云南松种子发芽试验
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高盐环境下矮壮素浸种对云南松幼苗的影响摘要:为提高云南松(Pinus yunnanensis Franch.)幼苗对高盐胁迫的适应能力,通过0~2 500 mg/L 的矮壮素对云南松进行浸种处理,研究其在高盐胁迫下(200 mmol/L NaCl)的生长情况。
结果表明,1 000 mg/L矮壮素浸种效果最好,与对照相比,发芽率增加79.25%,发芽势增加80.54%,茎粗增加22.35%,鲜重增加38.83%,干重增加21.55%,可溶性糖含量是对照的5.55倍,叶绿素总量增加15.42%,SOD活性是对照的2.90倍,MDA含量下降了28.90%。
表明矮壮素对云南松在高盐环境下的生长具有良好的协助作用。
关键词:矮壮素;浸种;云南松(Pinus yunnanensis Franch.);幼苗;高盐环境土壤盐碱化和次生盐碱化问题在世界范围内广泛存在,特别是干旱、半干旱地区问题更为严重,给农林生产带来了巨大的损失。
治理盐碱地的一个有效措施是选育能在盐碱地上生长的作物,通过其在盐碱地上的生长降低土壤盐分,增加土壤有机质含量,既可创造一定的经济价值,同时又具有重要的生态价值[1]。
云南松(Pinus yunnanensis Franch.)主要分布于海拔700~3 430 m的河谷或山地阳坡[2],在云南省种植范围广泛,抗逆性强,具有重要的经济价值。
矮壮素是一种延缓性植物生长调节剂。
研究证明,矮壮素可以增强幼苗的抗逆性[3,4],但对云南松抗盐方面的研究尚未见报道。
试验用矮壮素对云南松进行浸种,使萌动期的云南松种子接受抗盐锻炼,提高其在高盐环境下的形态、生理、生化适应性,以期找出矮壮素适宜的处理浓度和处理方法,为云南松在盐碱地的推广种植提供依据。
1 材料与方法1.1 材料云南松种子购于云南省林木种苗站,挑选子粒饱满、整齐一致的种子,清水洗净,5%的KMnO4消毒30 min,去离子水清洗3次,清水浸种4 h备用。
林木种子发芽测定的方法林木种子发芽测定是对林木种子质量的一种重要检测方法。
它可以直接检测种子的萌发力和发芽速度,为种子质量检测提供可靠数据,并为合理采种、育苗、造林等工作提供科学依据。
本文将介绍瓶芽法、毒药法、纸棉片法、田间播种法和断种法等种子发芽测试常用方法。
一、瓶芽法瓶芽法也称为瓶子装发法,是一种室内发芽法,适用于比较小型的种子。
该方法的实施步骤如下:1、垫上适量滤纸,滤纸具有一定的透气性,点一些水,让其湿透,但不能有积水。
2、种子摆放在滤纸上,为了避免种子直接接触滤纸而失去萌发能力,可以使用滤纸夹或有孔塑料袋,将种子包裹在其中,并使种子距离较近。
3、将滤纸包裹在黑布中。
4、把装有种子的瓶子放在25℃左右的恒温器内。
5、观察每天种子的发芽情况,记录下种子的发芽率和发芽时间。
二、毒药法毒药法是一种诱导种子发芽的方法,适用于较硬的种子,其主要步骤包括:1、选取种子:选用数量适当的种子,尽量避免坏种和小种。
2、准备毒药:将2,4-二氯酚混合于含糊不清的沙子中。
3、工具准备:必须戴手套,佩带口罩,不要把毒药接触到皮肤和口腔。
4、实施方法:将种子放到一定的温度下(20—25℃)温水浸泡。
浸泡2小时后洗干净,再用开盖罐或含糊不清沙子内均匀地涂上毒药,盖上盖子。
5、记录:观察种子发芽情况,记录并核算发芽率和发芽时间。
三、纸棉片法这是一种普遍应用于小种子的发芽测定法,其基本步骤如下:1、准备工作:选材、准备纸棉片等。
2、准备纸棉片:将纸棉片按种子数抽出,以预留有一半的棉絮为准。
3、种子处理:将种子放置于中央有棉吸附的纸棉片上。
4、加水:向种子处滴加适量水,使纸棉片湿润。
5、定温:将纸棉片放置在平板,置于温度适宜的环境中。
6、观察测定:在一定时间内,记录种子发芽情况,统计发芽率和发芽时间。
四、田间播种法田间播种法是通过对种子在自然环境中的发芽情况进行观察,以测定种子的发芽能力和发芽势,适用于目标种子扩繁和原生态采种的种质筛选。
植物种子发芽势检测技术的方法与结果分析植物种子发芽势是指种子具备生活力并具备发育成植物的潜能。
种子发芽势的大小直接影响着植物的增长和繁殖能力。
因此,准确快速地检测种子发芽势对于农业生产和植物科研具有重要意义。
本文将介绍植物种子发芽势检测的方法与结果分析。
一、传统的种子发芽势检测方法传统的种子发芽势检测方法主要包括发芽率检测和萌发指数检测。
1. 发芽率检测:该方法通过观察种子在一定环境条件下的发芽情况来评估种子发芽势。
实验中,将一定数量的种子放置在湿纸巾或培养皿中,并提供适宜的温、湿度条件。
经过一段时间后,记录发芽的种子数量,计算出发芽率。
但是,该方法存在着操作时间长、观察结果不准确等问题。
2. 萌发指数检测:该方法主要是通过观察种子发芽的快慢来评估种子发芽势。
实验中,将一定数量的种子划分成几个试管,每个试管中放置一定数量的种子。
然后,测量种子在一定时间内的萌发高度,计算出萌发指数。
但是,该方法需要大量的观察和测量工作,操作繁琐。
二、新型的种子发芽势检测技术随着科学技术的进步,新型的种子发芽势检测技术被广泛应用于农业和生态研究中。
以下是几种常见的新型技术:1. 电导率检测:该方法通过测量种子和环境之间的电导率来评估种子发芽势。
种子发芽过程中,种子细胞内的质子和金属离子会溶解到周围水分中,从而增加了水分的电导率。
通过测量水分中的电导率变化可以确定种子发芽的进程。
电导率检测方法具有操作简便、结果快速等优点。
2. 图像处理技术:该方法通过拍摄种子的图像并用图像处理技术分析图像来评估种子发芽势。
通过比较图像中种子的颜色、形状和大小等特征,可以判断种子的发芽状态。
这种方法具有非接触式、高效率的特点,适用于大规模的种子发芽势检测。
三、植物种子发芽势检测结果分析种子发芽势检测的结果分析可以帮助我们进一步了解种子的质量和生活力。
通过对种子发芽势的结果进行统计和比较,可以得出以下结论:1. 不同品种的种子发芽势存在差异:不同品种的种子在种子发芽势上存在着明显的差异。
林业田间试验设计
个人报告
报告名称:IBA浸种对云南松种子发芽的影响
组别:第五组
学号:20110455009
姓名:付义
班级:2011级林学1班
授课老师:李莲芳
IBA浸种对云南松种子发芽的影响
1试验的目的和意义
外源激素处理种子可以促进种子萌发和提高种子活力。
在室内条件下,用不同浓度的IBA溶液处理云南松种子,了解IBA浸种对云南松种子发芽率及其发芽过程的影响。
为云南松实生苗培育提供参考。
2试验设计
因素IBA含有8个水平,分别为0.0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6和0.7g/L,采用单因素试验设计(表1)。
表1 单因素试验设计
处理号 1 2 3 4 5 6 7 8
IBA浓度(g/L) 0.0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 实验共重复4次,每重复8个处理,每处理(1个发芽皿)置床100粒种子,每重复需种子800粒,4个重复共需种子4×8×100=3200粒。
(每小组做一个处理,4次重复)
3实验材料
(1)种子云南松种子采集于云南省昆明
纸、镊子和纱布等洗净后放入烘箱(130℃,1h)中烘干。
(3)摆种
(4)置床后管理、观测根据需要适时加水。
每三天观察一次发芽状况并做记录,最后一起观察胚根和胚轴长度。
5 结果与分析
5.1云南松种子发芽状况分析
统计各处理的平均胚根、及胚轴长,结果分别为1.4~1.9cm和3.5~4.3cm,且各处理的平均发芽率分别为0.76、0.75、0.65、0.78、0.66、0.51、0.49和0.61(表1)。
表 1 各处理相关指标的描述统计
胚根平均
标准误差0.059 0.067 0.073 0.071 0.062 0.066 0.072 0.081 中位数 1.8 1.695 1.2 1.2 1.34 1.21 1.7 1.32 众数0.8 3 0.4 0.4 1.12 1.73 0.6 1.32 标准差 1.036 1.166 1.153 0.936 0.998 0.945 1.005 0.850 方差 1.074 1.359 1.330 0.877 0.995 0.893 1.011 0.722 峰度0.275 -0.617 0.136 0.060 9.801 -0.060 -0.836 -0.498 偏度0.742 0.477 0.943 0.689 1.824 0.783 0.301 0.592 区域 5.3 5.38 4.8 4.3 8.8 4.02 4.4 3.31 最小值0.3 0.12 0.1 0 0.05 0.13 0.2 0.31 最大值 5.6 5.5 4.9 4.3 8.85 4.15 4.6 3.62 求和581.8 564.58 371.2 236.4 405.61 289.811 356.1 159.12 观测数304 300 252 175 263 204 197 110 最大(1) 5.6 5.5 4.9 4.3 8.85 4.15 4.6 3.62 最小(1) 0.3 0.12 0.1 0 0.05 0.13 0.2 0.31 置信度(95.0%) 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.2 变异系数54.1 61.9 78.3 69.3 64.7 66.5 55.6 58.8
胚轴平均 4.0A 4.1A 3.6AB 3.7AB 3.6AB 4.2A 3.9A 3.5B 标准误差0.064 0.082 0.094 0.090 0.079 0.094 0.094 0.122 中位数 3.9 4.1 3.7 3.8 3.61 4.225 3.9 3.62 众数 3.8 4 3.7 4.2 4.18 3.53 3.4 4.23 标准差 1.118 1.428 1.492 1.189 1.279 1.345 1.325 1.280 方差 1.250 2.039 2.226 1.413 1.636 1.810 1.757 1.639 峰度-0.418 0.170 -0.494 0.233 -0.613 0.633 -0.420 -0.287 偏度-0.184 -0.323 -0.237 -0.046 -0.027 0.307 0.110 -0.225 区域 5.2 7.7 6.5 6.6 5.92 8.7 6.5 6.4 最小值 1.2 0.1 0.4 0.8 0.54 1.05 1.1 0.32 最大值 6.4 7.8 6.9 7.4 6.46 9.75 7.6 6.72 求和1204.3 1224.06 916 653.3 954.85 847.85 767.8 386.6 观测数304 300 252 175 263 204 197 111 最大(1) 6.4 7.8 6.9 7.4 6.46 9.75 7.6 6.72 最小(1) 1.2 0.1 0.4 0.8 0.54 1.05 1.1 0.32 置信度(95.0%) 0.1 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 变异系数28.2 35.0 41.0 31.8 35.2 32.4 34.0 36.8
各处理发芽率0.76 0.75 0.65 0.78 0.66 0.51 0.49 0.61
图 1 各处理IBA浓度对发芽率的x、y散点图
由表1所得的结果,(1) 平均胚根和胚轴最大的分别是处理1(1.9cm)、处理2(1.9cm)(IBA浓度为0.0g/l和0.1g/l)和处理6(4.2cm) (IBA浓度为0.5g/l),各处理的发芽率由大到小分别是处理4>处理1>处理2>处理5>处理3>处理8>处理6>处理7。
说明0.1g/l的IBA对促进云南松种子发芽及云南松种子胚根的生长有明显作用,而0.5g/l的IBA对云南松种子胚轴的生长有明显的作用。
(2)以上两个指标变异系数最小的均为处理1(0.0g/l),分别为54.1和28. 2,其平均胚根、胚轴分别为1.9cm和4.0cm,这说明云南松种子发芽后的胚根、胚轴长都是较整齐的,而且是在较好水平上的整齐。
(3)从图一可以看出,随着IBA浓度的增大即从处理1~8,其发芽率呈现出从平缓到下降再升高再下降再升高的这样一个趋势,到处理4(0.3g/l)达到最大值(78%),说明0.3g/l的IBA对云南松种子的发芽率有显著的影响,但相对于其他处理来说,处理1和2的发芽率也是比较大的。
进一步对胚根和胚轴做处理之间的方差分析,了解其差异显著状况(表2)。
表 2 处理间测定指标的单因素方差分析
指标变异源离差平方和(ss)自由度(df)均方(ms) F p
胚根(cm)处理间83.979 7 11.997 11.131 .000 误差1936.863 1797 1.078
总数2020.842 1804
胚轴(cm) 处理间81.391 7 11.627 6.712 .000 误差3113.133 1797 1.732
总数3194.524 1804
由表2得方差分析结果,各处理的平均胚根(p≈0.00<0.01)和胚轴(p≈0.00<0.01)之间均达到了极显著的差异。
根据方差分析结果,对平均的胚根和胚轴进行多重比较。
(1)由表3得,处理1、2和7(A组别)的平均胚根极显著地高于处理 4 (B组别),而处理6、8、3和5的平均胚根与最大的A组别和最小的B组别没有明显的差异,为过渡的AB组别。
(2)由表4得,处理1、2、6和7(A组别)的平均胚轴极显著地高于处理8(B组别),而处理3、4和5的平均胚轴与最大的A组别和最小的B 组别无显著的差异,为过渡的AB组别。
综合以上所述,处理1(0.0g/l)的两个指标均为8个处理中较优的,且其发芽率也达到了76%,相对于全部的处理来说,是比较大的。
就分析结果而言,0.0g/l的IBA溶液即不加IBA的溶液不仅可以促使云南松种子发芽还可以促进云南松种子胚根胚芽的伸长,即可以说IBA对云南松种子的发芽没有促进作用。
但是,事实上IBA作为一种生长素类似物,它能够促进植物主根的生长,提高发芽率和成活率,还可以促使插条生根,因此以上所得的结论与事实严重不符。
表3 平均胚根多重比较分析
IBA N alpha = 0.05 的子集
1 2
4 17
5 1.351
6 204 1.421
8 110 1.447
3 252 1.473
5 263 1.542
7 197 1.808
2 300 1.882
1 304 1.914
显著性.098 .333
表4平均胚轴多重比较分析
IBA N alpha = 0.05 的子集
1 2 3 4
8 110 3.475
5 263 3.631 3.631
3 252 3.635 3.635
4 17
5 3.733 3.733 3.733
7 197 3.897 3.897 3.897
1 304 3.96
2 3.962
2 300 4.080
6 204 4.156
6 结论
通过这个试验,我们得出了一条与事实或理论完全不符的结论,这毫无疑问是操作过程中出了错,对此我得出了几条在试验过程中必须注意的事项:
(1)要尊重客观事实,在试验中不得伪造和胡乱改动数据,即要保留原始数据。
(2)要以一种严谨的态度对待试验,该注意的事项必须遵守,有可能你的一点小疏忽就会导致整个试验失败。
(3)要做好试验前的各种准备工作,不要等到试验时才临时准备,这样不利于试验的开展。
(4)在试验前、试验中到试验末都要做好各种记录工作,这样试验报告的撰写才能达到详实可靠。