实验报告-探究培养液中酵母菌种群数量的变化
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4.2实验培养液中酵母菌种群数量的变化
4、血球计数板的使用方法步骤
① 镜检计数室：
在加样前，先对计数板的计数室进 行镜检。若有污物，则需清洗，吹干 后才能进行计数。
② 加样品：
将清洁干燥的血球计数板的计数室上加盖专用的 盖玻片，用吸管吸取稀释后的酵母菌悬液，滴于盖 玻片边缘，让培养液自行缓缓渗入，一次性充满计 数室，防止产生气泡，充入细胞悬液的量以不超过 计数室台面与盖玻片之间的矩形边缘为宜。多余培 养液可用滤纸吸去。
随机取样，多次计数，取平均值
如何计数？
血球计数板
1、血球计数板的结构
血球计数板是一种专门用于计算较大单细胞 微生物数量的仪器，由一块比普通载玻片厚的 特制玻片制成的玻片中有四条下凹的槽，构成 三个平台。中间的平台较宽，其中间又被一短 横槽隔为两半，每半边上面刻有一个方格网。
大方格
中 方 格
小 方 格
例1
2×108
例2 检测员将1 mL水样稀释10倍后，用抽样检测的 方法检测每毫升蓝藻的数量；将盖玻片放在计数室上， 用吸管吸取少许培养液使其自行渗入计数室，并用滤 纸吸去多余液体。已知每个计数室由25×16＝400个 小格组成，容纳液体的总体积为0．1 mm3。
现观察到图中该计数室所示a、b、c、d、e 5个 中格80个小格内共有蓝藻n个，则上述水样中约有 5 蓝藻 5n×10 个／mL。
要将试管轻轻震荡几下，这样使酵母菌分 布均匀，防止酵母凝聚沉淀，提高计数的 代表性和准确性，求得的培养液中的酵母 菌数量误差小。
②.本探究需要设置对照吗？如果需要，请讨 论说明怎样设计；如不需要，请说明理由。
不需要。因为该实验在时间上形成前后的自身对照
第1天
第4天
第6天
第 7天
③.需要做重复实验吗？ 需要。尽量减少误差。对每个样品计数三 次,取其平均值。
最新实验报告-探究培养液中酵母菌种群数量的变化
实验报告: 探究培养液中酵母菌种群数量的变化班级姓名小组年月日一、实验目的：1、通过探究培养液中酵母菌种群数量的变化，来研究一个种群的数量变化情况，尝试构建种群增长的数学模型。
2、通过使用血球计数板掌握单细胞生物的计数方法。
二、实验原理：1、酵母菌可以用液体培养基来培养，培养液中的酵母菌种群的增长情况与培养液中的成分、空间、PH、温度等因素有关，我们可以根据培养液中的酵母菌数量和时间为坐标轴做曲线，从而掌握酵母菌种群数量的变化情况。
2、利用血球计数板在显微镜下直接计数是一种常用的细胞计数法，这种方法可以直接测定样品中全部的细胞数目，所以一般用于单细胞微生物数量的测定，由于血球计数板上的计数室盖上盖玻片后的容积是一定的，所以可根据在显微镜下观察到的细胞数目来计算单位体积的细胞的总数目。
三、实验材料：酵母菌菌种，无菌马铃薯培养液或肉汤培养液。
四、实验用具：无菌水，试管，棉塞，恒温培养箱，显微镜，无菌滴管，无菌移液管，小烧杯或小试管，血球计数板(2mm×2mm×0.1mm)、纱布、滤纸、镊子、盖玻片。
五、方法步骤：1、取相同洁净试管若干支，分别加入5ml马铃薯培养液，塞上棉塞。
2、用高压锅进行高压蒸汽灭菌后，标记甲、乙、丙等。
3、将酵母菌母液分别加入试管甲、乙、丙，各5ml，摇匀后用血球计数板计数起始酵母液个数，做好记录。
4、将各试管送进恒温箱，25℃下培养7天。
5、每天时间，各组取出本组的试管，用血球计数板计数酵母菌个数，并作记录，连续观察7天。
六、实验记录表根据表格数据绘图：七、实验结论：培养液酵母菌种群数量随时间呈型增长变化。
数量时间中考历史政治知识点全汇总国策、战略、理念（3个考点）1、基本国策：对外开放、计划生育、保护环境、节约资源。
2、治国战略：依法治国、以德治国、科教兴国、人才强国、可持续发展、西部大开发。
3、发展理念：科学发展观、和谐社会、以人为本、低碳生活。
发展道路、理论体系、伟大旗帜（3个考点）1、发展道路：中国特色社会主义道路、可持续发展道路生态友好型社会、资源节约型社会、全面建设小康社会、构建社会主义和谐社会。
培养液中酵母菌种群数量的变化
3) 观察A、B曲线，思考： （1）为什么到一定时间后酵母菌数量不再增加了？ （2）到了一定时候，酵母菌种群数量下降了，原因是 什么？
可能影响酵母种群数量增长的限制因素：除了温度、养分外，生 活空间、种群密度等也须考虑。
4)那么，酸碱度等因素会不会影响酵母种群数量增长？
再见
血球计数板的分区与分格
25（中格）×16（小格）
16 （中格）×25 （小格）
• 血球计数板的分区与分格
*
*
#
#
*
*
• 例一
• 1大格=Βιβλιοθήκη 6中格•=16 X 25小格
•
=400小格
#
#
#
例二 1大格=25中格
=25 X 16小格 =400小格
高倍镜下的中方格 中方格的边界是双线，计数时以内线为边界
血球计数板计数
计数方法
思考：
#
#
1、设每个中方格中的细
菌数分别是：A1，A2，
A3，A4，稀释倍数为：
B，则样品中细胞数/ml是
多少？
#
#
1立方毫米=1毫升
（A1+A2+A3+A4）/4*16*10*1000*B
• 一个大方格有25个中方
#
# 格的计数板为例进行计算：
设5个中方格中总菌数为
A，菌液稀释倍数为B，
C组不装培养液，只装无菌水10mL,酵母菌母液0.1mL,环境温度28℃ ，与A组形成营养条件对照。
3. 实验操作
（l）无菌马铃薯培养液配制 材料：用天平称取 马铃薯（去皮）200g，葡萄糖20g，大烧杯量 取1000 mL水。 （2）灭菌 （3）接种 （4）培养 将 A、C试管置于 28℃的恒温箱中培养。将 B试管置 于5℃的恒温箱中培养。 （5）计数 每次每组按序号取一支试管。每次取样前要试管振荡 摇匀用滴管吸取1滴培养液滴在已盖在血球计数板网格上的盖玻 片的边缘，待培养液自行渗入并充满网格后，再放在显微镜下进 行细胞计数，如记数时发现，细胞数较多，不易分辨，吸取的样 液应当稀释。方法是：将9 mL无菌水移入1支干净的试管里，然 后立即将1mL培养液移入试管里并充分混匀，使原培养液被稀释 10倍。再依照刚才方法进行取样记数。
可能影响酵母种群数量增长的限制因素：除了温度、养分外，生 活空间、种群密度等也须考虑。
4)那么，酸碱度等因素会不会影响酵母种群数量增长？
再见
血球计数板的分区与分格
25（中格）×16（小格）
16 （中格）×25 （小格）
• 血球计数板的分区与分格
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• 例一
• 1大格=Βιβλιοθήκη 6中格•=16 X 25小格
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=400小格
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例二 1大格=25中格
=25 X 16小格 =400小格
高倍镜下的中方格 中方格的边界是双线，计数时以内线为边界
血球计数板计数
计数方法
思考：
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1、设每个中方格中的细
菌数分别是：A1，A2，
A3，A4，稀释倍数为：
B，则样品中细胞数/ml是
多少？
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1立方毫米=1毫升
（A1+A2+A3+A4）/4*16*10*1000*B
• 一个大方格有25个中方
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# 格的计数板为例进行计算：
设5个中方格中总菌数为
A，菌液稀释倍数为B，
C组不装培养液，只装无菌水10mL,酵母菌母液0.1mL,环境温度28℃ ，与A组形成营养条件对照。
3. 实验操作
（l）无菌马铃薯培养液配制 材料：用天平称取 马铃薯（去皮）200g，葡萄糖20g，大烧杯量 取1000 mL水。 （2）灭菌 （3）接种 （4）培养 将 A、C试管置于 28℃的恒温箱中培养。将 B试管置 于5℃的恒温箱中培养。 （5）计数 每次每组按序号取一支试管。每次取样前要试管振荡 摇匀用滴管吸取1滴培养液滴在已盖在血球计数板网格上的盖玻 片的边缘，待培养液自行渗入并充满网格后，再放在显微镜下进 行细胞计数，如记数时发现，细胞数较多，不易分辨，吸取的样 液应当稀释。方法是：将9 mL无菌水移入1支干净的试管里，然 后立即将1mL培养液移入试管里并充分混匀，使原培养液被稀释 10倍。再依照刚才方法进行取样记数。
实验13 培养液中酵母菌种群数量的变化(解析版)
实验13 培养液中酵母菌种群数量的变化➢核心知识回顾1、实验原理(1)用培养基培养酵母菌，种群的增长受培养液的成分、空间、、等因素的影响。
(2)在理想的环境条件下，酵母菌种群的增长呈曲线增长；在有环境阻力的条件下，酵母菌种群的增长呈曲线增长。
(3)计算酵母菌数量可用的方法。
2、实验设计(1)变量分析：自变量：；因变量：；无关变量：培养液的体积等。
(2)步骤：先将放在血细胞计数板的计数室上→用吸管吸取培养液→滴于边缘→让培养液自行渗入→用吸去多余的培养液→酵母菌全部沉降到计数室→显微计数一个小方格内的酵母菌数量→估算试管中酵母菌的总数。
3、结果分析(1)开始一段时间内，酵母菌的增长符合型曲线增长模型。
(2)de段曲线下降的原因可能有随着消耗逐渐减少，有害产物逐渐积累，培养液的等理化性质发生改变等。
4、实验注意事项及分析①显微镜计数时，对于压在小方格界线上的酵母菌，应遵循“计上不计下，计左不计右”的原则。
②从试管中吸出培养液进行计数前，需将试管轻轻振荡几次，目的是使培养液中的酵母菌，减小误差。
③本实验(“需要”或“不需要”)设置对照实验，因不同时间取样已形成对照；(“需要”或“不需要”)做重复实验，目的是尽量减小误差，应对每个样品计数三次，取其平均值。
④如果一个小方格内酵母菌过多，难以数清，应当培养液重新计数。
⑤每天计数酵母菌数量的时间要。
⑥若使用的血细胞计数板(规格为1 mm×1 mm×0.1 mm)每个计数室分为25个中方格，每个中方格又分为16个小方格，将样液稀释100倍后计数，发现计数室四个角及中央共5个中方格内的酵母菌总数为20个，则培养液中酵母菌的密度为个/mL。
⑦本实验的目的是研究一定时间内酵母菌活细胞数量的动态变化，但实际上显微镜直接计数的是总的菌体(包括死菌和活菌)，可以通过染色法区别活细胞与死细胞。
活的酵母菌将呈色，死的酵母菌将呈色，然后分别计数，算出两者比例，从而进一步换算出总菌体数中的活菌数。
《探究培养液中酵母菌种群数量变化》改进实验
《探究培养液中酵母菌种群数量变化》改进实验引言酵母菌是一类单细胞真菌，生活广泛且在许多领域都起着重要作用。
在生物学实验中，研究酵母菌种群数量变化对于理解酵母菌的生长规律和生物学特性具有重要意义。
当前的酵母菌数量变化实验存在一些不足之处，例如操作复杂、数据准确性不高、结果可重复性差等问题，因此有必要对实验方法进行改进，以便得到更准确可靠的实验结果。
一、实验目的本实验旨在改进当前酵母菌数量变化实验方法，提高实验的准确性、可重复性和操作的简便性，为进一步研究酵母菌的生长规律和生物学特性奠定基础。
二、实验材料和方法1. 实验材料（1）培养液：含有适量酵母菌生长所需的营养成分的培养液；（2）酵母菌种子液：含有大量活跃酵母菌的培养液；（3）平板培养基：含有适量的培养物质和琼脂的培养基。
2. 实验方法（1）实验前准备：将培养液倒入培养瓶中，并使用高温高压灭菌仪对培养液进行灭菌处理，以保证培养液的无菌状态；（2）培养酵母菌：将酵母菌种子液加入培养液中，置于恒温培养箱中进行培养，记录在不同时间点的菌落数量；（3）平板计数：取适量的培养液进行稀释处理，然后将其均匀涂布在平板培养基上，培养一定时间后，使用计数器进行酵母菌数量的计数。
三、实验改进在对酵母菌数量变化实验方法进行分析的基础上，我们提出了如下改进措施：1. 增加平板计数次数：当前实验中仅进行了一次平板计数，容易受到偶然因素的影响，不足以反映酵母菌数量的真实变化。
我们建议增加平板计数的次数，以提高实验数据的可靠性。
2. 使用自动化计数设备：传统的平板计数需要人工进行，操作繁琐且容易引入误差，我们建议引入自动化计数设备，提高计数的准确性和效率。
3. 采用多种培养液：当前实验中仅使用了一种培养液，为了更全面地了解酵母菌数量的变化规律，我们建议采用不同成分的培养液进行实验，并比较它们对酵母菌数量变化的影响。
四、预期结果通过对酵母菌数量变化实验方法的改进，我们预期可以得到更加准确、可靠的实验结果。
《探究培养液中酵母菌种群数量变化》改进实验
《探究培养液中酵母菌种群数量变化》改进实验引言酵母菌是一种单细胞真菌，广泛应用于食品工业、酿酒业和生物学实验中。
探究培养液中酵母菌种群数量变化的实验可以帮助我们了解酵母菌的生长特性和调控因素。
传统的实验方法可能存在一些问题，因此我们进行了一系列改进，旨在提高实验的可靠性和指导性。
实验目的本实验旨在改进探究培养液中酵母菌种群数量变化的实验方法，以提高实验的准确性和可靠性。
材料与方法1. 材料：酵母菌培养液、无菌培养皿、无菌移液管、无菌培养瓶、无菌耗材等。
2. 方法：2.1 准备工作：将所有玻璃器皿和培养液进行高温高压灭菌，确保实验的无菌性。
2.2 培养酵母菌种群：2.2.1 取一定体积的酵母菌培养液放入无菌培养瓶中，密封好，摇晃均匀使其悬浮均匀。
2.2.2 根据需要，分别取出一定体积的酵母菌悬液加入无菌培养皿中。
2.2.3 将培养皿放入恒温恒湿箱中（温度和湿度可根据实验需求进行调整），进行酵母菌的培养。
2.3 取样与计数：2.3.1 从酵母菌培养皿中取出一定体积的酵母悬液，分别加入无菌移液管中。
2.3.2 使用显微镜对酵母菌进行计数。
通过目镜计数室或平面计数室，统计培养液中的酵母菌数量。
重复多次计数取平均值，以提高结果的准确性。
2.4 分析数据：根据不同时间点的酵母菌数量和时间的关系绘制曲线图，以观察酵母菌种群数量的变化趋势。
结果与讨论通过改进实验方法，我们得到了一组更可靠的数据，并绘制了酵母菌种群数量与时间的关系曲线。
从结果中可以看出，初始阶段，酵母菌种群数量增长较为缓慢。
随着时间的推移，酵母菌数量迅速增加，达到最高峰后逐渐趋于平稳。
这是因为酵母菌在培养液中寻找营养物质进行繁殖的过程。
在初始阶段，酵母菌的数量相对较少，营养物质相对较多，导致其繁殖速度较慢。
随着酵母菌数量的增加，营养物质逐渐减少，酵母菌的繁殖速度逐渐加快。
当酵母菌数量达到一定水平后，营养物质被消耗殆尽，酵母菌数量停止增长，进入平衡状态。
探究培养液中酵母菌种群数量的变化
细胞数/ml=(80小格内的细胞数/80)×400×10000×稀释倍数
设：每个中方格的菌数为A，则 每样小品格中平的均菌菌数/数m=l=（AA11++AA22++AA383+0+AA44++AA55)X/804000,000 X 稀释倍数
器材
酵母菌悬液，血球计数板，显微镜，盖玻片，无 菌毛细管等。
母出芽，芽体大小达到母细胞的一半时，即作两个菌体计数)。
5．清洗血球计数板
血球汁数板使用后,用自来水冲洗,切勿用硬物洗刷, 洗后自行晾干或用吹风机吹干,或用95%的乙醇,无 水乙醇,丙酮等有机溶剂脱水使其干燥. 通过镜检观察每小格内是否残留菌体或其他沉淀 物.若不干净,则必须重复清洗直到干净为止.
优点是直观、快速。将经过适当稀释的菌悬 液（或孢子悬液）放在血球计数板载玻片与 盖玻片之间的计数室中，在显微镜下进行计 数。由于计数室的容积是一定的（0.1㎜3）， 所以可以根据在显微镜下观察到的微生物数 目来换算成单位体积内的微生物总数目。由
于此法计得的是活菌体和死菌体的总和，故又称为 总菌计数法。
（2）步骤:
培养液配制：配制质量分数为5％的葡萄糖溶液（葡萄 糖20g，1000 mL水），分装到5个烧杯中（200mL/烧 杯）
灭菌：用高压蒸汽灭菌锅将培养液和取样、计数时所用 的滴管分别灭菌。贴标签。
接种(无菌操作）：接种时要在酒精灯附近，用灭菌干 净的1mL刻度吸管每次吸取0.1mL酵母菌母液，往每个 烧杯中加入。（注意滴加量不要太多，避免初始菌数过 多)
4．显微镜计数
将血球计数板置于显微镜载物台上，先用低倍镜找到计数 室所在位置，然后换成高倍镜进行计数。
若选用25×16规格的计数板则每个计数室选5个中方格， 可选4个角和中央的中格（即80个小格），若选用16×25 规格的计数板，则数四个角：左上、右上、左下、右下的 四个中方格，（即100小格）中的菌体进行计数。
设：每个中方格的菌数为A，则 每样小品格中平的均菌菌数/数m=l=（AA11++AA22++AA383+0+AA44++AA55)X/804000,000 X 稀释倍数
器材
酵母菌悬液，血球计数板，显微镜，盖玻片，无 菌毛细管等。
母出芽，芽体大小达到母细胞的一半时，即作两个菌体计数)。
5．清洗血球计数板
血球汁数板使用后,用自来水冲洗,切勿用硬物洗刷, 洗后自行晾干或用吹风机吹干,或用95%的乙醇,无 水乙醇,丙酮等有机溶剂脱水使其干燥. 通过镜检观察每小格内是否残留菌体或其他沉淀 物.若不干净,则必须重复清洗直到干净为止.
优点是直观、快速。将经过适当稀释的菌悬 液（或孢子悬液）放在血球计数板载玻片与 盖玻片之间的计数室中，在显微镜下进行计 数。由于计数室的容积是一定的（0.1㎜3）， 所以可以根据在显微镜下观察到的微生物数 目来换算成单位体积内的微生物总数目。由
于此法计得的是活菌体和死菌体的总和，故又称为 总菌计数法。
（2）步骤:
培养液配制：配制质量分数为5％的葡萄糖溶液（葡萄 糖20g，1000 mL水），分装到5个烧杯中（200mL/烧 杯）
灭菌：用高压蒸汽灭菌锅将培养液和取样、计数时所用 的滴管分别灭菌。贴标签。
接种(无菌操作）：接种时要在酒精灯附近，用灭菌干 净的1mL刻度吸管每次吸取0.1mL酵母菌母液，往每个 烧杯中加入。（注意滴加量不要太多，避免初始菌数过 多)
4．显微镜计数
将血球计数板置于显微镜载物台上，先用低倍镜找到计数 室所在位置，然后换成高倍镜进行计数。
若选用25×16规格的计数板则每个计数室选5个中方格， 可选4个角和中央的中格（即80个小格），若选用16×25 规格的计数板，则数四个角：左上、右上、左下、右下的 四个中方格，（即100小格）中的菌体进行计数。
探究培养液中酵母菌数量的动态变化
探究培养液中酵母菌数量的动态变 化 问题探究：
1、如果一个小方格内酵母菌过多，难以数清，应当采取怎 样的措施？ 摇匀试管取1ml酵母菌培养液稀释几倍后，再用血球计数 板计数，所得数值乘以“n×2.5×104”，即为1ml酵母菌 原液中酵母菌个数。
2、本探究需要设置对照吗？如果需要，请讨论说明怎样设 计；如不需要，请说明理由。
计算公式
• 16格×25格的血球计数板计算公式： 酵母细胞数/ml=小格内酵母细胞个数 /100×400×104×稀释倍数
• 25格x16格的血球计数板计算公式： 酵母细胞数/ml=小格内酵母细胞个数 /80×400×104×稀释倍数
探究培养液中酵母菌数量的动态变 化 方案设计：
一、提出问题 培养一种酵母菌种群的数量是怎样随时间变化的？也可以 提出其他的探究问题，例如，在不同温度（以及通氧、通CO2 等）条件下酵母菌种群数量增长的情况如何？不同培养液（如 加糖和不加糖）中酵母菌种群数量增长的情况如何？等等。 二、猜想假设 酵母菌种群的数量随时间呈S型增长变化。 三、设计实验 ①全班同学分成甲、乙、丙等若干实验组。②分别用等量 培养液，在相同适宜环境中培养等量酵母菌。③每天用血球计 数板，采用抽样检测的方法计数一个小方格内的酵母菌数量并 作记录，连续7天。④7天后，各组向全班汇报本小组7天的数 据，算出每一天数据的全班平均值，根据平均值画出酵母菌种 群数量的增长曲长。
(3)将血球计数板用擦镜纸擦净，在中央的计数室上 加盖专用的厚玻片。 (4)将稀释后的酵母菌悬液，用吸管吸取一滴置于盖 玻片的边缘，使菌液缓缓渗入，多余的菌液用吸水 纸吸取，捎待片刻，使酵母菌全部沉降到血球计数 室内。 (5)计数时，如果使用16格×25格规格的计数室，要 按对角线位，取左上、右上、左下、右下4个中格 （即100个小格）的酵母菌数。如果规格为25格 ×16格的计数板，除了取其4个对角方位外，还需 再数中央的一个中格(即80个小方格)的酵母菌数。
生物-培养液中酵母菌种群数量的变化
培养液中酵母菌种群数量的变化[高中生物]1.利用血细胞计数板进行微生物的计数。
2.探究培养液中酵母菌种群数量的变化。
3.总结影响种群数量变化的因素。
[素养要求] 科学探究：需要学生讨论确定显微镜下酵母菌计数的方法等问题，所用抽样检测法与样方法有相通之处，可以看作宏观调查方法在微观领域的应用，有助于培养学生严谨求实的科学态度和进行统计思维方法的训练。
1．实验目的：探究培养液中酵母菌种群数量的变化并总结影响种群数量变化的因素。
2．实验原理：酵母菌是单细胞真核生物，生长周期短，增殖速度快，可以用液体培养基来培养。
3．提出问题：培养液中酵母菌种群的数量是怎样随时间变化的？4．作出假设：培养液中的酵母菌数量一开始呈“J”形增长；随着时间的推移，由于营养物质的消耗、有害代谢产物的积累、pH的改变，酵母菌数量呈“S”形增长。
5．实验设计(1)变量分析：自变量：时间；因变量：酵母菌数量；无关变量：培养液的体积等。
(2)怎样对酵母菌进行计数？①方法：抽样检测法。
②用具：试管、滴管、血细胞计数板、显微镜等。
③步骤：先将盖玻片放在血细胞计数板的计数室上→用吸管吸取培养液→滴于盖玻片边缘→让培养液自行渗入→用滤纸吸去多余的培养液→酵母菌全部沉降到计数室底部→显微计数一个小方格内的酵母菌数量→估算试管中酵母菌的总数。
6．实施计划：首先通过显微镜观察，估算出10 mL培养液中酵母菌的初始数量(N0)，在此之后连续观察7天，分别记录下这7天的数值。
7．实验结果：酵母菌增长曲线图(如图1)及酵母菌增长速率曲线图(如图2)如下：增长曲线的总趋势是先增加再降低，原因是在开始时培养液的营养充足、空间充裕、条件适宜，因此酵母菌大量繁殖，种群数量剧增，随着酵母菌数量的不断增多，营养消耗、pH变化、有害产物积累等，使生存条件恶化，酵母菌死亡率高于出生率，种群数量下降。
判断正误(1)可用抽样检测的方法监测酵母菌数量( )(2)应先向计数室滴加样液，再盖盖玻片( )(3)待酵母菌全部沉降到计数室底部再开始计数( )答案 (1)√ (2)× (3)√探讨点 酵母菌的计数1．从试管中吸出培养液进行计数之前，需将试管轻轻振荡几次，试分析其原因。
实验报告-探究培养液中酵母菌种群数量的变化
实验报告-探究培养液中酵母菌种群数量的变化实验报告: 探究培养液中酵母菌种群数量的变化班级姓名小组年月日一、实验目的：1、通过探究培养液中酵母菌种群数量的变化，来研究一个种群的数量变化情况，尝试构建种群增长的数学模型。
2、通过使用血球计数板掌握单细胞生物的计数方法。
二、实验原理：1、酵母菌可以用液体培养基来培养，培养液中的酵母菌种群的增长情况与培养液中的成分、空间、PH 、温度等因素有关，我们可以根据培养液中的酵母菌数量和时间为坐标轴做曲线，从而掌握酵母菌种群数量的变化情况。
2、利用血球计数板在显微镜下直接计数是一种常用的细胞计数法，这种方法可以直接测定样品中全部的细胞数目，所以一般用于单细胞微生物数量的测定，由于血球计数板上的计数室盖上盖玻片后的容积是一定的，所以可根据在显微镜下观察到的细胞数目来计算单位体积的细胞的总数目。
三、实验材料：酵母菌菌种，无菌马铃薯培养液或肉汤培养液。
四、实验用具：无菌水，试管，棉塞，恒温培养箱，显微镜，无菌滴管，无菌移液管，小烧杯或小试管，血球计数板(2mm×2mm×0.1mm)、纱布、滤纸、镊子、盖玻片。
五、方法步骤：1、取相同洁净试管若干支，分别加入5ml 马铃薯培养液，塞上棉塞。
2、用高压锅进行高压蒸汽灭菌后，标记甲、乙、丙等。
3、将酵母菌母液分别加入试管甲、乙、丙，各5ml ，摇匀后用血球计数板计数起始酵母液个数，做好记录。
4、将各试管送进恒温箱，25℃下培养7天。
5、每天时间，各组取出本组的试管，用血球计数板计数酵母菌个数，并作记录，连续观察7天。
六、实验记录表根据表格数据绘图：七、实验结论：培养液酵母菌种群数量随时间呈型增长变化。
数量时间。
培养液中酵母菌种群数量的变化 (2)
培养液中酵母菌种群数量的变化
在培养液中，酵母菌种群数量的变化通常遵循以下模式：
1. 潜伏期（lag phase）：在初始阶段，酵母菌种群数量较少，适应环境需要一定时间来进行繁殖和适应。
在此阶段，种群数量增长缓慢，菌落较小。
2. 指数期（exponential phase）：一旦酵母菌种群适应了环境条件，其数量开始迅速增加。
在指数期中，种群数量
以指数速度增长，每个细胞通过二分裂产生新的子细胞。
此时，培养液中的酵母菌数量呈现出显著的增加趋势。
3. 平台期（stationary phase）：当培养液中的营养物质
耗尽或有害物质积累到一定水平时，酵母菌种群数量不再
继续增加。
在平台期中，种群数量保持相对稳定，新生细
胞数量等于死亡细胞数量。
4. 降解期（death phase）：当培养液中的营养物质完全
耗尽，或者有害物质浓度过高时，酵母菌种群开始寿命减少，死亡细胞数量超过新生细胞数量。
种群数量逐渐减少，直到完全消失。
酵母菌种群数量的变化受到培养液中的营养物质、pH值、温度和氧气等环境因素的影响。
不同的酵母菌株和培养条
件也会导致种群数量变化的差异。
探究培养液中酵母菌种群数量的变化
探究培养液中酵母菌种群数量的变化1. 酵母菌种群数量的变化是指在培养液中酵母菌数量随时间的变化情况。
酵母菌是一种单细胞真菌，可以通过无性繁殖产生大量的子孙。
在适宜的培养条件下，酵母菌的数量会迅速增加，直到达到一个平衡点。
2. 酵母菌是以营养物质为基础，通过进行代谢活动来生存和繁殖的。
在培养液中，酵母菌首先会利用培养液中的可溶性有机物如糖类来进行呼吸作用，产生能量和二氧化碳。
这个过程被称为酵母菌的生长阶段，菌落数量会迅速增加。
3. 随着酵母菌数量的增加，培养液中的营养物质会逐渐被消耗殆尽。
当营养物质供应不足时，酵母菌会进入一个相对稳定的状态，进入代谢减慢阶段。
这个过程被称为酵母菌的平衡阶段，菌落数量会停止增加，维持在一个相对恒定的水平。
4. 在酵母菌的平衡阶段中，菌落数量的变化取决于两个主要因素：死亡率和出生率。
死亡率是指酵母菌死亡的速率，可能由于竞争资源、环境压力或外界干扰引起。
出生率是指新酵母菌子代的产生速率，可以通过无性繁殖或有性繁殖来实现。
5. 如果酵母菌的死亡率大于出生率，那么酵母菌数量就会减少，进入菌落数量下降的阶段。
相反，如果酵母菌的出生率大于死亡率，那么酵母菌数量就会增加，进入菌落数量增加的阶段。
6. 此外，酵母菌的数量变化还会受到培养液中其他环境因素的影响，如温度、pH值、氧气浓度等。
这些因素会直接或间接地影响酵母菌的生长速率和代谢活动，从而影响菌落数量的变化趋势。
7. 研究培养液中酵母菌种群数量的变化可以通过实验方法进行。
一种常用的方法是在培养液中加入一定浓度的酵母菌，并在一段时间内定期取样，使用细胞计数法或培养基平板计数法来测定菌落数量。
通过分析这些数据，可以得出酵母菌种群数量随时间变化的曲线图，从而了解酵母菌的生长规律和影响因素。
8. 总结起来，培养液中酵母菌种群数量的变化是一个动态的过程，受到酵母菌的生长和代谢活动、死亡率和出生率、环境因素等多个因素的综合影响。
研究这个过程可以帮助我们了解酵母菌的生物学特性和生态学行为，对于工业发酵、食品加工和生物医学研究等领域具有重要意义。
实验：培养液中酵母菌种群数量的变化
第4天
第 6天
死亡
第7天
酵母菌种群个体数量变化
酵母菌数量／万个·mL-1
12000
10000 8000
6000
4000 2000
0
1
2
3
4
5
6
7
时间／d
从试管中吸出培养液进行计数之前，建议将试管 震荡几次，目的是什么？
目的：使培养液中酵母菌分布均匀，以保证 估算准确，减少误差
本实验需要设置对照吗？
探究：
回顾思考:
1、酵母菌的繁殖方式主要是: 出芽生殖 2、酵母菌的呼吸方式是:
兼性厌氧(可进行有氧呼吸和无氧呼吸) 3、酵母菌的培养条件要注意那些问题?
比如要用适宜的温度培养,调节好PH值,溶氧 量的控制等。
1、实验原理 （1）酵母菌属兼性厌氧型微生物，有氧时产生二氧化碳和水，
无氧时二氧化碳和酒精 （2）用液体培养基培养酵母菌，种群的增长受培养液的成分、
（5）分析结果、得出结论：将所得数值用曲线图表示出 来，分析实验结果，得出酵母菌种群变化规律。
血球计数板 • 血球计数板是一种专门用于计算较大单细胞微 生物的一种仪器。 • 计数时，常采用样方法。
•血球计数板是一种专门用于计算较大单细胞微 生物的一种仪器。 • 计数时，常采用样方法。
大方格：2mm×2mm×0.1mm (25×16规格） 中方格：5×5个 小方格：4×4个（共400个）
计数方法：抽样检测法
• 盖盖玻片
• 吸管吸取培养液，滴于盖玻片边缘
• 待菌体全部沉降到计数室底部，显微镜下计数 • 计算：1mL菌液的数量=
（A/5×25×10000×B=5000A·B（五个方格中总菌数 为A,稀释倍数为B）。
探究培养液中酵母菌种群数量的动态变化
“探究培养液中酵母菌种群数量的动态变化”的分析和方案设计1 对课题的分析1.1 实验目的熟悉探究实验的一般方法、步骤，培养分析、设计、实施和完善实验方案的能力；探究培养液中酵母菌种群数量的变化，建构种群增长的数学模型；正确使用显微镜、血球计数板等实验器材；分析影响种群数量的波动的因素，在此基础上作更深入的探究。
1.2 选用的实验材料酵母菌是一种单细胞的真核生物。
由于酵母菌具备培养简单、生长周期短、增殖速度快等特点，是研究种群数量的变化以及种群内部和外部因素对种群个体数量影响的良好实验材料。
1.3 种群数量测定方法——取样调查法由于酵母菌种群数量庞大，种群个体绝对数量的统计费时、费力，也不现实，取样调查则简单有效。
将酵母菌培养液摇匀（搅匀）后取样进行计数，并依此推断出单位体积或培养液中酵母菌的总数。
1.4 实验原理生物的种群在与环境相互作用中，处于不断的变化之中，种群的增长、波动、稳定、下降等具体反映了种群数量的动态变化过程。
在理想条件下种群增长可以呈“J”型曲线，而在实际环境中，种群的增长一般都是“S”型曲线，在一个小的密闭环境中还可能出现衰退，乃至种群的完全消失。
种群数量的增长不仅受到内部因素如种群密度的制约，还受到许多环境因素（如温度、培养液的pH、培养液的种类和浓度、代谢产物等）的影响。
血球计数板是一种微生物细胞计数的常用工具。
每个血球计数板上的计数室，一种血球计数板的计数室有25个中格，每个中格有16个小格，共400个小格，总容积为0.1mm3；另一种类型的血球计数板的计数室有16个中格，每个中格有25个小格，一样共400个小格，总容积也为0.1mm3。
本实验方案设计使用前一种类型的血球计数板。
根据血球计数板的计数室中酵母菌种群数量与体积的关系，可以推算出单位体积或溶液中酵母菌的总数。
2 实验设计方案2.1 实验前的准备实验器具血球记数板、显微镜、烧杯、滴管、量筒、吸水纸等培养液的配制和灭菌按马铃薯培养液的配制方法进行，并进行灭菌。
《探究培养液中酵母菌种群数量变化》改进实验
《探究培养液中酵母菌种群数量变化》改进实验本实验主要是为了探究培养液中酵母菌种群数量的变化规律，并通过改进实验方法来提高实验结果的准确性和可靠性。
改进实验方法要注意以下几点：1. 实验控制变量：在控制变量方面，我们需要注意调控好培养液中的饲料浓度、温度、pH值、搅拌速度等因素，以保证得到准确的结果。
为了避免外界环境对实验产生影响，需要将实验进行在无菌条件下进行，控制实验操作的卫生程度。
2. 实验时间的选择：可以根据自己的实验目的选择实验时间的长短，比如可以选择在不同时间段内对酵母菌种群数量进行观察和记录。
可以在实验开始时设置一个适当的起始浓度，然后每隔一段时间取样进行数量测量。
同时可以根据需要，选择不同的培养时间进行实验比较。
3. 测量方法的改进：在测量酵母菌数量方面，可以采用更加准确和精细的测量方法，比如使用显微镜进行直接观察和计数，或者使用流式细胞仪等现代化测量设备进行精确测量。
4. 实验重复与统计分析：为了提高实验结果的可靠性和准确性，需要进行多次重复实验，并进行统计分析。
这样可以减小实验误差，并通过统计数据来验证实验结果的可靠性。
实验重复要求条件相同，并且随机分组，以保证实验结果的可靠性和可重复性。
1. 实验材料准备：酵母菌培养液、适当的培养基、培养皿、移液管、显微镜等。
2. 实验操作步骤：- 在无菌条件下，准备好实验所需的培养基和酵母菌培养液。
- 设置起始浓度并将培养液注入培养皿中。
- 每隔一段时间取样进行数量测量，可以使用显微镜直接观察和计数，也可以使用现代化测量设备进行精确测量。
- 记录测量数据并统计分析。
- 进行多次重复实验并比较结果，验证实验结果的可靠性。
3. 数据处理与结果分析：- 根据实验数据绘制酵母菌种群数量变化曲线图，分析曲线的形态和趋势。
- 对不同实验组进行统计分析，比较不同条件下的酵母菌数量变化，验证实验结果的可靠性和准确性。
通过以上改进实验的方法，可以更加准确和可靠地探究培养液中酵母菌种群数量的变化规律，为进一步研究酵母菌生长和繁殖提供了有力的实验依据。
《探究培养液中酵母菌种群数量变化》改进实验
《探究培养液中酵母菌种群数量变化》改进实验实验目的：本实验旨在探究不同培养液中酵母菌种群数量的变化规律，通过改进实验方法提高实验结果的准确性和可靠性。
实验材料：1. 酵母菌培养液2. 培养皿3. 电子天平4. 空气消毒灯5. 显微镜6. 定量移液器7. 离心机实验步骤：1. 准备不同浓度的酵母菌培养液。
将酵母菌培养液按照浓度由低到高的顺序编号，并将其倒入相应编号的培养皿中。
保持所有培养液的体积相同，以确保实验条件一致。
2. 在实验开始前，将实验器材进行消毒处理，以杀灭可能存在的外源菌。
3. 将一定数量的酵母菌种子加入每个培养液中，并使用定量移液器均匀混合。
4. 将所有培养皿放置在恒温培养箱中，设定适宜的培养温度（例如30℃）。
在培养的过程中，要保持培养皿密封，防止外界杂菌的污染。
5. 每隔一段时间，取出一个样本，使用离心机将酵母菌沉淀下来。
倒掉上清液后，向离心管中加入适量的磷酸盐缓冲液，将离心管中的沉淀重新悬浮均匀。
6. 取一小部分悬浮液，放置在显微镜镜片上，使用显微镜观察酵母菌的数量和形态，利用计数器进行酵母菌数量的计数。
7. 记录下每个时间点的酵母菌数量，并画出酵母菌数量随时间变化的曲线图。
改进方法：1. 提高实验的复现性，即重复实验多次，取平均值来得到更准确的结果。
2. 避免实验中可能存在的污染源，例如实验器材的消毒处理、培养皿的密封等都需要严格操作。
3. 保证培养液中的营养物质的充足，并控制好培养液的浓度，以确保酵母菌的生长条件适宜。
4. 在观察酵母菌数量时，使用显微镜配备合适的放大倍数，以确保观察到的数量准确无误。
5. 注意观察酵母菌的形态和特征，例如酵母菌的形状、大小、颜色等，有助于判断酵母菌的生长状态。
《探究培养液中酵母菌种群数量变化》改进实验
《探究培养液中酵母菌种群数量变化》改进实验摘要：本实验旨在探究培养液中酵母菌种群数量的变化。
通过将酵母菌种植于含有营养物质的培养液中，并在不同时间段内观察其种群数量的变化。
实验结果表明，酵母菌的种群数量在一段时间内呈指数增长，并在一定时期后达到饱和状态。
关键词：酵母菌，培养液，种群数量，变化，指数增长1. 引言酵母菌是一类单细胞真菌，广泛存在于自然环境中。
酵母菌具有快速繁殖和便捷培养的特点，因此被广泛应用于食品发酵、酒精生产、生物学研究等领域。
酵母菌繁殖过程中，种群数量的变化是一个重要的研究方向。
通过了解种群数量的变化规律，可以更好地掌握酵母菌的生长规律，进而优化酵母菌的培养条件，提高其产量。
2. 实验目的本实验旨在通过观察和记录酵母菌种群数量的变化，探究酵母菌在不同条件下的生长规律，并进一步了解酵母菌的生物学特性。
3. 实验原理酵母菌繁殖过程中，种群数量的变化可以用Malthusian增长模型进行描述。
Malthusian增长模型认为，酵母菌的种群数量在一段时间内呈指数增长，即种群数量与时间呈正相关关系。
增长速率与当前种群数量成正比，即增长速率随时间的推进而逐渐增加。
酵母菌的种群数量在达到一定数目后，由于资源限制和环境压力等因素的影响，种群数量将趋于稳定，不再呈指数增长。
4. 实验步骤1) 准备工作：将所需培养液配置好，并将其分装于培养皿中。
2) 消毒处理：对培养皿进行高温高压消毒处理，以杀死其中可能存在的细菌等微生物。
3) 接种酵母菌：在培养皿中接种适量的酵母菌。
4) 观察和记录：将培养皿放置于恒温恒湿箱中，并在不同时间段内观察种群数量的变化，并记录在实验记录表中。
5) 分析数据：通过绘制酵母菌种群数量随时间变化的曲线图，分析种群数量的变化规律。
5. 结果与讨论经过一段时间的观察和记录，我们得到了酵母菌种群数量随时间变化的数据，并绘制了相关的曲线图。
根据实验结果发现，在初始阶段，酵母菌的种群数量增长迅速，并近似呈指数增长。
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实验报告: 探究培养液中酵母菌种群数量的变化
班级姓名小组年月日
一、实验目的：
1、通过探究培养液中酵母菌种群数量的变化，来研究一个种群的数量变化情况，尝试构建种群增长的数学模型。
2、通过使用血球计数板掌握单细胞生物的计数方法。
二、实验原理：
1、酵母菌可以用液体培养基来培养，培养液中的酵母菌种群的增长情况与培养液中的成分、空间、PH、温度等因素有关，我们可以根据培养液中的酵母菌数量和时间为坐标轴做曲线，从而掌握酵母菌种群数量的变化情况。
2、利用血球计数板在显微镜下直接计数是一种常用的细胞计数法，这种方法可以直接测定样品中全部的细胞数目，所以一般用于单细胞微生物数量的测定，由于血球计数板上的计数室盖上盖玻片后的容积是一定的，所以可根据在显微镜下观察到的细胞数目来计算单位体积的细胞的总数目。
三、实验材料：酵母菌菌种，无菌马铃薯培养液或肉汤培养液。
四、实验用具：无菌水，试管，棉塞，恒温培养箱，显微镜，无菌滴管，无菌移液管，小烧杯或小试管，血球计数板(2mm×2mm×、纱布、滤纸、镊子、盖玻片。
五、方法步骤：
1、取相同洁净试管若干支，分别加入5ml马铃薯培养液，塞上棉塞。
2、用高压锅进行高压蒸汽灭菌后，标记甲、乙、丙等。
3、将酵母菌母液分别加入试管甲、乙、丙，各5ml，摇匀后用血球计数板计数起始酵母液个数，做好记录。
4、将各试管送进恒温箱，25℃下培养7天。
5、每天时间，各组取出本组的试管，用血球计数板计数酵母菌个数，并作记录，连续观察7天。
六、实验记录表
根据表格数据绘图：
七、实验结论：培养液酵母菌种群数量随时间呈 型增长变化。
数量 时间。