肝癌小鼠造模实验方法
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小鼠肝癌模型的建立及PTP1B表达的研究肝癌是目前世界上最常见的癌症之一,而小鼠肝癌模型是研究肝癌病理生理学、分子遗传学等方面的重要工具。
本文将介绍小鼠肝癌模型的建立过程及PTP1B表达的研究。
1. 小鼠肝癌模型的建立小鼠肝癌模型可以通过许多方法进行建立,其中最常用的是化学诱导法、基因改造法和放射性物质诱导法。
本文将着重介绍化学诱导法建立小鼠肝癌模型的过程。
首先,选择适合的小鼠品系进行实验,一般选择C57BL/6J品系的雄性小鼠。
然后,通过口服或注射的方式给小鼠灌服化学致癌物质二甲基亚硝胺(DMN)、二乙二酸氮氫鈉(DEN)或对二氯苯胺(2-AAF)等化学物质,导致肝脏发生损伤和炎症反应,进而促进肝癌的发生。
此后,可根据肝癌的形态特征、肿瘤大小和数量、肿瘤组织学特征等指标对小鼠进行肝癌诊断。
2. PTP1B表达的研究PTP1B是一种酪氨酸磷酸酶,在正常情况下具有负调控胰岛素和胰高血糖素信号通路的作用。
PTP1B在多种人类肿瘤中发挥着重要的作用,如乳腺癌、前列腺癌和肝癌等。
因此,对PTP1B在肝癌发生发展中的作用进行深入研究具有重要意义。
通过小鼠肝癌模型可以获得不同发展阶段的肝癌组织标本,可用于研究PTP1B的表达情况。
目前主要采用免疫组织化学、Western blot、实时荧光定量PCR等技术手段进行测定。
研究结果显示,肝癌组织中PTP1B的表达显著升高,与肝癌细胞增殖和转移相关。
另外,PTP1B抑制剂等新型治疗手段的出现为治疗肝癌带来了新的机遇。
通过对PTP1B的研究,不仅可以深入了解肝癌的发生发展过程,还可以为肝癌的治疗提供新思路和策略。
总之,小鼠肝癌模型的建立和PTP1B表达的研究对于肝癌相关研究具有重要的意义。
未来还需要进一步加强肝癌发生机制和新型治疗手段的研究,为肝癌的预防和治疗提供更有效的手段。
肿瘤小鼠造模方法
肿瘤小鼠造模是研究肿瘤发生、发展和治疗的重要实验手段之一。
以下是常用的肿瘤小鼠造模方法:
1. 肿瘤细胞移植法:将肿瘤细胞直接注射到小鼠体内,使其形成肿瘤。
这种方法适用于研究肿瘤细胞的生物学特性和药物治疗等方面。
2. 基因工程小鼠法:使用基因工程技术,通过改变小鼠体内的基因表达来诱导肿瘤的发生。
例如,可以通过敲除或过表达某个关键基因来模拟人类肿瘤的发生机制。
3. 化学致癌法:通过给予小鼠致癌物质,如化学药物、化学物质等来引发肿瘤的发生。
这种方法适用于研究致癌物质的致癌机制以及药物预防和治疗的效果。
4. 放射性致癌法:通过给予小鼠辐射来诱发肿瘤的发生。
这种方法适用于研究放射线致癌的机制和辐射防护措施。
以上是常用的肿瘤小鼠造模方法,具体选择哪种方法要根据研究的目的和实验条件来决定。
在进行肿瘤小鼠造模实验时,需要严格遵守伦理规范和动物保护法律法规,并确保实验过程中小鼠的福利和安全。
可以参考以下步骤来制备肝功能损伤小鼠模型:
实验动物选择:选择SPF级Balb/c小鼠,雄性,周龄为4w~6w,体重为20g-22g。
实验分组:实验分六组:正常对照组、模型组、阳性药组、受试药组三个剂量组。
建模方法:建立小鼠慢性肝损伤模型。
具体方法为腹腔注射20%CCL4油溶液(5ml/kg),一周2次,连续注射12周。
在12周末次给药3d后,腹腔注射D-Gal(1g/kg)、LPS(10ug/kg)。
干预给药:分别给药TSA(Trichostatin A),正丁酸钠,NF-κB抑制剂(PDTC)等。
模型评价:待小鼠清醒后放回饲养室饲养,密切关注小鼠的状态及生存状况并做好记录。
在建模完成后,处死各组小鼠,取血并分离血清用于生化检测;取肝组织、肠组织进行病理检测。
生化指标包括ALT、AST;取肝组织时,经固定、脱水、包埋后,制石蜡切片;取肠组织进行HE染色。
小鼠肝癌原位移植模型的建立及其意义的研究项亮亮;侯杰;王婕;焦成斌【摘要】目的:探讨用肝癌H22细胞建立小鼠肝癌原位移植模型.方法:将肝癌H22细胞注入小鼠腹腔内,建立异位移植模型;抽取腹水中癌细胞接种于小鼠肝实质内,建立原位移植模型.结果:移植后10d可扪及肿瘤生长,模型成功率94.4%;晚期自发转移率79.4%,腹水产生率35.3%,无自发消退;移植瘤保持甲胎蛋白(AFP)、异常凝血酶原(DCP)高分泌及γ-氨基酰转氨酶(γ~GT)同工酶阳性的特点;模型平均自然生存期28d.结论:小鼠肝癌原位模型成功率高,易于制作,生物学特征符合模拟人类肝癌在体内发生发展的全过程,可成为今后人类研究肝癌的重要动物模型.【期刊名称】《黑龙江医药科学》【年(卷),期】2015(038)006【总页数】2页(P48-49)【关键词】肝癌;H22细胞;原位移植模型;小鼠【作者】项亮亮;侯杰;王婕;焦成斌【作者单位】佳木斯大学附属第一医院普外二科,黑龙江佳木斯154003;佳木斯大学附属第一医院普外二科,黑龙江佳木斯154003;佳木斯大学附属第一医院普外二科,黑龙江佳木斯154003;佳木斯大学附属第一医院普外二科,黑龙江佳木斯154003【正文语种】中文【中图分类】R735.7肝癌是世界范围内常见的恶性肿瘤之一,因其发病率高、恶性程度高、死亡率高,素有“癌中之王”的称号[1]。
目前已有大量研究为肝癌临床的治疗提供基础依据,而肝癌动物模型一直是肝癌临床与基础研究工作的重要工具。
目前有关人肿瘤转移模型大多是用裸大鼠、裸小鼠,动物肿瘤则多数是用Wistar或SD大鼠建立的,而用小鼠建立原位肿瘤移植模型国内外报道较少。
小鼠作为一种更经济,易饲养,易获得的实验研究载体,在发挥其普遍应用性方面有着重大的作用。
小鼠肝癌原位移植模型作为一种新型的动物模型是否能更好地模拟人肝癌在体内发生、发展、侵袭及转移的过程,本实验将研究报道如下。
#综 述#肝癌动物模型建立的方法徐玉音,陈 莉收稿日期:2010-06-17基金项目:南通市科技局应用研究项目(2009060)作者单位:南通大学医学院病理教研室,南通 226001作者简介:徐玉音,女,在读硕士研究生。
E-m ai:l xuyuyi n27@yahoo .cn陈 莉,女,教授,硕士生导师,通讯作者。
E -m ai :l b l 1@ntu 摘要:肝细胞癌是一种常见的恶性肿瘤,尽管近年来采用分子生物学技术研究肝癌的发生,但仍缺乏对肝癌发病机制的确切认识。
随着人们对肝癌动物模型研究的不断深入,逐渐建立了自发型、诱发性、移植性及转基因动物肝癌模型。
因为这些模型很好地模拟了人类肝癌,可以用于肝癌的生理、细胞和分子等发病机制方面的研究,也可用于肝癌治疗药物的筛选以及基因治疗的探索。
本文讨论一些有条件地、选择性诱导肝癌模型的情况,重点关注与人类肝癌关系最密切的肝癌动物模型,并对动物模型的临床应用进展进行简要介绍。
关键词:肝肿瘤;动物模型;转基因;转基因动物中图分类号:R 73517;R-33 文献标识码:A 文章编号:1001-7399(2011)02-0405-05人类疾病动物模型是指医学研究中建立的具有人类疾病模拟表现的动物实验对象和相关材料,可分为自发瘤模型、诱发模型、移植模型和转基因动物模型等。
实验动物模型与其模拟的人类肿瘤在分子、组织学以及生物学特性方面有许多共同性,可以用于肿瘤发病机制研究、肿瘤治疗药物的筛选以及肿瘤的基因治疗。
本文对肝癌动物模型的建立及其临床应用进展予以综述,以供研究者根据各自研究的目的、实验室的条件等在建立合适的肝癌动物模型时参考。
1 自发性肝癌动物模型自发性肝癌动物模型是指实验动物未经任何有意识的人工处理,在自然状况下所发生的肝癌。
实验动物多选用近交系小鼠,由于实验动物种属、品系的不同,肿瘤发生类型和发病率有很大差异。
14月龄以上的C3H f 系雄鼠、C3H 系雄鼠和C3H e 雄鼠的发生率分别为72%、85%和80%[1]。
人肝癌裸鼠皮下-肝原位移植瘤模型的建立实验具体步骤及方法先用组织学完整的新鲜人肝癌组织接种于裸鼠皮下,形成皮下移植瘤,然后用此移植瘤组织再接种于裸鼠肝内,建立肝原位移植瘤模型(间接肝原位移植瘤模型),并将其与直接肝原位移植瘤模型、皮下移植瘤模型和腹腔内移植瘤模型作比较。
一、间接肝原位移植瘤模型的制备1. 用新鲜的肝癌外科手术切除标本(来自长海医院,患者为1名47岁男性,病理诊断:肝左叶肝细胞癌,粗梁型,Ⅱ级),在Hanks液中,去除坏死组织和非癌组织后切成1~2 mm3小块。
2. 取2块瘤组织,在离体40 min内用粗针头植入裸鼠腰背部皮下,待皮下移植瘤长到直径约1 cm时切取肿瘤,在Hanks液中,去除坏死组织后切成1~2 mm3小块,裸鼠用戊巴比妥钠腹腔麻醉后,行左上腹横切口,暴露肝脏。
3. 取上述2块瘤组织,在离体40 min内用粗针头植入裸鼠肝右叶深部实质内,全层关腹。
二、直接肝原位移植瘤模型的制备1. 同一例新鲜肝癌手术切除标本,处理方法同皮下移植,裸鼠处理同间接肝原位移植,取2块瘤组织,在离体40 min内用粗针头直接植入裸鼠肝右叶深部实质内。
2. 皮下移植瘤模型和腹腔内移植瘤模型的制备。
三、病理检查和相关指标检测1. 解剖和组织学检查(1)所有裸鼠接种后,分组分笼饲养,自由进食,每天观察1~2次。
(2)当裸鼠处于全身衰竭状态时处死并作大体解剖,对接种瘤和转移瘤分别进行观察、测量,记录肿瘤侵袭和转移情况,重要器官(主要为肝和肺)经10%中性甲醛固定后,常规石蜡制片,光学显微镜检查。
2. 周围血甲胎蛋白(AFP)检测处死前,均采用摘眼球采血的方法获得血液,用生化法检测AFP的分泌量。
3. 瘤细胞DNA含量分析留取部分移植瘤标本采用流式细胞术进行DNA含量分析。
注意事项目前,肝癌的复发和转移仍然是其术后长期存活的主要障碍。
为了研究肿瘤的转移机制,建立接近于人体的肿瘤动物模型显得尤为重要。
肿瘤小鼠造模方法肿瘤小鼠模型是研究肿瘤发展、治疗和预防的重要工具。
通过模拟人类肿瘤的形成和发展过程,可以更好地了解肿瘤的病理生理特征,并为肿瘤的早期诊断和治疗提供有益的信息。
下面我们将介绍几种常用的肿瘤小鼠造模方法。
1. 异种移植模型异种移植模型是最常用的肿瘤小鼠模型。
它通过将人类肿瘤细胞或肿瘤组织移植到小鼠体内形成肿瘤。
该方法可以用于研究肿瘤的生长、转移、侵袭和药物敏感性等方面。
在异种移植模型中,首先需要获取人类肿瘤细胞或肿瘤组织样本。
常用的来源包括人类肿瘤细胞株、肿瘤切片、肿瘤移植瘤等。
然后,将这些样本注射到小鼠体内,通常是通过皮下注射、腹腔注射或静脉注射的方式。
注射后,观察肿瘤的生长情况,定期测量肿瘤体积,并进行影像学检测以评估肿瘤的进展和治疗效果。
2. 转基因小鼠模型转基因小鼠模型是通过改变小鼠基因组中的特定基因,使其表达或缺失某种特定基因,从而模拟人类特定基因异常引起的肿瘤。
这种模型常用于研究特定基因对肿瘤发生和发展的影响。
转基因小鼠模型的制备通常分为两个步骤:基因敲除和基因敲入。
基因敲除是指将目标基因从小鼠基因组中彻底删除,而基因敲入是指将目标基因导入小鼠基因组中,使其表达或缺失。
基因敲除通常采用胚胎干细胞技术。
首先,通过体外培养的方法获得小鼠胚胎干细胞,然后,通过基因编辑技术,将目标基因从胚胎干细胞基因组中删除。
最后,将这些基因敲除的胚胎干细胞注入到小鼠的早期胚胎中,使其发育成为具有目标基因敲除的小鼠。
基因敲入通常采用质粒转染、病毒载体转染或基因修复等方法。
通过以上方法,将目标基因导入小鼠的基因组中,使其表达或缺失。
这种模型的制备过程比较复杂,需要专业的实验条件和技术支持。
3. 化学诱导模型化学诱导模型是通过给予小鼠特定的诱癌物,如化学物质或药物,来诱发肿瘤的形成。
这种模型可以模拟某些环境因素或生理机制与肿瘤发生的关系。
在化学诱导模型中,首先选择合适的诱癌物,如DMBA(二甲基苯并[a]芘)、DEN(二乙胺)等。
如何进行小鼠肿瘤模型的建立及鉴定小鼠肿瘤模型的建立及鉴定是癌症研究中非常重要的一步,可以用于研究肿瘤的发生机制、治疗策略以及评估新的抗癌药物。
下面将详细介绍小鼠肿瘤模型的建立及鉴定的方法并提供一些实用的技巧。
肿瘤模型建立的方法主要包括人工移植方法、化学物质诱导方法和遗传工程方法。
一、人工移植方法:1.将人类肿瘤细胞、移植物肿瘤组织或细胞株移植到小鼠体内,可以通过裸鼠或免疫缺陷小鼠模型建立人类肿瘤模型。
当细胞或组织取出并经过相关处理后,通过给小鼠注射或将其移植到小鼠体内,研究人类肿瘤的生长和发展。
2.移植人体肿瘤片段。
3.使用免疫缺陷小鼠模型,如裸鼠、严重联合免疫缺陷小鼠等,可以接受外源组织移植而不会引发排斥反应。
二、化学物质诱导方法:1.化学物质诱导肿瘤模型是通过给予小鼠致癌物质或诱导剂来诱发肿瘤发生。
2.应遵循相关伦理原则使用易获得且时间成本低的致癌物质。
3.诱导剂可通过各种途径给予小鼠,如口服、皮下注射、腹腔注射等。
4.对于使用化学物质诱导的肿瘤模型,需要在给药期间和给药后对小鼠进行定期观察和血液检测,以评估肿瘤的发生和发展情况。
三、遗传工程方法:1.遗传工程方法可利用转基因技术将特定肿瘤相关基因引入小鼠体内,例如,通过敲除或激活肿瘤抑制基因或癌基因等,产生特定类型的肿瘤模型。
2.通过基因敲除、敲入或点突变技术,可改变小鼠体内特定基因的表达水平,以模拟人类肿瘤的发生和发展。
确定小鼠肿瘤模型建立成功后1.观察和检测小鼠是否出现明显的肿瘤体积增大和质地变硬等症状。
2.定期观察小鼠的体重变化,以评估肿瘤对小鼠健康状况的影响。
3.使用体重表、肿瘤质量表等测量工具定期测量肿瘤体积,以评估肿瘤生长速度。
4.进行组织学检测,通过活体组织活检或解剖后进行病理学检测,以确定肿瘤种类和分级。
5.对肿瘤样本进行免疫组织化学染色、分子生物学检测等,以确定肿瘤的分子特征。
总结:建立和鉴定小鼠肿瘤模型是一项复杂的工作,需要专业的知识和技术支持。
肝癌小鼠造模实验方法
(1)肿瘤细胞悬液的制备小鼠肿瘤细胞用小鼠腹腔培养,然后抽取腹水,是
取得大量肿瘤细胞最便捷的方法。
具体操作如下:将肿瘤细胞株复苏后,接种于babl/c(昆明小鼠)腹腔,培养8-10天后,接种小鼠的腹腔内长出含肿瘤细胞的腹水,选择腹水饱满的小鼠,在超净台内于无菌条件下消毒小鼠腹部,用注射器抽取淡腹水为瘤源,放入无菌容器内,加入无菌生理盐水稀释瘤液,小心摇匀,并置冰水上保存。
若用多只动物做瘤源时,则应混合腹水。
(腹水应为淡黄色浓稠液体,若为深黄色或红色则应弃去不用。
)
(2)肿瘤细胞计数取少量腹水,放置于干试管内,用生理盐水稀释100倍,用
枪头吸取少许腹水,滴于载玻片上,推片,镜下观察细胞形态:细胞为圆形,胞浆均匀,透
明,折光性好,分布均匀。
并于镜下进行细胞分类计数,其中肿瘤细胞数应≥95%。
7mL,在小鼠右侧腋下(右侧腋窝(3)肿瘤细胞接种腹水用无菌生理盐水调整细胞浓度为1*10
6个瘤细胞)(5*106)?。
全程严格无菌操作,皮下?)常规接种H22瘤液0.2mL/只(含2*10
40min内完成。
(4)分组与给药昆明小鼠用上法造模,造模后再将腹水瘤小鼠按体重分层,随
机分为阳性对照组(CTX)、青蒿素各剂量组(150mg/kg、300mg/kg)、青蒿琥酯P0组(60mg /kg)、青蒿琥酯ip组(60mg/kg)、青蒿醇提物和青蒿水提物各剂量组
(1000mg/kg、4000mg/kg)和模型对照组(Model),每组各lO只小鼠。
造模24h后,阳性对照组(CTX)20mg/kg和青蒿琥酯ip组(60mg/kg),腹腔注射0.2mL/只,每天1次,连续lOd:其它组灌胃给药,灌服溶液0.4mL/只,每天1次,连续lOd。
模型对照组仅予等量CMC-Na 溶液,连续lOd。
平均每只小鼠每天给等量鼠料,每周换垫料2次,每日换新鲜水1次。
记录各小鼠死亡的时间。
其他问题:
检测药物对肿瘤的抑制作用,给药时间怎么确定?
1、造模后第二天给药
2、肿瘤长出一定体积后在给药。