操作方法对于实验结果的准确性和实验动物的健康都有着重要的影响。
下面将介绍大鼠小鼠腹腔注射的操作方法。
一、实验前的准备工作1. 实验动物的准备：选择健康、体型适中、年龄相近的实验动物，进行一定的适应性饲养时间，使其适应实验环境。
2. 实验操作的准备：准备好需要使用的注射器、针头、药物或细胞悬液等实验物品，确保其干净无菌。
3. 实验环境的准备：在无菌、安静的实验环境中进行操作，保持操作台面的清洁，并准备好消毒酒精、无菌纱布等清洁物品。
二、腹腔注射操作步骤1. 实验动物的准备：将实验动物取出，放置在实验操作台上，使用专用的实验动物夹夹住实验动物的颈部，固定实验动物的身体，使其保持固定姿势。
2. 操作人员的准备：操作人员穿戴好实验服，戴好口罩，佩戴实验手套，保持手部的清洁，以防止实验操作过程中对实验动物造成感染。
3. 注射器的准备：将所需药物或细胞悬液等实验物品装入注射器中，确保注射器内无气泡，并检查针头是否安装牢固。
4. 定位实验动物：在实验动物的腹部找到解剖点，即离前肢近侧肋骨下缘处，用无菌纱布蘸取适量消毒酒精，对实验动物的腹部进行消毒处理。
5. 注射操作：用一只手握住实验动物的身体，用另一只手拿起装有药物的注射器，将针头从腹部向腹腔方向穿刺。
穿刺时要轻柔但有力，直到感觉针尖进入腹腔内，然后停留片刻以确保针尖在腹腔内，确认无误后慢慢注射药物。
6. 注射结束：将药物全部注射完毕后，慢慢将注射器从腹部拔出，用无菌纱布轻压注射部位，使药物不会外溢，并保持实验动物的安静。
7. 操作后的处理：将使用过的注射器、针头等实验用品进行无菌处理，以防止交叉感染的发生，将实验动物放回适宜的环境中继续饲养。
三、注意事项1. 选择适当的注射器和针头：根据实验动物的大小和实验物品的性质，选择合适的注射器和针头，以确保操作的准确性和安全性。
腹腔注射【定义】：腹腔注射是将药物注入胃肠道浆膜以外，腹膜以内．其吸收速度较快（2小时左右）。
【适应症】：人不常应用，有时可以作为特殊治疗手段，如多巴胺、速尿联合腹腔注射治疗肝硬化顽固性腹水。
当猪只较小而难以寻找耳静脉时，或天冷皮肤血管收缩或猪处于贫血消瘦情况血管不明显时，可以通过腹腔注射补液．以防脱水死亡，因下痢脱水1/3以上即有生命危险．【操作步骤】：小鼠腹腔注射腹腔注射是常见的给药方式，尤其是在麻醉时。
常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用1ml的注射器，配合4号针头。
2. 腹腔注射时右手持注射器，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔，注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
【禁忌】：⒈忌不等渗液体，如50%葡萄糖。
⒉药液须加温至体温⒊选用无刺激性药液，忌葡萄糖酸钙等。
⒋油乳剂，有沉淀，半固体药物不宜腹腔注射。
【优点】：操作方便，任何动物不论大小都可腹腔注射。
腹膜面积大.密布血管和淋巴管,吸收能力特强,每小时可吸收占动物体重3%~8 %的液体.且腹腔补液时间短,速度快大号针头2分钟即可输入500毫升药液,还不考虑心脏超负荷。
【其他声音】：某些兽医认为腹腔注射液不宜过大，20KG的猪20-30ml，30kg 的猪40ml，50kg的猪50ml。
【个人体会】：一般情况下，输入体重5%的适宜液体是安全可靠的。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法腹腔注射是一种常见的动物实验操作方法，它可以用于给小鼠或大鼠注射药物、细胞、病毒等物质。
正确的腹腔注射操作可以确保实验的准确性和可靠性，同时也可以减轻动物的痛苦和不适。
下面就介绍一下关于大鼠小鼠腹腔注射的操作方法。
一、准备工作在进行腹腔注射之前，首先需要做好准备工作，确保实验的顺利进行。
准备工作包括准备注射所需的器材和药物、准备动物、清洁工作台和操作区域等。
1. 准备器材：首先需要准备好所需的器材，包括注射针、注射器、酒精棉球、手套等。
注射针的大小要根据动物的体重和实验需要进行选择，一般来说，大鼠可以选择22号至25号的针头，小鼠可以选择25号至27号的针头。
2. 准备药物：根据实验需要，准备好需要注射的药物、细胞、病毒等物质。
确保药物的浓度和用量符合实验要求，避免浪费。
3. 准备动物：在进行腹腔注射之前，需要确认动物的健康状况和体重，选择适合的实验动物进行操作。
可以提前将动物从饲养箱中取出，放置在操作台上进行适应环境，减少动物的惊恐和焦虑。
4. 清洁工作台和操作区域：在进行腹腔注射之前，需要清洁工作台和操作区域，保持操作环境的清洁和卫生，避免污染。
二、腹腔注射操作步骤1. 基本操作要求腹腔注射是一种需要较高技术要求的操作方法，操作时需要细心、耐心和稳定的手部技巧。
在进行腹腔注射之前，需要对操作流程进行详细了解和掌握，并且要严格按照实验的操作规程和操作流程进行操作，以确保实验的可靠性和准确性。
2. 动物定位在进行腹腔注射之前，需要将动物放置在操作台上，进行适当的固定和定位。
一般来说，可以将动物的四肢与动物操作台的支架进行固定，同时注意动物的头部和背部要保持平稳，避免动物的不适和惊恐。
3. 皮肤消毒在进行腹腔注射之前，需要对动物的注射部位进行皮肤消毒，以确保注射部位的清洁和无菌。
可以使用酒精棉球对注射部位进行消毒，注意要避免酒精进入动物的眼睛或口腔。
4. 注射操作a. 使用手套和口罩确保实验的无菌操作。
小鼠腹腔注射操作要点
一、操作步骤：
1、根据注射需要的体积，称取绝对无菌的药液，放置在绝对无菌的容器中，然后以水浴加热至37℃。
2、小鼠两手仰卧，靠胸部颈部有足够高度，让它肚子处于有利位置，既易于观赏有利于注射。
3、取一支新的进口塑料胰岛素叉，拧紧前放，略向前方弯曲，用50%乙醇消毒，在小鼠的腹腔周围绕行；需要让叉子穿过腹腔肌肉，刺入约1-2cm处。
4、以慢速向小鼠腹腔内按注射量注入药液，药液注入过程中要控制注入速度，若小鼠出现不良反应，可用手慢慢压在小鼠体表，使小鼠稳定。
5、完成药液注入后，取出叉，把小鼠身体轻轻搓揉，使其药液沿腹壁均匀浸染，以及消除对小鼠身子的刺激感，并将小鼠置于绝对无菌的容器内。
6、按照规定的时限，将小鼠放回原位。
二、操作要点：
1、操作前，一定要进行全身消毒程序，确保手部等器械的无菌用途。
腹腔注射前，一定要用50％的乙醇细范地对叉子进行消毒，以确保小鼠注射无菌。
2、操作期间要经常更换新的叉子，以保证其清洁度，尤其要注意叉子使用前后末尾处要进行消毒。
3、捧住小鼠体表，以仰卧姿势仰卧小鼠，用1-2cm的深度刺入，尽量保持稳定，以防止小鼠体表流出毒素，完成操作时要轻轻戳小鼠腹部，让药液均为沿腹部浸染，缓解小鼠痛感。
4、操作完成后，必须把小鼠放置在通风光线充分的环境，定期检查小鼠健康，提供营养健康的食物，以及给予适当的温暖舒适的居住环境。
5、注射后，应立即称取注射量，以便观察小鼠病变治疗的效果，并尽快调整治疗策略。
6、给予小鼠吸收有益的物质，如胆酸，可有利于减少小鼠死亡率，起到保护作用。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法腹腔注射是一种常见的动物实验操作方法，用于给实验动物注射药物或其他实验物质。
本文将介绍大鼠小鼠腹腔注射的操作方法，以便于科研工作者正确、安全地进行相关实验操作。
一、准备工作1.1 实验室准备需要确保实验室的环境整洁、明亮，并且通风良好。
应保持实验室的温度和湿度处于适宜的范围，以确保动物在实验过程中能够处于良好的生理状态。
实验室内应配备必要的实验器材和药品，以便于进行实验操作。
在进行腹腔注射实验之前，需要对实验动物进行充分的准备工作。
应选择健康状态良好、体重适中的大鼠或小鼠作为实验动物，并将其放置在适宜的实验室环境中进行适当的驯化和饲养。
还需要对实验动物进行必要的体格检查，确保其身体状况良好，以保证实验结果的准确性。
二、操作步骤2.1 注射器和针头准备需要准备一支干净的注射器和一根适宜的注射针头。
通常情况下，对于大鼠，可选择1ml或2ml的注射器，并配备18号至22号的注射针头；对于小鼠，可选择0.5ml的注射器，并配备22号至26号的注射针头。
在使用前，应检查注射器和针头是否完好无损，并且进行必要的消毒处理，以确保实验的安全性和准确性。
2.2 动物准备在进行注射操作之前，需要将实验动物取出并置于操作台上，用纸巾或棉签轻轻擦拭其腹部，以保持注射部位的清洁。
还需要将实验动物固定在操作台上，以防止在注射过程中出现不必要的移动和颤动。
2.3 麻醉和消毒在进行腹腔注射之前，通常需要对实验动物进行适当的麻醉处理，以减轻其疼痛感和焦虑感。
一般情况下，可选择将实验动物放置在麻醉盒中进行麻醉处理，或者使用适当的麻醉药物进行注射处理。
在进行注射操作之前，还需要对注射部位进行必要的消毒处理，以防止感染和其他并发症的发生。
2.4 注射操作在完成麻醉和消毒处理之后，即可进行腹腔注射操作。
取出预先准备好的注射器和针头，将需要注射的药物吸入注射器中，并确保注射器中无气泡和溢出。
然后，选择注射针头插入实验动物的腹部，通常可选择在肚脐周围1-2厘米的处所。
腹腔注射锁定【定义】：腹腔注射是将药物注入胃肠道浆膜以外，腹膜以内．其吸收速度较快（2小时左右）。
【适应症】：人不常应用，有时可以作为特殊治疗手段，如多巴胺、速尿联合腹腔注射治疗肝硬化顽固性腹水。
当猪只较小而难以寻找耳静脉时，或天冷皮肤血管收缩或猪处于贫血消瘦情况血管不明显时，可以通过腹腔注射补液．以防脱水死亡，因下痢脱水1/3以上即有生命危险．【操作步骤】：小鼠腹腔注射腹腔注射是常见的给药方式，尤其是在麻醉时。
常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用1ml的注射器，配合4号针头。
2. 腹腔注射时右手持注射器，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔，注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
【禁忌】：⒈忌不等渗液体，如50%葡萄糖。
⒉药液须加温至体温⒊选用无刺激性药液，忌葡萄糖酸钙等。
⒋油乳剂，有沉淀，半固体药物不宜腹腔注射。
【优点】：操作方便，任何动物不论大小都可腹腔注射。
腹膜面积大.密布血管和淋巴管,吸收能力特强,每小时可吸收占动物体重3%~8 %的液体.且腹腔补液时间短,速度快大号针头2分钟即可输入500毫升药液,还不考虑心脏超负荷。
【其他声音】：某些兽医认为腹腔注射液不宜过大，20KG的猪20-30ml，30kg的猪40ml，50kg的猪50ml。
【个人体会】：一般情况下，输入体重5%的适宜液体是安全可靠的。
腹腔注射与静脉注射的区别腹腔注射和静脉注射的区别不大，静脉注射的药物注射后马上就能进入体循环；腹腔注射的药物要在腹腔中经过肠系膜静脉吸收后缓慢的逐步进入体循环。
两种给药方式的用量一般一样，但是腹腔注射产生作用的速度可能要慢一些。
腹腔注射操作方法
腹腔注射是将药物或其他液体注射到动物或人类的腹腔中。
这种注射方法常用于实验室动物或某些临床情况下。
以下是腹腔注射的一般操作方法：
1. 准备必要的工具和材料，包括注射器、针头、药物、酒精、无菌盘子或布等。
2. 洗手并戴上手套，确保卫生条件。
3. 将药物注射器连接到合适的针头上。
通常使用10毫升的注射器。
4. 将药物抽入注射器中，务必确认药物剂量准确。
5. 将注射器筒体竖立起来，提前准备好需要注射的实验动物或患者。
6. 遵循正常的注射程序和技巧，定位到腹腔区域。
在注射前，可以用酒精棉球清洁并消毒该区域。
7. 用一只手指轻轻按压腹腔，定位到一个适合注射的区域。
8. 用稳定的手势将针头插入腹腔，角度约为30度。
9. 缓慢注射药物，同时留意动物或患者的反应。
确保注射过程平稳和不引起不适。
10. 移除针头后，轻轻按压注射点，直到出血停止。
11. 丢弃使用过的注射器和针头，并进行清洁工作。
仔猪的腹泻是养殖业中的常见病高发病，但由于仔猪腹泻后迅速脱水．一方面使血液循环发生障碍造成药物吸收减缓或无法吸收．药物的作用无法发挥：另一方面仔猪脱水后常造成各系统迅速的衰竭导致死亡腹泻造成断奶前死亡的占5O％以上．给养殖业造成极大的经济损失仔猪腹泻的病因复杂，除细菌、病毒外，外界环境及营养因素也常引起腹泻．所以在治疗本病的同时，改善环境，提高营养才会取得更好的效果。
常规的治疗方法如肌肉注射，口服给药，头皮剂等治疗方法，但都存在缺点，效果不佳。
肌肉注射由于脱水后循环障碍对药物的吸收减少是药效降低效果不好：t51服给药不仅吸收速度慢而且对于重度腹泻胃肠常失去吸收功能，使药物无法发挥作用；头皮剂作用缓慢，常常药物还没发生作甩就已经死亡了：静脉注射的方法常可以迅速补液纠正代谢紊乱，但仔猪个体小，静脉细小，既增加注射的难度同时注射效率低，无法大面积推广。
腹腔注射补液优点是腹膜面积大．密布血管和淋巴管，吸收能力特强，每小时可吸收占动物体重3％~8 ％的液体．且腹腔补液时间短，速度快大号针头2分钟即可输入500毫升药液，还不考虑心脏超负荷。
对于个体小的仔猪安全适用、省时省力。
在注射的药液中可以加入如蒽诺沙星、环丙沙星、庆大霉素、卡那霉素等药品。
从而起到标本兼治的效果。
腹腔注射的方法：倒提法保定，待其停止挣扎后在耻骨前方3～6厘米腹白线f 正中线) 的侧方，局部消毒后用右手持注射器，使用普通12号注射针头与皮肤垂直刺人腹腔2～3厘米，刺人针感有活动而无抵触、回抽活塞无气体和液体时即可缓慢注入药液，每注射200毫升只用2～3分钟。
补液完毕，术部消毒．放回圈内。
腹腔注射的注意事项：1补液的位置要避开中线．特别是公猪，以免伤及阴茎。
2补液所用液体必须是等渗溶液如5％葡萄糖溶液及0．9％的氯化钠溶液，不可用高渗溶液，否则会加重脱水：刺激性药液，如氯化钙、磺胺等不能作腹腔注射，它们易引起腹膜炎和组织坏死。
3油乳剂、有沉淀的药物、半固体药剂不宜作腹腔注射，这些药物不易吸收。
4补液的药液需加温至37 度左右，．避免因为补液的温度过低加重仔猪病情。
5严格的消毒及无菌操作：对腹腔补液的位置要用碘酒消毒；对注射用针头，注射器每次用后都要高温消毒j对补液用水及加入的药物要现用现配，操作尽量保持l无菌，剩余的要废弃。
6对猪只要进行良好的保定，以免在挣扎中划伤肠管及肝肾。
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猪腹腔注射是指把药液注入或输入猪腹腔内的治疗技术。
现就我们10多年来的实践应用，介绍如下。
一腹腔注射的特点：
适用药物广、疗效高、补充体液迅速、药液容纳量大。
特别对于初生仔猪体质弱，消化机能不健全，御寒能力差，常发生腹泻。
仔猪发生腹泻时，水盐代谢失调，机体大量失水，如不及时补充水盐，常导致仔猪脱水而死。
因此在使用抗菌药物治疗的同时，还须做好补液工作。
畜体腹腔有较强的吸收力，腹膜表面积大，密布血管和淋巴管，吸收能力特强，每小时可吸收占动物体重3%—8.5%的液体，仅次于静脉注射，尤其当心脏衰弱，静脉注射困难时，通过腹腔注射进行补液甚好，而且通过补液尚可对食欲废绝和外科手术后的病危动物进行能量和营养物质的补充。
腹腔补液时间短，速度快，大号针头2分钟即可输入1000m1药液，且不必担心心脏超负荷。
安全适用，省时省力，只要不违反操作规程，对病猪不会造成危害。
二临床使用适应症：
1急性、群发性病，药效快、费时短，便于抢救。
如中毒、仔猪腹泻脱水。
2病后期或病重呼吸衰竭、心力衰弱需补液又经不起长时间静注应激，如猪气喘病等。
3急性发热脱水，需补液及体内物理降温，如中暑。
4体温降低，需补液及体内物理加温，如乳猪寒冻。
5阉割等原因引起腹膜炎及肠道发炎。
6肌肉注射部位因各种原因造成药物吸收差。
三补液处方：
处方1 生理盐水150ml，5%葡萄糖100ml，5%碳酸氢钠30ml，青霉素80万单位。
每天1次，连用3天。
处方2 5%葡萄糖200ml, 5%碳酸氢钠30ml，四环素10万单位，维生素C10ml。
每天1次，连用两天。
四腹腔注射的操作方法：
1 注射器械①金属注射器(10ml、20ml)，针头(12～18号、长3～7cm)，②输液器，分吊瓶输液用及注射器推注输液用2种，前者可取一次性人用输液器，将其末端的输液针拆除使用。
推注输液用器，依上述除去输液针后，向前50～60cm处剪断导管。
留用此下端导管，并于断口处套上前拆除的塑料针头座，供使用。
2注射器直接注射法常用于乳猪、小猪。
注射者右手持注射器，针头(12号，长3cm)取与腹壁垂直方向刺入(刺入腹腔后顿感阻力骤减)，后左手
扶住针头及注射器末端，右手回抽检查是否有血液或内容液后，推动注射器内塞注入药液。
3使用输注用输液器常用于中猪、大猪。
注射者左手按抵注射部位，右手持针头(12～18号，长4～7cm)抵住注射刺入点，伺机待猪安静时把针头垂直迅速刺入，然后左手扶持针头，右手接上输注用输液器，完全松开流量调节器，按常规吊瓶输入药液。
使用推注用输液器，参照上法注射。
4 保定原则是安全、迅速、简单、实用。
常用方法有：徒手保定、钳耳保定、一侧倒卧保定或用套绳保定和猪鼻捻棒保定等，前3种保定适用于中小猪，而套绳保定，常用于体大、性蛮猪。
助手2人用约3m长、拇指粗绳子，一端打一个直径20～25cm的活结环套，待环套套入猪的上颌犬齿后，推移环套活结，把环套套紧固定在猪上颌，牵拉固定绳子另端而保定。
猪鼻捻棒保定，助手1～2人使用一端穿孔并系有直径约15～20cm绳环的捻棒，左手持捻棒，右手把绳环套入猪的上颌犬齿之后，捻棒即时把绳环捻紧砸住猪上颌，助手持稳捻棒的另端向猪前方牵拉固定。
5 注射部位乳猪、小猪于脐至耻骨前缘连线的中部，离开腹中线2～5cm左(右)旁侧。
中大猪不易提起，多站立或倒卧保定，注射部位于两侧肷部，距髂外结节、腰锥横突及最后肋骨等距离的腹壁点。
待其停止挣扎，选择注射部位，一般在耻骨前方3—6cm腹白线（正中线）的侧方，局部剪毛消毒后，用右手持注射器，用普通注射针头，针头与皮肤垂直刺入腹腔2—3cm，刺入针感有活动而无抵触，回抽活塞无气体和液体时即可缓慢注入药液，也可连接在备用的吊瓶输液管上，吊瓶高挂，药液任其流入。
每注射500m1只用2—3分钟，补液量依体重和病情而定。
补液完毕，术部消毒，放回圈内。
五注意事项：
药液一般需接近体温，尤其在寒冷季节，注入大量药液时，应将液体加热到38℃左右。
但也应根据治疗需要，灵活掌握。
注射中需固定好针头。
针头须稍压腹壁，使腹壁脏面紧贴腹膜，以免针孔扩大或针头移动于腹壁与腹膜之间，造成药液注聚夹层。
如需多次注射，须避开原针头刺入点，每次注射前后，注射部位要用5%碘酊消毒。
膀胱积尿者宜先导尿，尿毒症或腹腔积液慎用。
保定方法得当与否是能不能顺利实施补液的关键。
必须在患猪机体吸收机能良好的情况下进行，对腹膜炎严重循环障碍者，应谨慎使用。
补液浓度不可过高，禁用刺激性药物。
进针深度掌握准确，过深则易伤及肠管等脏器，引起腹膜感染，根据刺入针感和药液流入快慢可以判断针刺腹腔是否准确，输液过程中注意观察患猪的反应，若挣扎过于剧烈则表明可能扎伤肠管，马上拔针另刺，推注药液先慢后快。
补液器具必须严格消毒。
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猪倒提起来打！
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