测根系活力

测定植物根系活力的方法植物根系活力是指植物根系吸收、传导和利用水分、营养物质以及对土壤环境进行适应的能力。

根系活力的测定可以帮助我们了解植物生长发育和适应能力的情况，同时指导我们合理地进行植被管理和栽培。

以下是测定植物根系活力的几种方法：1. 简易Auslander土柱法。

如其名，Auslander土柱法是一种方法简单、不需高级设备的测定植物根系活力的方法。

该方法主要是通过植物根系对土壤环境的响应，来判断根系活力的强弱。

具体操作方法为：将要测定的植株的根系在浇透水的土壤内生长2-4天，之后将其整株拔起，然后根据根系的发育程度、数量、长度等来评估根系活力的强弱。

该方法简单易行，操作简便，但其缺点在可能存在误判的可能性。

2.根系形态分析法。

根系形态分析法是通过对植物根系形态结构的观察，来判断其根系活力的强弱。

该方法适合于观测植物在不同环境下的根系结构变化，比如不同土壤类型、水分营养等而导致的根系形态上的适应性变化。

具体测定内容为：利用根系分叉角度、根毛数量、根长、分散程度等指标来评估根系活力的强弱。

该方法操作简便，可以直观地观察植物根系的形态变化。

3. 马琦森氏（Markson）芽生长理论测定法。

马琦森氏芽生长理论测定法是一种直接测定植物根系活力的方法，与前面两种方法略有不同。

该方法的基本理论是当植物叶和根的生长速度趋于相等时，表明根系的活力非常强。

为测量生长速度，该方法首先需要在芽顶茎部投射一个小光斑，之后再测量芽生长长度的变化。

与前面两种方法相比，马琦森氏芽生长理论测定法操作难度较大，但它可以直接反映出植物根系的生长速度。

4.直接收获法。

直接收获法可以理解为野外调查法。

该方法不针对单一植物进行定量测定，而是利用长期收获和观察的数据分析出根系生长的数量、长度和生长速度。

根第一原则：土壤性质的差异和分布引起根的差异在根领域尤为明显。

如草地表土CO_2分压的变化，山间度坡对气温、风速、光照和土壤水分的影响均可引起根的各种变化。

• 3、将放汝抽屉中的烧杯拿出（在规定30min后），吸取2ml 溶液放入25ml容量瓶中，加入10ml蒸馏水，再加入1%对氨 基苯黄酸和亚硝酸钠溶液各1ml，室温放置5min，待混合溶 液变成红色，再用蒸馏水定容到25ml，在2060min内，510nm处比色，读取OD值，查得浓 度。
• 4、在做有根烧杯的同时加做一组无根的空的对照，按步 骤2、3操作，作为α-萘胺自动氧化比值,在结果中减去部 分数值 α-萘胺氧化总量:a初-a终 (c)
α-萘胺氧化法测定根系活力原理：
植物根系能氧化吸附在根表面的α-萘胺，生成红色的α-羟 基-1-萘胺，沉淀于有强氧化力的根表面，使这部分跟染 成红色。 根对α-萘胺的氧化能力与其呼吸强度有密切关系。有报道 认为α-萘胺的氧化本质就是过氧化物酶的催化作用。该酶 的火力越强，染色就越深。所以根据染色深浅半定量地判 断根系活力的大小，还可测定溶液中未被氧化的α-萘胺量， 定量地测定根系火力大小。
046 代入方程y=0.
α-萘胺在酸性环境下与对氨基苯黄酸和亚硝酸 盐作用产生红色的偶氮染料，可供比色测定 α-萘胺含量
器材与试剂
• 实验仪器 分光光度计， 分析天平，量筒，移
液管，容量瓶
• 实验试剂 25ug/mlα-萘 胺溶液,0.1mol/L磷酸缓
冲液，1%对氨基苯黄ห้องสมุดไป่ตู้
酸，亚硝酸钠溶液
•
实验材料 小麦
植株
绘制α-萘胺标准曲线
酸钠溶液各1ml，室温放置5min，待混合溶 169 a终=0.
α-萘胺氧化法测定根系活力原理：
x/根鲜重×min=0.0507 液变成红色，再用蒸馏水定容到25ml，在20-
60min内，510nm处比色，读取OD值，查得浓

实验十二氯化三苯基四氮唑（TTC）法测定植物根系活力一、实验目的掌握TTC 法测定植物根系活力的原理和方法。

植物根系与植株整个生命活动紧密相关，其作用主要有：对地上部的支持和固定；物质的贮藏；对水分和盐类的吸收；合成氨基酸、激素等物质。

因此根系的活力是植物生长的重要生理指标之一，它直接影响地上部的生长和营养状况及产量水平。

二、实验原理氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80 mV 的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯基甲腙（TTCH或TTF），比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC 被广泛地用作酶促反应实验的氢受体。

根系中脱氢酶的活性强弱与根的活力成正相关。

所以TTC 还原量能表示脱氢酶活性并作为根系活力的指标。

三、设备与试剂分光光度计，电子天平，温箱，研钵，漏斗，试管架，药勺，石英砂，50 mL三角瓶，100 mL 量筒，10 mL移液管，10 mL 刻度试管，10 mL容量瓶，10 mL、1 000 mL 烧杯。

①乙酸乙酯（分析纯）或丙酮，保险粉（连二亚硫酸钠，Na2S2O4）。

②1％TTC 溶液：准确称取TTC 1.0 g，溶于少量水中，定容到100 mL。

用时稀释至需要的浓度。

③0.1mol/L，pH7 磷酸缓冲液贮备液A：0.2mol/L NaH2PO4溶液（27.8g NaH2PO4·H2O或31.21gNaH2PO4·2H2O 配成1000ml）；贮备液B：0.2 mol/L Na2HPO4溶液（53.65g Na2HPO4·7H2O或71.64gNa2HPO4·12H2O 配成1000ml）；取A液39ml+B液61ml，用水稀释至200ml）④1 mol·L－1硫酸：用量筒取比重1.84 的浓硫酸55 mL，边搅拌边加入盛有500 mL蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1 000 mL。

2. 测定根系活力时最佳选择根旳哪个部位？ 为何？
3. 3. 简述分光光度计使用过程及注意事项。
4、在使用分光光度计时，为何每变化一次波 长，就需要重新调零和调透光率100%？
5、为何在测定时需要洗净比色皿？洗净旳比 色皿在倒入提取液时为何还要用提取液洗 2-3遍？
（二）仪器与用具 分光光度计、天平、恒温培养箱、三角烧瓶、量筒、移液 管、剪刀、玻棒。
（三）试剂 α-萘胺溶液：先用少许旳95%酒精溶解，然后加水定容成。 配制50 μg/mL、50 μg/mL溶液。
• 0.1 mol/L磷酸缓冲液，pH 7.0。 • 1%对氨基苯磺酸溶液：溶解于30%旳醋酸溶液中。 • 0.01%亚硝酸钠溶液。
注意：
• OD510越大→α-萘胺剩余越多→根系活力越弱
• 反应液旳酸度大则增长重氮化作用旳速度，但降 低偶联作用旳速度，颜色比较稳定。增长温度能 够增长反应速度，但降低重氮盐旳稳定度，所以 反应需要在相同条件下进行。
三、试验材料与仪器设备
（一）试验材料 水稻(Oryza sativa L.)等水生植物旳须根系。
• 各取2 mL，按照环节4分别反应，并测定 OD值。以OD值为纵坐标，浓度为横坐标， 绘制α-萘胺溶液旳原则曲线。或者根据浓 度与OD值关系直接计算回归方程。
6．换算浓度
• 分别核对原则曲线，或利用回归方程直接 计算出试验组与对照组溶液试验前后相应 旳α-萘胺浓度（ C、C’与 C0、C’0 ）。
定性观察
• 根系表面红色越深，阐明根系活力越强。
定量测定
• 剩余旳α-萘胺在酸性环境中可与对氨基苯 磺酸（sulfanil-amide）和亚硝酸盐作用生 成稳定旳红色偶氮染料。
定量测定
对-苯磺酸-偶氮-α-萘胺