浮游动物生物量的测定方法

浮游动植物采样方法
一、浮游植物定量
用1L的塑料瓶，直接在采样点装满水，加10-15ml的鲁哥试剂，摇匀。

鲁哥试剂即将6g碘化钾溶于20ml水中，待其完全溶解后，将4g碘充分摇动，待其完全溶解后，定容至100ml，即配成鲁哥氏液。

二、浮游植物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。

三、浮游动物定量
表层取水样10L（中层和底层取20L水样）过25号浮游生物网，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，4%添加的福尔马林溶液。

福尔马林溶液即40%的甲醛与蒸馏水按照1：9的比例混合配制而成。

四、浮游动物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。

定性定量和生物量的监测技术（浮游、底栖、着生）(1)水样的沉淀浓缩将己固定的水样，放入1 000 ml沉淀器（沉淀器可用1 000 ml广口瓶或分液漏斗）中静置24 h，使其充分沉淀。

然后缓慢吸出上层清液，将剩下的20 ml左右的沉淀物转入30 ml定量瓶中，再用吸出的清液冲洗沉淀器3次，每次的冲洗液仍转入定量瓶中，并使终于容量为30 ml。

假如标本需长时光保存，应加入2～3 ml。

(2）定性调查将新奇或固定的水样，置于显微镜下举行属种鉴定。

对于优势种应当鉴定到种，普通种类可鉴定到属。

鉴定结束后，应将鉴定的种类列有名录。

假如鉴定到种属有困难，可按蓝藻、裸藻、绿藻、金藻、黄藻、硅藻、甲藻、原生动物、轮虫、枝角类和桡足类等大类举行鉴定。

(3）定量调查视野法计数：将定量瓶中的样品充分摇匀，采纳合适体积的计数框举行总数计数或分类计数。

每个样品计数2片，取其平均值；同一样品的两次计数之差超过±15％，需举行第3片计数，取两个近似的平均数作为计数结果（见表9.3)。

藻类、原生动物计数取0.1 ml，在l0x40～10x60倍显微镜下用0.1 ml的计数框举行藻类计数，计数50～300个视野，原生生物全片计数。

轮虫取1 ml，在10x10～10x20倍显微镜下用1 ml计数框举行全片计数。

甲壳动物取5 ml或8 ml，在10x10～10x20倍显微镜下用5 ml或8 ml计数框举行全片计数。

每升水中浮游植物的个体数，按下列公式计算：式中：N—1L水中浮游生物的个体数； Cs—计数框面积，mm2 ; Fs—每个视野的面积，mm2 ; Fn—计数过的视野数； V—1L水样经沉淀浓缩后的体积，ml; U—计数框的体积，ml; Pn—每片计数出的浮游生物个体数。

单位体积浮游动物的数量，按下列公式计算：式中：N—1L水样中浮游动物的数量，个／L; V—采样的体积，L; Vs—样品浓缩后的体积，ml; Va—计数样品体积，ml; n—计数所获得的个体数，个。

浮游动物鉴定方法浮游动物鉴定方法浮游动物是一类生活在水中的微小生物，广泛存在于淡水和海水中。

它们扮演着重要的生态角色，不仅是海洋食物链中的关键环节，还是水质评估和生物监测的重要指标。

因此，准确鉴定浮游动物的种类和数量对于环境保护和生态研究非常重要。

在浮游动物鉴定中，通常会使用显微镜观察样本，以确定它们的形态特征、结构和颜色等。

以下是一些常用的浮游动物鉴定方法：1. 样本采集：在水体中采集浮游动物样本时，应选择透明的容器，避免样本被污染或破坏。

最好在采样后尽快进行观察，以确保浮游动物的活性和形态特征的完整性。

2. 样本制备：取一小部分浮游动物样本，加入适量的水，使其浓度适中。

然后，将样本放置在载玻片上，覆盖一个薄玻片，并用透明胶带固定，以便在显微镜下观察。

3. 显微镜观察：将载玻片放入显微镜下，使用适当的倍率进行观察。

通常，10倍或40倍的放大倍率足够观察浮游动物的结构和特征。

4. 形态鉴定：通过观察浮游动物的形态特征，如大小、形状、颜色、鳃、触角等，来确定它们的种类。

此外，还可以观察其运动方式和行为模式等特征。

5. 参考资料和专家咨询：在鉴定过程中，可以参考相关的浮游动物分类书籍、图鉴和在线数据库，以了解更多关于特定种类的信息。

此外，也可以咨询专家或参加相关的培训课程，提高鉴定水平。

需要注意的是，浮游动物的鉴定是一个复杂而繁琐的过程，并且需要一定的经验和专业知识。

因此，在进行浮游动物鉴定之前，建议获得相关的培训和指导，以确保鉴定结果的准确性和可靠性。

总的来说，浮游动物的鉴定方法主要包括样本采集、样本制备、显微镜观察、形态鉴定和参考资料等步骤。

通过这些方法，我们可以更好地了解浮游动物的多样性和分布，为环境保护和生态研究提供重要的依据。

浮游动物生物量的测量方法自赵文《水生生物学》现存量：单位面积或体积中所存在生物体的数量或质量。

现存量若以个体数表示则可称为丰度或（数量）密度，单位为个/L。

若以质量表示则可称为生物量，单位为mg/L。

采集方法：一采水器采水后沉淀分离（适用原生动物、轮虫等小型浮游动物）；二用网过滤（适用于枝角类、挠足类等甲壳动物）。

仪器：采水器，（25#）浮游生物网，显微镜，计数框（计数原生动物用0.1ml计数框，计数轮虫和甲壳动物用1ml计数框）解剖镜，毛细管，目测微尺一采集1 设站根据浮游动物的分布设站。

2 采水层次由水体的深度决定。

切不可之采一个表层或一个底层水样。

（据夏季调查，东湖B站（水深4m左右），在2m的水层区，甲壳动物的数量约占31%，而入2m一下的水层占69%左右。

同时还发现，在夏季，一般幼体喜欢在表层，成体在深层。

）分层方法：是每隔0.5m或1m,甚至2m取一个水样加以混合，然后取得一部分作为浮游动物定量之用。

许多水库或深水湖泊，水深20m以上，这种水体在夏季及冬季存在温跃层（或称变温层）。

由于在温跃层一下缺乏光照，浮游植物数量极少，依赖植物生存的浮游动物数量也相应减少。

如果从养殖角度而言，只取温水层以上的水层就足够了。

3 采水量浮游动物不但种类组成复杂，而且个体大小相差也极悬殊。

因此要根据它们在水体中的不同密度二采不同的水量。

（目前计数原生动物、轮虫的水样量以1L为宜，枝角类、桡足类则以10~50L较好。

）4 采集时间采样时间要尽量保持一致。

一般在上午8:00~10:00进行为好。

在长江中下游采集，如果采集四次，则春、夏、秋、冬各一次。

如果只采一次，则应在秋季（9、10月）进行为好。

（这是因为9~10月正是鱼类摄食旺季，为鱼类生长的最佳时期，如果此时有较高的现存量，则可认为该水体中有较大的供铒能力。

）浮游动物样品的固定，原生动物和轮虫可用碘液或福尔马林，加量同浮游植物（一般可与浮游植物合用同一样品）。

浮游生物量计算方法浮游生物量是指水体中的浮游生物数量，通常用来评估水体的生态系统状况和水质变化。

浮游生物量计算方法是指通过测量和计算水体中浮游生物的数量和生物量来评估水体的浮游生物丰度和群落结构。

本文将介绍几种常用的浮游生物量计算方法。

一、显微镜计数法显微镜计数法是最常用的测量浮游生物数量的方法之一。

通过在显微镜下观察水样中的浮游生物，使用显微镜的目镜和物镜进行计数，然后根据计数结果和单位体积水样的体积计算出浮游生物的数量。

这种方法适用于水样中浮游生物数量较少的情况，但需要高度的专业知识和技巧。

二、集落计数法集落计数法是一种相对简单和快速的测量浮游生物数量的方法。

通过将水样在培养基上进行培养，浮游生物会在培养基上形成集落，通过计算集落的数量和大小来估算浮游生物的数量。

这种方法适用于水样中浮游生物数量较多的情况，但需要一定的培养时间和实验室设备。

三、生物量计算法生物量计算法是通过测量浮游生物的体长或体积，结合浮游生物的丰度，来计算浮游生物的生物量。

常用的方法有体长-体积关系法和生物量学模型法。

体长-体积关系法是通过建立浮游生物的体长和体积之间的关系，根据浮游生物的体长测量结果来计算浮游生物的体积，进而计算浮游生物的生物量。

生物量学模型法是通过建立浮游生物的体长、宽度和高度等参数与生物量之间的关系，根据浮游生物的形态测量结果来计算浮游生物的生物量。

这些方法需要对浮游生物的形态特征进行准确的测量和分析，适用于研究浮游生物的生物量变化和群落结构的长期监测。

四、分子生物学方法分子生物学方法是近年来发展起来的一种浮游生物量计算方法。

通过提取水样中的DNA或RNA，并使用分子生物学技术进行测序和定量分析，可以快速、准确地鉴定和计数水样中的浮游生物。

这种方法具有高度的灵敏性和特异性，可以检测到较低浓度的浮游生物，并且可以同时鉴定和计数多种不同种类的浮游生物。

浮游生物量计算方法有显微镜计数法、集落计数法、生物量计算法和分子生物学方法等。

浮游动植物调查方法1.方法与原理1.1采样点水体中浮游生物的分布不是很均匀的，通常因水体形态、深度、水源几出口、风、光照以及其他环境条件而差异，因此必须选择有代表性的地点进行采样。

在一般情况下，湖泊的湖湾和中心部分，沿岸有水草区和无水草区浮游生物的种类和数量都有不同。

当有风引起水流时，浮游生物多聚集在水流冲击的下风向一侧，总量较高。

此外，水源入口处，不同时间各水层的光照和温度条件下浮游生物的种类和数量都会有所不同。

采样点的数目根据水体的具体条件而定。

水体面积大的，条件复杂的，采样点要多些；要有较高人力、时间和经费等条件允许的，采样点也可以多些。

1.2采集采集工具主要有采集网和采水器。

当一般定性采集时，可站在船舱内或甲板上，将采集网系在竹竿或木棍前端，放入水中作∞形循回拖动（网口上端不要露出水面），拖动速度不要超过0.3米/秒。

如若拖动太快，水在网内会发生回流，将使网内的浮游生物冲到网外。

当一般定量采集时，各种类型的采水器均可使用，但一定要能分层采水。

在水深不超过10米的水体采样时，可用自制的采水器。

采水器可以采集到那些易从网孔中漏失的微小浮游生物。

但因采集水量有限，很难采到密度较稀和游动能力强的较大类型种类。

1.3固定和保存采到的样品必须在5分钟以内加以固定。

常用的固定液有福尔马林、刘哥氏液、甘油—福尔马林保存液、Rodhe碘固定液。

福尔马林为含有40%甲醛的药品。

一般按每100毫升水样加入约4毫升福尔马林（含1.6%甲醛），也就是说用4%福尔马林固定。

1.4浓缩化学沉淀法：所才水样用福尔马林加以固定静置1—2昼夜使之沉淀，用宏吸管吸去上面清夜，将下层包括沉淀物的浓液移入小容器中，再静置沉淀。

必要时可反复进行，直到浓缩到10—50毫升为止。

1.5观察与鉴定对所采到的浮游生物种类进行全面的种的鉴定，是一项难度和工作量都很大的工作，常常需要各方面的专家协同进行。

种类鉴定可采用检索表和图鉴相结合的方法。

水质常规项目实验之三
浮游动物的调查
一、实验试剂及工具
甲醛溶液40%（V/V）
采水器5000mL、浮游生物网13号（孔径0.112mm纱绢制成）、水样瓶（矿泉水瓶子）、样品瓶（带有100mL或150mL刻度的玻璃试剂瓶）、离心机、洗耳球、移液枪（20～200uL）、计数框0.05mL、盖玻片
二、实验步骤
1、采样：选择5个特定的区域作为采样点，关闭13号浮游
生物网的网口，5000mL采水器采水5次（用浮游生物网
过滤），第6次采水用于冲洗过滤网使浮游动物全部收集
到水样瓶中。

2、固定：在水样中加入10mL甲醛
3、沉淀：用3000转/分钟离心机5分钟离心
4、稀释：将离心后的上层清液弃去，沉淀物移入样品瓶中，
稀释到100mL
5、观察计数：用移液枪移取50uL样品，移入计数框，盖上
盖玻片，在显微镜4倍～40倍下进行观察并计数n
6、计算：每升水中浮游动物的数量
密度=（n×100）/（0.05×30）只/L
三、实验结果
1号（铁桥老王家）
233只/L
2号（南溪沟张磊）
550只/L
3号（老雷家）
917只/L
4号（清泉主航道）
733只/L
5号（翠屏岛码头沉淀稀释150mL）
375只/L
四、结果讨论
1、浮游动物含量介于233～917只/L，其中老雷家附近水域
含量最高，铁桥下水域含量最低。

同一二班所测结果相
差不大。

2、各类浮游动物大体平均含量为：（只/L）
显然累枝虫最多。

变形虫最少。

浮游动植物调查方法1.方法与原理1.1采样点水体中浮游生物的分布不是很均匀的，通常因水体形态、深度、水源几出口、风、光照以及其他环境条件而差异，因此必须选择有代表性的地点进行采样。

在一般情况下，湖泊的湖湾和中心部分，沿岸有水草区和无水草区浮游生物的种类和数量都有不同。

当有风引起水流时，浮游生物多聚集在水流冲击的下风向一侧，总量较高。

此外，水源入口处，不同时间各水层的光照和温度条件下浮游生物的种类和数量都会有所不同。

采样点的数目根据水体的具体条件而定。

水体面积大的，条件复杂的，采样点要多些；要有较高人力、时间和经费等条件允许的，采样点也可以多些。

1.2采集采集工具主要有采集网和采水器。

当一般定性采集时，可站在船舱内或甲板上，将采集网系在竹竿或木棍前端，放入水中作∞形循回拖动（网口上端不要露出水面），拖动速度不要超过0.3米/秒。

如若拖动太快，水在网内会发生回流，将使网内的浮游生物冲到网外。

当一般定量采集时，各种类型的采水器均可使用，但一定要能分层采水。

在水深不超过10米的水体采样时，可用自制的采水器。

采水器可以采集到那些易从网孔中漏失的微小浮游生物。

但因采集水量有限，很难采到密度较稀和游动能力强的较大类型种类。

1.3固定和保存采到的样品必须在5分钟以内加以固定。

常用的固定液有福尔马林、刘哥氏液、甘油—福尔马林保存液、Rodhe碘固定液。

福尔马林为含有40%甲醛的药品。

一般按每100毫升水样加入约4毫升福尔马林（含1.6%甲醛），也就是说用4%福尔马林固定。

1.4浓缩化学沉淀法：所才水样用福尔马林加以固定静置1—2昼夜使之沉淀，用宏吸管吸去上面清夜，将下层包括沉淀物的浓液移入小容器中，再静置沉淀。

必要时可反复进行，直到浓缩到10—50毫升为止。

1.5观察与鉴定对所采到的浮游生物种类进行全面的种的鉴定，是一项难度和工作量都很大的工作，常常需要各方面的专家协同进行。

种类鉴定可采用检索表和图鉴相结合的方法。

淡水浮游动物监测基本流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。

文档下载后可定制随意修改，请根据实际需要进行相应的调整和使用，谢谢!并且，本店铺为大家提供各种各样类型的实用资料，如教育随笔、日记赏析、句子摘抄、古诗大全、经典美文、话题作文、工作总结、词语解析、文案摘录、其他资料等等，如想了解不同资料格式和写法，敬请关注!Download tips: This document is carefully compiled by theeditor. I hope that after you download them,they can help yousolve practical problems. The document can be customized andmodified after downloading,please adjust and use it according toactual needs, thank you!In addition, our shop provides you with various types ofpractical materials,such as educational essays, diaryappreciation,sentence excerpts,ancient poems,classic articles,topic composition,work summary,word parsing,copy excerpts,other materials and so on,want to know different data formats andwriting methods,please pay attention!1. 监测点位的选择：根据监测目的和水体类型，选择具有代表性的监测点位。

浮游动植物调查方法1.方法与原理1.1采样点水体中浮游生物的分布不是很均匀的，通常因水体形态、深度、水源几出口、风、光照以及其他环境条件而差异，因此必须选择有代表性的地点进行采样。

在一般情况下，湖泊的湖湾和中心部分，沿岸有水草区和无水草区浮游生物的种类和数量都有不同。

当有风引起水流时，浮游生物多聚集在水流冲击的下风向一侧，总量较高。

此外，水源入口处，不同时间各水层的光照和温度条件下浮游生物的种类和数量都会有所不同。

采样点的数目根据水体的具体条件而定。

水体面积大的，条件复杂的，采样点要多些；要有较高人力、时间和经费等条件允许的，采样点也可以多些。

1.2采集采集工具主要有采集网和采水器。

当一般定性采集时，可站在船舱内或甲板上，将采集网系在竹竿或木棍前端，放入水中作∞形循回拖动（网口上端不要露出水面），拖动速度不要超过0.3米/秒。

如若拖动太快，水在网内会发生回流，将使网内的浮游生物冲到网外。

当一般定量采集时，各种类型的采水器均可使用，但一定要能分层采水。

在水深不超过10米的水体采样时，可用自制的采水器。

采水器可以采集到那些易从网孔中漏失的微小浮游生物。

但因采集水量有限，很难采到密度较稀和游动能力强的较大类型种类。

1.3固定和保存采到的样品必须在5分钟以内加以固定。

常用的固定液有福尔马林、刘哥氏液、甘油—福尔马林保存液、Rodhe碘固定液。

福尔马林为含有40%甲醛的药品。

一般按每100毫升水样加入约4毫升福尔马林（含1.6%甲醛），也就是说用4%福尔马林固定。

1.4浓缩化学沉淀法：所才水样用福尔马林加以固定静置1—2昼夜使之沉淀，用宏吸管吸去上面清夜，将下层包括沉淀物的浓液移入小容器中，再静置沉淀。

必要时可反复进行，直到浓缩到10—50毫升为止。

1.5观察与鉴定对所采到的浮游生物种类进行全面的种的鉴定，是一项难度和工作量都很大的工作，常常需要各方面的专家协同进行。

种类鉴定可采用检索表和图鉴相结合的方法。