蓝莓组织培养
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《蓝莓快繁及诱导加倍技术的研究》一、引言蓝莓作为一种营养丰富、口感独特的水果,深受消费者喜爱。
然而,由于蓝莓的繁殖周期长、种植成本高,导致其市场价格较高,影响了蓝莓的普及程度。
因此,开展蓝莓快繁及诱导加倍技术的研究具有重要的实际意义。
本文旨在研究蓝莓快繁和诱导加倍技术的关键技术,为蓝莓的高效种植和大规模推广提供理论依据。
二、蓝莓快繁技术研究1. 材料与方法本研究采用组织培养法进行蓝莓快繁。
选取生长健壮、无病虫害的蓝莓母株作为外植体,通过消毒处理后,将其切割成适当大小的茎段或叶片,接种于含有适宜培养基的组培瓶中。
2. 培养条件培养室温度控制在(25±2)℃,光照强度为2000 lx,光照时间为16小时/天。
每隔一段时间进行移栽换瓶处理,同时进行常规的营养元素添加。
3. 结果与讨论(1)经过不断试验优化,我们发现以MS培养基为基础的培养基配方能够有效地促进蓝莓的外植体生长和繁殖。
同时,适宜的生长环境对蓝莓的快繁也有重要影响。
(2)通过观察和记录蓝莓植株的生长情况,我们发现快繁技术可以显著缩短蓝莓的繁殖周期,提高繁殖效率。
此外,通过多次继代培养,可以实现蓝莓植株的遗传稳定性。
三、蓝莓诱导加倍技术研究1. 材料与方法本研究采用植物生长调节剂进行蓝莓诱导加倍。
选取生长旺盛的蓝莓组培苗作为实验材料,通过施加适宜浓度的植物生长调节剂进行诱导处理。
2. 诱导条件诱导处理后,将组培苗放置在适宜的生长环境下进行培养。
定期观察并记录组培苗的生长情况及染色体加倍情况。
3. 结果与讨论(1)通过实验发现,适宜浓度的植物生长调节剂能够有效地诱导蓝莓组培苗的染色体加倍。
在适宜的温度、光照等条件下,能够促进加倍细胞的分裂和生长。
(2)在诱导过程中,我们观察到加倍后的蓝莓植株具有更强的生长势和抗病性。
此外,经过多次实验和筛选,我们可以确定最佳的植物生长调节剂浓度和处理时间。
四、结论与展望本文研究了蓝莓快繁及诱导加倍技术的关键技术,通过组织培养法和植物生长调节剂的应用,实现了蓝莓的高效繁殖和染色体加倍。
基本内容:研究哪种植物生长激素对于蓝莓组培苗生根及生长最有利。
解决的主要问题:1.外植体的灭菌。
2.确定培养基中除植物生长激素以外的成分。
3.得出到底哪种植物生长激素对蓝莓组培苗的生根及生长最有利。
四、研究的方法与技术路线实验采将用的培养基是在MS和WPS基础上改良的WPM培养基分别加入不同质量浓度的NAA。
从中选择最适合幼芽诱导分化、增殖生根的培养基。
培养基pH4.0~5. 0在1219、131kpa的条件下灭菌20min。
培养温度(24±2),光照10~12h/d,光照强度为1200"16001xo五、预期的研究结论得出什么样的植物生长素配比使蓝莓组培苗更快的生根与更好的生长。
六、研究的总体安排与进度七、主要参考文献[1] 植物激素对杉木组培苗增殖和生根的影响[J].韦如萍,胡徳活,郑会全,晏姝,王润辉.广东林业科技.2013(04)[2] 蓝浆果叶片高效再生体系的建立[J].陶建敏,耿其芳,庄智敏,刘捷,章镇,蔡斌华.西北植物学报.2006(03)[3] 蓝莓芽诱导与再生研究[J].董朝莉.广西农业科学.2009(03)[4] 不同基质中IBA与NAA对矮牵牛杆插生根的影响[J].冯嘉現,邹志荣,文颖强,陈修斌.西北农林科技大学学报(自然科学版).2004(08)[5] 美国高灌蓝莓的引进及微体快繁技术研究[J].王侠礼,钟士传,郑亚琴,刘庆忠,赵红9军.中国种业.2003(12)[6]世界蓝莓生产历史与发展趋势[J].苑兆和.落叶果树.2003(01)[7]髙灌蓝莓微体繁殖技术研究初报卩].刘庆忠,赵红军,郑亚芹,王侠礼,石立岩.落叶果树.2001(05)[8]蓝莓高效丰产栽培管理技术[J].刘新,李晶,孟繁利住净飞.科技创新与应用. 2012(06)[9]不同火菌条件对蓝莓组培影响试验[J].李丽容,金开正,赖联森.中国园艺文摘. 2012(02)[10]南高丛蓝莓组培再生技术研究[J].王淑珍,来文国,周历萍,马华升.现代农业科技.2011(21)[11]蓝莓嫩枝杆插繁殖技术卩]・乌凤章,王贺新,陈英敏.东北林业大学学报.2007(11)[12]论林木的无性繁殖及其应用[J].赵勇刚,高克姝.山西林业科技.1996(03)[13]蓝莓苗木繁冇技术[J]・李灿,于强,沙玉芬.烟台果树.2006(04)3。
蓝莓的组织培养及快速繁殖姜冬;张利萍【摘要】对蓝莓的组培快繁技术进行了研究.结果表明:茎段在1/3MS + BA1.5 mg/L + NAA0.2 mg/L+ ZT1.5 mg/L 培养基上继代一次即可出苗,繁苗系数8倍以上;生根培养以1/4MS + IBA0.5 mg/L 培养基为最好,生根率达100%,并且每株可达5~10条根;移栽基质以腐苔藓为最好,成活率达80%以上% Cell culture was made of the blueberry for its rapid propagation .Orthogonal design indicated that 1/3MS + 6-BA 1 .5mg/L + NAA 0 .2mg/L + ZT 1 .5 mg/L was the best culture medium to induce proliferation buds from its tuber .Propagation coefficient was eight times .The best culture medium for multiplication of cluster shoots was 1/4 MS + IBA 0 .5 mg/L .Rooting rate 100% ,every plant root 5-10 ;When micropropagated plantlets with well-developed root systems were transferred to planting bed of moss in a greenhouse ,80% of the plantlets survived .【期刊名称】《中国林副特产》【年(卷),期】2012(000)004【总页数】3页(P12-14)【关键词】蓝莓;组织培养;快速繁殖【作者】姜冬;张利萍【作者单位】辽宁省森林经营研究所,辽宁丹东118002;辽宁省森林经营研究所,辽宁丹东118002【正文语种】中文蓝莓(Blueberry)又名越橘,属于杜鹃花科越桔属(Vaccinium),原产北美,多年生落叶或常绿果树,分为高丛蓝莓、矮丛蓝莓、半高丛蓝莓和兔眼蓝莓。
《不同品种蓝莓组培快繁及移栽驯化技术研究》一、引言蓝莓作为一种营养丰富、口感独特的水果,近年来在国内外市场上的需求量不断增长。
为了满足市场需求,蓝莓的种植技术和品种改良成为研究的热点。
组培快繁和移栽驯化技术作为蓝莓高效繁殖和栽培的重要手段,其研究具有重要意义。
本文以不同品种蓝莓为研究对象,对其组培快繁及移栽驯化技术进行研究,旨在为蓝莓的规模化种植和品种改良提供理论依据和技术支持。
二、材料与方法1. 材料本研究选取了不同品种的蓝莓作为试验材料,包括兔眼蓝莓、高丛蓝莓和半高丛蓝莓等。
同时,准备了组培快繁所需的试剂、仪器和设备,以及移栽驯化所需的土壤、肥料等。
2. 方法(1)组培快繁技术a. 外植体的选择与处理:选取健康、无病虫害的蓝莓嫩枝作为外植体,进行消毒、切割等处理。
b. 培养基的制备:根据蓝莓的生长需求,制备适宜的培养基,包括基本培养基、生长调节剂等。
c. 快繁过程:将处理好的外植体接种到培养基中,进行光照、温度等条件的控制,促进其快速生长。
(2)移栽驯化技术a. 炼苗:在组培室中,对快繁得到的蓝莓幼苗进行炼苗处理,使其适应外部环境。
b. 移栽:将炼苗后的蓝莓幼苗移栽到田间,进行土壤、肥料等的管理。
c. 驯化:通过逐步调整环境条件,使蓝莓幼苗逐渐适应新的生长环境。
三、结果与分析1. 组培快繁结果通过对外植体的选择与处理、培养基的制备以及快繁过程的控制,成功实现了不同品种蓝莓的组培快繁。
快繁得到的蓝莓幼苗生长健壮,根系发达,为后续的移栽驯化打下了良好的基础。
2. 移栽驯化结果通过炼苗、移栽和驯化等过程,蓝莓幼苗逐渐适应了新的生长环境,成活率较高。
同时,通过对土壤、肥料等的管理,促进了蓝莓的生长和发育,为规模化种植提供了技术支持。
3. 分析组培快繁技术能够快速、高效地繁殖蓝莓,缩短了繁殖周期,提高了繁殖效率。
同时,通过移栽驯化技术,使蓝莓幼苗能够快速适应新的生长环境,提高了成活率和生长质量。
此外,通过对土壤、肥料等的管理,能够促进蓝莓的生长和发育,提高其产量和品质。
蓝莓组织培养方案
1、植物介绍:
1)供试材料来源:
选取长势旺盛的幼嫩枝条,去除多余的叶片,切取除顶芽外的第3节~第10节作为外植体。
提供的材料希望老师可以从组培室提供。
2)技术路线:
外植体处理→接种→增殖培养→生根培养→移栽
2方法步骤:
1)外植体的剪取与消毒程序的筛选:
切取除顶芽外的第3节~第10节作为外植体段去叶片留叶柄→流水冲洗30min→75%酒精浸泡30s→0.1%升汞溶液消毒
3~7min→无菌水冲洗4~5次→用滤纸吸去水分→将茎段切成带有1~2个腋芽的小段
2)初代培养基的筛选:
选用MS为最基本的培养基,根据需要的不同,添加激素6-BA、
NAA、ZT。
3)增殖培养基的筛选:
以MS为基本培养基,按激素6-BA、NAA、ZT含量的不同,
诱导增殖培养基设4系列处理(培养基1~4号),生根培养
基设2系列处理(培养基5~6号),培养基配方表如下:
表中培养基蔗糖含量:分化和继代培养基为30g/L,pH值5.6~5.8,
在115MPa气压下灭菌20min。
4)生根培养基的筛选
不同的培养基进行生根的优势也不一样,根据大量的材料表明1/4 MS中的小苗生根均明显优于全量的MS培养基,所以用激素以IBA
0.5mg/L效果最好,生根情况好且所需天数也最短。
最适培养基应
该为1/4 MS+IBA 0.5mg/L
5)试管苗移栽试验:
当苗根长到1~1.5cm时,打开瓶盖,取出小苗,洗净培养基。
用多灵菌500~800倍浸泡30min左右,然后栽入0.1%高锰酸钾消毒过的苗床上。
苗床基质分5个处理,分别为沙:草炭土=1:1、沙:蛭石=1:1、纯沙、纯蛭石、腐苔藓。
(根据资料查找以腐苔藓为基质最好,成活率达80%以上,草炭土和沙半量也可达50%的成活率。
)。