茶叶中茶多酚的提取与检测分析

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2014年第7期现代园艺

茶叶中茶多酚的提取与检测分析

田鄂

(恩施自治州产品质量监督检验所,湖北恩施445000)

摘要院茶叶中含有茶多酚,茶多酚是纯天然的,拥有很强的抗氧化作用,是目前人工不能合成的纯天然、多功能、

高效能的抗氧化剂和自由基净化剂。一般我们经过对粗茶的萃取、冷凝、浸提、回流和蒸发,然后可以通过分光光度法和

标准的曲线法来计算出粗茶中茶多酚的含量。关键词院浸提;蒸发;检测;茶多酚

在现代生活中,人们更加注重饮食安全和保健。在众多

饮品中,茶可谓是饮品中的极品。茶叶中含有多种的有效成

分,如咖啡因、茶多糖和茶多酚等等。而茶多酚是一种纯天然

的高效抗氧化剂。在食品,日用和保健方面都能找到它的身

影。本文试验室为了探讨茶多酚提取和分离的新方法。1所用材料和方法

1.1选取的材料

首先是选取茶叶的样品,我们选择了3个品种的茶叶,

共计10份来做试验。分别是绿茶4份,占40%,花茶3份,占

30%,乌龙茶3份,占30%。这些茶叶样品都是2009年3月

份~2012年3月份生产的。

选择试验仪器:上海尤尼柯生产的UV-2000紫外可见

分光光度计,上海至金仪器设备有限公司生产的恒温水浴设

备,美国奥豪斯电子的分析天平。分液漏斗,冷凝回流仪和旋

转蒸发仪。

试验试剂:无水乙醇,没食子酸乙酯(作为基准试剂),酒

石酸铁溶液110g,定容1000ml的酒石酸钾钠,510g的硫酸亚

铁,分析纯用乙酸乙酯,23187g的缓冲溶液,9108g的磷酸氢

二钠和磷酸二氢钾各定容1000ml,然后按85ml∶15ml混合,

使其pH值=7.5。

1.2提取用到的方法

首先是浸提,要选取710g的各种茶叶样品剪碎。然后放

进冷凝回流仪里面,然后倒进热水,浸提3次。过滤残渣,再

用含水的乙醇浸提1次,然后丢弃残渣。过滤的液体放进分

液漏斗里面去,然后用氨仿来浸提,最后我们要用到乙酸乙

酯来进行浸提3次就可以了。其次,就是旋转蒸发了:准备真

空的旋转蒸发器,把浸提过后的过滤液体倒进去。要进行旋

转蒸发,应该在40℃时的恒温水浴设备下,加入乙酸乙酯。最

后提取浓缩液来做一个样品分析。

1.3对样品进行检测

测定吸收曲线:我们知道,亚铁离子和多酚类会生成紫蓝

色的络合物。我们可以用分光光度法来测定它的含量。在

215ml缓冲液的背景下,准备25ml的容量瓶,放入5ml的酒

石酸铁后,再加入215mg的没食子酸标准溶液来进行显色。

然后在1cm的吸收池里面放入少量的显色液体和蒸馏水参

比,利用UV-2000紫外可见分光光度计来测定吸收曲线。测

定数据为(为方便简洁,用字母表示)Nnm分别为400、410、

420、430、440、450、460、470、480、490、500:而对应的A值分别

为:0.810、0.868、0.929、0.977、1.08、11.094、1.155、1.213、1.267、1.315、1.354:而Nnm值分别为:510、525、530、535、540、550、

560、570、580、590:而下面一组对应的A值为:1.389、1.412、

1.415、1.417、1.416、1.414、1.394、1.372、1.324、1.281、1.205。经

过测定,我们可以很直观地看出,没食子酸和酒石酸铁显色

液最大的吸收波长是530nm。

绘制标准曲线:干燥的没食子酸乙酯取250mg加进

100ml的水里作为母液。分别取0、2、4、6、8、10ml的母液放在

100ml的容量瓶里。然后取没食子酸乙酯1ml和酒石酸铁

5ml放到25ml的容量瓶里面。定容用pH=7.5的缓冲溶液。然

后放进1cm的吸收池和蒸馏水参比。以此来测定没食子酸乙

酯和酒石酸铁的工作标准曲线。得到如下数据:编号分别为:

1到6:而其对应的没食子酸(mg/ml)分别为:0.00、0.50、1.00、

1.50、2.00、2.50:而相对应的A值则分别为:0.048、0.283、

0.616、0.797、0.996、1.417。

测试样品:准备100ml的烧杯,取200mg的浓缩液放到

里面,再加上30ml的沸水,等冷却后倒进100ml的容量瓶里

面。然后再从里面取1ml的液体放到25ml的容量瓶里面。加

入酒石酸铁5ml,用pH=7.5的标准缓冲溶液稀释到刻度。和

空白试剂参比。从530nm处可以测定吸光度,计算公式为

X=E×100(1-G)。可以分别计算出吸光度,没食子酸乙酯含量和

茶叶中的茶多酚含量,见下表。

2结果和讨论

在中国,茶叶以及茶文化可谓是源远流长。在对茶多酚

的提取上,我们中国的技术可以做到提取纯度为99%的茶多

酚。并且在理论上证明了茶多酚拥有广泛的用途,在社会上

和经济上都有着重大效益。作为一种纯天然的抗氧化剂,茶

多酚已经在食品加工行业中得到了广泛的应用。根据我们国

家的食品添加剂使用标准,茶多酚可以用在熟食、饮料、糖果

等食品上。在用量上规定为0.14g/kg。要正确使用,要先将其

溶入乙醇,加上一定量的柠檬酸制成溶液,然后喷在或添加

在食品上。试验研究

吸光度A没食子酸乙酯当量E茶叶中茶多酚含量X铁观音(乌龙茶)0.0420.0760.163%龙井(绿茶)0.0130.0230.049%黄山毛峰(绿茶)0.1690.3040.651%花茶0.1340.2410.516%红茶0.1450.2610.559%

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参考文献

1罗婧,顾颖颖,刘易成,郭梁.不同茶叶中茶多酚和咖啡因成分的对比分析[J].贵州茶叶,2013(1)2浦周芳,韩丽琴,曹宏梅.茶叶中茶多酚提取及含量测定的研究[J].食品研究与开发,2013(17)3鹿洋,齐崴,苏荣欣,何志敏.茶叶中茶多酚的提取纯化及咖啡碱和茶多糖的联产制备[J].食品工业科技,2013(20)(责任编辑王蔓)植物组织培养即植物无菌培养技术,又称离体培养,是

根据植物细胞具有全能性的理论,利用植物体离体的器官(如

根、茎、叶、茎尖、花、果实等)、组织(如形成层、表皮、皮层、髓

部细胞、胚乳等)或细胞(如大孢子、小孢子、体细胞等)以及

原生质体,在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下,

诱导出愈伤组织、不定芽、不定根,最后形成完整的植株。1组织培养发展简史

1838~1839年,德国科学家Schleide和Schwann发表了

细胞学说,奠定了组织培养的理论基础。

1902年,德国植物学家Haberlandt根据细胞学说,提出

单个细胞的植物细胞全能性(totipotency)理论。

1904年,Hanning最先成功地培养了萝卜和辣根菜的胚。

1922年,Knudson采用胚培养法获得大量兰花幼苗。

1934年,White用番茄根尖建立起第一个活跃生长的无

性繁殖系,从而使非胚器官的培养首先获得成功。

1958年,英国科学家Steward等用胡萝卜根的愈伤组织

细胞进行悬浮培养,成功诱导出胚状体并分化为完整的小植

株,不但使细胞全能性理论得到证实,而且为组织培养的技

术程序奠定了基础。

1962年,Murashinge和Skoog在烟草培养中筛选出至今

仍被广泛使用的MS培养基。

1964-1966年,印度科学家Guha和Maheswari在曼陀罗

花药培养中首次由花粉诱导得到了单倍体植株。

1972年,Carlson通过两个种的烟草原生质体融合培养,

获得了第一个体细胞杂交的杂种植株。

植物组织的培养过程并不复杂,但是外植体消毒灭菌不

彻底往往会影响试验和生产的结果,本实验以蓝刺头的腋芽

为外植体,研究流水冲洗外植体时间的长短在植物组织培养

中的应用效果。2准备工作

(1)试验材料:蓝刺头新发腋芽。(2)消毒试剂:75%酒精,

2%次氯酸钠溶液,吐温-80。(3)无菌器材:16瓶培养基,大量

无菌水,镊子,解剖刀,烧杯。

接种前,用75%酒精棉球擦拭超净工作台台面,将培养

基及接种用具放入超净工作台。房间用酒精喷雾降尘后打开

超净工作台紫外灯及房间的紫外灯,照射约30分钟;然后关

闭紫外灯,打开房间换气扇以及超净工作台的风机,通风20

分钟后,再进行无菌操作。3消毒步骤

3.1自来水冲洗

用已消毒的刀片切取新发的蓝刺头腋芽,先用毛刷粘洗

洁精轻轻刷洗表面,然后分别放入4个玻璃杯,玻璃杯口用

纱布封上,在自来水龙头下分别冲洗1小时、2小时、4小时、

8小时。

3.2酒精消毒

冲洗后进超净工作台,进入接种间,用酒精棉球仔细擦

拭双手至手腕部位。外植体用滤纸吸干水分,放入事先消好

毒的空瓶,用75%酒精浸泡30秒,倒出酒精用无菌水冲洗

3~4次。

3.3化学药剂灭菌

外植体用无菌水冲洗完后,第3步用2%次氯酸钠溶液

加少量吐温80消毒5~8分钟,消毒过程经常晃动瓶子,使

外植体表面与消毒液充分接触,以期达到最佳消毒效果。消

毒时间结束后在酒精灯火焰旁用无菌镊子将已完成表面灭

菌的外植体转移到烧杯中,用无菌水反复清洗7~8次,每次

不少于1分钟,清洗时不断摇动烧杯以确保完全去除消毒

剂。最后1次清洗后将外植体转移到无菌烧杯上,吸干水分

备用。4接种培养

接种时,每1次操作都要先将镊子等器械浸入75%酒精

中,再将器械取出后置于酒精灯火焰上充分灼烧,待冷却后

方可使用。将消毒后的外植体腋芽表层剥离,再接种到

MS+6-BA1.0mg/L+2,4-D0.4mg/L的培养基上。每瓶接入

2~3个腋芽。每瓶接种完毕后,将瓶口置火焰上转动烧烤,以

杀死瓶口上的细菌,再封好瓶口,贴上标签。将培养瓶放置在

温度为24~26℃,光照为1500~2000lx,光周期12h/天的环

境下培养。每周观察1次,将污染的外植体及时拿走洗掉。5结果分析

30天后观察不同流水时间对外植体长势的影响发现:冲

洗8小时的外植体接种后的污染率最低,但由于冲洗时间过

长,其发芽率明显低于其他;冲洗1、2小时的外植体污染率

高于冲洗4小时和8小时的;而冲洗4小时的外植体效果最

佳。实验表明,外植体流水冲洗时间也并非越长越好,冲洗4

小时左右为最佳时间。

(责任编辑荷初)流水冲洗对外植体消毒灭菌的影响

王伟张丽华管德泳刘捷李剑龙

(上饶市水稻良种场,江西上饶334100)试验研究

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