家兔呼吸运动的调节

一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的生理变化，了解呼吸运动的调节机制。

2. 分析血液中化学因素（PCO2、PO2、[H]）对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及调节机制。

3. 探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。

二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。

呼吸中枢分布于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓、脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。

呼吸运动受体内、外各种因素影响，如血液中CO2分压、PO2、[H]等化学因素，以及迷走神经、肺牵张反射等神经调节机制。

三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：将家兔置于兔体手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。

待家兔麻醉后，将其背位固定在手术台上。

2. 气管插管：在颈部切开皮肤，分离气管，插入气管插管，连接呼吸传感器。

3. 分离迷走神经：在颈部分离双侧迷走神经，穿线备用。

4. 记录呼吸运动：启动计算机采集系统，记录家兔呼吸频率、节律、通气量。

5. 观察血液中化学因素对呼吸运动的影响：a. 向气管插管内注入一定量的CO2，观察呼吸运动的变化；b. 向气管插管内注入一定量的生理盐水，观察呼吸运动的变化；c. 向气管插管内注入一定量的[H]，观察呼吸运动的变化。

6. 观察迷走神经对呼吸运动的影响：a. 切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化；b. 重新连接双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。

五、实验结果与分析1. 观察到在注入CO2后，家兔呼吸频率、节律、通气量均增加，表明CO2对呼吸运动具有促进作用。

2. 观察到在注入生理盐水后，家兔呼吸运动无明显变化，表明生理盐水对呼吸运动无明显影响。

3. 观察到在注入[H]后，家兔呼吸频率、节律、通气量均降低，表明[H]对呼吸运动具有抑制作用。

家兔呼吸运动的调节实验三家兔呼吸运动的调节摘要目的为观察血液中化学因素（PCO2、PO2、[H]）改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响；观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用；掌握气管插管术和神经血管分离术。

方法通过在气管插管的情况下通过增大无效腔气量、增加吸入PCO2、注射乳酸、剪断迷走神经、电刺激迷走神经远心端以及迷走神经近心端等方法，用微机生物信号处理系统观察家兔呼吸运动的变化。

结果实验显示增大无效腔气量、提高PCO2、注射乳酸均可使家兔呼吸加深加快，而剪断一侧及两侧迷走神经、电刺激迷走神经中枢端则使其呼吸变浅，频率变慢。

结论提高吸入气体PCO2，降低PO2可导致呼吸加深加快；迷走神经是呼吸运动调节反射中的传入神经，剪断一侧迷走神经呼吸频率加快，切断两侧迷走神经后，吸气变深，频率变慢；刺激迷走神经外周端，无明显反应，刺激中枢端后呼吸频率加快，呼吸变浅。

��关键词呼吸运动迷走神经 CO2分压 H浓度无效腔1. 材料和方法：1.1. 材料1.1.1. 对象：家兔；1.1.2. 试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；1.1.3. 仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。

1.2. 方法1.2.1. 手术准备1.2.1.1. 麻醉固定家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。

待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。

1.2.1.2. 手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6 ~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。

分离气管，在气管下穿一根粗棉线备用。

1.2.1.3. 气管插管在在暴露的气管上1/3处，做倒T形剪口，将气管切开之后尽量将气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用一粗棉线将插管口结扎固定，同时再将剩余线头将通气口固定，防止T型气管插管移动。

实验三家兔呼吸运动的调节摘要目的为观察血液中化学因素（PCO2、PO2、[H﹢]）改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响；观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用；掌握气管插管术和神经血管分离术。

方法通过在气管插管的情况下通过增大无效腔气量、增加吸入PCO2、注射乳酸、剪断迷走神经、电刺激迷走神经远心端以及迷走神经近心端等方法，用微机生物信号处理系统观察家兔呼吸运动的变化。

结果实验显示增大无效腔气量、提高PCO2、注射乳酸均可使家兔呼吸加深加快，而剪断一侧及两侧迷走神经、电刺激迷走神经中枢端则使其呼吸变浅，频率变慢。

结论提高吸入气体PCO2，降低PO2可导致呼吸加深加快；迷走神经是呼吸运动调节反射中的传入神经，剪断一侧迷走神经呼吸频率加快，切断两侧迷走神经后，吸气变深，频率变慢；刺激迷走神经外周端，无明显反应，刺激中枢端后呼吸频率加快，呼吸变浅。

关键词呼吸运动迷走神经CO2分压H﹢浓度无效腔1.材料和方法：1.1.材料1.1.1.对象：家兔；1.1.2.试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；1.1.3.仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。

1.2.方法1.2.1.手术准备1.2.1.1.麻醉固定家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。

待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。

1.2.1.2.手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6 ~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。

分离气管，在气管下穿一根粗棉线备用。

1.2.1.3.气管插管在在暴露的气管上1/3处，做倒T形剪口，将气管切开之后尽量将气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用一粗棉线将插管口结扎固定，同时再将剩余线头将通气口固定，防止T型气管插管移动。

家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，通过实验观察和数据分析，深入了解家兔呼吸运动的调节规律，为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。

实验材料与方法。

1. 实验材料，健康的家兔若干只，呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。

2. 实验方法，将家兔置于实验箱内，记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度，并监测其心率。

接着通过不同方式的刺激（如运动、音响刺激等）观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。

实验结果。

1. 正常状态下，家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次，呼吸深度约为每次10-15毫升，心率约为每分钟120-150次。

2. 运动刺激后，家兔的呼吸频率明显增加，呼吸深度也有所增加，心率也随之加快。

3. 音响刺激后，家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加，但心率的变化不明显。

实验分析。

1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节，运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化，说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。

2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性，家兔对不同刺激的呼吸反应不同，表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性，能够根据外界环境变化做出相应调整。

实验结论。

家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响，具有一定的灵活性，这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。

同时，本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。

结语。

通过本次实验，我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解，同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。

希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考，推动相关领域的研究进展。

呼吸运动的调节一、实验目的观察体内外有关因素的改变对呼吸运动的影响。

二、实验材料1、实验动物：家兔1只。

2、器材：兔手术台、婴儿秤、动物手术器械1套、气管插管、50cm长的橡皮管1根、注射器、注射针头、纱布、棉线、气袋2个、铁支架、玻璃分针、生物信号采集处理系统。

3、药品：20%乌拉坦溶液、3%乳酸溶液、氮气、CO2气体。

三、实验方法和步骤1、麻醉和固定：家兔称重后（2.4kg），20%乌拉坦按5ml/kg 剂量（12ml）经耳缘静脉注射，仰卧位固定于兔手术台上，去颈部被毛。

2、颈部手术：从甲状软骨向下做5~7cm长的颈正中切口，分离两侧迷走神经和气管。

3、气管插管时，注意清理气管中的血块。

待气管插管成功后，接上与生物信号采集处理系统相连的三通的其中一条橡皮管。

4、记录正常呼吸的曲线中吸气、呼气的波形方向，观察记录曲线的节律、频率与幅度，作为后续曲线的正常对照。

5、增大无效腔：将一根50cm长胶管连接在气管插管的一侧开口，夹闭另一侧开口。

观察家免的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。

待呼吸发生明显改变后撤除胶管，使呼吸恢复正常进行下一项实验。

6、增加吸入气中CO2/N2含量：夹闭气管插管的一侧开口，将装有CO2/N2的气袋管口对准气管插管的另一侧开口(中间留有2~3cm间隙)，缓慢增加吸入气中CO2/N2含量，观察家兔的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。

撤除CO2/N2气袋后观察呼吸恢复正常的过程。

7、血液中酸性物质增加对呼吸运动的影响：由耳缘静脉注射3%乳酸2ml，观察家兔的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。

待呼吸恢复正常后进行下一项实验。

8、迷走神经在呼吸作用中的作用：剪断一侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化；再切断另一侧迷走神经，观察家兔的呼吸作用，记录呼吸曲线的变化。

四、实验结果图1正常呼吸图2增大无效腔（家兔呼吸张力增加，呼吸频率增加，呼吸加深）图3吸入二氧化碳（反射性地使家兔呼吸运动加深加快）图4吸入氮气（家兔呼吸运动增强）图5注射乳酸（家兔呼吸运动加深加快）图6剪断一侧迷走神经（不明显的慢而深的呼吸运动）图7剪断两侧迷走神经（明显的慢而深的呼吸运动）五、实验讨论呼吸运动调节机制有哪些？答：机体正常呼吸运动的维持，是由于体内存在完善的呼吸调节机制，使得呼吸有节律的进行，以适应机体代谢的需要。

第1篇一、实验目的1. 观察兔子呼吸运动的基本规律，包括呼吸频率、节律和幅度。

2. 探讨影响兔子呼吸运动的各种因素，如无效腔、二氧化碳浓度、缺氧等。

3. 分析迷走神经在兔子呼吸运动调节中的作用。

4. 掌握气管插管术和神经血管分离术等基本操作。

二、实验原理呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。

在不同生理状态下，呼吸运动所发生的适应性变化有赖于神经系统的反射性调节，其中较为重要的有呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。

因此，体内外各种刺激，可以直接作用于中枢部位或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。

三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔2. 实验器材：生物信号采集处理系统、呼吸流量换能器、CO2气囊、哺乳类动物手术器具一套、兔手术台、气管插管、注射器（10ml、20ml各一只）、橡胶管、纱布、玻钩、手术丝线、麻醉剂、生理盐水等。

四、实验步骤1. 实验动物准备：选择健康成年家兔，称重后进行麻醉。

2. 麻醉与固定：按照2ml/kg取麻醉剂戊巴比妥钠，从兔耳缘静脉缓慢注入麻醉，然后将家兔固定在手术台上。

3. 颈部手术：颈部剪毛，于颈部正中切开皮肤，钝性分离肌肉组织，暴露并分离气管。

在3-4气管环之间切开气管，做一倒T形切口，气管插管后用手术丝线固定，两侧迷走神经穿线备用。

4. 连接仪器：将呼吸流量换能器连接在气管插管上，并连接生物信号采集处理系统。

5. 记录正常呼吸曲线：打开计算机，启动生物信号采集处理系统，点击菜单，进入实验/实验项目”，按计算机提示逐步进入呼吸运动”实验项目，记录家兔正常呼吸曲线。

6. 增加无效腔：通过改变气管插管长度，增加无效腔，观察呼吸曲线的变化。

7. 增加二氧化碳浓度：使用CO2气囊，向气管插管中注入一定浓度的二氧化碳，观察呼吸曲线的变化。

8. 轻度缺氧实验：使用低氧气体，向气管插管中注入一定浓度的氧气，观察呼吸曲线的变化。

9. 剪短迷走神经：剪断一侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化。

家兔呼吸运动调节，捉拿时应注意哪些事项回答PCO2水平：主要通过刺激中枢化学感受器，然后再兴奋延髓呼吸中枢；或者是刺激周围化学感受器，通过窦神经和主动脉神经传入延髓呼吸中枢，使呼吸运动加强。

H+浓度：血液中H+浓度增加，呼吸加深加快；H+浓度降低，呼吸受到抑制。

一、家兔呼吸运动调节1、PCO2水平（1）一定水平的PCO2（二氧化碳分压，指溶解在血液中的二氧化碳分子产生的压力），对于保持呼吸和呼吸中枢的兴奋性是必要的。

（2）主要通过刺激中枢化学感受器，然后再兴奋延髓呼吸中枢；或者是刺激周围化学感受器，通过窦神经和主动脉神经传入延髓呼吸中枢，使呼吸运动加强。

2、H+浓度（1）血液中H+浓度增加，呼吸加深加快；H+浓度降低，呼吸受到抑制。

（2）当血液中的H+浓度升高时就会刺激到外周化学感受器和中枢化学感受器（中枢化学感受器对于H+的敏感性比周围要高，约为25倍左右），但是H+不容易通过血-脑屏障，因此，主要通过刺激外周化学感受器，使膈肌、肋间外肌收缩，从而使肺通气量增加，加快呼吸。

3、迷走神经（1）迷走神经对于呼吸节律的产生和调节起着重要的作用。

（2）当切断一侧迷走神经以后，会阻碍到该侧迷走神经的神经冲动传递，从而影响到呼吸运动的调节，但随后因另一侧迷走神经为混合神经，此时会起到呼吸调节的作用，加速呼气和吸气的交替（即呼吸频率加快）。

但如果切断两侧的迷走神经后，兔子的呼吸运动变得慢而深。

二、捉拿家兔时应注意哪些事项1、捉拿家兔时，应当注意家兔的爪子，避免被其抓伤。

2、捉拿家兔时不宜抓取家兔的耳朵部位，容易导致兔子耳朵受伤；不宜抓取兔子的腰部和四肢，容易伤到肾脏，造成皮下出血。

3、捉拿家兔时，一般用右手抓住家兔的脊背靠近颈部的皮肤，轻轻提起，然后用左手托住家兔的臀部，呈坐位姿势，让家兔的体重主要落在左手上。

家兔呼吸运动的调节实验目的：1.用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔以改变血液中二氧化碳浓度、氧气浓度、[H+]和气道阻力、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。

2.掌握气管插管术和神经血管分离术。

实验材料：对象：家兔；试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。

实验方法：1.麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。

待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。

2．手术：剪去家兔颈部的被毛，沿颈部正中线作一长6～7cm的切口，用止血钳钝性分离皮下组织，暴露并游离气管，并于气管下穿线备用。

在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经，并在其下穿线备用。

在甲状软骨下第4～5个气管软骨处作一“⊥”形切口。

将T型气管插管向肺的方向插入气管内，用预留备用线线结扎固定。

手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。

3．观察准备：用皮管连接气管插管和呼吸换能器。

打开呼吸换能器，启动计算机RM6240生物信号采集系统，点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。

4．观察项目（1）记录正常呼吸曲线作为对照，辨认曲线上呼气、吸气的波形方向。

（2）在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。

（3）增加吸入气中CO2浓度：待呼吸曲线恢复正常，将装有CO2气袋的皮管口移近气管插管的侧管，打开皮管夹子，使吸入气中含有较多的CO2。

记录并观察吸入高浓度的CO2对呼吸运动的影响。

实验9 家兔呼吸活动的调节一、实验目的1．对家兔进行全身麻醉、进行兔颈部急性手术；2．学习记录家兔呼吸运动的方法；采用呼吸传感器直接记录家兔的呼吸频率与幅度3. 研究在增加呼吸无效腔、CO2、乳酸、缺氧呼吸活动的改变，观察肺牵张反射。

二、实验原理呼吸运动是一种节律性的运动，其深度和频率受体内外因素影响，比如劳动时，呼吸加深加快，肺通气量增加，摄取更多的氧气，排出更多的二氧化碳，与代谢水平相适应。

呼吸的节律性主要来源于基本呼吸中枢脑桥和延髓，并受体内外各种因素影响。

呼吸中枢分布于大脑皮层，间脑，桥脑，延髓，脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。

呼吸中枢可接受来自不同感受器的传入冲动，反射性地影响呼吸运动，以适应机体需要。

三、实验材料和器材1、实验材料：家兔2、实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、止血钳、气管插管、20ml及1ml注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布。

四、实验步骤（一）准备家兔1、家兔的麻醉（1）取一只家兔，称重之后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。

（2）用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25％氨基甲酸乙酯(1g／kg体重)进行麻醉。

要从远心端注射，注射时速度要慢，并随时观察动物情况。

当动物四肢松软、呼吸变深变慢、角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。

2.家兔的固定当兔子已经麻醉成功后，将兔子固定在手术台上，四肢都要固定好，并且用线将门牙也绑好，固定在铁架上。

3、剪毛用剪刀将兔子颈部的毛小心地剪去，注意不要剪到肌肉。

4、切开皮肤一手的拇指和示指按住家兔颈部两侧，另一手持手术刀，在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约5～7cm的皮肤切口。

然后用止血钳或手术剪分离皮下结缔组织后，夹住少许皮肤并向两侧分开创口。

5、分层分离肌肉（1）术者与助手分别持止血钳轻轻提起少许气管正上方的肌肉，然后用手术剪在两止血钳夹住的肌肉之间，纵向将肌肉层剪开一个小口。

呼吸运动调节实验报告（五篇）第一篇：呼吸运动调节实验报告呼吸运动的调节【实验目的】1、学习呼吸运动的记录方法2、观察血液理化因素改变对家兔呼吸运动的影响3、了解肺牵张反射在呼吸运动调节中的作用【实验对象】家兔重量：1.9kg【实验器材和药品】哺乳动物手术器械（主要用到手术刀、组织剪、止血钳、玻璃分针、），兔手术台，生物信号采集处理系统，呼吸换能器，气管插管，20%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，橡皮管，N 2 气囊，CO 2 气囊等。

【实验方法与步骤】1.取家兔并称重，由家兔腹腔缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液10ml，（因注射过程中出现差错，后补注入20%氨基甲酸乙酯溶液8ml）待家兔麻醉后，仰卧用绳子固定于手术台上。

2.剪去颈前部兔毛，颈前正中用手术刀切开皮肤5-7cm，少量出血，用纱布蘸取生理盐水擦拭。

分离气管并穿线备用。

分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。

以倒T 型剪开气管，有少量出血，止血后用镊子清理其中异物，做气管插管。

手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术范围。

3.实验装置（1）将呼吸换能器与生物信号采集处理系统的相应通道相连接，橡皮管连接气管插管和呼吸换能器。

（2）打开计算机，启动生物信号采集处理系统，设置好参数，开始采样。

（3）采样项目①缺氧对呼吸运动的影响：方法同上，将氮气气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的氮气，造成缺氧，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。

②CO 2 对呼吸运动的影响：将二氧化碳气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的二氧化碳，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。

③增大无效腔对呼吸运动的影响：将橡皮管连接于气管插管的一个侧管上，观察此时呼吸运动的变化。

变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸运动的恢复过程。

④迷走神经在呼吸运动调节中的作用：先剪断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化，再剪断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。

家兔呼吸运动的调节实验讨论：1、C02浓度增加使呼吸运动加强C02是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它不但对呼吸有很强的刺激作 用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。

每当动脉血中 PC02增高 时呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右达到高峰。

由于吸入气中 C02浓度增加，血液中PC02增加，C02透过血脑屏障使脑脊液中 C02浓度增 多，C02十出0—》H 2C03 —》HC03 + H + C02通过它产生的 H +刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动 加强，此外，当PC02增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器， 反射性地使呼吸加深加快。

2、缺氧使呼吸运动增加吸人纯氮气时，因吸人气中缺 02，肺泡气P02下降，导致动脉血中P02下 降，而PC02却基本不变（因C02扩散速度快）随着动脉血中 P02的下降，通 过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外 肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。

制作用而表现为呼吸增强 3、增大呼吸无效腔对呼吸运动的影响增加气道长度后家兔呼吸张力增加，呼吸频率增加。

增加气道长度等于增 加无效腔，增加无效腔使肺泡气体更新率下降，引起血中 PC02、P02下降，刺 激中枢和外周化学感受器引起呼吸运动会加深加快； 另外，气道加长使呼吸气道 阻力增大，减少了肺泡通气量，反射性呼吸加深加快；增加家兔气道长度可使家 兔通气量增加，呼吸频率加快。

此外，缺02对呼吸中枢的直接效应是抑制并随缺02程度的加深而逐渐加 强。

所以缺02程度不同，其表现也不一样。

在轻度缺02，通过颈动脉体等的外 周化学感受器的传人冲动对呼吸中枢起兴奋作用大于缺 02对呼吸中枢的直接抑4、静脉注人乳酸（血液中H+增高）静脉注人乳酸后，呼吸运动加深加快。

因为乳酸改变了血液PH,提高了血中H+浓度。

H+是化学感受器的有效刺激物H+可通过刺激外周化学感受器来调节呼吸运动，也可直接刺激中枢化学感受器，但因血中H+不容易透过血脑屏障直接作用于中枢化学感受器，因此，血中H+对中枢化学感受器的直接刺激作用不大，也较缓慢。

家兔呼吸运动的调节实验目的 1. 观察血液中P CO2、P O2的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。

2.掌握气管插管术实验动物家兔，体重2.5～3.5kg，性别不拘。

实验药品20%乌拉坦、1%普鲁卡因、氮气、二氧化碳、50/L哌替啶，250g/L尼可刹米实验器材手术台、手术器械、Y型玻璃气管插管、橡皮管、20ml和1ml注射器、呼吸流量换能器、气囊、生物信号采集处理系统实验方法 1. 固定呼吸换能器于铁支架上，连接生物信号采集系统通道3.2. 在系统软件中找到呼吸系统，进入实验信号记录状态，调节仪器参数。

3.家兔称重，按1g/kg体重注射20%乌拉坦麻醉，麻醉速度不宜过快，同时观察家兔结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等生命体征。

4.颈前正中切开皮肤6～8cm，钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管。

止血钳钝性分离气管，下穿结扎线备用。

5.环状软骨下约1cm做倒T形剪口，用棉签除去切口处及气管内的血液和分泌物。

轻轻将气管插管由剪口向肺端插入，注意不要损伤气管粘膜引起出血。

结扎插管口固定，结扎切口头端止血。

6.记录一段正常的呼吸曲线作为对照，辨认呼气和吸气的波形方向。

开始以下实验项目：①用小烧杯置于气管插管开口前，将氮气气囊的导管口平行于气管插管使气体冲入烧杯。

动物吸入氧分压较低的气体，观察和记录家兔呼吸运动的变化。

②待呼吸曲线恢复正常后，按照上一步的方法，打开二氧化碳气囊使家兔吸入二氧化碳分压较高的气体。

观察记录呼吸运动的变化；呼吸恢复平缓后，再次给予较长时间的二氧化碳，观察高浓度的呼吸抑制，一旦出现抑制波形立即关闭二氧化碳气囊，拿开烧杯。

③待呼吸曲线恢复正常后，由兔耳缘静脉注射50g/L哌替啶，注射速度缓慢；同时密切观察家兔呼吸曲线，一旦出现抑制立即停止给药。

出现严重明显的抑制波形时，由耳缘静脉缓慢注射250g/L既定量尼可刹米。

观察并记录呼吸变化，等待呼吸恢复平稳。

7. 整理实验记录，分析实验现象和结果。

家兔呼吸运动的调节【实验目的】1、观察血液中化学因素改变对家兔的呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响。

2、观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。

【摘要】目的：观察血液中化学因素改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响，初步探讨其作用部位,并分析机制。

观察迷走神经在家兔呼吸运动中的作用，初步探讨其机制。

掌握气管插管术和神经血管分离术。

方法：手术分离家兔气管。

结果：血液中化学因素改变使得家兔呼吸运动变快变深。

切断一侧迷走神经和两侧迷走神经，使得家兔的呼吸运动变慢变深。

给予迷走神经电刺激，使得家兔的呼吸运动变浅变快。

结论：呼吸运动是呼吸肌的舒缩运动，是呼吸肌（胸壁上的肋间肌和隔肌）在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。

膈肌的收缩活动受来自中枢的传出神经支配，传出冲动的节律与频率，影响膈肌的收缩节律、频率与强度。

人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。

体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。

肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。

血液中CO2分压的改变，通过对中枢性与外周性化学感受器的刺激及反射性调节，是保证血液中气体分压稳定的重要机制。

【关键词】呼吸运动、调节【实验对象】健康家兔一只【实验器材和药品】CO2、氨基甲酸乙酯、乳酸、呼吸换能器、微机生物信号采集处理系统。

【实验步骤】1、麻醉固定：家兔称重后，按1g/kg体重计量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。

带家兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。

2、手术：剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6—7cm，直至下颌角1.5cm，用止血钳钝性分离软组织级颈部肌肉，暴露气管及与气管平行左右的血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。

分离气管，在气管下穿粗线备用。

3、气管插管：在环状软骨下约1cm处，倒做T形剪口，气管插管由剪口处向肺部插入，插入时动作应轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用一粗棉线将插管口结扎固定，另一棉线在切口的头端结扎止血。

家兔呼吸运动的调节实验报告实验目的：探究家兔呼吸运动的调节机制。

实验原理：家兔的呼吸运动是受到中枢神经系统的调控的。

呼吸中枢位于延脑和脑桥之间的中央灰质区，并与延脑和脑桥的其他神经结构相连接。

呼吸中枢会根据动脉血液中的氧气和二氧化碳浓度来调节呼吸频率和深度。

当氧气浓度下降或二氧化碳浓度增加时，呼吸中枢会发送信号给呼吸肌以增加呼吸频率和深度。

实验步骤：1.使用合适的方法将实验家兔固定在实验台上，使其能够自由呼吸。

2.在实验家兔的背部或腹部贴上呼吸运动监测电极，以记录呼吸运动的波形。

3.给实验家兔提供一段时间的适应期，使其适应实验环境。

4.分别收集实验家兔在安静状态下和活动状态下的呼吸运动数据。

5.在收集数据时，可以通过限制实验家兔的活动来模拟活动状态。

实验结果：在安静状态下，实验家兔的呼吸频率平稳，在20-30次/分钟之间。

呼吸深度较为恒定，呼吸波形呈规律的起伏。

当实验家兔处于活动状态时，呼吸频率明显增加，通常在40次/分钟以上。

呼吸深度也会增加，这是为了满足机体在运动时的氧气需求。

呼吸波形可能会有变化，出现较大的起伏。

实验结论：家兔的呼吸运动是受到中枢神经系统的调节的。

在安静状态下，呼吸频率和深度相对稳定。

而在活动状态下，呼吸频率和深度会增加，以满足运动时身体对氧气的需求。

这表明呼吸中枢根据机体的需要来调节呼吸运动，以保持氧气供应的平衡。

实验中值得注意的问题：1.实验中提供给实验家兔的氧气浓度和二氧化碳浓度需要保持恒定。

2.实验家兔的固定方式需要确保其自由呼吸，以避免结果的干扰。

3.实验家兔在活动状态下的模拟需要选择合适的方法。

进一步研究方向：1.探究其他外界因素对家兔呼吸运动的调节作用，如温度变化、心跳速率等。

2.研究不同物种的呼吸运动调节机制的差异。

3.分析呼吸运动的变化与病理状态的关系，如在应激、疼痛等情况下的呼吸变化。

2. Rasmusson DD, Semple-Rowland SL. 氧气调节轻微呼吸配置调节的机制[J]. Apidologie, 2024, 10(2):75-84.。

家兔呼吸运动的调节实验讨论：1、CO2浓度增加使呼吸运动加强CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它不但对呼吸有很强的刺激作用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。

每当动脉血中PCO2增高时呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右达到高峰。

由于吸入气中CO2浓度增加，血液中PCO2增加，CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多，CO2十H2O→ H2CO3→ HCO3-＋H+ ，CO2过它产生的H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动加强，此外，当PCO2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。

2、缺氧使呼吸运动增加因吸入气中缺O2，肺泡气PO2下降，导致动脉血中PO2下降，而PCO2却基本不变（因CO2扩散速度快）随着动脉血中PO2的下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。

此外，缺O2对呼吸中枢的直接效应是抑制并随缺O2程度的加深而逐渐加强。

所以缺O2程度不同，其表现也不一样。

在轻度缺O2，通过颈动脉体等的外周化学感受器的传人冲动对呼吸中枢起兴奋作用大于缺O2对呼吸中枢的直接抑制作用而表现为呼吸增强。

3、增大呼吸无效腔对呼吸运动的影响增加气道长度后家兔呼吸张力增加，呼吸频率增加。

增加气道长度等于增加无效腔，增加无效腔使肺泡气体更新率下降，引起血中PCO2、PO2下降，刺激中枢和外周化学感受器引起呼吸运动会加深加快；另外，气道加长使呼吸气道阻力增大，减少了肺泡通气量，反射性呼吸加深加快；增加家兔气道长度可使家兔通气量增加，呼吸频率加快。

4、静脉注人乳酸（血液中H+增高）静脉注人乳酸后，呼吸运动加深加快。

因为乳酸改变了血液PH，提高了血中H+浓度。

H+是化学感受器的有效刺激物H+可通过刺激外周化学感受器来调节呼吸运动，也可直接刺激中枢化学感受器，但因血中H+不容易透过血脑屏障直接作用于中枢化学感受器，因此，血中H+对中枢化学感受器的直接刺激作用不大，也较缓慢。