CyAn ADP vs LSR II vs Canto II比较表
- 格式:doc
- 大小:44.50 KB
- 文档页数:3
1、流式细胞术(英文flow cytometry)是一种生物学技术,用于对悬浮于流体中的微小颗粒进行计数和分选。
这种技术可以用来对流过光学或电子检测器的一个个细胞进行连续的多种参数分析。
目录* 1 原理* 2 流式细胞仪(flow cytometer)* 3 应用* 4 参见原理一束单色光(通常是激光)照到流体力学聚焦的一股流体上。
若干个检测器瞄向流束和激光相交的这个点,其中一个和激光在同一直在线(称作前散射(FSC)),其它几个和激光垂直(旁散射(SSC)和一个或几个荧光监测器)。
当每个悬浮颗粒通过光束时会按某种方式把光散射,同时所带有的荧光化合物被激发并发射出频率低于激发光的荧光。
这些散射光和荧光的组合数据被检测器记录,根据各检测器亮度的波动(每个细胞会显出一个散射或荧光的峰)就能够推算出每个颗粒的物理和化学性质。
前散射与细胞体积相关,而旁散射取决于颗粒的内部复杂程度(比如核的形状、胞质内颗粒的种类或者末的粗糙程度)。
可以检测的参数有:细胞的体积和形态复杂程度、细胞中的色素、DNA(细胞周期分析、细胞动力学、细胞增殖等)、RNA 染色体分析和分选(文库构建、染色体涂染)、蛋白质、细胞表面抗原(CD标记)、胞内抗原(各种细胞因子(cytokine)、次级媒介等)、核抗原、酶活性、pH,胞内离子化的钙、镁,膜电势、膜流动性细胞凋亡(apoptosis)(定量检测DNA降解、线粒体膜电位、通透性变化)、细胞存活能力、监测细胞电通透性、氧爆作用(oxidative burst) 、研究癌细胞中的多重耐药性(multi-drug resistance, MDR) 、谷胱甘肽、各种组合(DNA/表面抗原等等)流式细胞仪(flow cytometer)流式细胞仪又称荧光激活细胞分选器、荧光活化细胞分类计(FACS,Fluorescence Activated Cell Sorter)。
现代的流式细胞仪每秒可以实时检测几千个颗粒,并且可以主动分离具有不同特性的颗粒。
รԫີΕΕBD LSR IIߓอิګຝ։รԫີBD LSR IIੌڤาઽᏚBD LSR IIਢՂรԫױໂ֭ࡐࡳீᄷऱΕܐڤሼ୴ऱோՂীੌڤาઽᏚΔ،౨ٵழ։࣫ڍመ10ۥᘛ٠ᑇΖႃᨋ࣐شΕUVሼ୴Εᑇڗ֏ሽߓอ࣍ԫߪऱBD LSR IIΔױየߩޓᐖऑऱڍۥੌڤ։࣫Δࠌ൞່Օૻ৫چႃխતԺ࣍ઝᖂઔߒΔۖլਢᓤᠧऱຌ࿏᧯ᖙ܂ΖᏚᕴऱૠு֨ਢࠡᄅڤᑇۯ֏ᑇᖕߓอΔࠌBD LSR IIګഄԫటإऱᑇۯ֏ੌڤาઽᏚΖBD LSR IIऱᑇۯ֏ߓอױኔޢઞᤪԫեᆄڻऱຒ։࣫ΔٵழᏚᕴᄅ֏ऱ౧ᓢݾΔຏመ։࣫ॾᇆ౧ᓢऱ૿ᗨΕᐈ৫Δ։ኔ᧯ิ៣ᑑءխऱ⊺ຑาઽᆢ᧯Δ່Օ࿓৫چ྇֟ၺࢤΔਢኔ᧯ิ៣DNA։࣫ऱึᄕᇞެհሐΙኙࠟጟᘛ٠ॾᇆֺऱૠጩٍױش࣍ၩᠦੌ೯ऱᛀྒྷΖBD LSR IIऱ٠ᖄፂߓอലޢԫ֭ሼ୴٠ޔતᒔΕࡳچႪፋڇ٠ޔݮګ④ᢴՂΔ٦ຏመ④ᢴΔലሼ୴٠ޔދ୴۟ፋྡྷຘᢴՂΖॾᇆگႃߓอૠګԶߡݮඈ٨Δຍጟૠױ່Օ࿓৫چൕޢԫଡሼ୴ᕴխᛀྒྷ٠ॾᇆΖޢԫଡPMTհছऱຏៀ٠ׂΔւش֪ኙࢬᏁگႃऱ٠ᢜᒤતาᓳᆏΖط࣍֘୴ֺຘ୴ऱயޓΔࢬאຍጟૠ༼ԱᇠᏚᕴڇڍۥ։࣫ழऱᛀྒྷࢤ౨ΖᨋࢤΚΚBD LSR IIױ୲1۟4 ሼ୴Ζࢬڶሼ୴ᕴຟਢܐࡐࡳீᄷΔࠀໂ೯ ᨋࢤኪᒤઌᔞΕᚌ။פ౨ऱPMTΖሼ୴ΚΚଈڻᆜ࣍ோՂীੌڤาઽᏚΔࡐࡳீᄷΔ୲࣐ࠌشΖױൄش࣍ Indo-1 ྒྷࡳΕ UVሼ୴Ca+ ຏၦΕDAPI ࢨ Hoechst ։࣫าઽDNAΖڍۥ։࣫ΚΚᘛ٠ᕪᙇᖗᒤᏺףΖೈԱᑑᄷ 488nm ᖿ࿇ऱᘛ٠ᕪհ؆Δᝫڶ UV ᖿ ڍۥ։࣫࿇ऱᘛ٠ᕪڕ DAPIΕHoechst 33342ΕIndo-1ΕGFPΙHeNe ᖿ࿇ऱᘛ٠ᕪڕ APC ΖߓอഗءዌΚΚ1.1 BD LSR IIߓอഗءዌBD LSR IIาઽ։࣫Ꮪ᧯FACSDivaሽᆰՠ܂ీBDੌڤาઽᏚץਔੌߓอΕ٠ᖂߓอΕࡉሽߓอΖৱྒྷᑌءխऱาઽᆖੌߓอႚಬࠉݧچຏመาઽᏚխሼ୴ᅃ୴ऱΔาઽ࠹ሼ୴ऱᖿ࿇ขسॾᇆΔॾᇆ൷گᕴ൷࠹ࠀ࣋ՕΔຍࠄ࣋ՕԱऱॾᇆᆖሽᆰ։࣫Δࠀאቹ।ऱݮڤऴᨠچ᧩قנࠐΖੌڤาઽᏚขسࠀ։࣫ऱॾᇆڶ٠ཋ୴ॾᇆࡉᘛ٠ॾᇆΖ٠ཋ୴ॾᇆऱൎஇױא֘ਠาઽऱՕ՛Εݮኪ֗ઽᑠឍศ֏ऱ࿓৫Ζࠉᘛ٠ైऱլٵΔشլٵं९ऱ٠ᖿ࿇Δ࿇୴נլٵं९ऱᘛ٠Δױ᧩قլٵऱᠱۥΔڇլٵऱኔ᧭᧯ߓխΔຍࠄᘛ٠ॾᇆ༉ױא֘ਠլٵऱาઽسढᖂࢤΖาઽᏚ᧯LSR IIาઽᏚ᧯ΚΚ᧯إ૿قრቹBD LSR IIᖲิګ։1.2 Fluidics ੌߓอੌߓอץܶSample injection tube ᑌՂᑌಾ(SIT)Εflow cell ੌ೯ΕࠟଡᚏΕ֗ԫߓ٨᧯ᙁಬጥᒵΖੌߓอऱפشΔਢലาઽࠉݧಬࠩྒྷၦ࠹ᛀΖ1.2.1 ੌ೯Flow CellLSR II าઽᏚආشയຨڤੌߓอΖڼԫߓอऱੌᚘԺፖᙫੌੌຒઃᐗቃΔֹᏁԳᓳᖞΔਚۖᖙ܂១ΖףՂᏚᕴփհሼ୴٠ሁٍᐗቃ٣ᓳΔڂڼᔞش࣍ᜯݩᛀ᧭ፖഗ៕ઝઔΖ܃ലڜᇘᑌጥڇSIT ՂΔੌߓอᇙԫଡᚥᄎףᚘᙫੌᙓΔ༼ࠎᙫੌࠩੌ೯խΖڇຍٵழΔᑌᇢጥՈךףᚘΔۖᑌঁᄎႉထSIT ಬၞੌ೯Ζԫ؟ᑌၞԵੌ೯Δาઽࢨศലݮګԫሁ᜕ၷٻሼ୴٠ޔฝ೯Ζࠐ۞ຍࠄศऱཋ୴٠ࡉ࿇נऱٺۥᘛ٠ല༼ࠎᣂ࣍،ଚऱ֡՚ΕݮणΕឍศࢤΕࡉس֏سࢤऱಛஒΖڇੌ೯ᛀྒྷխΔຘᢴലሼ୴٠ޔፋྡྷڇᑌੌၗ֨ۯᆜΖሼ୴٠ޔፋྡྷڇᑌੌՂขس່ࠋऱ٠ॾᇆΖط࣍٠ᖂຏሁࡉᑌੌၗ֨ऱۯᆜࡐࡳΔࢬאڼጟ່ࠋ֏णኪԫऴঅࡳΖੌ೯ੌ೯ଳ૿ቹଳ૿ቹଳ૿ቹΚΚੌ೯փךየᙫΔᑌᇢጥխऱาઽԫ࣍ᖞଡੌߓอऱᚘԺංԵੌ೯խΔݮګԫპาֽሁΔาઽױ࣍ࠡփٻՂཾ೯Ζ៶طੌ᧯೯Ժፋྡྷΰhydrodynamic focusing αΔױࠌᇠֽሁࡐࡳ࣍ੌ೯խ؇ΔࡌհᙫੌݮګԫץֽሁհᙫᓂΔࠌาઽ౨אԫาઽհݮኪΔດԫੌᆖ່ాऱֽሁࠩሒྒྷၦΔۖፖሼ୴٠ٌᄎΖੌߓอقრቹ1. ሽᄭၲᣂΚሽᄭڇᏚᕴ׳ছՀֱΖ2. Ꮪᕴ૿ࣨΚڇᏚᕴছֱ૿ࣨխڶ3ଡੌຒ൳ࠫΰLO/MED/HIα֗3ଡפ౨൳ࠫΖੌຒ൳ࠫΚLOΚᑌੌຒΚ12 μl /minMEDΚᑌੌຒΚ35 μl /minHIΚᑌੌຒΚ60 μl /minੌຒპᓳඝၨΚֱؐհSample Fine Adjust ඝၨױპᓳڶᑌੌຒΔൕ50%-200%ΖLOΚᑌੌຒΚ6 - 24 μl/minMEDΚᑌੌຒΚ17.5 - 70 μl/minHIΚᑌੌຒΚ30 - 120 μl/minੌߓอפ౨൳ࠫΚ• RUNΚጸۥழ।قᑌၲࡨᙁࣹΖΰᖪદۥழ।قᏚᕴլإൄΔᓮᛀਢܡዥα• STANDBYΚྤᑌࢨᄊᖲழհإൄۯᆜΔڼழሼ୴פᄎ۞೯૾܅א९ሼ୴ኂࡎΖ• PRIMEΚPrimeᖙ܂౨ඈೈੌ೯փऱऐΔشֲ࣍ൄൄߠംᠲऱᇞެΖଈ٣ᙫೖַੌ೯ΔᚘԺ֘ٻലᙫඈנੌ೯ੌԵᐒදΖڇቃऱԫࡳழၴ৵Δߓอאԫࡳऱຒ৫۞೯ലੌ೯ךየᙫॴַऐऱݮګΖՂ૪࿓ڤݙګ৵ΔᏚᕴᄎၞԵStandbyᑓڤΖࠌشழᖲڕΚᄅᇘᖲၲᖲΕޓངPBSΕփຝጥሁڶऐΕ৺ੑᏚᕴࢨ৺ੑၞᑌಾΖ3. ᚏᙓΚᙫΚᙫᙓ୲ᗨપ8֒ΔאጸۥጥᒵፖᖲઌຑΖᇘየᙫΔᏚᕴױאሎ۩Օપ8՛ழΖᙫ።Ղڶ८᥆ᛩڬΔঅဳᙫയຨΖᙫੌڶۭᜤᙫመៀᕴSheath FilterΔ0.22umመៀᕴΔװೈᙫխऱᠧᔆΔঅᢞၞԵੌ೯ऱᙫਢऱΖᓮࣹრሁ྇ᚘᎺհۯᆜΖຍԫীऱૠڶᇘ૿ႚტᕴΔࢬאྤऄൕᏚᕴຌ᧯ՂቃवᙫܛലشݙΖ౨ش֫ᄀ೯ᙫΔᖇૹၦტࠐܒឰΖᐒΚ୲ᗨપ16֒ΔႿᓄޗᔆΔאᖪۥጥᒵፖᖲઌຑΖՂᇘڶ૿ტᚨᕴΔᐒךየழᄎ࿇ᜢᤞܫΖش֪ױאؾီ۷ጩᐒऱ۾የၦΔࠐංጩᙫऱໍਲၦΖ4. ՂᑌΚՂᑌਢᑌءጥऱՂᑌۯᆜΖ،ץਔԿଡຝ։Δԫଡਢၞᑌಾ SITΔᝫڶ֭ᐶਮTube Support ArmΕࡉዠژఎߓอDroplet Containment Module(DCM)Ζ•ၞᑌಾΚਢԫլᙓጥΔലาઽൕᑌءಾխܮԵੌ೯Ζၞᑌጥ؆ڶԫጥΔਢዠঅఎߓอऱԫຝ։Ζ•֭ᐶਮΚຂඔ೯ዠژఎߓอΖ֭ᐶਮۯ࣍ؐೡࢨ׳ೡழඔ೯ዠژఎߓอΙ֭ᐶਮڇՂᑌणኪᣂຨΖ•ዠژఎߓอΚߓอط֭ᐶਮΕట़ᚥࡉ؆ጥิګΖᅝ֭ᐶਮۯ࣍ؐೡࢨ׳ೡۯᆜழΔట़ᚥ༉ᄎඔ೯Δല᧯ൕ؆ጥܮԵᐒփΖՂᑌழΔႊ߰ຒല֭ᐶਮۯ࣍խۯΔאᝩ܍መڍᑌࢼܮࠩᐒփΔᅝ֭ᐶਮۯ࣍խۯΔట़ᚥೖַՠ܂ΖޓངᑌழΔᨃᏚᕴঅRUNऱᑓڤΔࠌၞᑌಾױאܛࠥ֘ޱՂᑌΖඔ೯DCM ᣂຨDCM5. HTS (High Throughput Sampler) ՂᑌߓอBD LSR IIױᙇHTSՂᑌߓอΔگႃ96ࢨ384პ֞ᒌհᛀ᧯ΖڇᇘڶHTSհᏚᕴՂΔᄎڶԫگ࠷ᑓڤ֊ང(Acquisition Mode Switch)ࠎࠌشृ֊ངጥࢨHTSՂᑌᑓڤΖ!•ጥᑓڤΚڇڼᑓڤՀDCMפ౨إൄΖᅝ֭ᐶਮۯ࣍ؐೡࢨ׳ೡۯᆜழΔట़ᚥᄎඔ೯Δല᧯ൕ؆ጥܮԵᐒփΖ•პ֞ᒌՂᑌᑓڤΚڇڼᑓڤՀDCMפ౨ᣂຨΖ֊ང۟ڼᑓڤழΔၞᑌಾᄎڂDCMפ౨ᣂຨۖขسዠֽွΔዠՀհᙫᄎՀֱհܮگቾ(adsorbent pad)ܮگΔڼإൄွΔլᏁᖜ֨ΖޓངHTSറشհၞᑌಾঅᥨࠀലᛀ᧯ຑ൷ᕴ(sample coupler)ڜᇘݙฅ৵Δዠֽွܛᄎ؈ΖHTSዌທقრቹ:1.3 Optics ٠ᖂߓอBD LSR II ߚᵤ۔Ոܝᅌிవᰃϵ▔Հܝᅌிవᬊ▊ܝᅌிవ᠔ఈ៤DŽ▔Հܝᅌிవ⚎⌕ࢩՈ௴ྡྷᐊ՚ܝ࿁˗ᬊ▊ܝᅌிవࠛᬊ▊ᕲ௴ྡྷୖᄤՀߎՈᙦܝֵᔣ້ᬷᇘܝDŽ٠ᖂߓอ٠ᖂߓอଳ૿ቹଳ૿ቹଳ૿ቹΚΚ1.3.1 Excitation Optics ᖿ࿇٠ᖂߓอ٠ॾᇆᖿ࿇ߓอطሼ୴ᕴΕ٠ᖄፂΕݮګ٠ޔऱᆆᢴࡉԫଡຘ٠ࢤፋྡྷຘᢴิګΖ٠ᖄፂߓอലሼ୴٠ޔતᒔΕࡳچႪፋڇ٠ޔݮګᆆᢴՂΔ٦ຏመᆆᢴΔലሼ୴٠ޔދ୴۟ፋྡྷຘᢴՂΔߠՀቹࢬقΖLSR IIሼ୴ΚBD LSR IIᏚᕴࠌش܅פΕܐڤࡐኪሼ୴ᕴΔຍᑌԫࠐΔᇠᏚᕴ༉լᏁሽᄭࡉܐথໂԱΖሼ୴ं९ं९ΰΰnmα່՛פΰmWαൄشᘛ٠றCoherent R Sapphire TM ࡐኪሼ୴488ΰ៴٠α20 FITC, PE, PE-Texas Red, PerCP,PerCP-Cy5.5, PE-Cy7,PIJDS Uniphase TM HeNe 633ΰદ٠α 17 APC,APC-Cy7Coherent Vioflameࡐኪ405 (٠) 25 Cascade Blue, Alexa 430 Kimmno HeCd 325 (؆٠) 8 Indo-1, DAPI, Hoechst Lightwave X-Cyteࡐኪ355 (؆٠) 20 Indo-1, DAPI, Hoechst1.3.2 Collection Optics گႃ٠ᖂߓอፋྡྷຘᢴߓอঞ֧ᖄሼ୴٠ၞԵੌ೯ு֨ऱᑌ೯ᒵՂΖא 6-2 ૠLSR_IIࠏΔگႃ٠ᖂץਔࠟଡᛀྒྷᕴೄ٨ΔطڕቹխࢬقऱԫଡԶߡݮࡉԫଡԿߡݮඈ٨ऱ٠ሽጥิګΖԶߡݮᛀྒྷᕴೄ٨ץܶԮଡ٠ሽጥΔ،ຂᛀྒྷࠐ۞៴٠ሼ୴ऱॾᇆΖࠡխڶԫଡ٠ሽጥΔ،ຂᛀྒྷ90৫ೡֱཋ୴٠ॾᇆΖԿߡݮᛀྒྷᕴೄ٨ץܶࠟଡ٠ሽጥΔ،ຂᛀྒྷࠐ۞દ٠ሼ୴ऱॾᇆΖ٠ᖂಛᇆ൷گᕴቹق(ቹ6-2 )ΚॾᇆگႃߓอૠګԶߡݮࡉԿߡݮऱඈ٨Δຍጟૠױڶயچൕޢԫଡሼ୴ᕴխᛀྒྷ٠ॾᇆΖࠠ᧯ڕՀΚຏመԫิ९ຏԲ։ᢴLongpass DMΔ٣ലᘛ٠ॾᇆխं९່९ऱႚᙁࠩรԫଡ٠ሽጥΰPMTαՂΔ֘୴ڃࠐऱለं९ऱ٠ॾᇆঞٻՀԫଡPMTֱٻ࿇୴ΖޢԫଡPMTհছऱຏៀ٠ׂbandpassւኙࢬᏁگႃऱ٠ᢜं९તาᓳᆏΖط࣍֘୴ֺຘ୴ऱயޓΔࢬאຍጟૠ༼ԱᇠᏚᕴڇڍۥ։࣫ழऱᛀྒྷࢤ౨ΖڕቹقΔBlue Aΰ750~810 nmαΕBlue Bΰ675~715nmαΕBlue Cΰ650~670nmαΕBlue Dΰ600~620nmαΕBlue E ΰ562~588nmαΕBlue Fΰ515~545nmαΕBlue Gΰ488nmαΖOctagonΚTrigonΚڕቹقΔRed Aΰ770~830 nmαΕBlue Bΰ650~670nmαೈ٠ሽጥᛀྒྷᕴհ؆Δፖሼ୴ؓ۩ֱٻڶ࣋ᆜԫඕ৫٠ሽԲᄕ᧯photodiodeΔشאگႃൎՕऱছֱཋ୴٠ॾᇆΖຍଡԲᄕ᧯ছֱڶଡᔟ٠ཧΔױאַإٻऴ୴ऱሼ୴٠ၞԵΔ൷گ៥୴٠ΖៀׂੌڤาઽխࢬشៀׂڶৰڍጟΔڶຏៀׂΕ९ंຏៀׂΕंຏៀׂΕ९ंຏᠨۥࢤ֘୴ׂΕխࢤៀׂΖຏៀׂऱᚨشঞإړઌ֘Δ،ւਬԫࡳं९ऱ٠ᒵຏመΔࠏڕԫ530 nmຏៀׂւFITC࿇୴ऱ530 nmጸۥᘛ٠ຏመΔۖࠡהं९ऱᘛ٠٤ຝॴឰΖ९ंຏៀׂւਬԫं९אՂऱ٠ᒵຏመۖലڼं९אՀऱ٠ᒵៀൾΔڕ650nm ९ंຏៀׂւPerCP࿇୴ऱદۥᘛ٠ຏመΔۖ488nmऱᖿ࿇٠֗FITC࿇୴ऱ525nmጸ٠٤ຝॴΖ९ंຏԲۥࢤ֘୴ᢴւਬԫं९אՂऱ٠ᒵຏመۖലڼं९אՀऱԫࡳं९ऱ٠ᒵ֘୴Ζࠏڕᨃ620nmאՂऱદ٠ຏመۖല 525nmጸ٠֘୴Δࠡהऱ٠ᒵঞطᢴׂܮگΖխࢤៀׂྤ᙮ࢤΔ،ኙٺं९ऱ٠ᒵ݁ಐ྇Δൄش٠ᒵመൎᏁ݁ಐ྇ऱچֱΖሼ୴٠ᄭ֗ኙᚨ൷گᕴᘛ٠ं९। ( 4-2-2-2 )Κ1.4 Electronics ሽߓอሽߓอຂނ٠ॾᇆ᠏֏ګሽॾᇆΔࠀലհᑇۯ֏৵ᥛሽᆰ։࣫܂ᄷໂΖڇԲᄕ᧯ࡉPMTs٠ሽጥࢬขسऱॾᇆΔᄎፖהଚೠྒྷࠩ٠ऱᑇၦګإֺΖาઽᏚऱሽߓอᄎ൷ထৱຍࠄຑᥛሽᚘऱᣊֺॾᇆ࣋ՕΔྥ৵᠏ངګ։ᠦऱᑇڗ֏ᑇଖΖڇॾᇆ࣋Օࡉᑇڗ֏᠏ང৵Δൕۥาઽศऱۥᘛ٠ॾᇆ༉ᄎᆵࠩࡳऱຏሐΔڂۖւ։ᆢ։࣫ΖBD LSR IIሽߓอຝٙطሽᄭ൳ࠫΕຑ൷ᕴࡉࣨᑒխऱࣨΕࡉੌߓอ൳ࠫցΕگ࠷ਐقᗉցٙࢬิګΖءີᆏႛ១տฯڇInstrumentᏚᕴီ࿗Laser tabխΔڶ༓ଡᣂՊሼ୴ΕױࠎࠌشृᓳᆏૹᑇΔڕՀቹDelayΕWindow ExtentionΕፖArea Scaling FactorsΙუᛵᇞڶᣂሽߓอऱݙᖞᇷಛΔױאەπBD LSR II User’s GuideρխऱSignal detectionີᆏΖຍ༓ଡᣂՊሼ୴ऱૹᑇᐙᖞଡᏚᕴߓอሎ܂Ζԫऱس᠔ઔߒش֪լᏁޓޏLaser DelayፖWindow ExtentionࠟႈቃයٙΔᓮ֎ᖐ۞ޓޏΖڶ֟ᑇൣउՀױאڂᚨาઽ؆ীΕ֡՚ΔࠐଥޏFSC Area ScalingΔ܀ᓮڇޢֲᣂᖲছΔᓮބڃDefault ᐗࡳΔא܍ᐙהԳऱኔ᧭࣠ΖޢֲᣂᖲழΔຍࠄᑇᄎ۞೯ᚏژΔሶֲၲᖲழΔঞਢਤֲऱ່ึࡳΖאՀ១տฯᖙ܂ঞΔᓮጥီኔᎾᏁ۞۩ᒤΖ1.4.1 Laser Delay ሼ୴ᙈழԱ૾܅լٵሼ୴ၴขسᘛ٠ॾᇆհઌյեឫΔ༼ᛀྒྷᨋඕ৫ΔLSR IIආشم᧯़ၴᖿ࿇ߓอΖՈ༉ਢլᄎሼ୴ڇլٵழၴΔፖาઽศٌᄎΔࢬขسऱॾᇆ٦ნᖞܧΖڼԫૠऱᚌរޢԫ֭ሼ୴ࢬگႃᘛ٠ॾᇆΔאᗑمऱ٠ᙁԵΔױ྇܅ઌյեឫΖԫऱૠਢא៴٠ᥲ୴t0ΔࢬאڶદۥΕۥΕࡉ؆ሼ୴ڶᏁᒔᎁሼ୴ᙈழၴΖ1.4.2 Window Extensionףᐈ࿗Window gateψ࿗॰ωਢԫଡॾᇆ౧ᓢ࣍ࢳଖऱழၴ࿗ΙۖψWindow Extention (ףᐈ࿗)ωঞז।Ꮪᕴ౧ᓢॾᇆऱழၴਢܡ९ΖലϙWindow Extentionϙᓳ۟Ϙ0ϙΔױڇ່ాऱழၴ࿗փࠩ౧ᓢ᧢֏Δ܀រਢຝٝ౧ᓢآԵᗨ։ΖBD LSR IIᐗቃऱψףᐈ࿗ω7პઞΔܛ౧ᓢছ৵ٺ९3.5პઞΔᔞش࣍0.2~12.0პۏՕ՛ऱาઽศΖԫऱࠂᣊ೯ढาઽઃᔞشΖڕᏁྒྷၦՕ࣍20პۏऱาઽศᓮፖߓอጥ൷Δᔞ৫چ༼ψףᐈ࿗ωΖመ৫࣋Օψףᐈ࿗ωᄎࠌॾᇆᅸᐳΰelectronic abortsαऱᖲᏺףΔࠌᑌءੌຒ࠹ࠩওૻΖ1.4.3 Area scaling factors ᓳᖞ૿ᗨངጩڂڍڂైױ౨ᄎᐙᘛ٠ॾᇆऱ૿ᗨAࡉ৫HऱઌኙֺଖΔڕาઽՕ՛ΕᙫੌຒΖԱᒔঅޢԫଡ౧ᓢॾᇆऱAࡉHऱᑇଖઌᅝΔܛֺଖ࣍1Δױאᓳᖞ૿ᗨངጩڂΖאFSCॾᇆऱ٠ሽԲᄕ᧯ࠏΔᓳᆏ”FSC Voltage”Δࠌᘛ٠პஆᆵ࣍FSC-Hऴֱቹࠥ৫પ100x1,000ΖᨠኘFSC-AፖFSC-Hऴֱቹհᘛ٠ൎ৫Δڕ࣠ઌٵΔঞլᏁᓳᖞ៴٠ሼ୴ऱ૿ᗨངጩڂΖڕ࣠FSC-AፖFSC-Hᘛ٠ൎ৫լઌٵΔ࣍”Instrument”ီ࿗խរᙇ”Laser”।ᓳᇢ”FSC Area Scaling”ΖڕFSC-A՛࣍FSC-Hհᘛ٠ൎ৫ΔᓳFSC Scaling FactorΙ֘հঞᓳ܅Ζޢԫ֭ሼ୴ٺڶٺᗑمऱ૿ᗨངጩڂΔڕڶᏁױଡܑᓳᖞࢨᒔᎁΖڕՀΖ1.5 BD LSR IIՠ܂ీᇷறऱᛧ࠷ፖ։࣫Δא֗BD LSR IIᏚᕴऱՕຝ։פ౨Δ݁ਢLSR IIՠ܂ీՂΔطFACSDivaຌ᧯൳ࠫᖙ܂Ζᇠՠ܂ీץਔאՀຝ։ΚBDᐗᆜऱPCሽᆰΰܶᄶቕΕᒌαЁش࣍ᛧ࠷ᇷறऱՠ܂ీؘႊᆜڶԫଡPentium R IV ࢨਢޓ్ऱᕴΔڶԫଡ۟֟1GB ऱRAMΔԫଡ40GBऱױشऱ࿏़ၴΔא֗WindowsXP Professional (US-English)܂ᄐߓอΖ17ٹᘛኟۥٱ।ᖲBD FACSDiva ຌ᧯version 5.0 or aboveЁᇷறऱᛧ࠷ፖ։࣫Ёੌߓอऱ۞೯ඔ೯Δᣂຨࡉ৺ੑᑓڤBD FACSDiva Data ManagerЁᇷறऱໂٝፖᚏژรԲີΕΕBD LSR IIൄᖙ܂รԲີᙫੌᙓᙓ2.1ךჄᙫੌ৬ᤜޢֲၲ೯ᏚᕴছΔࠉՀ٨ޡᨏךჄᙫੌᙓΚࣈՀףᚘᒵΰጸᒵαࡉᙫੌጥΔຏመڇᔞᅝऱ൷ᙰՂऱ८᥆ᚘථՂਊᚘΔࠀࢮದػۥ 1.ຑ൷ᕴΖലᙫᙓֽࠩᑒΔࠀࢮದᚘԺຏଅ֞ࠐਜ਼23.ඝᠾື።Δ࠷Հື።ΔࠀףԵᔞၦऱFACSFlowᙫੌΖ࣋ڃື።Δᒔঅࠡ႕ۥቾׂፖᙫᙓയٽΔྥ৵ඝጹ።ၞۯᆜΖ4.ૹᄅ൷ڃףᚘᒵࡉᙫੌጥΔط࣍൷ᙰլٵΔᚨլᄎ൷ᙑΖ5.2.2ଙೈᐒ୲ᗨપ16֒ΔႿᓄޗᔆΔאᖪۥጥᒵፖᖲઌຑΖ৬ᤜޢֲၲ೯ᖲᕴছΔࠉՀ٨ޡᨏଙೈᐒΖش֪ױאؾီ۷ጩᐒऱ۾የၦΔࠐංጩᙫऱໍਲၦΖࣈՀᐒጥᒵΰᖪۥጥᒵαΔຏመڇᔞᅝऱ൷ᙰՂऱ८᥆ᚘථՂਊᚘΔࠀࢮದػۥຑ൷ᕴΖ 1.ඝᠾΔࠀࣈՀᐒᄨየႚტᤞᕴΖ2.ലᐒֽࠩᑒΔඝၲ።ΔଙೈᐒΖ3ףપ500 mLዦػֽΖ4.5.ඝڃື።Ζૹᄅ൷ڃᐒጥᒵࡉᐒᄨየႚტᤞᕴΖՂᖲࠩԫתழΔΔךჄᙫੌ2.3 Ղᖲࠩԫתழڕ࣠ᖲբඔ೯Δ߷شؘ֪ᏁࠉՀ٨ޡᨏךჄᙫੌΔאᝩ܍ጥሁխขسऐΖܑڇᏁᒔᎁᖲڇStandbyणኪΔ؆լࣈՀᙫੌጥΔࠀڇچࣨՂۯᖙ܂ΖࣈՀףᚘᒵΖ1.ࢮದᚘԺຏଅ֞ࠐਜ਼Ζ2ඝᠾື።Δ࠷Հື።ΔࠀףԵᔞၦऱFACSFlowᙫੌΖ3.࣋ڃື።Δᒔঅࠡ႕ۥቾׂፖᙫᙓയٽΔྥ৵ඝጹ።ၞۯᆜΖ4.ૹᄅ൷ڃףᚘᒵΖ5.2.4 ֊ངՂᑌᑓڤ(optional)ൕጥՂᑌᑓڤ֊ང۟პ֞ᒌՂᑌᑓڤழΔᏁലHTSറشհၞᑌಾ؆ጥא֗ᛀ᧯ຑ൷ᕴᇘՂΔࠀല֊ང֊ང۟პ֞ᒌᑓڤΖฝၲHTSঅᥨ።Ζ1.ല֭ᐶਮؐฝΔ࠷Հᛀ᧯ጥΖ2.՛֨ඝՀၞᑌಾհ؆ጥ(DCM sleeve)Δࠀݔᆜ࣋ᝩ܍ᙊ؈Ζ3.ലHTSറشհၞᑌಾঅᥨ(SIT protector)՛֨ٻՂԵΔං۟ືຝࠀ᠙ጹΖ4.൷ՂHTSᛀ᧯ຑ൷ᕴ(sample coupler):5.a. ലᛀ᧯ຑ൷ᕴ՛֨ٻՂංԵΔऴ۟ტࠩॴԺྤऄᥛංַΖb. ᒔᎁᛀ᧯ຑ൷ᕴՀֱጥᒵਢܡڶށڴࢨᚘމΔૉڶΔᓮ՛֨ඈೈΖc. א֫ലᛀ᧯ຑ൷ᕴ֭ᐶ۰Δࠀشԫೋ֫ലՂֱհඝၨඝጹΖࣹრ: ᛀ᧯ຑ൷ᕴՂֱፖၞᑌಾঅᥨࢍጤհၴᚨڶԫ՛ၴሶΖڕآᨠኘࠩڼၴሶΔᓮലᛀ᧯ຑ൷ᕴ࠵ՀࠀૹᄅᇘݔΖല֊ངᕴ֊ང۟პ֞ᒌՂᑌᑓڤΖ6.2.5 Ꮪᕴၲᖲ࿓ݧጥՂᑌᑓڤ2.5.11. ၲඔาઽᏚሽᄭΙၲඔሽᆰΖ2. ᒔᎁᙫੌڶԶ։የऱFACSFlowΔᒔኔ።ጹΔࠀᒔᎁጥሁຏዃΖ3. ലᐒଙൾΔڇᐒխףԵપ500 c.c. ዦػֽΖ4. ඈೈੌመៀᕴխऱ᧯Ζ5. ڕࠌشԫሼ୴ΔᏁᄊᖲԼն։ᤪΙڕࠌشᠨሼ୴ჸદ٠ΔᏁᄊᖲ֥։ᤪΙڕࠌشᠨሼ୴ჸUV٠ΔᏁᄊᖲքԼ։ᤪΖ6. ച۩ PRIME פ౨ࠟڻΖངՂPBSጥΔHIGH RUN ࠟ։ᤪ৵ܛױၲࡨ։࣫ᑌΖՂᑌᑓڤ2.5.2პ֞ᒌპ֞ᒌՂᑌᑓڤၲඔาઽᏚሽᄭΙၲඔHTSሽᄭΙၲඔሽᆰΖ1.ٵጥՂᑌᑓڤޡᨏ2-5Ζ2.ച۩ PRIME פ౨ࠟڻΖਊRUN bottonΔࠌߓอ࣍ՂᑌणኪΖ3.4. ၲඔ FACSDiva ຌ᧯Ζ5. រᙇՠࠠ٨Ղհ HTS Prime6. ৱ Prime ݙګ৵Δܛױၲࡨ։࣫ᑌΖ2.6 ඈೈੌመៀᕴխ᧯ԫۖߢΔᙫመៀᕴᄎڶ᧯ڍਢطᙫၒࢬᖄીΖຍଡംᠲᄎ֧ದऱฆൄွΔਢش֪ڇՂᖲழߠٚ۶ॾᇆڇᛧ࠷ᢄቹՂΔլᓵਢشչᏖگႃຒ৫ຟԫᑌΖش֪ؾီᛀױߠᙫੌᒵലਢ़ऱΖ٦גา࿇ᙫመៀᕴᇙՈڶ᧯Ζԫ؟࿇سՂ૪ွΔᓮܛࠥല࠷ՀᛀΔངՂDIֽΔࠀലੌߓอ࣋StandbyΖࠉᅃ2.3൸ࢬ૪ޡᨏૹᄅჄየᙫදΖჄየ৵ΔᓮࠉՀ٨ਐقඈೈ᧯Ζലੌߓอ࣋RUNΖ1.᎘᎘ࣁؚੌመៀᕴΔലऐ᎔۟መៀᕴືጤΖ2.3. ਊՀຑ൷࣍ੌመៀᕴՂհػۥਜ਼ጥືጤၲᣂΔࠌऐඈנΖലᄨੌऱᙫژ࣋ࠩᔞᅝ୲ᕴΔ՛֨֎႖ᏴΖ4. ᛀኘੌጥᒵΖڕڶऐΔലᏚᕴ׳ೡհੌጥሁᔚणၲᣂᓳᠾΔࠌऐፖᄨੌऱᙫژ࣋ࠩᔞᅝ୲ᕴΔ՛֨֎႖ᏴΖΖ5.ԫ؟ᙫإൄੌ೯ழΔױ࠷ՀᑌጥΔྥ৵ਊHigh ΕਊPrime Ζ6.ૹޡᨏ57.אإൄֱڤPrime Ζ8. HI RUN ն։ᤪΖ2.7 ᏚᕴᏚᕴᣂᖲᣂᖲᣂᖲ࿓ݧ࿓ݧᣂᖲছؘ೯܂Κ৺ੑၞᑌጥፖ؆ጥΔַၞᑌጥങႾΕࢨڶறྲྀఎΖ2.7.1ጥՂᑌᑓڤ1. ࠷ 3 c.c. FACSClean ՂᑌΖ2. ലᑌ֭ਮؐฝપ1։ᤪΔᨃᏚᕴऱట़ߓอࢼ࠷પ2 c.c. ऱ᧯Ζ3. ലᑌ֭ਮڃإΔਊ HI RUN Δྥ৵ᨃ FACSClean ৺ੑጥሁ 5 ։ᤪΖ4. ࠷ 2 c.c. FACSRinse ՂᑌΔૹՂ૪ޡᨏ2-3Ζ5. ࠷ 2 c.c. dH2O ՂᑌΔૹՂ૪ޡᨏ2-3Ζ6. ࣹრ່৵ఎપ1 c.c. dH2O ڇᇢጥխΖ7. ֊ང۟ Standby אܐথሼ୴ΔStandby ն։ᤪ৵ᣂຨาઽᏚΖ8. ᓮଙൾᐒΔࠀڃჄߩജၦऱዦػֽΖ9. ലᙫੌךჄ۟Զ։የΖ10. ᣂຨ࿓ڤΙᣂຨሽᆰΖ2.7.2პ֞ᒌპ֞ᒌՂᑌᑓڤՂᑌᑓڤ৺ੑጥሁ:1. Choose HTS> Clean2. រᙇDaily Clean-96 well U-bottom template Δរᙇʳˢ˞Ζ3. ຌ᧯נᒔᎁီ࿗ڕՀΚᓮݙګՀ٨ᄷໂՠ܂Κ3.1 ࣍ 96 well plate ՂΔᓮڇՀ٨ well խף FACSClean solution ֗ DI water Κ3.2 ലHTS Ղ።ฝၲΔࠀലᄷໂړऱ96 well plate ᆜ࣍ plate holder ՂΖࣹრ: Well A1 ᏁኙᏘ plate holder ׳ՂߡۯᆜΖ3.3 ።ՂHTS Ղ።Δᒔᎁᖲᕴڇ “RUN” ऱᑓڤΖˇˁʳរᙇ O ˞ΖᏚᕴݙګ৺ੑ࿓ݧ৵ΔᄎנՀ٨ီ࿗Ζ6. រᙇ O ˞Δᇞೈ৺ੑ࿓ݧΖࣹრ: ڕՂᑌᛀ᧯ܶڶacridine orange (AO) or propidium iodide (PI) ⊺ᆈ৫ለհᕪΔᓮࠉՀ।ࠉՀ।ᄷໂᄷໂᄷໂʳʳ˗ˡ˔ʳറش৺ੑᒌറش৺ੑᒌΔΔᙇᖗᙇᖗʳʳϘDaily Clean-96 well U-bottom DNA” template ࠉᅃՂ૪ޡᨏ৺ੑጥሁ૪ޡᨏ৺ੑጥሁˍˍWellsSolution Volume (μl)A1-A4BD FACSClean Solution 250 B1-B4BD FACSRinse Solution 250 C1-C4DI Water 250ᣂᖲ࿓ݧΚ11. ਊStandby אܐথሼ୴ΔStandbyն։ᤪ৵ᣂຨาઽᏚΖ12. ᓮଙൾᐒΔࠀڃჄߩജၦऱዦػֽΖ13. ലᙫੌךჄ۟Զ։የΖ14. ᣂຨ࿓ڤΙᣂຨሽᆰΖรԿີΕΕᏚᕴᆜSurface MarkersรԿີڇءີխΔ൞ലᖂڕ۶ၞ۩քۥ܍ᘛ٠։࣫հᏚᕴᆜΖڇ൞ಖᙕԫଡᑌऱᇷறհছΔؘႊ٣ᖕࢬࠌشऱᑌᣊীࡉᘛ٠றऱլٵΔኙ٠ሽᏺጥሽᚘଖΔᇖᚍଖࡉࢳଖᆜၞ۩່ᚌ֏ᆜΙᆖመ່ᚌ֏ᆜ৵Δլٵᘛ٠ᑇՀऱؾᑑาઽຟ౨։܉ڇቹݮࠥ৫ՂΖඔ೯ߓอၞ۩ᔆ൳່ࠫᚌ֏ᆜಖᙕᇷற։࣫ᇷறᣂຨߓอኙੌڤาઽᏚऱ່ᚌ֏ᆜץਔ༓ଡޡᨏΙ1. ࿆ᙕၞԵBD FACSDivaຌ᧯2. ᄅ৬ԫኔ᧭ Experiment3. ᘛ٠ᑇᙇᖗ4. ᎅࣔᛧ࠷פ౨5. ່ᚌ֏ੌڤาઽᏚऱᆜΰܶAutoCompα6. ૠGlobal Sheetᛧ࠷ठ૿7. ಖᙕኔ᧭ᑇᖕ8. ᙁנΕႪԵFCS֮ٙΕໂٝኔ᧭ᚾூءᆏലᙞ૪ڕ۶ܓشϙInstrument Setting (Ꮪᕴᆜ)ϙפ౨ΔኙLSR IIᏚᕴၞ۩ 6 ۥ։࣫ᆜ່ᚌ֏Ζኙ൞ۖߢΔ൞ڇᖙ܂ຍࠄޡᨏழΔᓮጐױ౨ਊᅃႉݧၞ۩Ζ3.1 ࿆ᙕၞԵBD FACSDiviaຌ᧯1ၲඔᏚᕴሽᄭΖሽᄭጸۥۯ࣍าઽᏚ׳ছֱΖ2ၲඔሽᆰΖோ૿ုםᇆਢAdministratorΔയᒘ࿆ᙕխᙁԵBDISΔਊENTERΖ3ၲඔ BD FACSDiva ຌ᧯Ζڇຌ᧯࿆ᙕխΔᙁԵࠌشृټጠ֗യᒘΖΰಖ٣ᇿጥعᓮࠩᦞയᒘαNOTICEΚ܃ऱࢬڶኔ᧭ᇷறຟലঅఎڇ܃۞աऱ࿏़ၴᇙΔࠡהش֪լ౨ၞԵΖ4ᒔࡳຌ᧯ፖาઽᏚݙګຑᒵΖݙګຑᒵ৵ΔڇInstrumentီ࿗Հֱᄎ᧩قInstrument ConnectedΖڕڶؘΔױរᚰInstrumentΰαီ࿗Δᨠኘຌ᧯ፖาઽᏚਢܡݙګຑᒵΖՠ܂ီ࿗࿗ՠࠠ᥏ՠ܂ီ5ڕڶᏁΔױᚰՠ܂ီ࿗ՠࠠ᥏ՂऱՠࠠቹقΰαࠐᛵᇞઌᚨऱցิګΔڕψBrowser (ោᥦᕴ)ωΕψInstrument (Ꮪᕴ)ωΕψInspector (ᇷಛ)ωΕψWorkseet (ՠ܂ቹ)ωΕࡉψAcquisition DashboardωΖ6ڇຌ᧯խՠ܂ழΔီ࿗ױ౨ᄎឆ៲ΖױࠩViewՀࢮפ౨᥏ਢܡࢬڶؘᏁՠࠠઃբၲඔΖڕսآߠࡳီ࿗ΔױشView>>Reset positionsڃ༚ຌ᧯ቃီ࿗ۯᆜΖࢨᠨᚰઌᚨီ࿗ᑑΔലᇠီ࿗ฝࠩՂᐋΖ3.2 ᄅ৬ԫኔ᧭Experiment7տฯBrowser (ោᥦᕴ) ऱցิګΖ܃վ֚ऱኔ᧭ᄎڇោᥦᕴီ࿗شᐋ్ऱݮڤࠐิ៣ΔFolder()>>Experiment()>>Specimen()>>Tube()ΖەՀቹΖ8ขسԫଡFolderΔ٣אᄶቕរᙇោᥦᕴီ࿗փറ᥆܃ऱ࿏Δྥ৵រᚰFolderᑑΖࢨਊᄶቕ׳ᙇNew folderΖ9ขسԫଡExperimentΔ٣אᄶቕរᙇ܃ᄅᏺऱFolderΔྥ৵រᚰExperimentᑑΖࢨൕᘛኟՂֱᙇᖗϘExperiment>>New Experimentϙࠐᄅᏺኔ᧭Ζࠀڇᙟ৵נऱψExperiment templatesωֱխΔᙇشψBlank Experiment with Sample TubeωΖ10” Blank Experiment with Sample Tube” ᚾ݈աܶڶԫSpecimen_001Δڕ࣠܃ऱኔ᧭ᚾ݈խڶSpecimenΔរᚰSpecimenᑑᄅᏺհΖ11ޢଡSpecimenᚨ۟֟ڶԫᇢጥTube_001ΔױរᚰSpecimen_001ছψЀωᇆ୶ၲհΔࠌױߠΔڕՀቹΖޢଡ़ػTubeֱؐڶԫઌኙᚨψਐقᒢᙰωΰαΔԫՀ։࣫ᑌழΔؘႊشᄶቕរᚰΔࠌࠡܧጸۥΰαΔթ౨ၞ۩ᏚᕴᑇᆜΔܡঞլࠩٚ۶ᏚᕴᑇΖᏚᕴᑇᆜᘛ٠ᑇᙇࡳΕΕܔ྇3.3ᘛ٠ᑇᙇࡳ12ڇInstrumentᏚᕴီ࿗ᄚΔᚰ”Parameters”૿Ζش֪ױڇParameters૿ՂΔܔೈٚ۶܃լࠌشऱᑇΖຍԫޡኙࠌش۞೯٠ᖂᇖᚍऱش֪ॺൄૹΖNOTiCEΚᓮᒔᎁشᄶቕរᚰTube_001ֱؐԫψਐقᒢᙰωΰαΔࠌࠡܧጸۥΰαΔթ౨ၞ۩ᏚᕴᑇᆜΖ13Parameters૿ڕՀΖᚰီ࿗ᄚऱϙAdd or DeleteϙࠐᏺףࢨܔೈᑇΖڕᏁޓޏᑇΔױរᚰᑇֱխ׳ೡᒢᙰΔڕFITCױޏګEGFPࢨAlexaʳ488ΖPerCP-Cy5.5ױޏګPerCPΖNOTICEΚݺଚ৬ᤜរᙇFSC-WፖSSC-WΔشࠐඈೈᠨᜤ᧯Ζ14ݺଚڇڼᒭشFITCΕPEΕPerCP-Cy5.5ΔPE-Cy7ΔAPCΔAPC-Cy7քଡᘛ٠ᑇΖᏚᕴီ࿗ᄚ”Parameters”૿ᚨᇠڕՀቹΖ3.4 ᛧ࠷൳ࠫᛧ࠷൳ࠫΰΰAcquisition Dashboardα15ᛧ࠷ᖙ᜕ิٙץܶᖙ᜕ᖲΕၞ۩ᛧ࠷ࡉಖᙕᑇᖕᇷறΖױਊՠ܂़ၴՂՠࠠၨխΰαΔࠐ᧩قᇠิٙΖڶᅝሽᆰՠ܂ీڶຑ൷ࠩาઽૠᑇᏚழΔᛧ࠷ᖙ᜕ิٙթ౨᧩قΖᛧ࠷ᖙ᜕ิٙפ౨ڕՀΚ• Next TubeΚ։࣫ՀԫጥᛀΖࢨᏺףԫጥᛀΖ• Acquire DataΚᛧ࠷ΔၲࡨڇᘛኟՂ᧩قྒྷၦࠩऱาઽᇷறΙ܀ࠀլಖᙕΖ• Record DataΚಖᙕΔၲࡨࠉਐחಖᙕᇷறګlist mode dataΖಖᙕݙګழΔᑌጥऱቹقᄎൕΰα᧢ګΰαΖ• RestartΚڇAcquireࢨRecordᑓڤழΔޣխַૹྒྷΖ• Storage Gate Κᚏژ॰Δᄎᒔࡳୌࠄาઽᆢലץܶڇ܃ऱᑇᖕᚾூᇙΖຏൄ܃ᄎუఎՀ‘AllEvents'ࢬڶࠃٙΙࠌشP1॰ঞᚏژP1าઽᆢΖ• Stopping Gate Κೖַ॰Δუᛧ࠷ԫࡳᑇၦऱาઽࠅᆢΔױࠌشP1ೖַ॰10Δ000ऱפ౨Δലگႃ٤ຝࠃٙऱᑇᖕऴࠩP1 ሒࠩ10Δ000թೖַΖΖ• Events to display Κຍפ౨ᒔࡳቹՂڇگ࠷ཚၴലᥛ୶قڍ֟ଡࠃٙΖ3.5 ່ᚌ֏Ꮪᕴᆜ່ᚌ֏ᏚᕴᆜΰΰAuto-Compensation αNOTICE Κڕ࣠܃ᦟ֫೯ᇖᚍ܃ऱᑌΔױאฃመຍଡᆵΖ16ࠌش۞೯٠ᖂᇖᚍऱش֪Δ܃Ꮑᄷໂԫ֭ۥ़ػኙᅃΕࡉԫิൎۥऱۥኙᅃิΔא՛ቕැ֣ࠏΔܛCD4ΕB220ΕCD3ΕCD8Ε।ሒၦݼᑑಖΖ17װᏚᕴᙇΔᙇᖗᏚᕴࡳΔࠀᙇᖗExperiment > Compensation Setup > Create Compensation Controls Ζ18ڇWorksheet ီ࿗ᇙΔቃᆜ٠ᖂᇖᚍ૿ࣨലנԫ֭Unstained ़ػኙᅃΕࡉք֭܃ᙇᖗऱۥኙᅃิΖຍࠄWorksheet ।ࡉݺଚܛലࠌشࠐᛧᑌऱGlobal Sheet ९ቝڶࠄլٵΔۖլױૹᒳΖNOTICEΚڕ࣠܃ܔೈآࠌشऱᑇΔ܃ؘႊൕsectionte 3.3ૹᄅၲࡨΧ19ଈ٣࣋Ղ़ػኙᅃิΔᓳᆏFSCࡉSSCሽᚘଖΔࠌ౨ജᔞᅝچ᧩قؾᑑาઽᆢΔរڇࠌڶრᆠऱගᆢ౨ᗑمګᆢΔࠌ౨ڇ৵ᥛഎᙇழࠩۍ։ۍऱԫගᆢΰڕቹΔ٤ۨխԿଡػۨาઽᆢαΖݙګ৵Δ٦ਊԫڻAcquireױխַᛧ࠷Ζ20܃ലᏁڇཋ୴٠ቹᢜՂނP1 ॰ฝ೯ࠩ܃ऱؾᑑගᆢՂΖฝ೯P1 ॰৵ಖᄶቕ׳ᚰP1ࠀᙇᖗ‘Apply to all Compensation Tubes'Δױ᠙ࡳP1 ॰ऱᄅஆᑑΖ21ڇױאᓳᖞ٠ሽᏺጥԱΖᚰ ”Instrumentϙီ࿗խऱϙParameterϙ૿Δᓳᖞٺଡ٠ሽᏺጥऱሽᚘଖΔࠌહནᘛ٠ଖᕣၦ၀२ؐՀߡΔࠀࠌาઽගᆢݙᖞܧΖݙګ৵Δ٦ڻᚰϘAcquisition Dashboardϙီ࿗ᇙऱϘAcquireϙࠐխַᛧ࠷Ζ22़ػኙᅃᑌءጥFITC-A vs PE-AቹݮΖലອࢤኙᅃऱޢጟᘛ٠ᑇॾᇆ݁ᓳᖞڇรԫ్ኙᑇփΰڕቹαΔڇڕLSR IIΕFACSCantoᖲীալٽழࡵΖ23ڇլRecordऱൣݮՀΔດԫՂᑌք֭ۥኙᅃΖڕڶᔞᅝچዠࡳݼ᧯ᖺ৫Δ܃ᚨᇠ౨ߠԫଡၺࢤΔ،ፖອࢤ۟֟։ၲԫଡኙᑇ్Ζ24ݺଚڇաᆖױאᚏژࢬڶኙᅃᇢጥऱࡨᑇᖕԱΖᒔᎁោᥦᕴխΔጸۥऱᛧ࠷ਐقΰαۯ࣍ϘUnstained ControlϙΖ25ಖᙕࠃٙऱቃᑇؾਢ5,000Δຍኙ࣍ૠጩ٠ᖂᇖᚍᚨբߩജΖ26ଈ٣SIT࣋Ղ़ػኙᅃิΔᚰϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ᄚऱϙRecordϙΖݙګ৵Δຌ᧯ᄎ۞೯խַಖᙕΖ27൷ထᚰϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ᄚऱϙNext TubeϙΖ܃ᄎࠩԫଡFSC_vs_SSCऱቹΔࡉԫଡڶP2ၴሶ॰ऱऴֱቹΔڕՀΖࠉݧՂᑌFITCۥኙᅃิΔਊRecordΖ28P2 ၴሶ॰ല۞೯װ༈ބ܃ऱၺࢤගᆢΖڕ࣠ڶᏁΔش֪ױאᓳᖞP2 ၴሶ॰ऱᒤΖەՀቹΖ29ڇگႃݙԮ֭ኙᅃิᑇᖕΔࠀᒔࡳޢԫଡۥኙᅃิP2 ၴሶ॰ڶො።ၺࢤගᆢ৵ΔڃࠩExperiment > Compensation SetupᙇᖗCalculate CompensationΖ30ຌ᧯ലޣ܃ኙڼԫ٠ᖂᇖᚍఢೄࡎټΔ৬ᤜࠌشፖ܃ऱኔ᧭ઌٵऱټጠΖ܃ױאᙇᖗLink&Save شڼ٠ᖂᇖᚍଖࠀᚏژאࠎֲ৵ࠌشΔࢨរᙇApply Onlyొش࣍ڼڻኔ᧭ՂΖNOTICEΚݙګAutoCompensation٠ᖂᇖᚍ৵Δߓอലլւ܃ޏ᧢܃ऱᘛ٠ሽᚘΔլመΔ܃ױאޏ᧢FSC ࡉSSC ሽᚘΖᓳᆏࢳଖ30ԫش֪ৰࣹ֟რࢳଖऱᆜΖࢳଖऱᆜਢԱඈೈॺؾᑑॾᇆऱեឫΖڕڶᏁΔױڇՂᑌழΔᚰ ”Instrument ϙီ࿗խऱϙThreshold ϙ૿ΔࠀڇڼࡳFSC ࢳଖΖՀቹխױߠڇլٵࢳଖழΔڶயࠃٙऱֺհլٵΖ31װᏚᕴီ࿗ࠀរᚰ٠ᖂᇖᚍΔؾছຍଡኔ᧭ऱ٠ᖂᇖᚍᑇଖലᄎ᧩قڇ߷ᇙΖ NOTICE ΚᓮᒔᎁڶشᄶቕរᚰTube_001ֱؐԫψਐقᒢᙰωΰαΔࠌࠡܧጸۥΰαΔթ౨ࠩᏚᕴᑇΖᒔᎁڶᘅ೯‘Enable Compensation' Ζ32൞բݙګքۥ܍։࣫ऱᏚᕴᆜΖױ٨ٱϙExperiment ϙᚾ݈ՀऱᏚᕴᆜΖᄶቕ׳ᚰኔ᧭݈֮ٙխϙInstr Settings ϙቹقΔࠀڇInpector ီ࿗խΔᙇᖗϘPrint ϙ٨ٱᆜΔױ၀ࠩኔ᧭ಖءխΖ3.6 ૠGlobal Sheet ᛧ࠷ᒤء33܃ܛലၞ۩ऱኔ᧭৬م܃ऱG lobal Sheet ठ૿Δଈ٣រᚰ Worksheet ૿ठؐՂߡհWorksheet֊ང֊ང۟Global Sheet 1Ζ34ڇ़ػ”Global Sheet1”ՂΔ٣ᙇᖗՂֱϙDot Plot ϙՠࠠᙇႈΔࠀڇᛧ࠷ᒤءរᢄ፹ࠟଡཋរቹΖΰ1αFSC-A vs SSC-A ΰ2αFSC-A vs FSC-W ΖNOTICE ΚუࡐࡳՕ՛Δ᎘រԫՀܛױΙٍױشᄶቕٚ۶ືរࠀࣆ࣋ࠐޏ᧢Օ՛Ζ35ױီኔ᧭ᏁףᢄཋរቹΖ36׳ᚰቹݮ݄ᑑၗᑇՂΔױאൕؾᙕխᙇ࠷ࢨଥޏቹݮՂऱ݄ᑑᑇΖᙇᖗᙇᖗᘛ٠ᑇࡉᘛ٠ᑇࡉᘛ٠ᑇࡉݼ᧯ݼ᧯ݼ᧯ᑑ᧘ᑑ᧘37ࡎټᑌፖᇢጥټΖቃᙁנᚾټSpecimen_001_Tube_001Ζױࠉڼঞ൞ऱᑌߓอ֏ࡎټΖ38אᄶቕរᙇSpecimen_001ΔࠀڇInspector ֱխᙁԵᄅټΔڕSample_0831ΔਊEnter Ζ39אᄶቕរᙇTube_001Δࠀᚨشᄶቕ׳ޓټRenameפ౨Δྥ৵ᙁԵᄅټΔڕCD3_CD4_001ΔਊEnterΖࣹრΚDivaຌ᧯լױආشរᅝᑇټࢨᚾூټΖ40ڇϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ᄚਊϙNext TubeϙΔࢬऱՀԫᇢጥലࡎټᇢጥټ _ 002Δྥ৵ᇢጥ _ 003ΔΖᑑಖLabels41אᄶቕរᙇTube_001ΔࠀInspectorڇϙLable (ᑑಖ)ϙ૿ՂΔٺଡᘛ٠ᑇᙁԵᑑಖڗցΖאᄶቕរᙇFITCᑇΔڇLabel᥏ۯՂԵᑑق֮ڗΔڕCD3Ζࠉݧലࢬڶऱᘛ٠ᑇᑑقࣔػΖNOTICEΝຌ᧯ڇᑑ᧘ټᇙլւش՛ᑇរΖ42ڇϙAcq. (ᛧ࠷)ϙ૿ՂΔױࠉኔ᧭Ꮑޣ۞۩ࡳψEvents to recordωΕψStopping gateωΕψStorage geteωΖ܃ٍױڇࢬᏁtubesᄅᏺݙګ৵ΔរᙇExperiment > Experiment Layout ࡳٺጥᑇټጠፖᛧ࠷යٙΖؾᑑาઽᆢؾᑑาઽᆢഎᙇഎᙇഎᙇ॰॰43ڇFACSDiva խ֧ၞၸᐋڤഎᙇΔቫᇢᨃഎᙇ॰ऱ৬مޓऴᤚΕ࣐ᚩΖլؘቝڇCellQuest ԫᑌؒࣥڤሎጩऱ॰ΔቝਢR1*R2ΖၸᐋڤഎᙇHierarchical G ating ऱഗءૠΔਢA ॰խࢬขנऱԫ॰B ΔױאუګਢA ॰ऱԫଡऱ՛ΰႃαΖڇࠌشFACSDiva ຌ᧯ழΔᅝش֪ڇԫଡաഎᙇࡳᆠመΔڕψऱาઽωऱቹᢜՂ٦ᒳᢄᄅऱࢨ॰Δຍᄅขנऱ॰۞೯ګψऱาઽω॰ऱ՛ΰႃαΖش֪ױאൕPopulation Hierarchial View פ౨խᨠኘࠩ܃ؾছࡳᆠנࠐࢬڶ॰ऱ୮ගᖫݮቹΖڕቹΖHierarchial View խ᧩قנψT cells ωΕψB cells ωΕፖψNK cells ωΔຟਢψlymohocytes ω॰ऱ՛ΖࢬאڇኔᎾՂ։ᙇᖙ܂ழΔش֪شψNK cells ω॰ΔהኔᎾՂਢࡳᆠڇψlymphocytes ٌႃNK cells ωΖ44٣ᒔᎁោᥦᕴխΔጸۥऱᛧ࠷ਐقΰαۯ࣍ϘCD3_CD4_001ϙΙڇϙAcquisition Dashboard ϙီ࿗խΔਊϘAcquire ϙΖ45ڇGlobal Sheet1ՠ܂ቹՂΔᙇᖗڍߡݮഎᙇՠࠠΔࠀڇFSC-A vs SSC-A ቹՂᢄഎנψؾᑑาઽωۯᆜΔݮګψP1॰ωΖψP1॰ωᙇࡳ৵Δ॰փาઽᄎ۞೯ܧۥΖ൞ױאฝ೯،ΔࢨਢࣆڵϘ॰ϙՂऱٚ۶ԫ൳ࠫរΔࠐޏ᧢Ϙ॰ϙऱՕ՛ࡉݮणΖᒭΖ46ՀԫଡቹᢜຏൄਢFSC-A_v_FSC-W Δຍଡቹᢜऱ܂شڇՊܑΕඈೈᠨᜤ᧯Ζشᄶቕ׳ᚰᙇխFSC-A_v_FSC-W ቹᢜΔᙇᖗϙShow Population ϙࡎחΙ൷ထᙇᖗϘP1ϙΔڕቹΖຍᑌԫࠐΔࢬڶᙇխऱቹݮՂ༉᧩قP1ැ֣าઽᆢ᧯ΖΖ47ՀԫޡਢڇFSC-A_v_FSC-WቹᢜᢄഎנψԫาઽωۯᆜΔඈೈᠨᜤ᧯Ζڇऱาઽගᆢࡌࢮԫ॰ΔຍലਢP2ΖڕՀቹΖ48൷ՀࠐΔݺଚუشຍP2॰ࠐኙ٤ຝᘛ٠ቹᢜၞ۩ቹᙇΖਊ۰ϘShiftϙΔشᄶቕຑᥛរᙇࢬڶᘛ٠ᑇཋរቹΖشᄶቕ׳ᚰᙇխࠡխԫଡቹݮΔᙇᖗϙShow Population ϙࡎחΙ൷ထᙇᖗϘP2ϙΔڕቹΖຍᑌԫࠐΔࢬڶᙇխऱቹݮՂ༉᧩قP2าઽᆢΖ49ڕڶؘΔױڇڶᘋᔊऱቹݮՂףගᆢΰpopulationsαΕອၺૻΰmarkerαΕࢨွૻΰquadrantsαΕ֗ઌᣂอૠ।ΔאঁᨠኘΖڕ࣠უᨠڶऱගᆢၸᐋΔױאൕPopulation>>ᙇᖗShow Population HierarchyΖޢଡගᆢऱټጠױאشRenameפ౨ૹᄅᑑಖΔڕՀቹխCD4, CD8Ζ50ڕ࣠უޏ᧢ٺଡගᆢऱቃᠱۥΔᠨᚰڇᇠගᆢছֱڶۥֱױᙇۥΔڕՂቹΖ51ڇPopulation Hierarchyီ࿗ࢬ༼ࠎऱอૠڶΝٺଡගᆢऱᑇၦΕ،ଚ۾׀ئ॰ऱۍ։ֺΕࡉ،ଚ᜔ࠃٙऱۍ։ֺΖڕ࣠უขנMeanΕCVอૠΔאᄶቕរᚰٚრቹᢜΔࠀڇቹՂ़ػΔᚰ׳ᙇᖗψCreate statistics ViewωΖ52ڕᏁᒳᙀอૠขנႈؾΔאᄶቕ׳ᚰอૠ।़ػΔᙇψEdit Statistics ViewωΖ3.7 ಖᙕኔ᧭ᑇᖕ53ലᇘڶ6ۥᘛ٠ۥऱSample_001ᑌጥᇘԵሉᑌകΖڇោᥦᕴխΔᒔᎁጸۥऱᛧ࠷ਐقΰαۯ࣍ϘCD3_CD4_001ϙΖױ٣ᚰϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ՂऱϙAcquire ϙΔৱาઽၲࡨڇቹݮՂנΔࠀᒔᎁP1/P2ۯᆜإᒔ৵ΔᚰϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ՂऱϙRecord ϙΖ54ಖᙕݙ10,000ଡาઽ৵ΔലᑌጥൕሉᑌകՂ࠷ՀΖ55ڇϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ՂᚰϙNextϙΔᄅ৬รԲଡϙTubeϙΖࣹრΚڼழᄅ৬ऱϙTubeϙ۞೯ࡎټϘCD3_CD4_002ϙΖ56ڇោᥦᕴխΔᒔᎁጸۥऱᛧ࠷ਐقΰαۯ࣍ϘCD3_CD4_002ϙΖലᇘڶรԲ֭ᑌጥᇘԵሉᑌകΖױ٣ᚰϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ՂऱϙAcquire ϙΔৱาઽၲࡨڇቹݮՂנΔࠀᒔᎁP1/P2ۯᆜإᒔ৵Δ٦ᚰϙRecord ϙၲࡨಖᙕΖ57ૹՂ૪։࣫ޡᨏΔ۟։࣫ݙࢬڶᛀΖ֮ٙΕΕໂٝኔ᧭ᚾூ3.8 ᙁנFCS֮ٙ58݈֮ٙփऱᑇᖕᇷறຟ౨ജא“FCS֮ٙ”ऱݮڤᙁנΔຍጟ֮ٙݮڤ౨ജBDຌ᧯ࡉࠡהᚨشຌ᧯ᦰ࠷Ζຍࠄ֮ٙױא“FCS 2.0”ࢨ“FCS 3.0”ठءݮڤᙁנΙՈ༉ਢᎅΔຍࠄᇷற౨ജא1,024ࢨ262,144ࠟጟᇞ࣫৫ᙁנΖڕ࣠൞ݦඨڇBD CellQuestΔBD CellQuest ProࢨModfit LTຌ᧯խૹᄅ։࣫ຍࠄᇷறΔ߷ᬕ൞Ꮑലᇷறא1,024ऱᇞ࣫৫ΰFCS 2.0αऱڤᙁנΖNOTICEΚڇBD CellQuest Proຌ᧯խ։࣫ᙁנऱᇷறհছΔଈ٣ᏁࠌشBD FACSConvertຌ᧯Δല֮ٙ᠏ངګ౨Macintoshሽᆰᦰ࠷ऱ֮ٙڤΖNOTICEΚڕ࣠൞ᙁנ֮ٙਢԱڇFACSDivaࢨFlowJoຌ᧯խኙࠡૹᄅၞ۩։࣫Δ߷ᬕ൞ױאᙇᖗ“FCS 3.0”ठءΖࠌشຍጟᇞ࣫৫ࡉ֮ٙठءΔࢬڶऱᑇຟലঅఎࡨᒵࢤᆜΖڇFACSDivaࢨFlowJoຌ᧯խΔױאലຍࠄॾᇆຏመኙᑇ᠏ངΔ٦אኙᑇݮڤ᧩قڇቹݮխΖ59ڇោᥦᕴխΔᠨរᚰؚၲუᙁנऱኔ᧭݈֮ٙExperiment()Ζ60ᙇᖗ“File>>Export>>Export FCS”ࡎחΖ61ڇ”Export Parameter”࿗Ցխᙇᖗ “FCS 2.0”ڤΖࢨ“FCS 3.0”ڤΖ62ڕڶؘΔױᙇNoneࠐᜍ՛ᇷறᚾΖᚰ“OK”Ζ63ڕڶؘΔױڇؾᙕሁஉ“࿏DΚ”ΔףՂᄅ৬ऱ݈֮ٙऱټڗΖᚰ”Save”ܛױΖ64NOTICEΚᚰ”Details”Δ൞ױאᔹڶᣂຍࠄᙁנ֮ٙऱᇡาᇷறΖ65൞բᆖګפچലᇷறᙁנ۟“࿏DΚ”Ղऱ“BD Export”݈֮ٙխΔ܃ױאشᙟߪᓤ፹ߨΖࢨृᚰ”Start”Δᙇᖗ“Program >Hewlett-Packard>hp dvd writer>hp dvd writer”Ζᙇᖗ”HP Record Now”ࡎחΔലᇷற᠏ᙕ۟CD٠ՂΖรີΕΕᏚᕴᆜDNA AnalysisรີڇءີխΔ൞ലᖂڕ۶ၞ۩១࣐DNA։࣫հᏚᕴᆜ່ᚌ֏Ζڇ൞ಖᙕԫଡᑌऱᇷறհছΔؘႊ٣ᖕࢬࠌشऱᑌᣊীࡉᘛ٠றऱլٵΔኙ٠ሽᏺጥሽᚘଖΔᇖᚍଖࡉࢳଖᆜၞ۩່ᚌ֏ᆜΖᆖመ່ᚌ֏ᆜ৵Δլٵᘛ٠ᑇՀऱؾᑑาઽຟ౨։܉ڇቹݮࠥ৫ՂΖඔ೯ߓอၞ۩ᔆ൳່ࠫᚌ֏ᆜಖᙕᇷற։࣫ᇷறᣂຨߓอኙੌڤาઽᏚऱ່ᚌ֏ᆜץਔ༓ଡޡᨏΙ࿆ᙕၞԵBD FACSDiviaຌ᧯ᄅ৬ԫኔ᧭ DNA Analysisᘛ٠ᑇᙇᖗૠGlobal Sheetᛧ࠷ᒤء່ᚌ֏ੌڤาઽᏚऱᆜಖᙕኔ᧭ᑇᖕᙁנFCS֮ٙΔModFit LT։࣫ءᆏലאൕࠃDNAۥ։࣫ࠏΔᙞ૪ڕ۶ܓشϙInstrument Setting (Ꮪᕴᆜ)ϙפ౨ΔኙᇠᏚᕴၞ۩ᆜ່ᚌ֏Ζኙ൞ۖߢΔ൞ڇᖙ܂ຍࠄޡᨏழΔؘႊጐױ౨ਊᅃႉݧၞ۩Ζ4.1 ࿆ᙕၞԵBD FACSDiviaຌ᧯1 ၲඔሽᄭΖሽᄭጸۥۯ࣍าઽᏚ׳ছֱΖ2 ၲඔሽᆰΖோ૿ုםᇆਢAdministratorΔയᒘ࿆ᙕխᙁԵBDISΔਊENTERΖ3 ၲඔ BD FACSDiva ຌ᧯Ζڇຌ᧯࿆ᙕխΔᙁԵࠌشृټጠ֗യᒘΖΰಖ٣ᇿጥعᓮࠩᦞയᒘΔࠏڕPIname_YournameαNOTICEΚ܃ऱࢬڶኔ᧭ᇷறຟലঅఎڇ܃۞աऱ࿏़ၴᇙΔࠡהش֪լ౨ၞԵΖ4 ᒔࡳຌ᧯ፖาઽᏚݙګຑᒵΖݙګຑᒵ৵ΔڇInstrumentီ࿗Հֱᄎ᧩قInstrumentConnectedΖڕڶؘΔױរᚰInstrumentΰαီ࿗Δᨠኘຌ᧯ፖาઽᏚਢܡݙګຑᒵΖ5 ᙇᖗϘInstrument>Instrument ConfigurationϙࡎחΔژᏚᕴᆜΖݺଚڇڼലDNA։࣫ழᏁᏺףᑇΔڕPIΕDAPIףࠩڶᏚᕴᆜխΖᓮ٣DuplicateԫᄅᏚᕴᆜΕאDNA_001ࢨࠡהזᇆࡎټհΔਊOK৵Ζ6٦ڇParameterֱխΔਊAddᏺףᑇΔ৬ᤜPIشBlue (Laser)ΕC(Detector)ࠐೠྒྷΔڕՀቹΖݙګ৵ΔਊOKΖ4.2 ᄅ৬ԫኔ᧭DNA Analysis7ขسԫଡFolderΔ٣אᄶቕរᙇ܃ऱᇷறᑒΔྥ৵រᚰFolderᑑΖ8ขسԫଡExperimentΔ٣אᄶቕរᙇ܃ᄅᏺऱFolderΔྥ৵រᚰExperimentᑑΖࢨൕᘛኟՂֱᙇᖗϘExperiment>>New Experimentϙࠐᄅᏺኔ᧭Ζࠀڇᙟ৵נऱψExperiment templatesωֱխΔᙇشψBlank Experiment with Sample TubeωΖ9ޓټפ౨ΖኙFACSDivaຌ᧯ቃऱᚾ݈ټጠΔઃױૹᄅࡎټΖڇោᥦᕴխᚨشᄶቕរᚰ”Blank Experiment with…” ኔ᧭ᚾ݈Δྥ৵ڇInspectorֱխᙁԵ”DNA_001”ڗցΔਊEnterࠐࡎټڼᄅ৬ऱኔ᧭ᚾ݈Ζ10” DNA_001” ᚾ݈աܶڶԫSpecimen_001Δڕ࣠܃ऱኔ᧭ᚾ݈խڶSpecimenΔរᚰSpecimenᑑᄅᏺհΖޢଡSpecimenᚨ۟֟ڶԫᇢጥTube_001ΔױរᚰSpecimen_001ছЀᇆ୶ၲΔࠌױߠΔڕՀቹΖޢଡ़ػTubeֱؐڶԫઌኙᚨψਐقᒢᙰωΔԫՀ։࣫ᑌழΔؘႊشᄶቕរᚰΔࠌࠡܧጸۥΔթ౨ၞ۩ᏚᕴᑇᆜΖ4.3 ᘛ٠ᑇᙇᖗ11ڇោᥦᕴխאᄶቕᙇᖗڼ”DNA_001”ᚾ݈Հऱ”InstrSettings” (Ꮪᕴᆜ)Ζᚰ”Inspector”ီ࿗ᄚऱ”Parameters”૿Ζش֪ױڇParameters૿ՂΔװೈڍਲऱᑇΔݺଚڇڼᒭװೈPerCP-Cy5-5ΔPE-Cy7ΔAPCΔAPC-Cy7ଡᘛ٠ᑇΔఎՀFITCࡉPEᘛ٠ᑇΖ12 Parameters૿ڕ׳Ζᚰီ࿗ᄚऱϙAdd or DeleteϙࠐᏺףࢨܔೈᑇΖڕᏁޓޏᑇΔױរᚰᑇֱխ׳ೡᒢᙰΔڕPerCP-Cy5-5ױޏګPerCPࢨPIΖ13ڇڼࡳPILINܧֱڤΔࠀᏺףPI-WᑇΔڕՀቹΖ4.4 ૠGlobal Sheetᛧ࠷ᒤء14ڇ़ػ”G lobal Sheet1”ՂΔ٣ᙇᖗϙDot PlotϙՠࠠᙇႈΔࠀڇᛧ࠷ᒤءរᢄ፹ࠟଡཋរቹΖΰ1αFSC-A vs SSC-Aΰ2αPI-W vs PI-AΔᙇᖗϙHistogramϙՠࠠΔࠀڇᒤءរᢄ፹ԫଡཋរቹΰ3αPI-A histogramΖ׳ᚰቹݮ݄ᑑၗΔױאଥޏቹݮՂऱ݄ᑑᑇΖ4.5 ່ᚌ֏Ꮪᕴᆜ່ᚌ֏ᏚᕴᆜΰΰOptimize SettingsαءᆏխΔലຏመאՀնଡޡᨏΔᖂᏚᕴऱ່ᚌ֏ᆜΖᓳᆏࢳଖΔᆜPI=5,000ࡳऱDNAᘛ٠ᑇᓳᆏ٠ሽᏺጥሽᚘଖาઽᆢ᧯॰ᓳᆏFSCࡉSSCᆜࠡהᘛ٠றᑇᓳᆏ٠ሽᏺጥሽᚘଖΰoptionalᠨۥαאൕࠃDNAᠨۥ։࣫ࠏΔലࠌشאՀᘛ٠றኙᅃᑌጥΚΰ1αUnstimulatedኙᅃΔPI Δΰ2αStimulated PositiveኙᅃΔPIΔΰ3αStimulated PositiveኙᅃΔPI and Anti-H3 FITC ᠨΖެࡳࢳᑇPI15٣ᒔᎁោᥦᕴխΔጸۥऱᛧ࠷ਐقΰαۯ࣍ϘTube_001ϙΙᚰ ”Instrumentϙီ࿗խऱϙThresholdϙ૿ΖڇڼࡳࢳଖᑇPIΔࠀᓳᆏPIࢳଖ5,000ΖࢳଖऱᆜਢԱඈೈॺؾᑑॾᇆऱიឫΖ16DNA։࣫ආLowੌຒΖ17ലອࢤኙᅃጥᇘԵሉᑌകΖᚰϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ᄚऱϙAcquireϙΖڼਐחᄎࠌຌ᧯ܛழܧᏚᕴࢬྒྷऱาઽᇷறΔ܀լ܂ಖᙕΰRecordαΖᓳᆏPIሽᚘଖVoltageΔࠌG0าઽऱPI-Aଖપڇ50ΰX1000αۯᆜΖาઽᆢ᧯॰18ڇGlobal Sheet1ՠ܂ቹՂΔᙇᖗڍߡݮഎᙇՠࠠΔࠀڇPI-W vs PI-AቹՂᢄഎנψSingle CellsωۯᆜΔݮګψP1॰ωΖψP1॰ωᙇࡳ৵Δ॰փาઽᄎ۞೯ܧۥΖ൞ױאฝ೯،ΔࢨਢࣆڵϘ॰ϙՂऱٚ۶ԫ൳ࠫរΔࠐޏ᧢Ϙ॰ϙऱՕ՛ࡉݮणΖᒭΖᓳᖞFSCፖSSCሽᚘ19ᚰ ”Instrumentϙီ࿗խऱϙParametersϙ૿ΖᓳᆏFSCࡉSSCሽᚘଖΔຏൄ٣ᓳᆏFSCΔ٦ᓳᆏSSCΖᓳᆏFSCࡉSSCሽᚘଖVoltageΔࠌJurkatาઽගᆢΰܛદۥาઽᆢα౨ᗑمګᆢΔڕՀቹΖݙګ৵Δ٦ਊԫڻAcquireױխַᛧ࠷Ζ20شᄶቕរᙇPI-AऴֱቹΖਊᄶቕ׳ᙇᖗϙShow Population ϙࡎחΙ൷ထᙇᖗϘP1ϙΔڕቹΖຍᑌԫࠐΔPI-AऴֱቹݮՂ༉᧩قP1 JurkatาઽගᆢΖ21პᓳᆏࢳଖΖᚰϘAcquisition DashboardϘီ࿗ᇙऱAcquireΖᏁழΔᚰ ”Instrumentϙီ࿗խऱϙThresholdϙ૿Ζڇڼᔞᅝچ༼PIࢳଖΔאඈೈาઽᅷׂऱեឫΖᓳᆏFITCᘛ٠٠ሽᏺጥ(optional for FITC/PI)22൞ױאڇሎ۩ψ़ػኙᅃጥωழΔᓳᖞڇϙInstumentϙီ࿗ऱ٠ሽᏺጥሽᚘଖVoltageΔאᛀFITC۞࿇ᘛ٠Ζല़ػኙᅃጥᇘԵሉᑌകΖ٣ᒔᎁោᥦᕴխΔጸۥऱᛧ࠷ਐقΰαۯ࣍ϘTube_001ϙᚰϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ᄚऱϙAcquireϙΖ23ᏁழΔᚰ ”Instrumentϙီ࿗խऱϙParameterϙ૿ΖᓳᖞFITC٠ሽᏺጥऱሽᚘଖΔࠌອࢤาઽऱFITCᘛ٠ᑇॾᇆ᧩قڇรԫ్ኙᑇփΰڕቹαΖݙګ৵Δ٦ڻᚰϘAcquisition Dashboardϙီ࿗ᇙऱϘAcquireϙࠐխַᛧ࠷Ζ24൞բݙګ១࣐DNAᠨۥ։࣫ऱᏚᕴᆜΖױ٨ٱϙExperiment ϙᚾ݈ՀऱᏚᕴᆜΖ׳ᚰኔ᧭݈֮ٙխϙInstr SettingsϙቹقΔࠀڇInpectorီ࿗խΔᙇᖗϘPrintϙ٨ٱᆜΔױ၀ࠩኔ᧭ಖءխΖ4.6 ಖᙕኔ᧭ᑇᖕᄷໂՠ܂25ࡎټᑌፖᇢጥټΖቃᙁנᚾټSpecimen_001_Tube_001Ζױࠉڼঞ൞ऱᑌߓอ֏ࡎټΖאᄶቕរᙇSpecimen_001ΔࠀڇInspectorֱխᙁԵᄅټΔڕSample_0831ΔਊEnterΖ26ٵΔאᄶቕរᙇTube_001ΔࠀڇInspectorֱխᙁԵᄅNameټΔڕAntiH3_PI_001ΔਊEnterΖࣹრΚDivaຌ᧯լױආش՛ᑇរᅝᚾټΖ27 ᑑಖLabelsΖᙇᖗϘExperiment>Experiment LayoutϙࡎחΖڇϙExperiment Layoutϙီ࿗ՂΔ൞ױאᆜᑇټጠΔڕՀቹΖຍࠄټጠലנڇቹݮऱ݄ᑑၗΔא֗ࢬڶอૠ࣠խΖڇϙLable (ᑑಖ)ϙ૿ՂΔٺଡᘛ٠ᑇᙁԵᑑಖڗցΖאᄶቕរᙇFITCᑇΔڇLabel᥏ۯՂԵᑑق֮ڗΔڕAnti_Histone H3Ζࠉݧലࢬڶऱᘛ٠ᑇᑑقࣔػΖ28 ڇϙExperiment Layoutϙီ࿗ᇙϙAcquisition (ᛧ࠷)ϙ૿ՂΔϘCD3_CD4_001ϙආႃጥΔެࡳಖᙕาઽ᜔ᑇΖڇϙEvents to RecordϙऱՀࢮפ౨।խᙇᖗϘ20,000ϙΔࢨ֫ՠԵࡳᑇڗ৵ΔᚰϘOKϙΖ29 ڇAcquisitionDashboardီ࿗ΔᒔᎁආشLowੌຒΖࠀࠉኔ᧭Ꮑޣ۞۩ᙇࡳψStoppinggateω֗ψStorage geteωΖၲࡨಖᙕᇷற30ᇷறᛧ࠷መ࿓խΔᓮᨠኘGlobal sheet1խPI-W/PI-AቹݮP1॰എᙇᔞᅝፖܡΖڕڶؘΔױฝ೯P1॰ۯᆜΖ31 ലᇘڶAnti-H3 FITC/PIᘛ٠ۥऱSample_001ᑌጥᇘԵሉᑌകΖڇោᥦᕴխΔᒔᎁጸۥऱᛧ࠷ਐقΰαۯ࣍ϘAntiH3_PI_001ϙΖױ٣ᚰϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ՂऱϙAcquire ϙΔৱาઽၲࡨڇቹݮՂנΔࠀᒔᎁP1ۯᆜإᒔ৵ΔᚰϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ՂऱϙRecord ϙΖಖᙕݙ20,000ଡาઽ৵ΔലᑌጥൕሉᑌകՂ࠷ՀΖ32 ۞೯֒ᕨᇢጥټΖڇϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ՂᚰϙNextϙΔᄅ৬รԲଡϙTubeϙΖࣹრΚڼழᄅ৬ऱϙTubeϙ۞೯ࡎټϘAntiH3_PI_002ϙΖڇោᥦᕴխΔᒔᎁጸۥऱᛧ࠷ਐقΰαۯ࣍ϘAntiH3_PI_002ϙΖലรԲଡᑌጥᇘԵሉᑌകΖױ٣ᚰϙAcquisition Dashboardϙီ࿗ՂऱϙAcquire ϙΔৱาઽၲࡨڇቹݮՂנΔࠀᒔᎁP1ۯᆜإᒔ৵Δ٦ᚰϙRecord ϙၲࡨಖᙕΖ33 ૹՂ૪։࣫ޡᨏΔ۟։࣫ݙࢬڶᛀΖ。
肝素抗凝:通常用肝素粉剂(每mg含100—125U)配成1g /L肝素水溶液,即每ml含肝素1mg。
取1ml可使10ml血液不凝固。
EDTA抗凝:EDTA对血液中钙离子有很大的亲和力,能与钙离子络合而使血液抗凝。
每0.8mg可抗凝1ml血液。
除不能用于血浆中钙、钠及含氮物质之测定外,适用于多种抗凝。
ICSH 、ICTH 推荐使用 3.13% (0.109M与草酸钠相比枸橼酸钠的优越性:首先是Ⅴ因子和Ⅷ因子在枸橼酸钠中更为稳定。
枸橼酸钠抗凝的血浆做 APTT 试验,其对肝素的敏感性远远高于草酸盐抗凝血浆。
草酸盐的缺陷:与钙形成不溶性沉淀物肝素可与 AT- Ⅲ作用并抑制许多凝血反应EDTA 能抑制或干涉纤维蛋白凝块形成时纤维蛋白单体聚合,且对因子Ⅴ保护性差,故草酸盐与肝素这二种抗凝剂除血小板试验外,一般不用。
柠檬酸的枸橼酸根与血中钙离子形成难解离的可溶性络合物,使血中钙离子减少,缓解钙离子促使血液凝固的作用而阻止血液凝固。
仅用于体外抗凝血。
常用的血液抗凝剂1、1%肝素溶液0.1ml于试管内,旋转试管,使溶液均匀浸湿试管内壁,放入80~100℃烘箱烤干,每管能使5~10ml血液不凝。
急性血压实验时可在充满生理盐水的动脉套管内注入肝素20~25mg。
体内抗凝:500~1000u/kg。
市售的肝素注射液每1ml含肝素12500u(相当于肝素钠125mg,即1mg相当于100u)。
应置冰箱内保存。
2、枸橼酸钠 3.8%的枸橼酸钠溶液1份可使9份血液不凝,用于红细胞沉降速率的测定。
因其抗凝血作用较弱而碱性较强,不适用于供化验用的血液样品。
做急性血压实验时则用5~7%的枸橼酸钠溶液。
3、草酸钾常用于供检验用血液样品的抗凝。
在试管内加饱和草酸钾溶液2滴(或10%溶液0.2ml),轻轻敲击试管,使溶液分散到管壁四周,置80℃以下的烘箱中烤干(烘烤温度过高,可使草酸钾分解为碳酸钾而失效),每管能使3~5ml血液不凝。
常用橡胶及溶剂的溶解度参数及适用橡胶在橡胶工业中,溶解度参数是用来衡量其中一种溶剂对橡胶的溶解能力的指标。
了解橡胶及溶剂的溶解度参数对于正确选择合适的溶剂以及进行橡胶制品的制造和加工具有重要意义。
下面是几种常用橡胶及其溶解度参数以及适用的橡胶的介绍。
1. 丁苯橡胶(BR):丁苯橡胶属于不饱和橡胶,具有良好的耐久性和抗拉强度。
它可以溶解于多种溶剂中。
丁苯橡胶的溶解度参数为δ=8.2(Mpa1/2),适用的溶剂有丙酮、甲乙醇等。
2. 丁腈橡胶(NBR):丁腈橡胶是一种抗油性橡胶,适用于石油和润滑油等油性环境。
丁腈橡胶的溶解度参数为δ=8.9(Mpa1/2),适用的溶剂有苯、二甲苯等。
3. 氯丁橡胶(CR):氯丁橡胶是一种具有良好耐候性和耐油性的橡胶。
它的溶解度参数为δ=9.0(Mpa1/2),适用的溶剂有甲酮、氯仿等。
4. 丁基橡胶(IIR):丁基橡胶是一种饱和橡胶,具有优异的耐热性和耐化学品性能。
它的溶解度参数为δ=8.1(Mpa1/2),适用的溶剂有石油醚、石油醚和石油醚。
5. 乙丙橡胶(EPM)和乙烯丙烯橡胶(EPDM):乙丙橡胶和乙烯丙烯橡胶是一种具有优异的耐候性和耐化学品性能的橡胶。
它们的溶解度参数分别为δ=8.8(Mpa1/2)和δ=8.9(Mpa1/2),适用的溶剂有甲苯、二甲苯等。
需要注意的是,虽然这些溶剂在适用橡胶中可以起到溶解的作用,但溶解度参数并不是唯一确定溶剂适用性的指标。
在实际应用中,还需要考虑其他因素,如溶剂对橡胶材料的膨胀性、溶剂的毒性和环境影响等。
另外,不同的橡胶材料具有不同的溶解度参数,可以根据需要选择适合的橡胶材料和溶剂。
正确选择溶剂可以提高橡胶制品的加工效率和质量,并在橡胶工业中起到重要的作用。
所以,在进行橡胶制品制造和加工时,需要仔细研究和选择溶剂,以确保制造出高质量的橡胶制品。
甘蓝型油菜漆酶基因家族成员表达模式及与茎秆抗折力的关联分析目录一、内容概要 (2)1. 研究背景 (2)2. 研究目的与意义 (3)3. 研究方法与实验设计 (4)二、甘蓝型油菜漆酶基因家族成员概述 (5)1. 漆酶基因家族的定义与分类 (7)2. 甘蓝型油菜漆酶基因家族成员的筛选与鉴定 (7)3. 漆酶基因家族成员的基本信息 (9)三、甘蓝型油菜漆酶基因家族成员表达模式分析 (10)1. 表达谱数据获取与处理 (11)2. 表达模式可视化与统计分析 (12)3. 表达模式聚类与功能注释 (14)4. 表达模式在不同组织及发育阶段的比较 (15)四、甘蓝型油菜漆酶基因家族成员与茎秆抗折力的关联分析 (16)1. 材料准备与实验设计 (17)2. 茎秆抗折力测定方法 (18)3. 基因表达量与茎秆抗折力的相关性分析 (18)4. 基因编辑技术验证 (20)五、结论与讨论 (21)1. 甘蓝型油菜漆酶基因家族成员表达模式的比较分析 (23)2. 漆酶基因家族成员与茎秆抗折力的关联机制探讨 (23)3. 研究的创新点与不足之处 (25)六、展望 (26)1. 深入挖掘漆酶基因家族在甘蓝型油菜中的功能与应用 (27)2. 探讨漆酶基因家族与植物其他性状的关联分析 (28)3. 为甘蓝型油菜的高产、抗逆等育种目标提供新的思路与策略..30一、内容概要甘蓝型油菜漆酶基因家族的鉴定与生物信息学分析:通过基因序列比对、生物信息学软件分析等手段,鉴定甘蓝型油菜漆酶基因家族的成员,并对其基因结构、蛋白质特性等进行深入研究。
表达模式分析:利用实时荧光定量PCR等技术,分析不同组织部位、不同发育阶段以及不同环境条件下甘蓝型油菜漆酶基因家族成员的表达情况,探究其表达模式。
茎秆抗折力测定:通过物理测试方法,测定甘蓝型油菜茎秆的抗折力,分析其力学特性。
关联分析:结合表达模式分析结果和茎秆抗折力数据,分析甘蓝型油菜漆酶基因家族成员的表达与茎秆抗折力之间的关联性,探讨其在提高茎秆抗折力方面的作用机制。
不同配位原子配位能力强弱的判断下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。
文档下载后可定制随意修改,请根据实际需要进行相应的调整和使用,谢谢!并且,本店铺为大家提供各种各样类型的实用资料,如教育随笔、日记赏析、句子摘抄、古诗大全、经典美文、话题作文、工作总结、词语解析、文案摘录、其他资料等等,如想了解不同资料格式和写法,敬请关注!Download tips: This document is carefully compiled by theeditor.I hope that after you download them,they can help yousolve practical problems. The document can be customized andmodified after downloading,please adjust and use it according toactual needs, thank you!In addition, our shop provides you with various types ofpractical materials,such as educational essays, diaryappreciation,sentence excerpts,ancient poems,classic articles,topic composition,work summary,word parsing,copy excerpts,other materials and so on,want to know different data formats andwriting methods,please pay attention!探究配位化学:不同配位原子的配位能力比较与分析在化学领域,配位化合物的形成是基于金属离子与配体之间的配位键。
极性吸附剂:硅胶、氧化铝非极性吸附剂:活性炭对极性物质亲和力强对非极性成分吸附强溶剂极性增强溶剂极性增强?吸附剂对溶质的吸附力降低吸附剂对溶质的吸附力增强溶质可被极性强的溶剂洗脱溶质可被极性弱的溶剂洗脱极性及强弱判断:R-COOH﹥Ar-OH﹥R-OH﹥R-NH-﹥R-CO-NH-﹥R-CHO﹥R-CO-R?﹥R-COO-R?﹥R-O-R?﹥R-X?﹥R-H溶剂:介电常数ε增加?,极性增加?环己烷(1.88)苯(2.29)无水乙醚(4.47)氯仿(5.20)乙酸乙酯(6.11)乙醇(26.0)甲醇(31.2)水(81.0)亲脂性:石油醚>环己烷>苯>氯仿>乙醚>乙酸乙酯>丙酮>乙醇>甲醇>水各种溶剂在聚酰胺柱上的洗脱能力:水<甲醇<乙醇<氢氧化钠水溶液<甲酰胺<二甲基甲酰胺<尿素水溶液单糖结构中反应活泼性顺序:端基C原子>伯C>仲C按苷键原子的不同,酸水解由难到易程度为:C苷>S>O>N苷呋喃糖苷较吡喃糖苷的水解速率大50~100倍酮糖较醛糖易水解吡喃糖苷中,吡喃环C5上的取代基越大越难水解2-去氧糖>2-羟基糖>2-氨基糖易难芳香烃比脂肪烃易水解苷元为小基团者,苷键横键的比苷键竖键的易于水解,因为横键上原子易于质子化苷元为大基团者,苷键竖键的比苷键横键的易于水解,这是由于苷的不稳定性促使水解碱水解反应:速度难易与C7取代基有关:7-OH香豆素<7-OCH3香豆素<香豆素萘醌和蒽醌的苯环上的羟基酸性:β-羟基>α-羟基游离蒽醌的酸性强弱顺序为:含COOH>2个以上β-OH>1个β-OH>2个以上α-OH>1个α-OH1,8>1,4>1,5??答案:E>B>C>A>D>F黄酮类化合物取代基对溶解度的影响:羟基数目越多,水中溶解度增加;羟基甲基化后,在有机溶剂中溶解度增加。
有机试剂极性大小下面这份溶剂极性表列出了常用有机溶剂极性顺序,并有常见溶剂的粘度、沸点、吸收波长等物理参数,在进行薄层色谱柱(TLC)洗脱的时候时很有帮助。
可能有不准确的,希望在留言处给予更正。
化合物名称极性粘度沸点吸收波长i-pentane(异戊烷) 0 - 30 -n-pentane(正戊烷) 0 0.23 36 210 Petroleum ether(石油醚) 0.01 0.3 30~60 210 Hexane(己烷) 0.06 0.33 69 210 Cyclohexane(环己烷) 0.1 1 81 210 Isooctane(异辛烷) 0.1 0.53 99 210 Trifluoroacetic acid(三氟乙酸) 0.1 - 72 - Trimethylpentane(三甲基戊烷) 0.1 0.47 99 215 Cyclopentane(环戊烷) 0.2 0.47 49 210 n-heptane(庚烷) 0.2 0.41 98 200 Butyl chloride(丁基氯; 丁酰氯) 1 0.46 78 220 Trichloroethylene(三氯乙烯; 乙炔化三氯) 1 0.57 87 273 Carbon tetrachloride(四氯化碳) 1.6 0.97 77 265 Trichlorotrifluoroethane(三氯三氟代乙烷) 1.9 0.71 48 231 i-propyl ether(丙基醚; 丙醚) 2.4 0.37 68 220 Toluene(甲苯) 2.4 0.59 111 285 p-xylene(对二甲苯) 2.5 0.65 138 290 Chlorobenzene(氯苯) 2.7 0.8 132 -o-dichlorobenzene(邻二氯苯) 2.7 1.33 180 295 Ethyl ether(二乙醚; 醚) 2.9 0.23 35 220 Benzene(苯) 3 0.65 80 280 Isobutyl alcohol(异丁醇) 3 4.7 108 220 Methylene chloride(二氯甲烷) 3.4 0.44 240 245 Ethylene dichloride(二氯化乙烯) 3.5 0.78 84 228 n-butanol(正丁醇) 3.7 2.95 117 210 n-butyl acetate(醋酸丁酯;乙酸丁酯) 4 - 126 254 n-propanol(丙醇) 4 2.27 98 210 Methyl isobutyl ketone(甲基异丁酮) 4.2 - 119 330 Tetrahydrofuran(四氢呋喃) 4.2 0.55 66 220 Ethyl acetate(乙酸乙酯) 4.30 0.45 77 260 i-propanol(异丙醇) 4.3 2.37 82 210 Chloroform(氯仿) 4.4 0.57 61 245 Methyl ethyl ketone(甲基乙基酮) 4.5 0.43 80 330Dioxane(二恶烷; 二氧六环; 二氧杂环己烷) 4.8 1.54 102 220Pyridine(吡啶) 5.3 0.97 115 305Acetone(丙酮) 5.4 0.32 57 330 Nitromethane(硝基甲烷) 6 0.67 101 330Acetic acid(乙酸) 6.2 1.28 118 230 Acetonitrile(乙腈) 6.2 0.37 82 210Aniline(苯胺) 6.3 4.4 184 -Dimethyl formamide(二甲基甲酰胺) 6.4 0.92 153 270Methanol(甲醇) 6.6 0.6 65 210Ethylene glycol(乙二醇) 6.9 19.9 197 210Dimethyl sulfoxide(二甲亚砜DMSO) 7.2 2.24 189 268Water(水)10.2 1 100 268下图是混合有机溶剂极性顺序(由小到大,括号内表示的是混合比例)一:溶剂极性参数表,方便以下比较展开剂。
几种酶的比较限制性核酸内切酶(以下简称限制酶):限制酶主要存在于微生物(细菌、霉菌等)中。
一种限制酶只能识别一种特定的核苷酸序列,并且能在特定的切点上切割DNA分子。
是特异性地切断DNA链中磷酸二酯键的核酸酶(“分子手术刀”)。
发现于原核生物体内,现已分离出100多种,几乎所有的原核生物都含有这种酶。
是重组DNA技术和基因诊断中重要的一类工具酶。
例如,从大肠杆菌中发现的一种限制酶只能识别GAATTC序列,并在G和A之间将这段序列切开。
目前已经发现了200多种限制酶,它们的切点各不相同。
苏云金芽孢杆菌中的抗虫基因,就能被某种限制酶切割下来。
在基因工程中起作用。
DNA连接酶:主要是连接DNA片段之间的磷酸二酯键,起连接作用,在基因工程中起作用。
DNA聚合酶:主要是连接DNA片段与单个脱氧核苷酸之间的磷酸二酯键,在DNA复制中起做用。
DNA聚合酶只能将单个核苷酸加到已有的核酸片段的3′末端的羟基上,形成磷酸二酯键;而DNA连接酶是在两个DNA片段之间形成磷酸二酯键,不是在单个核苷酸与DNA片段之间形成磷酸二酯键。
DNA聚合酶是以一条DNA链为模板,将单个核苷酸通过磷酸二酯键形成一条与模板链互补的DNA链;而DNA连接酶是将DNA双链上的两个缺口同时连接起来。
因此DNA连接酶不需要模板。
RNA聚合酶(又称RNA复制酶、RNA合成酶)的催化活性:RNA聚合酶以完整的双链DNA为模板,转录时DNA的双链结构部分解开,转录后DNA仍然保持双链的结构。
真核生物RNA聚合酶:真核生物的转录机制要复杂得多,有三种细胞核内的RNA聚合酶:RNA 聚合酶I转录rRNA,RNA聚合酶II转录mRNA,RNA聚合酶III转录tRNA和其它小分子RNA。
在RNA复制和转录中起作用。
反转录酶:RNA指导的DNA聚合酶,具有三种酶活性,即RNA 指导的DNA聚合酶,RNA酶,DNA指导的DNA聚合酶。
在分子生物学技术中,作为重要的工具酶被广泛用于建立基因文库、获得目的基因等工作。