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人牙周膜成纤维细胞与牙龈成纤维细胞差异表达一条新基因的克隆郭希民;吴补领;肖明振;蒲勤;赵忠良【期刊名称】《牙体牙髓牙周病学杂志》【年(卷),期】2000(010)006【摘要】AIM: To clone a new gene that is differentially expressed in human PDLF in comparison with GF.METHODS: Subtractive cDNA DNA library of PDLF was constructed with a recently developed gene cloning technique that is based on PCR and subtractive hybridization and then screened by restriction analysis and reverse southern dolt blot. Desired genes were sequenced and then analyzed by computer. RESULTS: We cloned a 818bp new gene from a PDLF cDNA subtractive library. CONCLUSION: We cloned a new gene from the subtuctive htnan PDLF cDNA library.%目的：克隆人牙周膜成纤维细胞( periodontal ligament fibroblast, PDLF)rn与牙龈成纤维细胞(gin-gival fibroblast, GF)差异表达的新基因。
方法：采用基于PCR和消减杂交的基因克隆技术构建体外培养的人PDLF与GF差异表达基因的扣除文库，采用酶切和反向杂交的方法筛选目的克隆，并进行测序和计算机分析。
结果：从构建的人PDLF与GF细胞差异表达基因的扣除文库中筛选到818bp新基因。
大蒜素对人牙周膜成纤维细胞的生物学作用的开题
报告
1.研究背景和意义
牙周炎和牙周病是口腔常见的疾病，大多数这些疾病的发生主要是
由细菌感染所致。
牙周膜成纤维细胞是口腔牙周组织中的重要细胞类型，它在牙周维护中扮演着重要的角色。
大蒜素是一种具有多种生物活性的
化合物，具有抗菌、抗炎、抗氧化等多种作用，近年来对其在口腔卫生
领域的应用研究越来越多，但对大蒜素对人牙周膜成纤维细胞生物学作
用的研究还比较少。
2.研究目的
本研究的目的是研究大蒜素对人牙周膜成纤维细胞生物学作用的影响，探究其对牙周组织维护的作用机制，为进一步开发大蒜素在口腔卫
生领域的应用提供参考。
3.研究内容和方法
研究内容：本研究将通过体外实验，研究不同浓度大蒜素处理对人
牙周膜成纤维细胞增殖、凋亡、分泌细胞外基质以及细胞迁移能力等生
物学行为的影响。
研究方法：将人牙周膜成纤维细胞接种于96孔板中，不同浓度大蒜素（如5、10、20mg/mL）处理后，对细胞进行增殖、凋亡、分泌细胞
外基质（如胶原、纤维素等）、细胞迁移能力和相关蛋白的表达进行检
测和分析。
4.研究预期结果和意义
本研究将全面解析大蒜素对人牙周膜成纤维细胞生物学作用的影响
及其作用机制。
从生物水平探究大蒜素的生物学效应，可为日后进一步
应用大蒜素来减轻口腔牙周组织疾病发生的提供实证依据，同时对于大蒜素的应用开发也具有重要的借鉴作用。
初级纤毛对牙发育的作用及相关机制的研究进展张晨洋;孙瑶【摘要】初级纤毛是哺乳动物细胞表面特化的细胞突起，其内部存在大量调控细胞生命活动的信号分子，参与构成细胞内的信息传递系统。
近年来研究发现，牙组织细胞有纤毛存在，并且纤毛病患者可同时伴有牙齿发育异常表现。
说明细胞纤毛可能参与牙发育过程。
本文旨在将近年来国内外有关初级纤毛在牙齿发育中的功能及作用机制研究进展作一综述，阐示细胞纤毛中信号分子的功能及作用通路，拓展对牙发育机制的了解。
%The primary cilium is a specialized cellular process of mammalian cells. With a large amount of cell signal molecules in it, the primary cilium forms a large information system in cells. Recently, primary cilium has been found in tooth forming cells, and it is reported that dysfunction of cilium can cause dysplasia of teeth,which suggests primary cilium is involved in tooth development. In order to demonstrate the function and signaling pathways of the cilium in tooth development, research on the mechanism and function of pri⁃mary cilium will be reviewed. It may broaden our understanding of the molecular mechanisms underlying tooth development.【期刊名称】《口腔医学》【年(卷),期】2016(036)010【总页数】4页(P950-952,956)【关键词】初级纤毛;牙齿发育;Hh信号通路;Wnt信号通路【作者】张晨洋;孙瑶【作者单位】同济大学附属口腔医院口腔种植科，上海 200072; 上海牙组织修复与再生工程技术研究中心，上海 200072;同济大学附属口腔医院口腔种植科，上海 200072; 上海牙组织修复与再生工程技术研究中心，上海 200072【正文语种】中文【中图分类】R78纤毛是哺乳动物细胞表面特化的细胞突起。
成牙骨质细胞的研究进展随着现代医学技术的不断发展，人类对于人体各器官的认知也日益提高。
在口腔领域中，成牙骨质细胞起着重要的作用，这是一类被广泛研究的细胞类型。
本文将介绍成牙骨质细胞的研究进展。
一、成牙骨质细胞的定义、分类及特点成牙骨质细胞是一种存在于口腔中的细胞，直接参与到人体的循环和代谢中。
成牙骨质细胞被广泛应用于齿周组织再生、骨缺损修复等临床治疗中。
成牙骨质细胞可以被分为牙骨质细胞和成骨细胞，其中牙骨质细胞主要存在于成牙的牙本质和牙周膜中，成骨细胞则主要分布在人体中的骨骼系统中。
成牙骨质细胞具有很高的增殖和分化潜能，在体外培养中可以通过合适的生长环境，使细胞增殖完全，同时也可以转变成其他骨骼系统中的细胞类型。
此外，成牙骨质细胞还可以分泌一系列的细胞因子和细胞外基质成分，对周围组织的再生和修复起到积极的促进作用。
二、成牙骨质细胞在牙髓组织的重要作用在牙髓组织修复和再生中，成牙骨质细胞的作用十分重要。
牙髓组织是成牙中最重要的一部分，它由一系列的血管、神经、间充质细胞、干细胞以及成牙骨质细胞等组成。
在牙髓组织发生损伤或受到其他影响时，成牙骨质细胞可以通过分化和增殖，再生出需要的组织。
研究表明，成牙骨质细胞可以通过促进骨形成、增强细胞和基质组分的分泌等作用来改善损伤的牙髓组织。
同时，成牙骨质细胞还可以分泌一系列的生物活性物质，包括生长因子、细胞因子、胶原蛋白、磷酸钙等成分，以促进受损牙髓组织的再生和修复。
三、成牙骨质细胞在口腔领域中的应用随着对成牙骨质细胞的认识和探索，人类开始将其应用于口腔领域的治疗中。
目前，成牙骨质细胞的应用领域主要包括齿周组织再生和骨缺损修复两个方面。
齿周组织再生是指再生缺损齿周膜、纤维连接组织和骨组织等剑齿周组织。
通过培养和使用成牙骨质细胞，可以促进其分化为牙骨质细胞、成骨细胞或是各类辅助细胞，从而实现齿周膜和骨组织的再生和重建。
骨缺损是一种常见的口腔问题，包括牙周炎、牙龈炎和齿周囊炎等。
口腔细胞培养技术总结在现代医学和生物学研究中，口腔细胞培养技术已经成为了一项重要的工具。
它不仅有助于我们更深入地了解口腔组织的生理和病理过程，还为口腔疾病的诊断、治疗以及组织工程的发展提供了有力的支持。
口腔细胞主要包括口腔上皮细胞、成纤维细胞、牙髓细胞、牙周膜细胞等。
这些细胞在口腔的正常生理功能和疾病发生发展中都发挥着重要的作用。
进行口腔细胞培养的第一步是细胞的获取。
对于口腔上皮细胞，可以通过刮取口腔黏膜表面来获取。
而成纤维细胞则可以从牙龈、牙周膜等组织中分离得到。
牙髓细胞则通常从健康或病变的牙髓组织中提取。
在细胞获取后，需要对其进行处理和培养。
培养所使用的培养基通常包含了各种营养成分，如氨基酸、维生素、无机盐等，以及血清等添加物。
血清中含有丰富的生长因子和激素，能够促进细胞的生长和增殖。
在培养过程中，需要严格控制培养环境的条件。
温度一般维持在 37℃左右，这与人体的正常体温相似，有利于细胞的正常代谢和功能维持。
同时，培养环境的 pH 值也需要保持在一定的范围内，通常为 72 74 之间，以确保细胞内的酶和代谢过程能够正常进行。
此外，细胞培养还需要在无菌的环境中进行，以防止细菌、真菌等微生物的污染。
为了让细胞能够更好地生长和附着，通常会在培养容器表面进行特殊处理，例如涂抹胶原蛋白或多聚赖氨酸等物质。
在细胞培养的过程中，还需要定期观察细胞的生长状态。
可以通过显微镜观察细胞的形态、大小、数量等特征，判断细胞是否健康生长。
正常情况下，细胞应该呈现出规则的形态，并且随着时间的推移，数量逐渐增加。
当细胞生长到一定程度后，可能需要进行传代培养。
传代培养是指将原代培养的细胞转移到新的培养容器中，继续培养。
这个过程需要小心操作，避免对细胞造成损伤。
口腔细胞培养技术在口腔医学领域有着广泛的应用。
例如，在疾病诊断方面，可以通过培养病变组织的细胞，观察其形态和功能的变化，辅助疾病的诊断。
在治疗方面，利用细胞培养技术可以研究药物对口腔细胞的作用，筛选有效的治疗药物。
牙周膜生物力学性质的试验研究进展傅肄芃;严斌【摘要】口腔正畸治疗中,牙齿的移动依赖于矫治力产生的牙周膜(Periodontal Ligament,PDL)反应,PDL的生物力学性质是正确理解正畸牙移动、牙周组织响应和制定正畸治疗计划的关键和基础.由于PDL组成成分多、牙根形态各异,对其生物力学性质的研究较为困难.该文拟对近年来研究PDL生物力学性质的各种试验方法做一综述.%Successful orthodontic tooth movement depends on favorable responses from the periodontal ligament(PDL)under orthodontic forces.Thus the biomechanical properties of the PDL are of great importance for understanding the mechanisms of orthodontic tooth movement and periodontal tissue response and making appropriate treatment plans.However,the complexity of the PDL components,together with large variations of root morphological characteristics,makes it a rather formidable challenge for studying the biomechanical properties of the PDL.Optimal experimental methods and properly designed parameters are often needed to establish a constitutive model for such studies.In this paper,the experimental methods that have been used to study the biomechanical properties of PDL were reviewed.【期刊名称】《口腔医学》【年(卷),期】2017(037)009【总页数】5页(P844-848)【关键词】牙周膜;生物力学;口腔正畸;本构模型【作者】傅肄芃;严斌【作者单位】南京医科大学口腔研究江苏省重点实验室,南京医科大学附属口腔医院正畸科,江苏南京 210029;南京医科大学口腔研究江苏省重点实验室,南京医科大学附属口腔医院正畸科,江苏南京 210029【正文语种】中文【中图分类】R783.5牙周膜，又称为牙周韧带(periodontal ligament，简称PDL)，最重要成分是由胶原蛋白构成的主纤维，此外还包括基质和血管、神经等成分。
人牙龈成纤维细胞的原代培养及鉴定作者：崔娟,孙克勤,李霞,张华屏来源：《中国医药导报》2010年第03期[摘要] 目的:分离培养人牙龈成纤维细胞,为进一步研究细胞因子对牙龈成纤维细胞的调控作用提供实验条件。
方法:用组织块法培养人牙龈成纤维细胞,并进行形态学和免疫学鉴定。
结果:牙龈成纤维细胞原代培养成功并稳定传代,细胞呈长梭形或星形,免疫学鉴定抗波形丝蛋白抗体阳性,抗角蛋白抗体阴性,为中胚层来源的成纤维细胞。
结论:组织块法培养的细胞符合牙龈成纤维细胞的形态学和免疫学特征,可作为体外细胞模型,为研究细胞因子对其功能的调控作用奠定基础。
[关键词] 牙龈成纤维细胞;细胞培养;鉴定[中图分类号] R329.2+8[文献标识码]A [文章编号]1673-7210(2010)01(c)-026-02The primary culture and identification of human gingival fibroblastsCUI Juan1, SUN Keqin1, LI Xia1, ZHANG Huaping2(1.Oral Medicine Department of Oral Hospital of Shanxi Medical University, Taiyuan 030001, China; 2.Central Laboratory of Oral Hospital of Shanxi Medical University, Taiyuan 030001, China)[Abstract] Objective: To isolate and culture human gingival fibroblasts (HGFs) in vitro, and provide the experimental condition for further research on the HGFs regulation by cytokines. Methods: HGFs were primary cultured by tissue explant culture technique and identified by morphological analysis and immunocytochemical analysis. Results: The HGFs were cultured and passaged successfully. The cells showed long spindle or star appearance. By immunocytochemical analysis, these cells tested positive to anti-vimentin antibody and negative to anti-keratin antibody, indicating the cells were mesoderm derived fibroblasts. Conclusion: The cells cultured by tissue explant culture technique are consistent with typical HGFs' characteristics of morphology and immunocytochemical observation. The HGFs are used as cell model in vitro for future research on HGFs regulation by cytokines.[Key words] Gingival fibroblasts; Cell culture; Identification人牙龈成纤维细胞(human gingival fibroblasts,HGFs)是牙龈结缔组织中的主体细胞,在牙周组织的保护和修复中起重要作用[1]。
牙周组织的组织学特点牙周组织是指围绕和支持牙齿的组织，包括牙龈、牙周膜、牙槽骨和牙本质。
牙周组织的组织学特点如下：1. 牙龈牙龈是覆盖牙槽骨和牙根的粘膜，由上皮、结缔组织和血管组成。
上皮：牙龈上皮由复层鳞状上皮构成，可分为角化层、棘层、颗粒层和基底层。
角化层是牙龈上皮最外层，由无核的角化细胞组成，可防止细菌和刺激物侵入。
棘层是牙龈上皮的中层，由多角形细胞组成，具有较强的增殖能力。
颗粒层位于棘层和基底层之间，由梭形细胞组成，细胞内含有角蛋白颗粒。
基底层是牙龈上皮的最内层，由柱状细胞组成，与结缔组织紧密相连。
牙龈上皮组织学结缔组织：牙龈结缔组织由胶原纤维、弹性纤维、成纤维细胞、炎性细胞和血管组成。
胶原纤维是牙龈结缔组织的主要成分，为牙龈提供支撑和强度。
弹性纤维使牙龈具有弹性。
成纤维细胞是结缔组织的主要细胞，负责合成胶原纤维和弹性纤维。
炎性细胞在牙龈炎症时增多。
血管为牙龈提供营养。
2. 牙周膜牙周膜是位于牙根和牙槽骨之间的薄层结缔组织，由牙周膜纤维、成纤维细胞、炎性细胞和血管组成。
牙周膜纤维：牙周膜纤维是牙周膜的主要成分，将牙根固定在牙槽骨中。
牙周膜纤维主要有以下几种类型：牙骨质纤维：连接牙根和牙槽骨。
牙周膜环状纤维：环绕牙根，将牙根固定在牙槽骨中。
牙周膜斜行纤维：斜向走行，连接牙根和牙槽骨。
牙周膜组织学成纤维细胞：成纤维细胞是牙周膜的主要细胞，负责合成牙周膜纤维。
炎性细胞：在牙周炎症时增多。
血管：为牙周膜提供营养。
3. 牙槽骨牙槽骨是上颌骨和下颌骨中包围牙根的骨组织，由骨小梁、骨板、骨细胞和血管组成。
骨小梁：是牙槽骨的主要结构，由骨组织构成，呈网状排列。
牙槽骨组织学骨板：是骨小梁之间的骨组织，较密实。
骨细胞：是骨组织中的活细胞，负责骨的形成和改建。
血管：为牙槽骨提供营养。
4. 牙本质牙本质是牙齿的主要硬组织，位于牙釉质内，由牙本质小管、牙本质原牙本质细胞和牙本质间质组成。
牙本质小管：是牙本质中的微小管道，由牙本质原牙本质细胞的胞突伸入其中。
牙周膜肌成纤维细胞的体外培养及其标志物的表达时效目的探讨人牙周膜肌成纤维细胞（MFB）体外培养及其标志物表达的时效性。
方法体外培养人牙周膜成纤维细胞（hPDLF），72 h内以5ug·L-1终质量浓度的转化生长因子（TGF）-B1诱导hPDLF向MFB转化，免疫细胞化学和免疫组织化学染色检测MFB标志物a-平滑肌肌动蛋白（a-SMA）表达情况。
分别进行12、24、48、72、96和120 h的MFB观察，采用流式细胞术观察MFB长时间培养的细胞活性，采用免疫细胞化学观察MFB长时间培养后的a-SMA表达情况。
结果经TGF-B1诱导后a-SMA呈阳性；诱导至120 h，a-SMA仍呈阳性，72 h内其表达稳定。
结论5 ug·L-1终质量浓度的TGF-B1成功诱导人牙周膜细胞向MFB转化。
MFB体外培养具有时效性，培养0-72 h，其状态稳定。
标签：人牙周膜成纤维细胞；肌成纤维细胞；a-平滑肌肌动蛋白本研究的前期体内试验证实，正畸牙牙周膜张力侧肌成纤维细胞（myofibroblast，MFB）可能参与了牙周膜改建和成骨细胞的成骨过程；但牙周膜内生物学环境复杂，在正畸生物力学的影响下，多种牙周膜细胞都可能出现类似于MFB标志物的表达情况；因此，要明确MFB在牙移动过程中可能发挥的作用，就需要进行体外试验，以明确MFB分泌细胞外基质及成骨的机制。
MFB 大多存在于组织处于外力环境时，而当外界张力因素去除掉后，MFB大多程序性死亡或退化消失。
研究MFB的功能，在成功诱导出MFB后还需明确MFB的活性，即MFB可以维持多久，这样才能确定MFB的体外观察时间。
本试验采用转化生长因子（transforming growth factor，TGF）-B1诱导人牙周膜成纤维细胞（human periodontal ligament fibroblast，hPDLF）向MFB转化，从12 h起，分6个时间点对hPDLF进行最长120 h的观察。
成纤维细胞基因表达成纤维细胞是一种重要的细胞类型，它们在人体中起着至关重要的作用。
成纤维细胞的主要功能是合成胶原蛋白和其他基质分子，这些分子构成了人体的结缔组织。
此外，成纤维细胞还参与了许多生理和病理过程，如伤口愈合、肝纤维化和肺纤维化等。
成纤维细胞的基因表达是其功能的关键。
基因表达是指基因转录成RNA，然后翻译成蛋白质的过程。
成纤维细胞的基因表达受到许多因素的影响，包括细胞外基质、细胞因子和信号通路等。
在成纤维细胞中，胶原蛋白是最重要的基质分子之一。
胶原蛋白的合成受到多种基因的调控，包括COL1A1、COL1A2、COL3A1和COL5A1等。
这些基因的表达水平决定了胶原蛋白的合成量和质量。
此外，成纤维细胞还合成其他基质分子，如弹性纤维蛋白、纤维连接蛋白和蛋白多糖等。
这些分子的合成也受到多种基因的调控。
成纤维细胞的基因表达还受到细胞因子的调节。
细胞因子是一类分泌性蛋白质，它们可以刺激或抑制细胞的生长、分化和功能。
在成纤维细胞中，许多细胞因子可以调节胶原蛋白的合成，如TGF-β、PDGF和FGF等。
这些细胞因子通过激活信号通路，影响胶原蛋白基因的转录和翻译。
信号通路是细胞内外信息传递的重要途径。
在成纤维细胞中，许多信号通路可以调节基因表达，如Wnt、Notch和Hedgehog等。
这些信号通路通过激活转录因子或抑制转录因子的活性，影响基因的转录和翻译。
成纤维细胞的基因表达是其功能的关键。
基因表达受到多种因素的调节，包括细胞外基质、细胞因子和信号通路等。
深入研究成纤维细胞的基因表达机制，有助于理解其在生理和病理过程中的作用，为疾病的治疗提供新的思路和方法。
口腔医学2020年12月第40卷第12期《口腔医学》2020年第40卷总目次述评2018牙周病和植体周病国际新分类—牙周炎分期分级疾病定义系统临床应用体会……束蓉，倪靖（1)新型冠状病毒肺炎疫情中口腔专科医院分级精准感染防控管理策略……王晓茜，杨菁菁，孙志达，徐艳（289)牙周专栏牙周治疗的微创理念……叶宇，徐艳（481)S100钙结合蛋白A8在人慢性牙周炎牙龈组织巨噬细胞中表达的研究……刘利思，杨婷，叶展鸿，孙澎，王刚，黄世光(486)牙周加速成骨正畸手术患者术前焦虑及术后生活质量的调查研究……王维倩，黄月华，徐秋芳，轩东英（491)牙周炎与慢性阻塞性肺疾病相关性的研究进展……田欢，王左敏（4%)新型冠状病毒肺炎专栏新型冠状病毒肺炎疫情下口腔癌患者在院发热的鉴别及处理……高诗雨，朱宇驰，万林忠，叶金海，江宏兵（581)橡皮障系统及其在新冠肺炎疫情传播控制中的作用……闵艺，吴大明，范伟（585)联合干预减少感染性气溶胶及2019-nCoV在口腔诊室传播风险的探讨……季琦，吴红梅，吴姗姗，袁苗（589)基础研究联合VEGF和PDGF-丨川促进骨髓间充质干细胞血管化的体内研究……毕翔宇，孙安，何惠宇（7)牙龈卟啉单胞菌对db/db小鼠骨髓来源巨噬细胞极化作用的初步探究……杨亚楠，于时卉，闫香珍，罗礼君（13)不同表面处理方法及根管深度对玻璃纤维桩粘接强度的影响……王玥，谢伟丽，李玥锟，施梦汝，徐琳，于敬伟（17)成釉细胞微环境对胚胎干细胞特性的影响……宁芳（22)PIGK与PCNA在成釉细胞瘤中的表达与意义……赵尔杨，王姗，孟琰，施磊，强冬霞（26)不同材料嵌体修复对楔状缺损患牙应力分布影响的5维有限元分析……于敬伟，谢伟丽，施梦汝，陈钱，王玥，焦海斌,徐琳（31)铒激光备洞对牙体与充填体间纳米渗漏和粘结强度的影响……宋召龙，李艳萍，李思宁，张琳（35)酪蛋白磷酸多肽钙磷复合体的应用顺序对乳牙牙本质粘结强度的影响……袁月，朱颐馨，杨晓丹，刘英群（39)核受体共激活因子7在槟榔碱诱导的上皮间充质转化中的生物学功能……刘清辉，何黎明（43)一种新型超透明氧化锆陶瓷的颜色和结构稳定性评价……沈佳娣，谢海峰，何峰，陈晨（97)青皮对主要致龋细菌生长的影响及网络药理学分析其防龋机制……吴泽钰，薛瑞，袁曦玉1从兆霞，赵今（丨〇1)口腔扁平苔藓黏膜病损区微生物群落分析……王雪薇，唐楠，赵知白，范媛（108)不同浓度盐存储液对纯钛表面碳累积效应的影响……唐恺谄，邱憬（193)柚皮苷对脂多糖诱导的人牙周膜成纤维细胞增殖及炎症因子表达的影响……刘景，袁媛（198)脂联素受体在人牙龈成纤维细胞中的表达研究……王丽美，支敏，吕沛颖，高鹏飞，蔺晨，杨艳艳，王永兰（204)正畸骨改建中Hedgehog通路下游信号的表达变化……荣崧汐，周梦琪，孙瑶（293)I型胶原修饰微球对骨髓间充质干细胞粘附增殖及成骨行为的影响……竺鑫晨，刘俊，严佳，胡克，陈刚，刘梅，章非敏（299)一种新透明Y-TZP陶瓷低温老化后的机械性能评价……沈佳娣，谢海峰，何峰，陈晨（304)一种CAD/CAM复合树脂块的低温老化后晶相、结构及抗弯强度稳定性的评价……颜越，谢海峰，孟虹良，陈冰卓，陈晨，张怀勤（309)法尼醇对白念珠菌生物膜死亡作用的研究初探……周鹏，章萍，姜刘鎏，孙凯瑞，魏昕（385)黄芩素与黄芩苷联合用药对口腔鳞癌细胞增殖、迁移的影响……郭净洁，王崇，张维甲，杜超，李国林（393)两种不同磷酸酯单体处理增强牙科包含氧化锆填料复合树脂的作用评价……杨家雪，陈晨，景双林，石炜，谢海峰（399)慢性肾脏病继发小鼠颌骨异常的形态学研究……张耀元，陈宏裕，王华，王林（404)三碘甲腺原氨酸对根尖牙乳头干细胞成牙/骨向分化的影响及其机制的初步探究……夏翊博，于金华（500)不同浓度血管内皮细胞生长因子对人牙周膜干细胞内皮向分化的影响……石笑，赵寅华，赵萤，程百祥，陈永进，张旻(506)先天上颌尖牙缺失家系的致病基因的研究……杨帆，姚思玥，于鑫，范力文，潘永初，王林（513)根吸收不同时期乳牙牙周膜干细胞通过NK细胞进行免疫调节作用的研究……赵辛，杨宽，王子瑞，韩欣欣，汪璐璐，王小• D•《口腔医学》2020年第40卷总目次竞（517)臭氧水溶液对口腔综合治疗台管道的消毒效果……孙荣，王娟，梅予锋（521)P D-1在4 N Q0诱导的小鼠口腔黏膜鱗状细胞癌中表达变化……张柏林，李岩，朱雪琴，蒋英英，陈万涛（593)3种高透氧化锆陶瓷的半透明度及颜色评价……廖梦圆，谢海峰，沈佳娣，戴诗琪，陈晨（597)一种国产龋活性培养基与标准培养基一致性及荇效性的实验检测……VIVIEN FENG，张羽，曹桂芝，吴日玥，陈曦（602)透明质酸及其合成酶在炎症牙髓组织中的表达……陈蔚婷，蒋备 战（606)mi-144在人牙周膜成纤维细胞中调控Toll样受体2及骨唾液酸蛋白 的表达……魏蓉，张源，李新月（612)浮游态白念珠菌SC5314标准株及耐药株卩噬的研究……孙凯瑞，姜刘鎏，周鹏，顾静怡，徐瑞，魏昕（677)慢病毒介导核心结合因子cxl基因感染对人牙龈成纤维细胞成骨特性的影响……陈晓霞，颜世果，孙钦峰，李玉兰（682)肝细胞生长因子对成骨细胞增殖、凋亡及成骨分化的影响……李若涵，佘文婷，华超，骆瑜，黄丽，彭友俭（688)联用大黄、黄芩对牙周炎S D大鼠炎性因子的抑制作用及对骨组织再生的促进效应研究……谷冬华，郭宁，赵晓丹，刘瑾，李昂，苟建重（692)不同根管通路建立方式对根管治疗后的下颌第一磨牙应力分布的影响……王晓，田宇，倪龙兴，王艺蓉，王丹，李芬，王建（698)光固化大块充填树脂厚度对透明度及透光性的影响……杨家雪，陈桂兰，吴大明，陈晨，谢海峰（703)姜黄素对变异链球菌产酸、耐酸能力的影响……李京洋，姚毅章，赵国廷（707)BMP2和BM P4对牙釉质基质蛋白酶基因表达的调控……刘向晖，耿硕硕，吴迪，李莹，罗晓娜，许莹莹，袁浩泽，王秀梅，谢晓华（773)大蒜素对口腔鳞状细胞癌治疗作用的研究……杜超，李国林，张雪松，郭净洁，王崇（778)激光联合氟钾酚醛树脂对牙本质小管封闭作用的实验研究……王芳，孙慧斌，李泽雨，孙莉青（786)不同粘结剂对两种椅旁CAD/CAM全瓷材料粘结强度影响的实验研究……李娟，章非敏，胡建（792)两种灭菌方法对离体牙灭菌效果及粘接强度影响的研究……史璐，李豪，郭笑，王鹏，马佳琳（796)下颌升支截骨去血供后牙梢骨内氧水平变化1骨改建的变化研究…蔡昀，唐皴，康非吾（869)氧化石墨烯纳米银复合物对变异链球菌抗菌作川的研究……诸晓 丹，何剑亮，唐子圣，漆正楠，石雨婷，夏文君，沈妙莲，邹岩，吕敏（874)磷酸酸蚀和不同磷酸酯中.体预处理牙釉质表面的微观形态学观察和粗糙度评价……韩菲，陈晨，杨家雪，石炜，景双林，谢海峰（878)P75NTK、S0X2在成釉细胞瘤中的表达及意义……赵炜，达林 泰，尚多（883)肉桂醛对口腔鱗状细胞癌细胞CAL27增殖和迁移的影响……许嘉 琪，单秋生，王晓峰（888)两种不同光热转化剂体外治疗口腔鱗状细胞癌的疗效差异对比研究……左佳鑫，李佳，熊屏（％5)全降解镁合金组织工程支架孔隙特征与性能关系研究……熊美萍，贾高智，袁广银（W l)血卟啉单甲醚介导的声动力疗法对菌斑细菌生物膜作用效果的研究……闫春阳，王碧琳，庄德舒，张祎，媿子征，毕良佳(976)自噬在氟牙症大鼠成釉细胞中的保护作用……翁清清，易芳羽，郁莹，葛苏钰，张颖（982)没食子酸对人舌鱗状细胞癌SCC15细胞自噬的影响……李芳，关爽（987)消退素E1对氧化应激下人牙髓千细胞生物学性能的影响……杨婷，陶硕，张旗（1061)成釉细胞瘤细胞抑制骨髓间充质干细胞成骨分化的研究……雷港，武和明，江飞（1067)青蒿琥酯干预对伴糖尿病牙周炎大鼠肠道组织TN F-a、MMP-9及 CaS pase3表达的影响……袁仲，农晓琳，陈怡，梁晨(1073)牙周炎微环境下静态牵张力对牙周膜干细胞中炎性细胞因子分泌的影响……蔡东轩，孙唯夫，金作林，刘佳（1079)FAM20A条件性基因敲除小鼠牙龈增生的组织测量学分析……刘静，李丽丽，刘培红，马肃（1084)临床研究Foley加压水囊在治疗颧弓骨折中的临床应用……张杰，孟箭，郑浩，李志萍（48)釉质内肩台预备加直接树脂充填修复前牙切端切角缺损的临床效果研究……孙晨雨，李倜，朱洪光，郭文丽，刘鹏辉，白建 文（52)上颌磨牙龋源性残冠截根术治疗的临床研究……古智豪，徐莉(55)牙周炎患者非刺激性全唾液、龈沟液及血清中CD147的表达及意义……柴琳，张瑞敏，王亚敏，穆森（丨丨3)三维摄影技术结合锥形束C T评估颜面部不对称患者正颌手术前后的软硬组织变化……徐雅婷，吴嵩，宋志芸，巢舒铭，陈文 静（117)骨性IH类错骀患者正畸正颌联合治疗前后面部软组织变化的研究……巢舒铭，吴嵩，许衍，宋志芸，许珂张圆，陈文静口腔医学2020年12月第40卷第12期• DI •牙周基础治疗联合牙周维护治疗重度慢性牙周炎松动前牙的临床研究……周永敏，丁红忠，王小平，李淑华（125)改良舌腭弓L形切口治疗茎突过长综合征临床体会……宋志强，召P博，吕曜光，龚忠诚（131)两种方法矫治不同年龄组安氏112错骑畸形的临床研究……周明 智，吴可，王林，王珊，赵春洋（209)61例正畸牙根牵引前后牙周状况变化的研究……严凌洁，黄晓峰(215)乌鲁木齐地区错枪畸形患者Bolton指数的分析研究……李兆阳，贾俊，胡义春，巴哈尔尼萨•热扎克，祖丽胡马尔•努尔艾合买提，迪丽菲热•吐尔洪，古力巴哈•买买提力（219)平行和分角线投照数字根尖片测量种植体的准确性研究……周杨，唐天润，王雅欣，杨连丰，孙超，王晶艳，吴大明(223)基于CBCT的下颌第一磨牙区即刻种植相关的影像学研究……童丽，顾卫平，陈岗，王燦（22*7)3D打印辅助手术治疗下颌骨缺损疗效的M eta分析……魏婷(232)母亲龋易感性与婴儿口腔微生物多样性关系的纵向探究……吴祎培，张羽，陈曦，冯希平（239)测试人牙周膜粘弹性力学特性的纳米压痕实验条件研究……施昊天，鹿如鑫，刘鑫，刘懋，黄辉祥，吴斌，严斌(313)CAD/CAM数字化瓷贴面在前牙美学修复中的临床应用……黄罡，陶进京，景建龙，高洋，俞青，魏煦（319) CAD/CAM在腓骨瓣-种植体功能性修复下颌骨缺损的临床应用……王凌，柳兆刚，田宏伟，唐振华，周宇，陈旭兵(324)垂直位埋伏阻生上颌中切牙正畸牵引治疗牙根发育的研究……陈国锋，王笑辰，王亮，王林，王玉华，赵春洋（330)正畸正颌联合治疗骨性ID类的视觉模拟评分法研究……邵馨怡，许衍，陈文静（334)两种微种植支抗方法拔牙矫治的疗效对比……王思，陈金林，陈强，姜佳杏，顾晓慧（338)颌骨囊性病变囊内压对开窗术后不同时间段体积缩小速度的影响……熊贤斌，吴元元，郑旸，丁旭，武和明，吴煜农，宋晓萌（411)术前彩色多普勒超声评估游离皮瓣供受区血管在头颈部修复重建中的初步应用研究……李萌，黄辉，丁旭，杜洪明，钟旖，宋海洋，马虞楠，吉幻，宋晓萌，武和明（416)无牙颌下颌骨前、后牙区骨量相关性的CBCT研究……黄佳，郑 旸，宋晓萌，吴煌农（421)旋入扭矩值与共振频率分析对种植体初期稳定性的相关性研究……刘东，吴煜农（426)成人骨性n类患者不同垂直骨面型上颌后牙区牙槽骨复合体形态比较的CBCT分析……鲁琦濉，张卫兵（432)iRoot S P直接充填后与牙本质壁粘结强度的临床初探……张福裕，仇晓慧，章非敏，张光东，徐海（437)下颌第一磨牙根管形态的CBCT研究……陆亚倩，杨晨露，刘亚文，闫明，李谨，吴大明（443)种植体早期失败的相关因素分析……章惠娅，林国芬，管叶，盛爱萍，何福明（526)无托槽隐形矫治技术远移下颌磨牙对上气道影响的研究……吴冬 雪，陈犧，张倩倩，马萌，魏亚珊，施丹丽，范琦(531)CBCT测量三根型下颌第一磨牙远中舌根的长度和弯曲度……张福 裕，张光东（535)颅面结构特征与牙列磨耗分布的相关性研究……张煜雯，严斌，胡建（540)江苏地区不同发育阶段错耠畸形青少年下前牙唇侧牙槽骨厚度分析……周逸，陈旭，李璐，汝一雯，徐艳（618)基于瞳孔中点的耠平面横向倾斜诊断的准确性研究……谢慧之，胡玲玲，谢志坚（624)七氟烷和丙泊酚在儿童口腔日间手术全身麻醉效果的对比性临床研究……严恩石，刘莉，余伊，吴波，尹楠，孙强(630)DSA引导下微球囊压迫技术精准治疗三叉神经痛……王可心，乔婧，张杰，葛良玉，张静，孟箭（711)不同粘接方法对种植修复粘接剂残留影响的临床研究……黄江琴，魏振宇，胡常琦，夏勋，郭水根，魏洪武（715)相关粘附分子在牙周炎与冠心病相关性中的作用初探……王彩琼，林建锋，马思环，邓辉（719)两种牙齿美白方法治疗氟斑牙着色斑的临床效果对比……杨丽媛，刘冠邑，赵凌（723)医用射线防护喷剂防治放射性口腔黏膜炎的临床观察……王楠，丁田贵，尹立杰（7之8)3D打印下颌骨定位及连接导板在下颌骨缺损修复中的应用……徐波，冉红兵，林川，杨丽俊，李文，陈尧（731)低能量镓铝砷半导体激光对颞下颌关节疼痛的疗效评价……于林凤，阿迪拉•艾赛提，王琛，周薇娜，张静露，季琦，马骞，陈亚明（800)老年糖尿病根尖周炎患者根管治疗的临床疗效分析……朱洁，桂冠，胡小哑，施博玮，程筱番，卜寿山（804)再生性牙髓治疗的临床和组织学结果的描述性系统评价……陈霞，汪成林，叶玲（807)系统评价种植体周围病的危险因素：粘结剂残留……张琴，帅宾宾，潘岩，邓梦婷，王悦，文冰（814)透明压膜保持器戴用前后咬合变化的T-scan分析……汝一雯，张卫兵（820)无托槽隐形矫治器对口腔微环境影响的相关性研究……李佩，陈犧，林彤，郭莉（825)•I V •《口腔医学》2020年第40卷总目次笑气吸人辅助拔除儿童埋伏多生牙的临床应用……刘靖，王万根，吴永正（829)上颌无牙颌固定修复中5颗不同倾斜角度种植体的三维有限元分析……郭海波，汤春波，周储伟，周逃林（894)正压冲洗对根管预备清除细菌的作用研究……刘晓燕，张轶丹，李芬，吕海鹏，蒋文凯（900)成釉细胞瘤患者IncRNA-mRNA共表达网络分析及作用研究……游婧，傅瑜，单杰，张杰，林晓虎，江裕程，卞成玥，罗颐辰（904)汉族青年人上颌腭侧咀嚼黏膜厚度的CBCT研究……程筱番，朱洁，胡小娅，桂冠，施博玮，卜寿山（910)上领腭部骨支持式前方牵引配合扩弓的=维有限元分析……李祥，杨婉琪，李慧，于晓艺，葛悦，朱宪春（916)微种植钉联合自我效能干预对露龈笑患者侧貌、面型及心理状态的影响……刘进，冯道宽（922)低角病例颈椎骨骼异常的研究……刘阳，高睿，韩天媛，邵砰，孙婷婷，唐林（927)牙周炎与胎膜早破的相关性—基于孕妇血清IL-6、C R P和PCT 水平及牙周指标的研究……齐帅，谈笑，周政权，周勇，王也，张力木，林晓萍（992)即刻负重与非即刻负重预后对比的Meta分析……赵国强，刘益，张思佳，宋应亮（998)不同固位方法对单侧上颌骨缺损赝复体修复疗效影响的临床研究……陈丽娟，张红闯，孟庆飞（1005)基于GEO数据库探索成釉细胞瘤与牙源性角化囊肿间差异基因……兰天俊，刘鑫，陈之锋（1009)含氟化物和氯己定牙膏的抗菌性能的体外研究……陈玉莲，秦子 玥，陈武（1015)酸蚀对乳牙玻璃离子窝沟封闭微渗漏和微拉伸强度的比较研究……武洁，刘茜，陈央兰，周红艳，梅予锋（1021)无托槽隐形矫治中牙根吸收的系统评价再评价……郑小雯，袁玲君，李振霞，夏伦果，陈荣敬，房兵，游清玲（1088)10〜20岁骨性n类患者上颂腭中缝成熟程度的CBCT评估分析……张洁，张卫兵（1094)整平SPe e曲线影响牙弓形态变化的研究……李丽华，朱佳敬，刘博，韩天媛，邵坪（1098)透明保持器对牙齿颜色的影响……张浩霖，金作林（1103) Andrews六要素指导下不同治疗方案对骨性II类患者审美评价的影响……凌兆，闫伟军，刘博，宋冰，邵坪（1107)南京市城区3〜5岁儿童龋活跃性指数与影响因素分析……宋玉梦，刘茜，王珏，蒋子晨，贡敏，张芮，周红艳，梅予锋(1112)调查研究江苏省12~ 15岁中学生龋病流行现状及影响因素分析……肖滢，刘怡然，沈红，仇颖莹，沈家平（135)江苏省中老年人群龋病现况调查……沈红，沈家平，刘怡然(141)江苏省中老年人牙周健康状况及影响因素分析……郭岩，刘怡 然，沈红，沈家平（244)江苏省12~ 15岁中学生牙周健康状况抽样调查……肖滢，刘怡 然，沈红，仇颖莹，沈家平（249)石河子市3~5岁学龄前儿童龋病流行病学调查分析……袁鲜艳(255)江苏省3〜5岁儿童龋病相关因素调查分析……刘怡然，沈红，仇颖莹，沈家平（342)江苏省12~ 15岁人群口腔健康知信行调查报告……沈红，刘怡 然，沈家平（348)江苏省3〜5岁和12〜15岁人群口腔卫生服务利用情况调查及相关因素分析……刘怡然，沈红，仇颖莹，沈家平（448)江苏省中老年人群牙齿缺失及义齿修复情况抽样调查报告……郭岩，刘怡然，黄鑫，沈家平（453)上海市长宁区学龄前儿童乳牙反胎调查分析……高祯，蔡蔚，王奕，贾景安，胡金梅（738)江苏省中老年人群口腔健康相关生活质量的影响因素……黄鑫，刘怡然，沈红，仇颖莹，沈家平（741)江苏省中老年人群口腔健康知信行抽样调查报告……黄鑫，刘 怡然，沈红，仇颖莹，沈家平（746)苏州市12岁青少年口腔状况流行病学调查……李蓓，潘灏，朱晔（932)病案分析美学区即刻种植联合钛网引导组织再生1例……汪汉池，孟繁荣，方蚊，秦勤，辛禧瑞，周延民（146)修复联合正畸治疗先天缺牙回顾分析……吕佳，谢琳，董作 青（151)种植术后术区肿痛1例报告……施亦菲，吴捃华（634)上颌第二磨牙腭侧双根管3例……印晶晶，马兰，禹怡君，李雯，苗雷英（751)原发于下颌骨内神经鞘瘤一例报告……刘福来，李志萍，孟箭(754)乳磨牙牛牙症1例病例报告及文献综述……梁鑫，苏吉梅(1026)综述慢性牙周炎与慢性肾病相关性研究进展……KRISTINE SUN，宋忠 臣（59)脱细胞外基质支架材料在骨再生中的应用及研究进展……张艳珉，姜治伟，杨国利，王慧明（63)高压蒸汽灭菌对镍钛根管器械物理性能影响的研究进展……刘程，王晓春（67)口腔医学2020年12月第40卷第12期•V •HipP〇-TAZ/YAP信号通路在头颈部鱗状细胞癌中的研究进展……邵伟华，李晋，龚炜韬，俞张红，韩兴怡，章馨钰，杨建荣，李中武（71)完全埋伏阻生的下颌第二磨牙拔除术后第二磨牙远中骨缺损的修复……梁艺，康非吾（78)牙周炎与非酒精性脂肪性肝病相关性的研究进展……岳轶云，丁小函，刘东宁，李艳，夏博园，于维先（83)新型快速硬固型根尖倒充填材料的研究进展……屠美洁，宿凌恺，何福明，邓淑丽（87)囊肿塞在颌骨囊肿开窗减压术中的应用……陈玥，胡建（92) 正畸治疗对第H磨牙萌出的影响及相关预测方法……贾俊，古 力巴哈•买买提力，祖丽胡马尔•努尔艾合买提，迪丽菲热•吐尔洪<157)牙本质底涂剂的研究进展……田子璐，于改改，王晗，刘昭影，李璇，朱松（161)氧化锆表面硅处理的进展……刘昭影，李璇，王晗，于改改，朱松（165)硅酸钙生物材料诱导牙源性干细胞成牙/成骨分化机制的研究进展.......周杨，李谨，朱庆萍，吴大明（169)透明质酸及其在口腔颌面外科领域的研究应用……张震，王晓飞（176)口腔健康影响程度量表在口腔扁平苔藓中应用的研究进展……段丽君，雷建华，武云霞（180)上颌恒尖牙萌出障碍的研究进展……金玲玲，阮文华（184)刃状边缘全瓷冠的研究进展……周怡，管叶，何福明（188)种植体表面抗菌技术的分类与研究进展……张晨秋，王柏翔，王 慧明（258)去除氧化锆修复体唾液污染的表面处理方法……赵颀，朱彦霖，王惠敏，朱松（262)双鱗酸盐在正畸治疗中的新进展与展望……唐中元，姜欢，陈玉，胡敏（266)间充质干细胞来源的脱细胞基质及其研究进展……冯煜婷，姜治 伟，杨国利，谢志坚（271)经牙槽嵴顶上领窦底提升术植骨与否的研究进展……俞丹，王宇，毛英杰，何福明（275)龈沟液成分及含量变化与糖尿病及心血管疾病的关系……谢春雨，陶丹英，冯希平（281)全程导航与部分导航的数字化种植导板的对比分析……邵琴，杨国利（285)单细胞测序研究进展及其在口腔医学中的应用……郑明霞，谭俊龙，刘湘宁，张永彪，王晓刚（353)放射性颌骨坏死的病因学研究进展……韩煜，何悦（362)水化硅酸钙类生物材料在口腔医学领域的研究进展……张峰，顾新华（366)支架材料在牙髓血运重建术中的研究进展……余梦佳，姜治伟，邓淑丽，杨国利（371)iR〇«t生物陶瓷材料性能及其在牙髓病学中的应用研究……刘燕，彭楚芳（376)不同类型的错耠畸形对颞下颌关节形态及功能的影响……关雨欣, 刘玲霞，武秀萍（381)种植体周结缔组织附着的研究进展……付齐月，李尊泰，齐晓爽，韩春雨，张慧彦，张震阳，孟维艳（457)LneRNA调控PDLSCs成骨分化的研究进展……孙唯夫，刘佳，金作林（461)14-3-3蛋内在口腔鱗癌中的表达与作用机制研究进展……李媛，达林泰（465)对髁突特发性吸收与颞下颌关节盘前移位相关性的探究……胡博，张丹（471)错骀畸形评估指数及其在早期矫治评价中的应用……吴滢倩，阮文华（476)KLFs与肿瘤干细胞相关性的研究进展……王家雄，朱慧勇（544) 整合素avp6与牙周炎关系的研究进展……王博，毕良佳（550) 微小RNA对骨衰老调控的相关研究进展……赵萌，江莉婷，高益鸣（554)错骀畸形患者颞下颌关节的CBCT研究进展……董春梅，俞律峰，邹德荣（560)无预备瓷贴面修复研究现状……王鲁涛，张正仪，傅柏平（565)可吸收生物膜在牙周引导组织再生术中的研究进展……张岚，吴燕岷（571)种植修复基台对前牙区牙龈美学影响的研究进展……周益锋，王伟，顾新华（5了6)穿颧种植用于上颂后部骨量不足种植修复的研究进展……吴迪，汤春波（639)巨噬细胞极化在种植体周围组织愈合的作用及研究进展……张 艺，张晓梦，史俊宇，赖红昌（644)牙种植体同位点再植临床考量……杨佳康，王柏翔，王慧明(648)平台转换技术的特点和研究现状……盛敏，章登辉，高佳雨，周益，王慧明（654)窝沟封闭剂的研究现状与进展……石镕嘉，许良，徐稳安(660)糖尿病与牙髓组织病变关系的研究现状……陶硕，张旗(664)钙硅基生物材料的抗菌性能及在根管感染控制中的研究进展……冷迪雅，李谨，朱庆萍，吴大明（668)有限元法模拟下颌磨牙咀嚼载荷的研究进展……王谜，刘定坤，邹俊东，徐通，王倩，姜南希，刘志辉（673)氧化石墨烯在骨组织工程中的研究概况……马瑞，刘志辉(758)负载生长因子引导骨再生屏障膜的研究进展……李娴静，储顺礼，• VI •《口腔医学》2020年第40卷总目次熊成立，郝爽，莫娟萍，张炜，丁典，郑云，王景云(762)凹面型患者颅面部生长发育及其预测的研究进展……谢钦钦，王欣，左森，伊帕热•克力木江，古力巴哈•买买提力(767)牙周炎与系统性红斑狼疮相关性研究进展……张力木，林晓萍(833)牙周炎与阿尔茨海默病双向关系研究……沈慧，宋忠臣（839)牙本质小管堵塞并诱导再矿化的研究进展……朱轩言，田子璐，王惠敏，杨宇斌，朱松（843)成牙本质细胞分化信号通路研究进展……田子璐，刘艺萍，王珏，朱松，孙宏晨，倪世磊（847)KU nx2基因表达与正畸牙移动牙周改建……邵佳琪，张佳男，卢海 平（851)正畸中釉质脱矿的控制与治疗研究进展……买尔旦江•肉孜，胡首杉，曾福磊，周丹，彭怡然（855)偏侧咀嚼与中枢神经系统相关性的研究进展……郝玉秀，杨连平(860)口源性口臭相关微生物及挥发性含硫化合物的产生机制……单晨，叶玮（864)牙本质渗出液对粘接界面的影响……杨宇斌，朱轩言，田子璐，王慧敏，朱松（936)新型镍钛器械弯曲根管成形能力的研究进展……封菲，曹立群，张旗（940)真菌致龋机制的研究进展……张璐瑾，商庆龙（947)智能水凝胶药物控释系统的研究进展……李玉芳，刘君瑜，王翔 宇，肖宇，包崇云（951)锥形束C T在牙槽外科定量测量中精准性及应用的研究进展……刘晓华，王恩博（955)光生物调节治疗颞下颂关节紊乱病的研究进展……刘小雅，罗寒，杨春（960)根管封闭剂对粪肠球菌抗菌作用的研究进展……刘瑾，程小刚，仇環，梅笑寒，程庚，白玉，余擎（1030)仿生生物分子材料在牙体硬组织再矿化中的应用……金启予，邓淑丽，胡济安（ 1037)上颌第一恒磨牙异位萌出类型预测因素研究进展……张峰，邱悦声（1041)P iezol离子通道在口腔医学中的研究进展……杨子圆，卢海平，康婷（1046)CPNE7在口腔组织再生中的相关研究进展……刘紫奇，葛少华(1050)骨形态发生蛋白异源二聚体诱导成骨的研究新进展……周健，涂业颖，赵子慕，黄必行，金佳杨，林海燕（丨054)纳米银颗粒用于牙周和种植体周抗菌的研究进展……梁晔，邵金龙，葛少华（1116)种植义齿的咬合设计……许月丹，金鑫阳，赵维家，蒋文翔，傅柏平（1124)修复体穿龈轮廓塑形在种植美学中的研究应用……沈璐，刘啸 晨，胡济安（1129)Le Fort I型骨切开术鼻唇形态控制的研究进展……王雨墨，李继 华（1133)饮酒与牙周炎的相关性研究进展……唐振兴，唐震航，葛少华(1138)无托槽隐形矫治器的临床应用及疗效评价……吴珊珊，田密，周珊，刘杰，王晓峰（1143)牙源性干细胞来源的外泌体的研究进展……宫晟凯，孙仔昂，王晓，蒋文凯，王玮（1147)外泌体在口腔组织修复与再生中的研究进展……张璐，王凯欣，王晓春（1152)。
牙周韧带细胞膜片技术用于牙周组织再生的研究进展摘要】中重度牙周炎可导致牙周组织破坏后不可自主再生，细胞膜片生物工程参考引导性组织再生原理，应用温敏培养皿方案得到完整细胞片层移植贴附于缺损部位，完成牙槽骨和牙骨质、两者牙周韧带再生的目的。
细胞膜片技术的发展，可有效弥补单层细胞膜片厚度低，自体细胞来源不足、血管化不良等情况，牙周组织再生应用牙周韧带细胞膜片技术在临床得到应用。
【关键词】牙周韧带细胞膜片技术；牙周组织再生；研究进展牙周治疗最终目标为实现牙周组织再生，可完成牙周发育过程，按照形态发生、细胞分化、细胞外基质产生和矿化的过程进行。
引导性组织再生术为临床常用的牙周再生方法，引导可再生牙周细胞占领根面，在已经暴露牙周袋病变根面出现牙周膜纤维埋入新生牙骨质，但该治疗方案，手术适应症严格，在临床应用得到限制[1]。
因此，通过基因技术等开展牙周组织再生为牙周再生的热点。
细胞膜片技术为临床研究的重点，该方案可提供足量组织结构完整健康细胞和胞外基质，对于难治愈性疾病，可促进机体受损功能的恢复，该技术在临床疾病治疗中得到广泛应用。
移植细胞膜片在取代受损组织、补偿受损功能的同时可促进组织休息，可应用牙周组织再生。
1.细胞膜片技术细胞膜片技术经非酶解法得到完整细胞片层，自身分泌胞外基质属“内源性支架”，保留细胞间、胞外基质信号传递，模拟源组织微循环状态，可促进细胞膜片黏附裸露牙根，制作细胞膜片技术包括以下几个[2]：（1）温敏培养皿：经低温处理可得到完整全层细胞膜片，可控制组织工程支架降解，克服细胞悬液注射局限，可应用在制作黏性细胞膜片。
（2）自身收缩力机械获得：PDLC经体外培养可形成细胞膜片，厚度适宜，纯物理性脱位，生物相容性好，安全性高，经济，实用性强，但其收缩面积具有一定随机性，技术要求高。
（3）编织PGA获取支架：该方法制作细胞膜片优势为：膜片易取下，避免膜片收缩，短时间内形成符合多层细胞膜片，易按照术区缺损调整膜片，附着于弯曲表面，手术过程肉眼可见，但该方法可能出现支架材料吸收、排异，因此生物相容性较上述两种方法略低，处理过程复发，增加污染可能。
［文章编号］㊀１６７４⁃８６０３（２０２０）０４⁃０２７０⁃００牙周膜干细胞在牙周组织再生中的研究新进展吴博昊１，安莹２∗（１．空军军医大学基础医学院，陕西西安７１００３２；２．军事口腔医学国家重点实验室，国家口腔疾病临床研究中心，陕西省口腔生物工程技术研究中心，空军军医大学口腔医院牙周病科，陕西西安７１００３２）［摘要］㊀牙周膜干细胞（ＰＤＬＳＣｓ）具有增殖及多向分化潜能等特性，在牙周组织再生方面具有广阔的应用前景㊂本文总结了ＰＤＬＳＣｓ的生物学特性及其在牙周组织再生中的最新应用，并对其将来的临床应用前景进行展望㊂［关键词］㊀牙周膜干细胞；牙周再生；组织工程［中图分类号］㊀Ｒ７８１．４㊀㊀［文献标识码］㊀Ａ㊀㊀［ｄｏｉ］㊀１０．３９６９／ｊ．ｉｓｓｎ．１６７４⁃８６０３．２０２０．０４．０１３基金项目：国家自然科学基金（８１７００９７１）∗通信作者：安莹，Ｅｍａｉｌ：ａｎｙｉｎｇ＠ｆｍｍｕ．ｅｄｕ．ｃｎ㊀㊀牙周炎是由牙菌斑引起的牙周组织的慢性炎症，进而造成牙槽骨的破坏吸收，是导致牙齿缺失的主要原因之一㊂近期的研究表明牙周炎与一些全身系统的疾病密切相关，例如阿兹海默症［１］㊁冠心病［２］以及免疫系统疾病［３］等㊂牙周炎的传统治疗，如洁治术和刮治术等，可以控制炎症，但难以恢复牙周组织的形态和功能㊂牙周组织再生是通过组织工程的方法，在体外利用种子细胞㊁生长因子以及生物支架，搭建出三维的移植复合体，以修复和改善牙周组织的形态和功能［４］㊂种子细胞是组织工程的核心和必要成分，牙周膜干细胞（ｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ，ＰＤＬＳＣｓ）是一类有克隆增殖能力㊁多向分化潜能和免疫调控等生物学特性的成体干细胞㊂由于ＰＤＬＳＣｓ是从牙周组织中分离获取，因而也是最适宜牙周再生的种子细胞之一㊂生长因子在牙周再生中具有重要作用，适宜的生长因子可以促进干细胞的增殖㊁分化以及生成组织的能力㊂支架材料应当具有生物相容性㊁可降解性㊁高孔隙率以及良好的表面活性等特性［５］，为干细胞提供附着㊁增殖㊁分化和分泌细胞外基质的土壤㊂本文从上述角度出发，对ＰＤＬＳＣｓ生物学特性㊁牙周再生的支架材料㊁牙周再生的生物活性分子以及近年用ＰＤＬＳＣｓ进行牙周再生的临床实验作一综述㊂１㊀ＰＤＬＳＣｓ的生物学特性１．１㊀ＰＤＬＳＣｓ的来源以及表面标记牙周膜组织是连接牙根与牙槽骨的致密结缔组织，其主要生理功能是缓冲牙合力㊁稳固支持和营养等作用㊂ＰＤＬＳＣｓ是从牙周膜组织中分离出的一类干细胞㊂２００４年，Ｓｅｏ等［６］首次利用酶消化法从人的牙周膜组织中分离出ＰＤＬＳＣｓ，这种干细胞表现出类似间充质干细胞（ｍｙｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓ，ＭＳＣｓ）的生物学特性，同时也会表达ＭＳＣｓ的相关标记㊂因而，起初研究者会使用ＭＳＣｓ的相关标记物鉴别ＰＤＬＳＣｓ，如基质细胞抗原１（ｓｔｒｏｍａｌｃｅｌｌａｎｔｉｇｅｎ１，ＳＴＲＯ１）㊁ＣＤ１４６和粘蛋白１８（ｍｕｃｏｐｒｏｔｅｉｎ，ＭＵＣ１８）㊂Ｔｒｕｂｉａｎｉ等［７］在ＰＤＬＳＣｓ表面检测到了更多的ＭＳＣｓ标记物，包括ＣＤ１０㊁ＣＤ２６㊁ＣＤ２９㊁ＣＤ７３和卷曲受体蛋白９（Ｆｒｉｚｚｌｅｄ⁃９，ＦＺＤ９）等；同时ＰＤＬＳＣｓ表面也会存在一些基质细胞㊁内皮细胞的标记物，如ＣＤ４４㊁ＣＤ９０㊁ＣＤ１０５㊁ＣＤ１６６㊁ＳＴＲＯ３等［８］㊂相对于外周血和脐带来源的ＭＳＣｓ，ＰＤＬＳＣｓ有更多的胚胎干细胞的标记物表达［９］，这些分子能够一定程度体现干细胞的未分化特性㊂例如：相比牙髓干细胞（ｄｅｎｔａｌｐｕｌｐｓｔｅｍｃｅｌｌｓ，ＤＰＳＣｓ）和骨髓间充质干细胞（ｂｏｎｅｍａｒｒｏｗｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓ，ＢＭＭＳＣｓ），ＰＤＬＳＣｓ会表达更多的阶段特异性抗原４（ｓｔａｇｅ⁃ｓｐｅｃｉｆｉｃｅｍｂｒｙｏｎｉｃａｎｔｉｇｅｎ４，ＳＳＥＡ⁃４），这表明ＰＤＬＳＣｓ具有ＭＳＣｓ样的性质以及更多未分化细胞的特性［８］㊂１．２㊀ＰＤＬＳＣｓ的增殖能力ＰＤＬＳＣｓ在体外具有一定克隆增殖的能力，其增殖潜能比ＢＭＭＳＣｓ和ＤＰＳＣｓ更强［１０］，通常ＢＭＭＳＣｓ在第５０代时就已经无法继续传代，而ＰＤＬＳＣｓ在第１００代时仍然保有一定的增殖能力［１１］㊂Ｌｉｕ等［１２］发现处于咀嚼应力区的牙周组织，会表现出更强的活性和自我修复能力，这表明ＰＤＬＳＣｓ的增殖能力与机械负荷相关㊂Ｍｏｎｎｏｕｃｈｉ等［１３］发现白介素（ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ，ＩＬ）⁃１１㊁血管紧缩素（ａｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ，Ａｎｇ）Ⅱ及其２型受体（ＡｎｇⅡｒｅｃｅｐｔｏｒｔｙｐｅ２，ＡＧＴＲ２）参与了机械负荷对ＰＤＬＳＣｓ的增殖能力的调控，机械负荷会促进ＰＤＬＳＣｓ分泌ＩＬ⁃１１，作用于ＡｎｇⅡ／ＡＧＴＲ２通路促进ＰＤＬＳＣｓ的增殖㊂缺氧环境也会促进ＰＤＬＳＣｓ的增殖［１４］，经过音猬因子（ｓｏｎｉｃｈｅｄｇｅｈｏｇ，Ｓｈｈ）处理的ＰＤＬＳＣｓ也表现出更高的增殖能力［１５］㊂还有研究表明，在牙周病中起重要作用的炎症调控因子ＩＬ⁃１０的上调也可以促进ＰＤＬＳＣｓ的增殖［１６］㊂１．３㊀ＰＤＬＳＣｓ的多向分化潜能１．３．１㊀成骨分化能力㊀Ｓｅｏ等［６］首次发现了ＰＤＬＳＣｓ的成骨能力，他们将ＰＤＬＳＣｓ与羟基磷灰石（ｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅ，ＨＡ）／β⁃磷酸三钙（β⁃ｔｒｉｃａｌｃｉｕｍｐｈｏｓｐｈａｔｅ，β⁃ＴＣＰ）陶瓷的复合材料移植至大鼠体内，６ ８周后处死大鼠，茜素红染色显示生成大量矿化结节，免疫组化结果检测到大量成骨相关分子的高表达㊂ＰＤＬＳＣｓ的成骨能力也受多方面因素影响，Ｚｈａｏ等［１７］用脂多糖（ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ，ＬＰＳ）模拟ＰＤＬＳＣｓ的炎症环境，并加入了芦丁，碱性磷酸酶（ａｌｋａｌｉｎｅｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ，ＡＬＰ）和茜素红染色等结果显示，芦丁可以有效地减弱炎症状态对于ＰＤＬＳＣｓ成骨的抑制㊂外泌体对ＰＤＬＳＣｓ的成骨分化也有调节作用，Ｗａｎｇ等［１８］在成骨诱导条件下的ＰＤＬＳＣｓ中加入了人脱落乳牙牙髓干细胞（ｓｔｅｍｃｅｌｌｓｆｒｏｍｅｘｆｏ⁃ｌｉａｔｅｄｄｅｃｉｄｕｏｕｓｔｅｅｔｈ，ＳＨＥＤ）来源的外泌体，促进了ＰＤＬＳＣｓ的成骨分化㊂骨组织的恢复是牙周组织再生的关键之一，因而ＰＤＬＳＣｓ成骨能力方面的研究，对于牙周再生有十分重要的意义㊂１．３．２㊀成脂分化能力㊀ＰＤＬＳＣｓ的成脂能力最早也是由Ｓｅｏ的团队所发现，他们在ＰＤＬＳＣｓ的培养基中加入含有胰岛素㊁地塞米松等成分的 鸡尾酒 成脂诱导液，３周后油红Ｏ染色后可见细胞内的脂滴，ＲＴ⁃ＰＣＲ检测也显示成脂分子 过氧化物酶体增殖物激活受体γ２（ｐｅｒｏｘｉｓｏｍｅｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｏｒ⁃ａｃｔｉｖａｔｅｄｒｅｃｅｐｔｏｒγ２，ＰＰＡＲγ２）的表达大量上调［６］㊂Ｄｅｎｇ等［１９］在２５ｍｍｏｌ／Ｌ葡萄糖的高糖环境下培养ＰＤＬＳＣｓ，发现其成脂能力会有提升，成脂诱导７ｄ后ＲＴ⁃ＰＣＲ结果显示，ＰＰＡＲγ等成脂相关分子的ｍＲＮＡ远高于对照组，但成骨能力会受到抑制，这或许也是糖尿病患者ＰＤＬＳＣｓ修复能力明显减弱的原因之一㊂Ｙａｎｇ等［２０］用一氧化氮合成酶的抑制剂 Ｌ⁃单甲基精氨酸作用于ＰＤＬＳＣｓ，其成脂的能力明显提升，但成骨能力也受到了抑制㊂许多研究都证实了ＰＤＬＳＣｓ的成脂能力，但上文所述的成脂能力和成骨能力互相拮抗的机制或许会为如何提高ＰＤＬＳＣｓ的成骨能力，提供一种新的思路㊂１．３．３㊀其他的分化能力㊀ＰＤＬＳＣｓ可以形成Ｓｈａｒｐｅｙ纤维样的组织：Ｌｉｍ等［２１］用β⁃卡波林生物碱处理ＰＤＬＳＣｓ，将其播种至双相磷酸钙，移植到免疫缺陷小鼠的皮下，８周后ＰＤＬＳＣｓ表现出更高的矿化程度，并且形成类似Ｓｈａｒｐｅｙ纤维样的组织垂直连接矿化组织，这对牙周再生具有重要意义㊂ＰＤＬＳＣｓ还具有成牙骨质的能力：Ｊｉｎ等［２２］用纤溶酶原激活物抑制剂（ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎａｃｔｉｖａｔｏｒｉｎｈｉｂｉｔｏｒ⁃１，ＰＡＩ⁃１）处理ＰＤＬＳＣｓ，将其与ＨＡ／β⁃ＴＣＰ和人牙根牙本质基质制成的移植复合物移植至免疫缺陷小鼠的背部，８周后在ＨＡ／β⁃ＴＣＰ表面形成了牙骨质样物质㊂除此以外，ＰＤＬＳＣｓ还可通过短时机械应力刺激，分化为表达肌动蛋白㊁心肌肌钙蛋白Ｔ等心肌标记物的心肌样细胞［２３］；用胰岛素㊁激活素⁃Ａ㊁丁酸钠㊁２⁃巯基乙醇等可将ＰＤＬＳＣｓ诱导为可在高糖环境下分泌胰岛素的胰岛样细胞［２４］；ＰＤＬＳＣｓ还可以分化为视网膜神经节样细胞，表达神经元和视网膜的相关标记物，并且可以形成有效突触［２５］㊂由于人ＰＤＬＳＣｓ可以来源于作用较少的第三磨牙，因而除了用于骨组织和牙周组织再生，还被用于软骨组织㊁神经组织㊁心肌组织等多种组织的再生㊂２㊀生长因子对ＰＤＬＳＣｓ调控生长因子可以有效地促进ＰＤＬＳＣｓ的增殖㊁分化以及成骨能力㊂近年来，除了经典的生长因子，其他一些生物活性分子也被用于牙周再生，如微小ＲＮＡ（ｍｉｃｒｏＲＮＡ，ｍｉＲＮＡ）㊁成骨信号分子等㊂２．１㊀经典生长因子转化生长因子（ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ，ＴＧＦ）β１㊁胰岛素样生长因子（ｉｎｓｕｌｉｎ⁃ｌｉｋｅｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ，ＩＧＦ）等经典生长因子广泛存在于外周血及血小板制品中，如富血小板血浆（ｐｌａｔｅｌｅｔ⁃ｒｉｃｈｐｌａｓｍａ，ＰＲＰ）㊁富血小板纤维蛋白（ｐｌａｔｅｌｅｔ⁃ｒｉｃｈｆｉｂｒｉｎ，ＰＲＦ）等㊂因此，许多学者研究了这类血小板制品对于牙周再生的影响㊂Ｋｏｒｎｓｕｔｈｉｓｏｐｏｎ等［２６］在犬的牙周炎动物模型中采取翻瓣术并加入ＰＲＦ的方法，这种方法有效地减轻了炎症，并且有更多的Ａ１型Ⅰ型胶原（Ｃｏｌｌａｇｅｎ１Ａ１，Ｃｏｌ１Ａ１）和Ａ１型Ⅲ型胶原（Ｃｏｌｌａ⁃ｇｅｎ３Ａ１，Ｃｏｌ３Ａ１）的分泌，而Ｃｏｌ１Ａ１和Ｃｏｌ３Ａ１的分泌水平能够反映ＰＤＬＳＣｓ的成骨能力㊂Ｄｕａｎ等［２７］将ＰＲＦ与ＰＤＬＳＣｓ的复合物移植至小鼠的牙周组织，结果显示这种处理会上调移植物骨涎蛋白（ｂｏｎｅｓｉａｌｏｐｒｏｔｅｉｎ，ＢＳＰ）㊁骨钙蛋白（ｏｓｔｅｏｃａｌｃｉｎ，ＯＣＮ）㊁Ｒｕｎｔ相关转录因子２（ｒｕｎｔ⁃ｒｅｌａｔｅｄｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒ２，ＲＵＮＸ２）和ＡＬＰ的水平，且可以观察到更多的骨质的生成㊂Ａｍｍａｒ等［２８］利用水凝胶材料包裹含ＴＧＦ⁃β１㊁ＩＧＦ⁃１㊁血小板源生长因子（ｐｌａｔｅｌｅｔｄｅｒｉｖｅｄｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ，ＰＤＧＦ）的冻干血小板浓缩液，研究表明这种材料可以有效地释放生长因子，提升ＰＤＬＣＳｓ的生物活性及增殖能力㊂这也为解决生长因子难以被缓释㊁有效递送和吸收的问题，提供了一种值得借鉴的方法㊂２．２㊀成骨相关分子成骨相关分子在组织再生的过程中起到调控和诱导成骨的作用，其中一类重要的成骨相关分子是信号分子，这是一类在细胞间或是细胞内传递信息的生物分子㊂常用于牙周再生的信号分子主要是成骨相关的信号分子，例如骨形成蛋白（ｂｏｎｅｍｏｒｐｈｏ⁃ｇｅｎｅｔｉｃｐｒｏｔｅｉｎ，ＢＭＰ）㊂Ａｃｉｌ等［２９］研究表明ＢＭＰ⁃７可以上调ＰＤＬＳＣｓ中骨桥蛋白（ｏｓｔｅｏｐｏｎｔｉｎｅ，ＯＰＮ）和ＯＣＮ等成骨相关蛋白的表达，而且ＰＤＬＳＣｓ会被诱导为成骨细胞样／成牙骨质细胞样的细胞㊂Ｋａｎｇ等［３０］利用碱性成纤维细胞生长因子（ｂａｓｉｃｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ，ｂＦＧＦ）对ＰＤＬＳＣｓ的增殖能力的促进作用，将其与ＢＭＰ⁃２协同作用于ＰＤＬＳＣｓ，增强了ＰＤＬＳＣｓ的成骨及矿化能力，同时有效地弥补了ｂＦＧＦ对ＰＤＬＳＣｓ成骨的抑制作用，这种处理方法在牙周再生中值得借鉴㊂２．３㊀ｍｉＲＮＡ根据目前文献，可以促进ＰＤＬＳＣｓ成骨分化的ｍｉＲＮＡ有ｍｉＲ２２㊁ｍｉＲ２１０㊁ｍｉＲ２９９⁃５ｐ㊁ｍｉＲ５４３等，而抑制ＰＤＬＳＣｓ成骨分化能力的有ｍｉＲ１２５ｂ㊁ｍｉＲ１３２等［３１⁃３６］㊂值得注意的是ｍｉＲ２１８，虽然尚未有文献报导ｍｉＲ２１８对ＰＤＬＳＣｓ的调控，但是ｍｉＲ２１８却可以通过基质金属蛋白酶⁃９（ｍａｔｒｉｘｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ，ＭＭＰ９），抑制破骨细胞的活性，缓解炎症状态，这无疑对牙周再生也是有积极意义的［３７］㊂但是，在临床上实现ｍｉＲＮＡ的有效递送和转运却极其困难㊂Ｌｉｕ等［３８］利用聚乳酸㊁聚乙二醇㊁介孔二氧化硅纳米粒子㊁聚乳酸⁃乙醇酸微球等材料，制作出一种可以携带并长时间缓释ｍｉＲＮＡ以及生长因子的纳米纤维海绵球，将这种材料复合ｍｉＲ⁃１０ａ／ＩＬ⁃２／ＴＧＦ⁃β，移植至牙周炎小鼠模型后，成骨相关分子的表达上调，再生的骨量也有明显提升㊂２．４㊀其他调控ＰＤＬＳＣｓ成骨作用的分子其他一些生物活性分子，对于ＰＤＬＳＣｓ的成骨也具有促进作用㊂Ｊｉａ等［３９］发现二甲双胍可以通过蛋白激酶Ｂ／核因子相关因子２通路，促进ＰＤＬＳＣｓ的成骨作用，并对氧化应激状态下的ＰＤＬＳＣｓ具有一定的保护作用㊂芦丁也可以有效地抵抗炎症状态下ＰＤＬＳＣｓ成骨分化受到的抑制作用［１７］㊂３㊀用于ＰＤＬＳＣｓ进行牙周再生支架材料生物支架材料为干细胞提供了适宜再生的三维微环境，良好的生物支架材料可以有效地促进细胞的附着㊁增殖㊁分化和组织生成㊂随着材料学的发展，近年也出现了更多应用于牙周再生的新材料㊂３．１㊀羟基磷灰石ＨＡ是人骨骼的主要无机成分，具有良好的生物相容性㊂Ｐａｒｋ等［４０］将ＨＡ与ＴＣＰ复合的生物材料作为支架，播种ＰＤＬＳＣｓ后移植至小鼠皮下，观察到了牙周膜样组织㊁骨样组织和牙骨质样的组织，甚至还观察到了类似Ｓｈａｐｅｙ纤维的组织，这对于实现牙周组织更全面的再生无疑有重大意义㊂Ｈｉｇｕｃｈｉ等［４１］利用超声喷涂和静电喷涂的方法，在聚合物生物膜表面修饰了一层厚度约为２ ３μｍ的纳米羟基磷灰石，涂层可以有效减缓生物膜的降解，增加生物膜的润湿度，而且细胞毒性较低㊂Ｗｉｊｅｄａｓａ等［４２］将鲷鱼和鲑鱼两种鱼鳞来源的ＨＡ，与肽纳米纤维复合成支架材料进行细胞学实验，细胞活力㊁ＡＬＰ活性和茜素红染色的结果都显示，这两种材料明显优于对照组，且鲑鱼组的细胞成骨分化能力更强㊂Ｏｕ等［４３］同样利用静电纺丝技术在一种玉米蛋白复合明胶的支架材料中加入了纳米羟基磷灰石，研制出了一种玉米蛋白／明胶／纳米羟基磷灰石复合的纳米生物支架，这种材料具有极为良好的表面润湿性，并且还可以促进人ＰＤＬＳＣｓ的附着㊁增殖和成骨的分化㊂ＨＡ具有与骨质相似的结构㊂其前体β⁃ＴＣＰ会在植入后６ ９个月内被替代㊁吸收，并在吸收的过程中提供成骨相关的钙离子㊁镁离子㊁磷酸根离子等，这些离子还会激活ＡＬＰ等成骨的关键酶，这些对于成骨及矿化至关重要的离子是其他材料所不具备的［４４⁃４５］㊂３．２㊀明胶明胶因其生物相容性㊁可降解㊁亲水等性能，近年来常作为生物支架材料用于组织再生㊂Ｙａｎｇ等［４６］研制出了一种玉米蛋白复合明胶的生物支架，这种材料具有良好的表面润湿性，并且其中的玉米蛋白有良好的生物亲和性能以及可降解性，可以有效地促进人ＰＤＬＳＣｓ的增殖和附着，但是对于ＰＤＬＳＣｓ的成骨性能并无明显的调节作用㊂Ｐａｎ等［４７］构建了一种明胶／甲基丙烯酸盐（ｇｅｌａｔｉｎｍｅｔｈ⁃ａｃｒｙｌａｔｅ，ＧｅｌＭＡ）水凝胶的包裹体系，其具有较大的溶胀比㊁良好的通透性和大量的纤维网络，可以为ＰＤＬＳＣｓ提供适宜附着㊁增殖和成骨分化的微环境㊂ＧｅｌＭＡ水凝胶包裹ＰＤＬＳＣｓ修复牙周病所造成的骨缺损，显微ＣＴ和组织学切片显示可以形成更多的骨增量，ＡＬＰ的活性也有显著提升㊂明胶可以加工成为水凝胶的形态，这种形态具有多孔结构，有利于进行细胞和分子的有效募集和递送；同时这种形态可以在募集了干细胞和生长因子后，采用注射的方式移植至缺损部位，对于骨缺损体积普遍较小的牙周组织，这种方式会有效降低手术难度［４８］㊂３．３㊀壳聚糖壳聚糖具有利于生物分子缓释的多孔结构，也是组织工程的理想材料之一㊂ＮｉｖｅｄｈｉｔｈａＳｕｎｄａｒａｍ等［４９］用静电纺丝技术制作出了聚己内酯和壳聚糖的双层复合物，这种材料具有多孔性和利于蛋白质粘附的特性，播种干细胞以后，干细胞的ＡＬＰ活性以及胶原蛋白的表达都有明显升高㊂Ｌｉ等［５０］研制了一种ＴＧＦ⁃β３和壳聚糖凝胶海绵的的复合物，可以大幅提升体外实验中人ＰＤＬＳＣｓ的增殖速率和ＡＬＰ活性，Ⅰ型胶原㊁ＡＬＰ㊁ＴＧＦ⁃βＲＩ㊁ＴＧＦ⁃βＲＩＩ等成骨相关分子也有更高的表达㊂同时壳聚糖还存在一定的免疫调节效应㊂Ｓｈｕ等［５１］将壳聚糖修饰为２⁃Ｏ，６⁃Ｎ硫酸化壳聚糖（２⁃Ｎ，６⁃Ｏ⁃ｓｕｌｆａｔｅｄｃｈｉｔｏｓａｎ，２６ＳＣＳ），２６ＳＣＳ会在移植的初期短时地活化巨噬细胞，并促进炎症反应，这种反应会逐渐转变为对炎症反应的抑制，他们推测这种免疫调节能力可能形成良好的免疫微环境，这种微环境在成骨的过程中会增强干细胞与免疫细胞间的交流，有利于成骨的过程，并且２６ＳＣＳ还会通过成骨相关的通路促进干细胞的成骨能力㊂Ｌｉ等［５２］还将壳寡糖进行磺酸化处理，磺化壳寡糖可以与ｂＦＧＦ产生更紧密的结合㊂ｂＦＧＦ可以有效促进人ＰＬＤＳＣｓ的体外增殖，抑制其成骨分化，但磺化壳寡糖可以缓解ｂＦＧＦ对于ＰＤＬＳＣｓ的成骨分化抑制，表明磺化壳寡糖可能存在一定的促进成骨能力㊂Ｇｅ等［５３］将壳聚糖涂布于纳米羟基磷灰石，在其表面培养的ＰＤＬＳＣｓ表现出更高的成活率，更高的ＡＬＰ活性以及ＢＳＰ㊁ＯＰＮ㊁ＯＣＮ等成骨相关蛋白的表达㊂壳聚糖的独特优势在于其抗菌特性，这种特性在有菌的口腔环境下具有独特优势；同时壳聚糖还可以加工成与上述明胶类似的水凝胶形态支架材料㊂但壳聚糖的缺点是灭菌过程会降低其分子量㊁黏度和凝胶化程度，这可能会导致其对细胞的募集能力下降［５４⁃５５］㊂如上文所述，不同材料具有不同的生物学特性，各有优劣，因而可以结合各种材料优势，研制出多种材料复合的㊁具有良好生物学特性㊁理化性质以适宜的微观表面结构的材料，或许是未来牙周组织再生的关键㊂４㊀ＰＤＬＳＣｓ用于牙周再生的动物实验及临床研究关于ＰＤＬＳＣｓ应用于牙周再生的动物实验前文已有所叙述，但许多动物模型并不是牙周炎模型，未将细胞移植至颌骨内㊂Ｉｗａｓａｋｉ等［５６］在免疫缺陷小鼠的第一磨牙处通过手术建立了Ⅱ度骨缺损的牙周炎模型，以人的羊膜为支架移植入人ＰＤＬＳＣｓ，结果显示在牙周膜间隙内形成更加粗大的胶原束，几近垂直的连接着新形成的类牙骨质层与新生骨组织㊂Ｎｕñｅｚ等［５７］则在犬的上颌第一磨牙通过手术建立了牙周炎模型，但实验结果却显示ＰＤＬＳＣｓ对于牙周组织再生无影响，其原因可能是手术破坏较深，达到了根分叉以下，移植的细胞数量可能不足，而且未使用生物膜㊂这提示在牙周再生中，移植与缺损量相匹配的ＰＤＬＳＣｓ以及维持ＰＤＬＳＣｓ的相对稳定，都是十分重要的㊂鉴于干细胞疗法安全和伦理学问题一直存在争议，近年来ＰＤＬＳＣｓ用于临床研究十分有限㊂Ｃｈｅｎ等［５８］采用单中心随机实验的方法将３０名有骨缺损的牙周炎患者分为两组，实验组用自体ＰＤＬＳＣｓ＋引导组织再生（ｇｕｉｄｅｄｔｉｓｓｕｅｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，ＧＴＲ）＋人工骨粉，而对照组仅用ＧＴＲ＋人工骨粉，虽然实验结果显示两组的临床疗效并无统计学差异，然而却证实了自体ＰＤＬＳＣｓ移植的安全性㊂Ｓｈａｌｉｎｉ等［５９］将２８名中重度牙周炎患者随机分为两组，比较了在翻瓣手术中移植自体ＰＤＬＳＣｓ与仅实施翻瓣术两种治疗方法的疗效㊂ＰＤＬＳＣｓ从患者自身智齿获取，与其周围的细胞外基质一同迅速与明胶支架材料混合，植入骨缺损；术后３㊁６㊁９㊁１２个月，相对于对照组，实验组牙周袋深度明显降低，骨缺损区的骨密度明显增加㊂Ｉｗａｔａ等［６０］则是挑选了牙周袋深度超过了４ｍｍ的患者，利用患者自体智齿获取的ＰＤＬＳＣｓ，在体外用自体ＰＤＬＳＣｓ与β⁃ＴＣＰ支架和可降解的聚乙二醇酸网制成的细胞膜片移植至牙周缺损的区域；６个月后，相比对照组，实验组患者牙周袋深度㊁临床附着丧失和骨高度都得到了明显地改善㊂上述研究结果表明，使用自体ＰＤＬＳＣｓ治疗牙周炎，目前为止是相对安全的㊂然而目前对于此种疗法的适应证（如牙周袋深度㊁牙齿松动度㊁骨缺损度等）和根分叉病变等牙周炎并发症是否也适用此种疗法，并没有文献报道㊂目前已报道的文献是以需翻瓣治疗甚至植骨的中重度牙周炎作为此种疗法的适应症㊂临床的有效性方面，目前只有文献证明对于牙周袋超过４ｍｍ的中重度牙周炎患者，ＰＤＬＳＣｓ自体移植的治疗可能是有效的［６０］㊂因而还需要大样本量的临床研究，以进一步探究其临床的有效性和具体适应症㊂５ 展望组织工程技术的飞速发展，为牙周再生这一新型治疗方法打下了更深厚的基础，但牙周再生需要面临诸多方面的问题和挑战㊂首先是干细胞的大量获取，作为最适宜牙周再生的干细胞之一的ＰＤＬＳＣｓ，人体来源极其单一，尤其是患有重度牙周病的患者㊂近年来细胞编程技术的出现可以提供解决思路，即用成体细胞诱导为诱导多能干细胞（ｉｎ⁃ｄｕｃｅｄｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ，ｉＰＳＣｓ），进而诱导为所需的细胞［６１］㊂Ｈａｍａｎｏ等［６２］曾将真皮成纤维细胞诱导为ｉＰＳＣｓ，进而诱导为ＰＤＬＳＣｓ㊂其次是如何便捷地制作出适宜ＰＤＬＳＣｓ生长分化，可以递送各种生长因子的支架材料，这类支架材料应当具有良好的生物相容性㊁可降解㊁亲水性，适宜的微观表面形貌和多孔结构，能够与一些包裹生长因子的载体紧密的结合㊂最后，ＰＤＬＳＣｓ应用于牙周再生的安全性和有效性还需要大样本量的临床实验来证明㊂［参㊀考㊀文㊀献］［１］㊀ＴｏｎｓｅｋａｒＰＰ，ＪｉａｎｇＳＳ，ＹｕｅＧ．Ｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｄｉｓｅａｓｅ，ｔｏｏｔｈｌｏｓｓａｎｄｄｅｍｅｎｔｉａ：Ｉｓｔｈｅｒｅａｌｉｎｋ？Ａｓｙｓｔｅｍａｔｉｃｒｅｖｉｅｗ［Ｊ／ＯＬ］．Ｇｅｒ⁃ｏｄｏｎｔｏｌｏｇｙ，２０１７，３４（２）：１５１⁃１６３［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｇｅｒ．１２２６１．［２］㊀ＺａｎｅｌｌａＳＭ，ＰｅｒｅｉｒａＳＳ，ＢａｒｂｉｓａｎＪＮ，ｅｔａｌ．Ｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｄｉｓｅａｓｅ，ｔｏｏｔｈｌｏｓｓａｎｄｃｏｒｏｎａｒｙｈｅａｒｔｄｉｓｅａｓｅａｓｓｅｓｓｅｄｂｙｃｏｒｏｎａｒｙａｎｇｉｏｇ⁃ｒａｐｈｙ：ａｃｒｏｓｓ⁃ｓｅｃｔｉｏｎａｌｏｂｓｅｒｖａｔｉｏｎａｌｓｔｕｄｙ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＲｅｓ，２０１６，５１（２）：２２１⁃２２７［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｊｒｅ．１２３０１．［３］㊀ＭｉｃｈａｕｄＤＳ，ＦｕＺ，ＳｈｉＪ，ｅｔａｌ．ＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＤｉｓｅａｓｅ，ＴｏｏｔｈＬｏｓｓ，ａｎｄＣａｎｃｅｒＲｉｓｋ［Ｊ／ＯＬ］．ＥｐｉｄｅｍｉｏｌＲｅｖ，２０１７，３９（１）：４９⁃５８［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０９３／ｅｐｉｒｅｖ／ｍｘｘ００６．［４］㊀ＬａｎｇｅｒＲ，ＶａｃａｎｔｉＪＰ．Ｔｉｓｓｕｅｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ［Ｊ／ＯＬ］．Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９３，２６０（５１１０）：９２０⁃９２６［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１２６／ｓｃｉｅｎｃｅ．８４９３５２９．［５］㊀ＣａｒｍａｇｎｏｌａＤ，ＴａｒｃｅＭ，ＤｅｌｌａｖｉａＣ，ｅｔａｌ．Ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄｓｃａｆｆｏｌｄｓａｎｄｃｅｌｌ⁃ｂａｓｅｄｔｈｅｒａｐｙｆｏｒｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＡｐｐｌＢｉｏｍａｔｅｒＦｕｎｃｔＭａｔｅｒ，２０１７，１５（４）：ｅ３０３⁃ｅ３１２［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．５３０１／ｊａｂｆｍ．５０００３８９．［６］㊀ＳｅｏＢＭ，ＭｉｕｒａＭ，ＧｒｏｎｔｈｏｓＳ，ｅｔａｌ．Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｏｆｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔｐｏｓｔｎａｔａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓｆｒｏｍｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔ［Ｊ／ＯＬ］．Ｌａｎｃｅｔ，２００４，３６４（９４２９）：１４９⁃１５５［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／Ｓ０１４０⁃６７３６（０４）１６６２７⁃０．［７］㊀ＴｒｕｂｉａｎｉＯ，ＺａｌｚａｌＳＦ，ＰａｇａｎｅｌｌｉＲ，ｅｔａｌ．Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｐｒｏｆｉｌｅｏｆｔｈｅｅｍｂｒｙｏｎｉｃｍａｒｋｅｒｓｎａｎｏｇ，ＯＣＴ⁃４，ＳＳＥＡ⁃１，ＳＳＥＡ⁃４，ａｎｄｆｒｉｚｚｌｅｄ⁃９ｒｅｃｅｐｔｏｒｉｎｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＣｅｌｌＰｈｙｓｉｏｌ，２０１０，２２５（１）：１２３⁃１３１［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１００２／ｊｃｐ．２２２０３．［８］㊀ＷａｄａＮ，ＭｅｎｉｃａｎｉｎＤ，ＳｈｉＳ，ｅｔａｌ．Ｉｍｍｕｎｏｍｏｄｕｌａｔｏｒｙｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＣｅｌｌＰｈｙｓｉｏｌ，２００９，２１９（３）：６６７⁃６７６［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１００２／ｊｃｐ．２１７１０．［９］㊀Ｔｒｉｖａｎｏｖｉｃ＇Ｄ，Ｊａｕｋｏｖｉｃ＇Ａ，Ｐｏｐｏｖｉｃ＇Ｂ，ｅｔａｌ．Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｏｒｉｇｉｎ：Ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅｅｖａｌｕａｔｉｏｎｏｆｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｖｅｃａ⁃ｐａｃｉｔｙ，ｔｅｌｏｍｅｒｅｌｅｎｇｔｈａｎｄｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｃｙｍａｒｋｅｒｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＬｉｆｅＳｃｉ，２０１５，１４１：６１⁃７３［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｌｆｓ．２０１５．０９．０１９．［１０］ＥｌｅｕｔｅｒｉｏＥ，ＴｒｕｂｉａｎｉＯ，ＳｕｌｐｉｚｉｏＭ，ｅｔａｌ．Ｐｒｏｔｅｏｍｅｏｆｈｕｍａｎｓｔｅｍｃｅｌｌｓｆｒｏｍｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔａｎｄｄｅｎｔａｌｐｕｌｐ［Ｊ／ＯＬ］．ＰＬｏＳＯｎｅ，２０１３，８（８）：ｅ７１１０１［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１３７１／ｊｏｕｒｎａｌ．ｐｏｎｅ．００７１１０１．［１１］ＳｈｉＳ，ＢａｒｔｏｌｄＰＭ，ＭｉｕｒａＭ，ｅｔａｌ．Ｔｈｅｅｆｆｉｃａｃｙｏｆｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓｔｏｒｅｇｅｎｅｒａｔｅａｎｄｒｅｐａｉｒｄｅｎｔａｌｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＯｒｔｈｏｄＣｒａｎｉｏｆａｃＲｅｓ，２００５，８（３）：１９１⁃１９９［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔ⁃ｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｊ．１６０１⁃６３４３．２００５．００３３１．ｘ．［１２］ＬｉｕＪ，ＬｉＱ，ＬｉｕＳ，ｅｔａｌ．ＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＬｉｇａｍｅｎｔＳｔｅｍＣｅｌｌｓｉｎｔｈｅＰｅｒｉｏｄｏｎｔｉｔｉｓＭｉｃｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔＡｒｅＳｅｎｓｉｔｉｖｅｔｏＳｔａｔｉｃＭｅｃｈａｎｉｃａｌＳｔｒａｉｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＳｔｅｍＣｅｌｌｓＩｎｔ，２０１７，２０１７：１３８０８５１［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１５５／２０１７／１３８０８５１．［１３］ＭｏｎｎｏｕｃｈｉＳ，ＭａｅｄａＨ，ＹｕｄａＡ，ｅｔａｌ．Ｍｅｃｈａｎｉｃａｌｉｎｄｕｃｔｉｏｎｏｆｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ⁃１１ｒｅｇｕｌａｔｅｓｏｓｔｅｏｂｌａｓｔｉｃｃｅｍｅｎｔｏｂｌａｓｔｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＰｅｒ⁃ｉｏｄｏｎｔａｌＲｅｓ，２０１５，５０（２）：２３１⁃２３９［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｊｒｅ．１２２００．［１４］ＨｅＹ，ＪｉａｎＣＸ，ＺｈａｎｇＨＹ，ｅｔａｌ．ＨｙｐｏｘｉａｅｎｈａｎｃｅｓｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎｖｉａｔｈｅＭＡＰＫｓｉｇｎａｌｉｎｇｐａｔｈｗａｙ［Ｊ／ＯＬ］．ＧｅｎｅｔＭｏｌＲｅｓ，２０１６，１５（４）［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．４２３８／ｇｍｒ１５０４８９６５．［１５］ＭａｒｔｉｎｅｚＣ，ＳｍｉｔｈＰＣ，ＲｏｄｒｉｇｕｅｚＪＰ，ｅｔａｌ．Ｓｏｎｉｃｈｅｄｇｅｈｏｇｓｔｉｍ⁃ｕｌａｔｅｓｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＤｅｎｔＲｅｓ，２０１１，９０（４）：４８３⁃４８８［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐ：／／ｄｘ．ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１７７／００２２０３４５１０３９１７９７．［１６］ＬｉｕＹ，ＹａｎｇＪ，ＳｕｎＷ．ＵｐｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｏｆＩＬ⁃１０ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｉｎｈｉｂｉｔｓｔｈｅｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＢｒａｚＯｒａｌＲｅｓ，２０２０，３４：ｅ０３０［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１５９０／１８０７⁃３１０７ｂｏｒ⁃２０２０．ｖｏｌ３４．００３０．［１７］ＺｈａｏＢ，ＺｈａｎｇＷ，ＸｉｏｎｇＹ，ｅｔａｌ．Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｒｕｔｉｎｏｎｔｈｅｏｘｉｄａｔｉｖｅｓｔｒｅｓｓ，ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎａｎｄｏｓｔｅｏｇｅｎｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓｉｎＬＰＳ⁃ｉｎｄｕｃｅｄｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｎｄｔｈｅｕｎｄｅｒｌｙｉｎｇｍｅｃｈａｎｉｓｍ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＭｏｌＨｉｓｔｏｌ，２０２０，５１（２）：１６１⁃１７１［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１００７／ｓ１０７３５⁃０２０⁃０９８６６⁃９．［１８］ＷａｎｇＭ，ＬｉＪ，ＹｅＹ，ｅｔａｌ．ＳＨＥＤ⁃ｄｅｒｉｖｅｄｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄｅｘｏｓｏｍｅｓｅｎｈａｎｃｅｔｈｅｏｓｔｅｏｇｅｎｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆＰＤＬＳＣｓｖｉａＷｎｔａｎｄＢＭＰｓｉｇｎａｌｉｎｇｉｎｖｉｔｒｏ［Ｊ／ＯＬ］．Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ，２０２０，１１１：１⁃１１［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｄｉｆｆ．２０１９．１０．００３．［１９］ＤｅｎｇＣ，ＳｕｎＹ，ＬｉｕＨ，ｅｔａｌ．Ｓｅｌｅｃｔｉｖｅａｄｉｐｏｇｅｎｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓｓｔｉｍｕｌａｔｅｄｗｉｔｈｈｉｇｈｄｏｓｅｓｏｆｇｌｕｃｏｓｅ［Ｊ／ＯＬ］．ＰｌｏＳｏｎｅ，２０１８，１３（７）：ｅ０１９９６０３［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１３７１／ｊｏｕｒｎａｌ．ｐｏｎｅ．０１９９６０３．［２０］ＹａｎｇＳ，ＧｕｏＬ，ＳｕＹ，ｅｔａｌ．ＮｉｔｒｉｃｏｘｉｄｅｂａｌａｎｃｅｓｏｓｔｅｏｂｌａｓｔａｎｄａｄｉｐｏｃｙｔｅｌｉｎｅａｇｅｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｖｉａｔｈｅＪＮＫ／ＭＡＰＫｓｉｇｎａｌｉｎｇｐａｔｈｗａｙｉｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＳｔｅｍＣｅｌｌＲｅｓＴｈｅｒ，２０１８，９（１）：１１８［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１８６／ｓ１３２８７⁃０１８⁃０８６９⁃２．［２１］ＬｉｍＨＣ，ＣｈａＢＹ，ＳｏｎｇＳＵ，ｅｔａｌ．Ｈａｒｍｉｎｅｐｒｏｍｏｔｅｓｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｃｅｌｌ⁃ｉｎｄｕｃｅｄｔｉｓｓｕｅｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＯｒａｌＤｉｓ，２０１８，２４（３）：４５６⁃４６４［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｏｄｉ．１２７７０．㊀㊀［２２］ＪｉｎＨ，ＣｈｏｕｎｇＨＷ，ＬｉｍＫＴ，ｅｔａｌ．ＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔＨｕｍａｎＰｌａｓｍｉｎｏ⁃ｇｅｎＡｃｔｉｖａｔｏｒＩｎｈｉｂｉｔｏｒ⁃１ＰｒｏｍｏｔｅｓＣｅｍｅｎｔｏｇｅｎｉｃＤｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆＨｕｍａｎＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＬｉｇａｍｅｎｔＳｔｅｍＣｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＴｉｓｓｕｅＥｎｇＰａｒｔＡ，２０１５，２１（２３／２４）：２８１７⁃２８２８［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０８９／ｔｅｎ．ＴＥＡ．２０１４．０３９９．［２３］ＰｅｌａｅｚＤ，ＡｃｏｓｔａＴｏｒｒｅｓＺ，ＮｇＴＫ，ｅｔａｌ．Ｃａｒｄｉｏｍｙｏｇｅｎｅｓｉｓｏｆｐｅｒ⁃ｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔ⁃ｄｅｒｉｖｅｄｓｔｅｍｃｅｌｌｓｂｙｄｙｎａｍｉｃｔｅｎｓｉｌｅｓｔｒａｉｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＣｅｌｌＴｉｓｓｕｅＲｅｓ，２０１７，３６７（２）：２２９⁃２４１［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔ⁃ｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１００７／ｓ００４４１⁃０１６⁃２５０３⁃ｘ．［２４］ＬｅｅＪＳ，ＡｎＳＹ，ＫｗｏｎＩＫ，ｅｔａｌ．Ｔｒａｎｓｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓｉｎｔｏ；ｐａｎｃｒｅａｔｉｃｃｅｌｌｌｉｎｅａｇｅ［Ｊ／ＯＬ］．ＣｅｌｌＢｉｏｃｈｅｍＦｕｎｃｔ，２０１４，３２（７）：６０５⁃６１１［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐ：／／ｄｘ．ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１００２／ｃｂｆ．３０５７．［２５］ＮｇＴＫ，ＹｕｎｇＪＳ，ＣｈｏｙＫＷ，ｅｔａｌ．Ｔｒａｎｓｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆｐｅｒｉｏ⁃ｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔ⁃ｄｅｒｉｖｅｄｓｔｅｍｃｅｌｌｓｉｎｔｏｒｅｔｉｎａｌｇａｎｇｌｉｏｎ⁃ｌｉｋｅｃｅｌｌｓａｎｄｉｔｓｍｉｃｒｏＲＮＡｓｉｇｎａｔｕｒｅ［Ｊ／ＯＬ］．ＳｃｉＲｅｐ，２０１５，５：１６４２９［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０３８／ｓｒｅｐ１６４２９．［２６］ＫｏｒｎｓｕｔｈｉｓｏｐｏｎＣ，ＰｉｒａｒａｔＮ，ＯｓａｔｈａｎｏｎＴ，ｅｔａｌ．Ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓｐｌａｔｅｌｅｔ⁃ｒｉｃｈｆｉｂｒｉｎｓｔｉｍｕｌａｔｅｓｃａｎｉｎｅｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＳｃｉＲｅｐ，２０２０，１０（１）：１８５０［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０３８／ｓ４１５９８⁃０２０⁃５８７３２⁃ｘ．［２７］ＤｕａｎＸ，ＬｉｎＺ，ＬｉｎＸ，ｅｔａｌ．Ｓｔｕｄｙｏｆｐｌａｔｅｌｅｔ⁃ｒｉｃｈｆｉｂｒｉｎｃｏｍｂｉｎｅｄｗｉｔｈｒａｔｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓｉｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｔｉｓｓｕｅｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＣｅｌＭｏｌＭｅｄ，２０１８，２２（２）：１０４７⁃１０５５［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｊｃｍｍ．１３４６１．［２８］ＡｍｍａｒＭＭ，ＷａｌｙＧＨ，ＳａｎｉｏｕｒＳＨ，ｅｔａｌ．Ｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒｒｅｌｅａｓｅａｎｄｅｎｈａｎｃｅｄｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓｖｉａｂｉｌｉｔｙｂｙｆｒｅｅｚｅ⁃ｄｒｉｅｄｐｌａｔｅｌｅｔｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｅｌｏａｄｅｄｔｈｅｒｍｏ⁃ｓｅｎｓｉｔｉｖｅｈｙｄｒｏｇｅｌｆｏｒｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＳａｕｄｉＤｅｎｔＪ，２０１８，３０（４）：３５５⁃３６４［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｓｄｅｎｔｊ．２０１８．０６．００２．［２９］ＡçｉｌＹ，ＹａｎｇＦ，ＧｕｌｓｅｓＡ，ｅｔａｌ．Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ，ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎａｎｄｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｐｏｔｅｎｔｉａｌｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａ⁃ｍｅｎｔｃｅｌｌｓａｎｄｄｅｎｔａｌｆｏｌｌｉｃｌｅｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｃｅｌｌｓａｎｄｔｈｅｉｒｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏＢＭＰ⁃７ｉｎｖｉｔｒｏ［Ｊ／ＯＬ］．Ｏｄｏｎｔｏｌｏｇｙ，２０１６，１０４（２）：１２３⁃１３５［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１００７／ｓ１０２６６⁃０１５⁃０１９８⁃１．［３０］ＫａｎｇＷ，ＬｉａｎｇＱ，ＤｕＬ，ｅｔａｌ．ＳｅｑｕｅｎｔｉａｌａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｏｆｂＦＧＦａｎｄＢＭＰ⁃２ｆａｃｉｌｉｔａｔｅｓｏｓｔｅｏｇｅｎｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏ⁃ｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＲｅｓ，２０１９，５４（４）：４２４⁃４３４［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｊｒｅ．１２６４４３４．㊀㊀［３１］ＹａｎＧＱ，ＷａｎｇＸ，ＹａｎｇＦ，ｅｔａｌ．ＭｉｃｒｏＲＮＡ⁃２２ＰｒｏｍｏｔｅｄＯｓｔｅｏ⁃ｇｅｎｉｃＤｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆＨｕｍａｎＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＬｉｇａｍｅｎｔＳｔｅｍＣｅｌｌｓｂｙＴａｒｇｅｔｉｎｇＨＤＡＣ６［Ｊ／ＯＬ］．ＪＣｅｌＢｉｏｃｈｅｍ，２０１７，１１８（７）：１６５３⁃１６５８［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１００２／ｊｃｂ．２５９３１．［３２］ＰｉｚｚｉｃａｎｎｅｌｌａＪ，ＣａｖａｌｃａｎｔｉＭ，ＴｒｕｂｉａｎｉＯ，ｅｔａｌ．ＭｉｃｒｏＲＮＡ２１０ＭｅｄｉａｔｅｓＶＥＧＦＵｐｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｉｎＨｕｍａｎＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＬｉｇａｍｅｎｔＳｔｅｍＣｅｌｌｓＣｕｌｔｕｒｅｄｏｎ３ＤＨｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅＣｅｒａｍｉｃＳｃａｆｆｏｌｄ［Ｊ／ＯＬ］．ＩｎｔＪＭｏｌＳｃｉ，２０１８，１９（１２）：３９１６［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．３３９０／ｉｊｍｓ１９１２３９１６．［３３］Ｋａｎｅｄａ⁃ＩｋｅｄａＥ，ＩｗａｔａＴ，ＭｉｚｕｎｏＮ，ｅｔａｌ．ＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｃｅｌｌｓｒｅｇｕｌａｔｅｏｓｔｅｏｇｅｎｅｓｉｓｖｉａｍｉＲ⁃２９９⁃５ｐｉｎｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ，２０２０，１１２：４７⁃５７［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔ⁃ｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｄｉｆｆ．２０２０．０１．００１．［３４］ＧｅＹ，ＬｉＪ，ＨａｏＹ，ｅｔａｌ．ＭｉｃｒｏＲＮＡ⁃５４３ｆｕｎｃｔｉｏｎｓａｓａｎｏｓｔｅｏ⁃ｇｅｎｅｓｉｓｐｒｏｍｏｔｅｒｉｎｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔ⁃ｄｅｒｉｖｅｄｓｔｅｍｃｅｌｌｓｂｙｉｎｈｉｂｉｔｉｎｇｔｒａｎｓｄｕｃｅｒｏｆＥＲＢＢ２，２［Ｊ／ＯＬ］．ＪＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＲｅｓ，２０１８，５３（５）：８３２⁃８４１［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｊｒｅ．１２５７２．［３５］杜莉，曹伟靖，田莹，等．ＭｉｃｒｏＲＮＡ⁃１２５ｂ对人牙周膜干细胞成骨分化的影响［Ｊ］．上海口腔医学，２０１８，２７（１）：１１⁃１７．［３６］ＸｕＹ，ＲｅｎＣ，ＺｈａｏＸ，ｅｔａｌ．ｍｉｃｒｏＲＮＡ⁃１３２ｉｎｈｉｂｉｔｓｏｓｔｅｏｇｅｎｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓｖｉａＧＤＦ５ａｎｄｔｈｅＮＦ⁃κＢｓｉｇｎａｌｉｎｇｐａｔｈｗａｙ［Ｊ／ＯＬ］．ＰａｔｈｏｌＲｅｓＰｒａｃｔ，２０１９，２１５（１２）：１５２７２２［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｐｒｐ．２０１９．１５２７２２．［３７］ＧｕｏＪ，ＺｅｎｇＸ，ＭｉａｏＪ，ｅｔａｌ．ＭｉＲＮＡ⁃２１８ｒｅｇｕｌａｔｅｓｏｓｔｅｏｃｌａｓｔｄｉｆ⁃ｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎａｎｄｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎｒｅｓｐｏｎｓｅｉｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔｉｔｉｓｒａｔｓｔｈｒｏｕｇｈＭｍｐ９［Ｊ／ＯＬ］．ＣｅｌｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌ，２０１９，２１（４）：ｅ１２９７９［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｃｍｉ．１２９７９．［３８］ＬｉｕＺ，ＣｈｅｎＸ，ＺｈａｎｇＺ，ｅｔａｌ．ＮａｎｏｆｉｂｒｏｕｓＳｐｏｎｇｙＭｉｃｒｏｓｐｈｅｒｅｓＴｏＤｉｓｔｉｎｃｔｌｙＲｅｌｅａｓｅｍｉＲＮＡａｎｄＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒｓＴｏＥｎｒｉｃｈＲｅｇｕ⁃ｌａｔｏｒｙＴＣｅｌｌｓａｎｄＲｅｓｃｕｅＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＢｏｎｅＬｏｓｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＡＣＳｎａｎｏ，２０１８，１２（１０）：９７８５⁃９７９９［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０２１／ａｃｓｎａｎｏ．７ｂ０８９７６．［３９］ＪｉａＬ，ＸｉｏｎｇＹ，ＺｈａｎｇＷ，ｅｔａｌ．Ｍｅｔｆｏｒｍｉｎｐｒｏｍｏｔｅｓｏｓｔｅｏｇｅｎｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎａｎｄｐｒｏｔｅｃｔｓａｇａｉｎｓｔｏｘｉｄａｔｉｖｅｓｔｒｅｓｓ⁃ｉｎｄｕｃｅｄｄａｍａｇｅｉｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓｖｉａａｃｔｉｖａｔｉｏｎｏｆｔｈｅＡｋｔ／Ｎｒｆ２ｓｉｇｎａｌｉｎｇｐａｔｈｗａｙ［Ｊ／ＯＬ］．ＥｘｐＣｅｌｌＲｅｓ，２０２０，３８６（２）：１１１７１７［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｙｅｘｃｒ．２０１９．１１１７１７．［４０］ＰａｒｋＪＣ，ＫｉｍＪＭ，ＪｕｎｇＩＨ，ｅｔａｌ．Ｉｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔ（ＰＤＬ）ｓｔｅｍｃｅｌｌｓ（ＰＤＬＳＣｓ）ｆｒｏｍｔｈｅｉｎｆｌａｍｅｄＰＤＬｔｉｓｓｕｅ：ｉｎｖｉｔｒｏａｎｄｉｎｖｉｖｏｅｖａｌｕａｔｉｏｎｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＣｌｉｎＰｅｒｉｏｄｏｎｔｏｌ，２０１１，３８（８）：７２１⁃７３１［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｊ．１６００⁃０５１Ｘ．２０１１．０１７１６．ｘ．［４１］ＨｉｇｕｃｈｉＪ，ＦｏｒｔｕｎａｔｏＧ，Ｗｏｚ＇ｎｉａｋＢ，ｅｔａｌ．ＰｏｌｙｍｅｒＭｅｍｂｒａｎｅｓＳｏｎｏｃｏａｔｅｄａｎｄＥｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙｅｄｗｉｔｈＮａｎｏ⁃ＨｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅｆｏｒＰｅｒｉ⁃ｏｄｏｎｔａｌＴｉｓｓｕｅｓＲｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．Ｎａｎｏｍａｔｅｒｉａｌｓ（Ｂａｓｅｌ），２０１９，９（１１）：１６２５［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．３３９０／ｎａｎｏ９１１１６２５．［４２］ＷｉｊｅｄａｓａＮＰ，ＢｒｏａｓＳＭ，ＤａｓｏＲＥ，ｅｔａｌ．Ｖａｒｙｉｎｇｆｉｓｈｓｃａｌｅｄｅ⁃ｒｉｖｅｄｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅｂｏｕｎｄｈｙｂｒｉｄｐｅｐｔｉｄｅｎａｎｏｆｉｂｅｒｓｃａｆｆｏｌｄｓｆｏｒｐｏｔｅｎｔｉａｌａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓｉｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｔｉｓｓｕｅｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＭａｔｅｒＳｃｉＥｎｇＣＭａｔｅｒＢｉｏｌＡｐｐｌ，２０２０，１０９：１１０５４０［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｍｓｅｃ．２０１９．１１０５４０．［４３］ＯｕＱ，ＭｉａｏＹ，ＹａｎｇＦ，ｅｔａｌ．Ｚｅｉｎ／ｇｅｌａｔｉｎ／ｎａｎｏｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅｎａｎｏｆｉｂｒｏｕｓｓｃａｆｆｏｌｄｓａｒｅｂｉｏｃｏｍｐａｔｉｂｌｅａｎｄｐｒｏｍｏｔｅｏｓｔｅｏｇｅｎｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＢｉｏｍａｔｅｒＳｃｉ，２０１９，７（５）：１９７３⁃１９８３［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０３９／ｃ８ｂｍ０１６５３ｄ．［４４］ＳｏｗｍｙａＳ，ＢｕｍｇａｒｄｅｎｅｒＪＤ，ＣｈｅｎｎａｚｈｉＫＰ，ｅｔａｌ．Ｒｏｌｅｏｆｎａｎｏ⁃ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｄｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓａｎｄｂｉｏｃｅｒａｍｉｃｓｉｎｅｎａｍｅｌ，ｄｅｎｔｉｎａｎｄｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｔｉｓｓｕｅｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＰｒｏｇＰｏｌｙｍＳｃｉ，２０１３，３８（１０／１１）：１７４８⁃１７７２［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｐｒｏｇｐｏｌｙｍｓｃｉ．２０１３．０５．００５．［４５］ＳｃｕｌｅａｎＡ，ＮｉｋｏｌｉｄａｋｉｓＤ，ＮｉｋｏｕＧ，ｅｔａｌ．Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓｆｏｒｐｒｏｍｏ⁃ｔｉｎｇｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｉｎｈｕｍａｎｉｎｔｒａｂｏｎｙｄｅｆｅｃｔｓ：ａｓｙｓ⁃ｔｅｍａｔｉｃｒｅｖｉｅｗ［Ｊ／ＯＬ］．Ｐｅｒｉｏｄｏｎｔｏｌ２０００，２０１５，６８（１）：１８２⁃２１６［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｐｒｄ．１２０８６．［４６］ＹａｎｇＦ，ＭｉａｏＹ，ＷａｎｇＹ，ｅｔａｌ．ＥｌｅｃｔｒｏｓｐｕｎＺｅｉｎ／ＧｅｌａｔｉｎＳｃａｆ⁃ｆｏｌｄ⁃ＥｎｈａｎｃｅｄＣｅｌｌＡｔｔａｃｈｍｅｎｔａｎｄＧｒｏｗｔｈｏｆＨｕｍａｎＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＬｉｇａｍｅｎｔＳｔｅｍＣｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．Ｍａｔｅｒｉａｌｓ（Ｂａｓｅｌ），２０１７，１０（１０）：１１６８［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．３３９０／ｍａ１０１０１１６８．［４７］ＰａｎＪ，ＤｅｎｇＪ，ＹｕＬ，ｅｔａｌ．Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｎｇｔｈｅｒｅｐａｉｒｏｆａｌｖｅｏｌａｒｂｏｎｅｄｅｆｅｃｔｓｂｙｇｅｌａｔｉｎｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅｈｙｄｒｏｇｅｌｓ⁃ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＭａｔｅｒＳｃｉＭａｔｅｒＭｅｄ，２０１９，３１（１）：３［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１００７／ｓ１０８５６⁃０１９⁃６３３３⁃８．［４８］ＣｈｅｎＸ，ＢａｉＳ，ＬｉＢ，ｅｔａｌ．Ｆａｂｒｉｃａｔｉｏｎｏｆｇｅｌａｔｉｎｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅ／ｎａ⁃ｎｏｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅｍｉｃｒｏｇｅｌａｒｒａｙｓｆｏｒｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｔｉｓｓｕｅｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＩｎｔＪＮａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅ，２０１６，１１：４７０７⁃４７１８［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．２１４７／ＩＪＮ．Ｓ１１１７０１．［４９］ＮｉｖｅｄｈｉｔｈａＳｕｎｄａｒａｍＭ，ＳｏｗｍｙａＳ，ｅｔａｌ．Ｂｉｌａｙｅｒｅｄｃｏｎｓｔｒｕｃｔｆｏｒｓｉｍｕｌｔａｎｅｏｕｓｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｏｆａｌｖｅｏｌａｒｂｏｎｅａｎｄｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＢｉｏｍｅｄＭａｔｅｒＲｅｓＢＡｐｐｌＢｉｏｍａｔｅｒ，２０１６，１０４（４）：７６１⁃７７０［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１００２／ｊｂｍ．ｂ．３３４８０．［５０］ＬｉＹ，ＱｉａｏＺ，ＹｕＦ，ｅｔａｌ．ＴｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ⁃β３／Ｃｈｉ⁃ｔｏｓａｎＳｐｏｎｇｅ（ＴＧＦ⁃β３／ＣＳ）ＦａｃｉｌｉｔａｔｅｓＯｓｔｅｏｇｅｎｉｃＤｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆＨｕｍａｎＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＬｉｇａｍｅｎｔＳｔｅｍＣｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＩｎｔＪＭｏｌＳｃｉ，２０１９，２０（２０）：４９８２［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．３３９０／ｉｊｍｓ２０２０４９８２．［５１］ＳｈｕＹ，ＹｕＹ，ＺｈａｎｇＳ，ｅｔａｌ．Ｔｈｅｉｍｍｕｎｏｍｏｄｕｌａｔｏｒｙｒｏｌｅｏｆｓｕｌ⁃ｆａｔｅｄｃｈｉｔｏｓａｎｉｎＢＭＰ⁃２⁃ｍｅｄｉａｔｅｄｂｏｎｅｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．Ｂｉｏ⁃ｍａｔｅｒＳｃｉ，２０１８，６（９）：２４９６⁃２５０７［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０３９／ｃ８ｂｍ００７０１ｂ．［５２］ＬｉＹ，ＹｕＦ，ＬｉｕＹ，ｅｔａｌ．Ｓｕｌｆｏｎａｔｅｄｃｈｉｔｏｓａｎｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅａｌｌｅ⁃ｖｉａｔｅｓｔｈｅｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙｅｆｆｅｃｔｏｆｂａｓｉｃｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒｏｎｏｓ⁃ｔｅｏｇｅｎｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＰｅｒｉｏｄｏｎｔｏｌ，２０２０，９１（７）：９７５⁃９８５［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔ⁃ｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１００２／ＪＰＥＲ．１９⁃０２７３．［５３］ＧｅＳ，ＺｈａｏＮ，ＷａｎｇＬ，ｅｔａｌ．Ｂｏｎｅｒｅｐａｉｒｂｙｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓｅｅｄｅｄｎａｎｏｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅ⁃ｃｈｉｔｏｓａｎｓｃａｆｆｏｌｄ［Ｊ／ＯＬ］．ＩｎｔＪＮａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅ，２０１２，７：５４０５⁃５４１４［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．２１４７／ＩＪＮ．Ｓ３６７１４．［５４］ＢａｂｒａｗａｌａＩ，ＭｕｎｉｖｅｎｋａｔａｐｐａＬａｋｓｈｍａｉａｈＶｅｎｋａｔｅｓｈＰ，Ｂａｎｇａｌ⁃ｏｒｅＶａｒａｄｈａｎＫ．Ａｎｏｖｅｌａｐｐｒｏａｃｈｕｓｉｎｇ１５％ｎａｔｕｒａｌｃｈｉｔｏｓａｎｇｅｌｉｎｔｈｅｍａｎａｇｅｍｅｎｔｏｆｉｎｔｒａｂｏｎｙｄｅｆｅｃｔｓ：ａｐｉｌｏｔｓｔｕｄｙ［Ｊ／ＯＬ］．ＣｈｉｎＪＤｅｎｔＲｅｓ，２０１６，１９（４）：２３１⁃２３７［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．３２９０／ｊ．ｃｊｄｒ．ａ３７１４８．［５５］ＺａｎｇＳ，ＤｏｎｇＧ，ＰｅｎｇＢ，ｅｔａｌ．Ａｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｐｈｙｓｉｃｏｃｈｅｍｉｃａｌｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓｏｆｓｔｅｒｉｌｉｚｅｄｃｈｉｔｏｓａｎｈｙｄｒｏｇｅｌａｎｄｉｔｓａｐｐｌｉｃａｂｉｌｉｔｙｉｎａｃａｎｉｎｅｍｏｄｅｌｏｆｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＣａｒｂｏｈｙｄｒＰｏｌｙｍ，２０１４，１１３：２４０⁃２４８［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｃａｒｂｐｏｌ．２０１４．０７．０１８．［５６］ＩｗａｓａｋｉＫ，ＫｏｍａｋｉＭ，ＹｏｋｏｙａｍａＮ，ｅｔａｌ．Ｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｒｅｇｅｎｅｒａ⁃ｔｉｏｎｕｓｉｎｇｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌ⁃ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄａｍｎｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．ＴｉｓｓｕｅＥｎｇＰａｒｔＡ，２０１４，２０（３／４）：６９３⁃７０４［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０８９／ｔｅｎ．ＴＥＡ．２０１３．００１７．［５７］ＮｕñｅｚＪ，ＶｉｇｎｏｌｅｔｔｉＦ，ＣａｆｆｅｓｓｅＲＧ，ｅｔａｌ．Ｃｅｌｌｕｌａｒｔｈｅｒａｐｙｉｎｐｅｒ⁃ｉｏｄｏｎｔａｌｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［Ｊ／ＯＬ］．Ｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌ２０００，２０１９，７９（１）：１０７⁃１１６［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１１１／ｐｒｄ．１２２５０．［５８］ＣｈｅｎＦＭ，ＧａｏＬＮ，ＴｉａｎＢＭ，ｅｔａｌ．Ｔｒｅａｔｍｅｎｔｏｆｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｉｎ⁃ｔｒａｂｏｎｙｄｅｆｅｃｔｓｕｓｉｎｇａｕｔｏｌｏｇｏｕｓｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓ：ａｒａｎｄｏｍｉｚｅｄｃｌｉｎｉｃａｌｔｒｉａｌ［Ｊ／ＯＬ］．ＳｔｅｍＣｅｌｌＲｅｓＴｈｅｒ，２０１６，７：３３［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１８６／ｓ１３２８７⁃０１６⁃０２８８⁃１．［５９］ＳｈａｌｉｎｉＨＳ，ＶａｎｄａｎａＫＬ．Ｄｉｒｅｃｔａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｏｆａｕｔｏｌｏｇｏｕｓｐｅｒｉｏｄｏｎ⁃ｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｎｉｃｈｅｉｎｔｒｅａｔｍｅｎｔｏｆｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｏｓｓｅｏｕｓｄｅ⁃ｆｅｃｔｓ：Ａｒａｎｄｏｍｉｚｅｄｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄｔｒｉａｌ［Ｊ／ＯＬ］．ＪＩｎｄｉａｎＳｏｃＰｅｒｉｏｄ⁃ｏｎｔｏｌ，２０１８，２２（６）：５０３⁃５１２［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．４１０３／ｊｉｓｐ．ｊｉｓｐ＿９２＿１８．［６０］ＩｗａｔａＴ，ＹａｍａｔｏＭ，ＷａｓｈｉｏＫ，ｅｔａｌ．Ｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｗｉｔｈａｕｔｏｌｏｇｏｕｓｐｅｒｉｏｄｏｎｔａｌｌｉｇａｍｅｎｔ⁃ｄｅｒｉｖｅｄｃｅｌｌｓｈｅｅｔｓ⁃Ａｓａｆｅｔｙａｎｄｅｆｆｉｃａｃｙｓｔｕｄｙｉｎｔｅｎｐａｔｉｅｎｔｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＲｅｇｅｎＴｈｅｒ，２０１８，９：３８⁃４４［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｒｅｔｈ．２０１８．０７．００２．㊀㊀㊀［６１］ＴａｋａｈａｓｈｉＫ，ＴａｎａｂｅＫ，ＯｈｎｕｋｉＭ，ｅｔａｌ．Ｉｎｄｕｃｔｉｏｎｏｆｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌｓｆｒｏｍａｄｕｌｔｈｕｍａｎｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓｂｙｄｅｆｉｎｅｄｆａｃｔｏｒｓ［Ｊ／ＯＬ］．Ｃｅｌｌ，２００７，１３１（５）：８６１⁃８７２［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｃｅｌｌ．２００７．１１．０１９．［６２］ＨａｍａｎｏＳ，ＴｏｍｏｋｉｙｏＡ，ＨａｓｅｇａｗａＤ，ｅｔａｌ．ＥｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒＭａｔｒｉｘｆｒｏｍＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＬｉｇａｍｅｎｔＣｅｌｌｓＣｏｕｌｄＩｎｄｕｃｅｔｈｅＤｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆＩｎｄｕｃｅｄＰｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔＳｔｅｍＣｅｌｌｓｔｏＰｅｒｉｏｄｏｎｔａｌＬｉｇａｍｅｎｔＳｔｅｍＣｅｌｌ⁃ＬｉｋｅＣｅｌｌｓ［Ｊ／ＯＬ］．ＳｔｅｍＣｅｌｌｓＤｅｖ，２０１８，２７（２）：１００⁃１１１［２０２０⁃０２⁃２２］．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０８９／ｓｃｄ．２０１７．００７７．（收稿日期：２０２０－０２－２２）（本文编辑：曹灵）。
口腔组织病理学试题及答案第四章牙周组织一、单项选择题：（在四个或五个备选答案中选出一个正确答案）1.牙周膜中最多、功能最重要的细胞是: ( )A.成纤维细胞；B.成牙骨质细胞；C.成骨细胞；D.破骨细胞；E.未分化间充质细胞。
2.在牙周膜中，哪一种细胞能增殖成颌骨囊肿或牙源性肿瘤: ( )A.成纤维细胞；B.间质细胞；C.成骨细胞；D.Malassez上皮剩余；E.成牙骨质细胞。
3.关于牙槽骨增龄性变化描述哪项是错误的: ( )A.随年龄增长，牙槽嵴高度减少；B.随年龄增长，骨密度逐渐降低；C.随年龄增长，骨吸收活动大于骨的形成；D.随年龄增长，成骨能力明显降低；E.但随年龄增长，骨髓仍为红骨髓。
4.龈沟深度的正常值为: ( )A.0.5-2mm；B.0.5-3mm；C.1mm；D.3.5mm；E.以上都不是；5.将牙齿悬吊在牙槽窝内，使牙齿承受的咀嚼压力转变为牵引力，均匀分散到牙槽骨上的牙周纤维称为: ( )A.牙槽嵴组；B.水平组；C.斜行组；D.根尖组；E.根间组。
6.牙龈中牙龈纤维最多的一组是: ( )A.龈牙组；B.牙槽龈组；C.环行组；D.牙骨膜组；E.越隔组。
7.龈沟液的特征包括：（）A.其成分与血清相似；B.具有清除异物，增进上皮与牙贴附的作用；C.是微生物的培养基；D.利于牙石和菌斑的形成；E.以上全是。
8.固有牙槽骨又称：（）A.网状板；B.束状板；C.硬骨板；D.基板；E.松质骨板。
9.关于牙龈上皮，以下哪项是错误的：（）A.牙龈由上皮、固有层和粘膜下层组成B.附着龈位于游离龈的根方C.覆盖于龈沟壁的上皮称为龈沟上皮D.龈沟上皮有上皮钉突E.龈谷表面覆盖的是无角化鳞状上皮10.关于牙周膜 , 以下哪项是错误的 ? （）A.牙周膜的纤维主要由胶原纤维和 Oxytalan 纤维组成；B.牙周膜内无上皮结构；C.牙周膜内成纤维细胞最多；D.牙周膜内同时含有成骨细胞和破骨细胞；E.牙周膜内的未分化间充质细胞在牙周膜的修复中起重要作用。
成纤维细胞的生物学特性及其成骨作用的研究进展
王英慧
【期刊名称】《大同医学专科学校学报》
【年(卷),期】2006(026)002
【摘要】成纤维细胞在骨损伤时能合成和分泌大量的胶原纤维和基质成分,和其它组织一起形成骨性骨痂,促进骨性愈合.成纤维细胞可能在上皮细胞等诱导因子作用下,分化为成骨细胞,形成骨组织,参与骨性愈合.
【总页数】3页(P30-32)
【作者】王英慧
【作者单位】山西大同大学医学院组胚教研室,037008
【正文语种】中文
【中图分类】R6
【相关文献】
1.人牙龈成纤维细胞和牙周膜成纤维细胞生物学特性的研究进展 [J], 徐杰;税艳青;
2.bFGF对成骨细胞和成纤维细胞生物学特性的影响 [J], 谭震;赵青;宫苹
3.成骨细胞对人牙周膜成纤维细胞生物学特性的影响 [J], 梁莉;周威;余继锋;温莉莎
4.重组碱性成纤维细胞生长因子基因转染对于骨髓源性成骨细胞的生物学特性及对血管生成的影响 [J], 史德刚;栗国梁;张积仁;黄忠琴;许灼新;陈志维;陈逊文
5.成纤维细胞与成骨细胞交互作用的研究进展 [J], 崔永锋;俞索静;吴承亮
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