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微生物的分离纯化实验报告微生物的分离纯化实验报告引言：微生物是一类极小的生物体，包括细菌、真菌、病毒等。
它们广泛存在于自然界中的土壤、水体、空气中，对生态系统的平衡和物质循环起着重要作用。
微生物的分离纯化是微生物学研究的基础，通过分离纯化可以获得单一的微生物菌株，为后续的鉴定、培养和利用提供基础数据。
本实验旨在通过分离纯化微生物的方法，获得纯净的微生物菌株。
材料与方法：1. 实验材料：含有微生物的样品（如土壤、水样等）、琼脂平板培养基、无菌培养皿、无菌移液管、无菌匙、无菌培养管等。
2. 实验步骤：a. 取适量样品，加入适量的无菌生理盐水中，充分搅拌均匀。
b. 取一定体积的悬浮液，分别在琼脂平板上均匀涂布，避免重复涂布。
c. 将涂布好的琼脂平板培养基放置于恒温培养箱中，以适当温度孵育。
d. 孵育一段时间后，观察平板上的菌落情况，选择形态独特的单个菌落。
e. 用无菌匙将选中的菌落划取至无菌培养管中，加入适量的无菌生理盐水。
f. 将培养管中的菌液进行摇匀，称取一定体积的菌液，分别在琼脂平板上均匀涂布。
g. 重复以上步骤，直至获得纯净的微生物菌株。
结果与讨论：通过实验，我们成功地从样品中分离纯化了多个微生物菌株。
在观察菌落形态时，我们发现不同微生物菌株的菌落形态各异，有的呈圆形，有的呈不规则形状，有的呈乳白色，有的呈黄色等。
这些观察结果表明不同的微生物菌株具有不同的生长特性和代谢方式。
在分离纯化的过程中，我们注意到有些菌落会在培养基上形成菌落周围的透明区域，这是由于菌落分泌的溶解酶作用于琼脂平板中的胶原蛋白，导致胶原蛋白溶解而形成的。
这种现象被称为溶解圈，是一种常见的微生物特征，有助于鉴定微生物的溶解能力。
在实验过程中，我们还遇到了一些困难和挑战。
首先，样品中可能存在多种微生物，通过分离纯化的过程中需要进行多次的涂布和筛选，才能获得纯净的菌株。
其次，在涂布过程中需要注意避免交叉污染，以免影响结果的准确性。
环境中微生物的检测和分离纯化一、实验目的：1.熟悉常用微生物培养基的配制方法。
2.学习并掌握各种无菌操作技术，并用此技术进行微生物稀释分离、划线分离接种。
3.用平板划线法和稀释法分离微生物。
4.认识微生物存在的普遍性，体会无菌操作的重要性。
二、实验原理：（一）微生物的分离与纯化：土壤是微生物生活的大本营，在这里生活的微生物无论是数量还是种类都是极其丰富的。
因此，土壤是微生物多样性的重要场所，可以从中分离、纯化得到许多有价值的菌株。
从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程称为微生物的分离和纯化。
常用的是平板分离法。
为了获得某种微生物的纯培养，一般是根据该微生物对营养、酸碱度、温度和氧等条件要求不同，而供给它适宜的培养条件，或加入某些抑制剂，造成抑制其他菌生长而利于此菌生长的环境，从而淘汰其他一些不需要的微生物。
再用稀释涂布平板法或稀释后平板划线分离，纯化该微生物，直至得到纯菌种。
（二）平板菌落计数法：平板菌落计数法是将样品经适当稀释，使其中的微生物充分分散成单个细胞，取一定量的稀释样液接种到平板上，经过培养，由每个单细胞生长繁殖而形成肉眼可见的菌落，即一个单菌落应代表原样品中的一个单细胞。
统计菌落数，根据其稀释倍数和取样接种量即可换算出样品含菌数。
此法缺陷：操作繁琐，结果需要培养一段时间才能取得，测定结果易受多种因素的影响。
此法优点：可以获得活菌的信息，被广泛用于生物制品检验，以及食品、饮料和水等的含菌指数或污染程度的检测。
三、实验材料和仪器：土样10g，未知菌变形杆菌单菌落平板和无菌水。
取液器（5000ul、1000ul各一支），培养箱，培养皿（20个），无菌有帽试管，三角瓶，无菌涂棒，接种环，5000ul、1000ul无菌吸头，记号笔，酒精灯，火柴，试管架。
四、实验步骤：（一）培养基的制备（第二次实验时准备）：肉汤蛋白胨培养基：牛肉膏2g蛋白胨4gNaCl 2g蒸馏水400mL琼脂8g1. 称量：按上述配方称量各类物质。
实验土壤中细菌的分离与纯化
细菌是微生物中最常见和广泛分布的，它们对人类和自然界都起着重要的作用。
在研究不同类型的细菌时，需要从土壤样品中细菌的分离和纯化。
这可以通过多个步骤来完成。
第一步是样品的准备。
准备好样品是关键的第一步。
需要从所需的环境中收集样品，例如，在花园中收集土壤样品，神经外科手术时，需要收集体内的样品。
样品收集后，需要将其保存在适当的容器中，并避免过度处理。
第二步是制备培养基。
为了孵化细菌，需要准备不同种类的培养基，例如，对光和氧气敏感的厌氧菌需要使用厌氧培养基。
还需要选择颜色，形状和口感不同的特殊培养基，以区分不同种类的细菌。
第三步是分离和纯化细菌。
需要采取逐步流程来分离和纯化细菌。
首先，需要将土壤样品分散在培养基中，并容纳在瓶子或平板上。
然后，将样品暴露于光线和空气下，以让细菌开始生长。
细菌的生长取决于培养基的条件，例如，温度，pH，光线等。
为了获得单个细胞，需要通过挑选法或分离检查板来分离细菌。
挑选法是一种分离单个细菌的技术，其中使用草地绿和某些特定镜头。
经过一些练习和专业技能，可以使用这种方法分离出单个细菌。
为了区分不同种类的细菌，还可以在不同的特殊条件下进行培养。
最后，需要使用不同的方法来检验细菌的纯度。
例如，可以使用静电鉴别法来检测细菌的标记。
通过这种方法，细菌可以在电场的方向下移动，并根据它们的大小，形状，颜色等特征进行分类。
细菌的分离和纯化是细菌学研究的关键步骤。
通过这些方法，可以提取不同种类的细菌，进而进行更深入的研究。
环境中微生物的检测和分离纯化一．实验原理1.微生物的分离与纯化土壤中含有丰富的微生物，可以从中分离纯化得到很多有价值的菌株。
微生物常用的分离方法是平板分离法，根据某种微生物对生长条件的不同要求供给它适宜的培养环境，再用稀释涂布平板法或稀释后平板划线分离，纯化该微生物，直到得到纯菌株。
2.平板菌落计数法将待测样品经适当稀释后，其中微生物充分分散成单个细胞，取一定量的稀释样液接种到平板上，经过培养，由每个单细胞生长繁殖而形成肉眼可见的菌落。
统计菌落数，根据其稀释倍数和取样接种量即可换算出样品中含的菌落数。
二．实验材料与试剂1.土壤稀释溶液2.取液器（1000ml 1支），培养箱，培养皿（12个），无菌有帽试管，三角瓶，无菌涂棒，接种环，1000ml无菌吸头若干，记号笔，酒精灯，火柴，试管架。
三．实验步骤（一）.无菌平板制备1.采用叠皿法把牛肉冻蛋白膏培养基倒入灭好菌的培养皿中，制作无菌平板（二）.周围环境中微生物的检测2.取一平板，分成6个区，做好标记。
同一个人同一根手指头按如下要求用力一致进行操作：分别用未洗过的手指头，自来水打湿的手指头，自来水认真洗过的手指头，洗手液洗过一遍的手指头，洗过两遍的，洗手液洗过又用酒精棉球消毒后的手指头在六个区上涂抹。
（平板1）3.取一平板，分区，分别用使用过的纸巾，硬币，旧纸币，餐卡在不同区拖动。
（平板2）4.在培养基上方抖动头发数次。
（平板3）5.取一平板，分区，用无菌接种环分别蘸一滴自来水，河水，豆浆在不同区划线。
（平板4）6.用无菌牙签取一点牙垢在培养基上划线。
（平板5）7.取两个平板，一个打开在实验台上放置30分钟，另一个在酒精灯火焰边打开皿盖1分钟。
（平板6）8.取一平板，打开盖，咳几下。
（平板7）（三）.从土壤中分离微生物1.采土样2.制备土壤稀溶液3.涂布吸取100ml稀释好的土壤稀溶液，较均匀地滴在平板上，再用无菌涂棒涂布均匀，涂1—2分钟4.培养将培养基平板倒置于37℃下培养24小时5.菌落计数四．实验结果1.平板1：从未洗到用酒精消毒总体趋势是菌落数越来越少，用自来水洗过和用洗手液洗过一遍的菌落数差不多；平板2：旧纸币和硬币的菌落数要多；平板3：抖头发的地方附近长出许多菌落；平板4：自来水菌落最多，其次是河水，河水的菌落分布成“牛”字形，和当时划线的形状一样，再其次是豆浆；平板5：划线的地方长出许多菌落；平板6：放在试验台上的平板长出各种形状的菌斑菌块，在酒精灯旁的基本没有菌落；平板7：咳几下的基本没有菌落。
实验八、土壤微生物的分离和纯化土壤微生物是指生长在土壤中的微弱的、微小的生物体，包括细菌、真菌、放线菌、原生动物等。
土壤微生物是土壤的重要组成部分，对维持土壤生态系统的平衡和功能发挥起着关键作用。
因此，对土壤微生物的分离和纯化具有重要意义。
本实验就是针对土壤微生物的分离和纯化进行研究。
一、实验原理由于土壤微生物数量繁多而多样，分离出单一的菌落对于此实验来说非常的困难。
但是采用适宜的富培养基后能够轻松的促进土壤微生物菌群的生长。
富培养基包括有机和无机元素、维生素、氨基酸、碳源和氮源。
地衣素琼脂（ISP）是一种富含多种碳源和氮源的优质菌落培养基，是常用的微生物培养基。
本实验的基本原理就是在能够生长的环境中分离出单一的菌落，通过多次分离和鉴定获得纯种菌株。
二、实验器材和试剂1.地衣素琼脂培养基2.试管、移液器、移菌环、烧灼器、电热蚊子香、灭菌器3.已经壳霉菌疫苗接种的贵州悬钩子种子和土壤三、实验步骤1.准备工作。
用移液器将壳霉菌疫苗接种在新的地衣素琼脂培养基板上，将其灭菌，以备之后的使用。
2.准备土壤基质。
将土壤样品剪碎成非常小的颗粒，并放入烧灼的试管中，加入恰当的地衣素酵母素琼脂，变形后形成一个接种板。
在较大的容器中放置电热器设备，以保持环境的湿度和温度适宜。
接下来，将接种板和采样站放在单独的区域以免混淆。
3.接种。
从土壤中取一小部分，倒入试管中，并加入适量的地衣素琼脂培养基，并将其摇动均匀，使菌群溢出。
等到土壤均匀地分散在地衣素琼脂培养基中之后，用移菌环扭曲并切出一个菌落，并将其置于新的地衣素琼脂培养基板中。
重复此步骤至少三次，每次都要将新的分离土壤菌落剪出来。
4.孵育。
将地衣素琼脂培养基板置于电热器设备中，以使温度保持在合适的范围内，并等待菌落的生长。
当新的菌落形成后，即可重复上述步骤以获得更多的菌株。
5.纯化。
检查菌落后，需要进行纯化。
鉴定每个菌落，把每个菌落分别悬浮在新的地衣素琼脂培养基板中，并等待菌落的生长。
微生物的分布实验报告篇一：微生物实验报告微生物实验报告一环境中的微生物的检测和分离纯化实验目的：1 学习并掌握无菌操作技术原理和方法2 学习用稀释涂布法分离微生物3 认识微生物存在的普遍性，体会无菌操作的原理实验材料：1 土样溶液0.5ml，无菌生理盐水2 取液器(1000μL一支，100μL一支)，培养箱，培养皿(12个)，无菌有帽试管，三角瓶，无菌涂棒，接种环，1000μL无菌吸头若干，记号笔，酒精灯，火柴，试管架实验步骤：A培养基的制备(已提前制备好)B周围环境中的微生物的检测，在牛肉膏蛋白胨培养基平板上作如下实验1 取三个平板，用100μL的取液器分别吸取100μL的河水、豆浆、豆奶，均匀加在三个培养基上，并用无菌玻璃涂棒涂布均匀(要多涂几次，时间约1-2分钟，使细菌均匀分布)。
2 再取三个平板，三个同学分别用手指(未洗过)在培养基上涂抹几秒钟，一个同学对应一个平板。
3 再取一个平板，其中一个同学将手用肥皂洗过后，再在培养基上涂抹。
4 再取一个平板，打开皿盖，一个同学对着培养基咳嗽，使口腔中的气流和飞沫落到培养基上。
5 再取一个平板，打开皿盖，在空气中放置10min左右，关上皿盖。
6 将上述9个平板放置在35℃的培养箱中培养24h。
C土壤中分离微生物1 采土样，制备土壤稀释液(已准备好)2 取三个平板，每个培养基上用取液器添加100μL的土壤稀释液，并用无菌玻璃涂棒涂布均匀(要多涂几次，时间约1-2分钟，使细菌均匀分布)。
3 将平板依旧放在35℃的培养箱中培养24h。
D菌落计数培养24h后，取出培养平板，算出每个平板上的菌落数量。
其中，土样中的微生物含量可用以下式子计算土壤中的细菌含量(个/g土壤)=菌落平均数×10×稀释倍数实验结果及数据：实验结果如附图。
开盖10min 手指直接按压手指直接按压手指直接按压1号的手指经肥皂洗后按压对着培养基咳嗽豆奶河水土壤溶液土壤溶液豆浆土壤溶液实验讨论及感想：1根据你对周围环境中微生物存在的观察，你认为无菌操作要注意什么？在进行无菌操作的时候，应该要注意始终在明火旁边操作，既不能离得太远，也不能离得太近。
实验日期：2017.10.25 实验班级：生物技术指导教师：张建丽姓名：高熹学号：1120152430培养基的制作及环境中微生物的分离和纯化一实验目的1.熟悉常用微生物培养基的配置、灭菌方法和原理。
2.掌握微生物的分离、纯化。
3.用稀释法分离微生物。
4.认识微生物存在的普遍性，对无菌操作的必要性、何时应该进行有大致理解。
5.培养基的制作。
二实验原理1.微生物的分离和纯化土壤是微生物多样性的重要场所，可以从中分离、纯化得到许多有价值的菌株。
从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程称为微生物的分离与纯化。
常用的是平板分离法。
为了获得某种微生物的纯培养，一般是供给它适宜的培养条件，或提供抑制其他菌生长而有利于此菌生长的环境。
再用稀释涂布平板法或稀释后平板划线分离，纯化该微生物，直至得到纯菌株。
2.平板菌落计数法平板菌落计数法是将待测样品经适当稀释成单个细胞，接种培养，一个单菌落代表原样品中的一个单细胞。
统计菌落数，根据其稀释倍数和取样接种量即可换算出样品含菌数。
三实验仪器、材料和用具1.实验材料：菌源：土样1g培养基：牛肉膏蛋白胨培养基8个2.实验仪器:不同的移液管；培养箱；平皿；涂棒；记号笔；酒精灯；3.实验试剂:牛肉膏；蛋白胨；NaCl；蒸馏水；四实验步骤（一）配置培养基（上次课完成，灭菌，实验开始前倒平板）配方，以1000ml培养基记：牛肉膏:3.0g蛋白胨:10.0gNaCl:5.0g琼脂:15-25g水:1000mlpH:7.4-7.6（二）周围环境中微生物的检测在牛肉膏蛋白胨培养基上作如下实验：1.取一个平板在空气中放置10min。
2.另取一个平板在酒精灯火焰旁放置10min。
（三）从土壤中分离微生物1．采土样:选择较肥沃土壤（生物系旧馆周围土地）,去表层土,挖5-20cm深度的土壤。
取土壤数10g,装入烧杯,带回实验室。
2．制备土壤悬液：称取土样1.0g，放入盛99ml无菌水的三角瓶中，用手振荡5min使土壤均匀分散成为土壤悬液（10-2）。
王--实验二土壤中微生物的分离与纯化
土壤中是存在大量微生物的，包括细菌、真菌、放线菌等，在生态系统中起着重要作用。
微生物的分离与纯化是微生物学研究的重要方法之一，对于了解土壤微生物多样性、功能和应用具有重要意义。
本实验旨在通过土壤样品进行微生物分离和纯化，了解微生物分离技术和分离纯化菌株的方法。
一、实验方法
1.1 实验设备
实验室常用的分离纯化设备有平板计数器、减压灭菌器、烧杯、移液器、离心机等。
其中，平板计数器是精确测定细菌数量的仪器。
实验材料包括培养基、细菌液、土壤样品等。
1.3 分离纯化细菌的步骤
（1）将土壤样品放入离心管内。
（2）在土壤样品中加入生理盐水，摇晃离心管，使土壤样品和生理盐水充分混合。
（3）将混合物在烧杯内振荡。
（4）利用平板计数器精确测定细菌数量。
（5）从混合物中挑出单个菌落，进行菌株分离和纯化。
（6）将菌落移至培养基上，进行培养、观察和记录。
二、实验结果
通过本实验，我们共采集了5个不同土壤样品，进行菌落计数和菌株分离、纯化、培养等处理。
实验结果显示，不同土壤样品中微生物的数量和种类存在差异。
其中，含有腐殖质较多的土壤样品中微生物数量较多，且种类丰富。
2.2 结果分析
土壤微生物数量和种类的差异主要与土壤样品的营养含量及物理化学性质有关。
白灰土、黄土、红壤等含有较高营养含量和较优地理环境的土壤样品中微生物的数量和种类较多，而贫瘠荒芜的土壤样品中微生物数量和种类较少。
此外，氧分压、pH值、盐分等土壤环境因素的差异也会导致土壤中的微生物数量和种类存在差异。
环境中微生物的检测和分离纯化
姓名：王韬
班级：生76
组号：7-2组
同组人：袁堂谧
实验日期：2009-11-12
一、实验目的：
1.熟悉常用微生物培养基配置方法。
2.联系无菌操作技术。
3.学习单菌落划线分离法。
4.通过实验认识环境中微生物的分布。
二、实验原理：
1.微生物的分离与纯化：从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的
过程称微生物的分离与纯化。
常用的是平板分离法。
为了获得某种微生物的纯培养，一般是根据该微生物对营养、酸碱度、温度和氧的条件要求不同，而供给他们适宜
的培养条件，或加入某些抑制剂造成一支其他菌生长而利于此菌生长的环境。
2.平板菌落计数法：平板菌落计数法是将待测样品经适当稀释，使其中的微生物充分
分散成单个细菌，取一定量的稀释液接种到平板上，经过培养，由每个单细胞生长
繁殖而形成肉眼可见的菌落，即一个单菌落应代表原样品的一个单细胞。
该计数法
最大的优点是可以获得活菌的信息。
三、实验材料：
土壤悬液（稀释100倍），未知菌菌落平板，无菌水，取液器，培养箱，培养皿，无菌涂棒，接种环，接种针，酒精灯。
四、实验步骤：
(一)培养基的制备（提前准备）：
肉汤蛋白胨培养基：
牛肉膏 2g
蛋白胨 4g
NaCl 2g
蒸馏水 400mL
琼脂 8g
1.称量：按上述配方称量各类物质。
2.溶解：在400mL水中溶解牛肉膏、蛋白胨和NaCl，混合加热溶解。
3.调pH值：调至7.2-7.4
4.过滤（本实验无需过滤）
5.加凝固剂：加入称量好的琼脂，混合均匀。
6.分装
7.包扎和灭菌
8.倒平板
(二)从土壤中分离微生物
1.采土样（已事先准备）：选择较肥沃的土壤，铲去表层土，挖5-20cm深度的或
特殊要求的土壤数十克，装入已灭菌的牛皮纸袋，封好袋口，做好编号记录。
2.制备土壤稀释液（已事先稀释至100倍）：称取1.0g，放入盛99mL无菌水并
带有玻璃珠的三角瓶中，置摇床振荡5min使土壤均匀分散成土壤悬液（10-2）。
3.继续稀释土壤悬液至合适浓度：用无菌吸头从上述稀释液中吸取0.1mL土壤悬
液，注入事先装有0.9mL无菌水的Ep管中，用同样的方法，分别配置浓度为
10-3，10-4，10-5的土壤溶液。
4.涂布：用一只新的无菌吸头，分别吸取各浓度的土壤悬液均匀地注入装有培养
基的平板上，用无菌玻璃涂棒涂匀。
每个浓度3个板。
5.培养：将平板倒置与37℃温箱中培养24h，统计所长出的菌落数。
6.菌落计数
(三)周围环境中微生物的检测
1.取一个平板，分成5区。
做好标记（下同），分别用未洗过的、用自来水沾湿、
用自来水清洗过、用肥皂清洗过和用酒精棉球擦过的手指在对应的区上轻轻涂
抹（用力一致）。
2.取一个平板，分区，对应放入或涂上头发、牙垢、纸币和玩具。
3.取一个平板，置于酒精灯火焰边1min.
4.取一个平板，置于试验台空气中11min。
5.取一个平板，打开皿盖，对着培养基咳嗽。
6.取一个平板，分区，分别用河水，饮用水涂布。
7.取一个平板，用培养基轻沾一下嘴唇。
(四)单菌落划线分离
取一个平板，分区，用接种环取未知菌种，在平板上划线。
划完一边后，灼烧接种
环，冷却后从上次划线的末端朝另一个方向划线。
以此类推，划完各个方向。
五、实验结果：
1.
板号浓度10-3 10-4 10-5
1 315 70 无法计数
2 338 无法计数无法计数
3 无法计数无法计数无法计数
表1. 土壤微生物平板计数结果
按照数据选取原则，应选择浓度为10-4板的结果。
由计算公式
得：
土壤中的细菌含量（个/g土壤）=70/(0.1*10-4)=7×106
2.周围环境中微生物的检测结果说明（照片见后附录，图12-图18）：
1)分别用未洗过的、用自来水沾湿、用自来水清洗过、用肥皂清洗过和用酒
精棉球擦过的手指实验中，细菌最多的是用自来水沾湿的手指，用自来水
清洗过的、用肥皂清洗过的、未清洗过的手指的细菌量依次递减，用酒精
清洗过的手指没有细菌生长。
2)酒精灯火焰边放置1min的培养皿出现2个菌落，在空气中放置11min的培
养皿出现10个菌落。
3)头发，牙垢，玩具，咳嗽和嘴唇都有细菌。
纸币未发现细菌。
4)河水和饮用水
3.单菌落划线分离（照片见后附录,图10-图11）：
六、实验结果讨论：
1.土壤微生物分离实验中，3个浓度的9个板中，只有10-3的两个板和10-4的一个
板的菌落可以计数。
另外几个板无法计数的主要原因是细菌没有涂开，而产生
了菌苔，或者因为菌落太过密集而无法区分。
可以改进操作，在滴加细胞悬液
时就应该分散滴加。
滴加完应该涂布较长时间。
涂布时最好按照一定的方向，
不要随意乱涂。
土壤中细菌数的数量级在106个/g。
另外，从菌落的形态分析，
可以看出，土壤中存在多种细菌。
可见多种细菌广泛分布于土壤中。
在分离过
程中，有两个因素可能造成较大误差。
一是土壤悬液的稀释，进行下一级稀释
时应将本级稀释液充分混匀。
二是涂布时可能引入杂菌，涂布时两个细胞重叠
也会造成计数时的误差。
2.我认为无菌操作中应注意以下几点：
1)始终在酒精灯火焰旁操作。
2)始终用无菌材料与样品直接接触。
3)尽量避免物品之间的接触，包括无菌器件与无菌器件的接触。
4)清楚细菌的来源，在实验过程中应随时避免。
例如培养皿开口应尽量小，
时间尽量短。
开口应对准火焰，而不要朝向人或其它细菌可能来源方向。
手或者其他器件不要出现在培养皿开口前方。
3.从周围环境中微生物的检测结果中可以看出，我们的周围环境，平时接触的各
种物品，人体自身都存在大量细菌。
所以应注意平时卫生。
例如，要饭前洗手，
饭后漱口。
但是，也有些看似卫生的习惯是不科学的。
例如，在手指实验中，
用自来水洗过的手指和自来水沾湿过的手指的细菌含量都是很大的。
主要原因
是干手指的细菌不易脱落。
纸币的实验也可以说明这点。
废旧的纸币在培养基
上擦了两次，但没有任何细菌。
肥皂洗过的手指细菌含量较少。
而用酒精擦过
的手指没有任何细菌生长。
这说明，洗手时，应该用肥皂等清洗干净，否则还
不如不洗手。
实验结果表明，对于有“洁癖”的人来说，除非用酒精灯消毒液
经常擦拭物品，否则，不可能达到清除所有细菌的目的。
人身体上就存在大量
细菌，例如我们的嘴唇，我们呼吸的气体等等。
4.单菌落划线实验中，我操作失误，所以没有得到预期结果。
划每个方向时我都
重新接种了新菌落。
所以没能得到单菌落。
七、参考文献：
陈金春，陈国强，微生物学实验指导，清华大学出版社，2005
八、思考题：
见实验讨论。
九、附录：
图1. 10-3浓度土壤稀释液（可计数）图2. 10-3浓度土壤稀释液（可计数）
图3. 10-3浓度土壤稀释液（无法计数）图4. 10-4浓度土壤稀释液（无法计数）
图5. 10-4浓度土壤稀释液（无法计数）图6. 10-4浓度土壤稀释液（可计数）
图7. 10-5浓度土壤稀释液（无法计数）图8. 10-5浓度土壤稀释液（无法计数）
图9. 10-5浓度土壤稀释液图10. 单菌落划线
图11. 单菌落划线图12. 河水、自来水、饮用水
图13. 咳嗽图14. 嘴唇
图15. 手指图16. 头发、牙垢、纸币、玩具
图17. 火焰旁1min 图18. 空气中11min。
