分子标记辅助育种技术
- 格式:docx
- 大小:20.82 KB
- 文档页数:7
分子标记辅助选择技术及其在作物育种上的应用研究目录1. 引言1.1 背景和意义1.2 结构概述1.3 目的2. 分子标记辅助选择技术2.1 分子标记的定义和分类2.2 常用的分子标记技术2.3 分子标记辅助选择技术的原理和方法3. 作物育种中的应用研究3.1 传统育种与分子标记辅助选择育种的对比3.2 分子标记辅助选择在作物抗病性改良中的应用研究3.3 分子标记辅助选择在作物品质改良中的应用研究4. 分子标记技术在现代作物育种中面临的挑战和前景展望4.1 技术挑战及其解决方案4.2 应用潜力与发展前景5. 结论5.1 总结已有研究成果5.2 展望未来发展方向和价值所在1. 引言1.1 背景和意义随着人口的不断增长和资源的有限性,如何提高作物的产量、品质和抗病能力成为全球农业面临的重要问题。
传统育种方法虽然可以改良作物,但其进展缓慢且存在许多局限性。
近年来,分子标记辅助选择技术的出现为解决这一问题提供了新的途径。
这项技术利用分子标记对作物基因组进行精确分析和筛选,从而加速育种过程,并在遗传改良上取得了显著成果。
1.2 结构概述本文将首先介绍分子标记辅助选择技术的定义和分类,然后探讨常用的分子标记技术以及相应的原理和方法。
接下来,将重点关注该技术在作物育种中的应用研究,并与传统育种方法进行比较。
特别是,我们将探讨分子标记辅助选择在作物抗病性改良和品质改良方面的应用案例。
此外,我们还将对分子标记技术在现代作物育种中面临的挑战及其解决方案进行深入讨论。
最后,本文将总结已有的研究成果,并展望未来分子标记辅助选择技术在作物育种领域的发展方向和价值。
1.3 目的本文的主要目的是全面介绍分子标记辅助选择技术及其在作物育种上的应用研究。
通过对该技术原理、方法以及实际应用案例的深入探讨,旨在加深读者对该领域的理解,并为相关研究提供参考和启示。
此外,本文还将探讨分子标记技术在现代作物育种中面临的挑战,并提出一些解决方案,为该技术未来的发展提供思路和指导。
分子标记辅助的遗传育种实践分子标记辅助的遗传育种实践遗传育种是农作物改良中的重要手段,为了提高育种效率和准确性,科学家们通过分子标记技术的应用,开展了分子标记辅助的遗传育种实践。
这项技术的出现,极大地促进了农作物育种的进程。
分子标记是一种通过DNA序列检测和分析的方法,可以确定特定基因位点的遗传信息。
借助这项技术,育种者可以更加准确地筛选和选择具有优良基因的个体,从而加速了育种过程中的杂交和选择。
与传统育种相比,分子标记辅助的育种具有更高的效率和准确性。
在实践中,科学家们首先通过分析物种的基因组,发现了与目标性状相关的分子标记。
这些标记可以是单核苷酸多态性(SNP)或简单重复序列(SSR)等。
然后,他们利用这些标记开展杂交和选择。
通过对大量杂交个体进行分子标记的检测,科学家可以快速筛选出携带目标基因的个体,并将其作为亲本进行后续的杂交。
这种方式避免了传统育种中的大量试验和大规模筛选的工作,提高了育种效率。
此外,在分子标记辅助的育种中,科学家还可以利用分子标记数据进行定位和图谱构建。
通过分析标记位点的位置和分布,可以预测携带目标基因的染色体区域,从而缩小育种目标的范围。
同时,构建遗传图谱可以帮助科学家更好地理解物种的遗传结构和基因座位间的连锁关系,为育种的进一步研究提供了基础。
分子标记辅助的遗传育种实践已经在多个农作物中得到了成功应用。
例如,在水稻育种中,通过分子标记技术可以筛选出高产、抗病、抗虫等多种优良性状的基因,从而加速了新品种的培育。
此外,分子标记还可以用于小麦、玉米、大豆等农作物的育种中。
总之,分子标记辅助的遗传育种实践为农作物改良提供了一种高效、准确的方法。
通过利用分子标记技术,育种者可以更加精确地选择优良基因,加速杂交和选择的过程,并为育种研究提供基础。
随着技术的不断发展,分子标记辅助的遗传育种将在农业生产中发挥愈加重要的作用。
江苏农业学报(JiangsuJ.ofAgr.Sci.)ꎬ2024ꎬ40(1):183 ̄192http://jsnyxb.jaas.ac.cn孙雨桐ꎬ刘德帅ꎬ冯㊀美ꎬ等.果树分子标记辅助育种研究进展[J].江苏农业学报ꎬ2024ꎬ40(1):183 ̄192.doi:10.3969/j.issn.1000 ̄4440.2024.01.020果树分子标记辅助育种研究进展孙雨桐ꎬ㊀刘德帅ꎬ㊀冯㊀美ꎬ㊀齐㊀迅ꎬ㊀姚文孔(宁夏大学农学院/宁夏优势特色作物现代分子育种重点实验室/林木资源高效生产全国重点实验室ꎬ宁夏银川750021)收稿日期:2023 ̄02 ̄25基金项目:宁夏回族自治区农业育种项目(NXNYYZ202101)ꎻ宁夏回族自治区重点研发项目(2018BEB04004)作者简介:孙雨桐(1998-)ꎬ女ꎬ黑龙江五常人ꎬ硕士研究生ꎬ研究方向为果树学ꎮ(E ̄mail)syt15146063010@163.com通讯作者:姚文孔ꎬ(E ̄mail)yaowenkong@163.com㊀㊀摘要:㊀随着分子生物学的不断发展ꎬ分子标记在果树育种中发挥的作用也愈发重要ꎮ本文主要对不同果树育种的分子标记类型及分子标记在果树种质资源鉴定㊁抗性育种㊁无核育种㊁早熟育种㊁品质改良育种㊁分子遗传图谱构建与数量性状座位(QTL)基因定位等方面的应用进行了综述ꎬ为果树分子标记辅助育种提供参考ꎮ关键词:㊀果树ꎻ分子标记ꎻ遗传图谱ꎻQTL定位中图分类号:㊀S603.6㊀㊀㊀文献标识码:㊀A㊀㊀㊀文章编号:㊀1000 ̄4440(2024)01 ̄0183 ̄10Advancesofmolecularmarkersassistedselectionappliedinfruittreebreed ̄ingSUNYu ̄tongꎬ㊀LIUDe ̄shuaiꎬ㊀FENGMeiꎬ㊀QIXunꎬ㊀YAOWen ̄kong(SchoolofAgricultureꎬNingxiaUniversity/NingxiaKeyLaboratoryofModernMolecularBreedingofDominantandCharacteristicCrops/StateKeyLabora ̄toryofEfficientProductionofForestResourcesꎬYinchuan750021ꎬChina)㊀㊀Abstract:㊀Withthedevelopmentofmolecularbiologyꎬmolecularmarkershaveplayedmoreimportantrolesinthebreedingoffruittrees.Inthispaperꎬwemainlyexpoundedthetypesofmolecularmarkersindifferentfruittreesbreedingꎬandsummarizedtheapplicationofmolecularmarkersintheidentificationofgermplasmresourcesꎬresistancebreedingꎬseedlessbreedingꎬearlymaturitybreedingꎬqualityimprovementbreedingꎬmoleculargeneticmapconstructionandquanti ̄tativetraitlocus(QTL)mappinginfruittrees.Ourstudycanprovidereferenceformolecularmarkerassistantbreedinginfruittrees.Keywords:㊀fruittreesꎻmolecularmarkersꎻgeneticmappingꎻQTLlocalization㊀㊀果树育种的常规手段主要有杂交育种㊁诱变育种㊁倍性育种等ꎬ但由于果树杂种比较多㊁品种来源复杂㊁多为多年生木本植物㊁生长周期长等因素ꎬ导致传统育种周期长㊁效率低㊁不确定因素多ꎮ相比于常规育种ꎬ分子标记辅助选择(Molecularmarkeras ̄sistedselectionꎬMAS)可以提高育种效率ꎬ缩短育种周期ꎬ并且在遗传多样性㊁品种鉴定等方面也有较好的效果[1]ꎮ分子标记技术种类繁多ꎬ如随机扩增多态性DNA(RandomamplifiedpolymorphicDNAꎬRAPD)㊁扩增片段长度多态性(AmplifiedfragmentlengthpolymorphismꎬAFLP)㊁简单序列重复(SimplesequencerepeatꎬSSR)㊁单核苷酸多态性(Singlenu ̄cleotidepolymorphismꎬSNP)等ꎬ这些分子标记被广泛应用于果树的遗传育种㊁亲缘关系判断㊁遗传图谱构建以及数量性状座位(QTL)定位等研究中ꎮ这将加速果树品种的改良进程ꎬ提高育种效率ꎮ3811㊀果树上应用分子标记的主要类型1.1㊀RAPD分子标记为适应不良环境以及抵御病虫危害ꎬ培育具有一定抗性的果树品种至关重要ꎮTartarini[2]从5种不同的RAPD标记中筛选出与MdVf基因紧密相关的OPAM192200和OPAL07580ꎬ标记了苹果(Malusdo ̄mestica)抗赤霉病Vf基因ꎮ杨亚州等[3]以燕山葡萄和河岸葡萄的F1代为材料ꎬ通过7个RAPD标记对其抗旱性进行研究ꎬ将RAPD标记5226 ̄1100转化成专一性的SCAR(Sequencecharacterizedamplifiedregionsꎬ特定序列扩增)标记DR ̄760ꎮ其次RAPD分子标记多用于果树遗传多样性及品种鉴定ꎬ余智城等[4]对16份柑橘包括11份琯溪蜜柚进行遗传多样性分析ꎬ通过15条RAPD引物将16份材料分为2大类(表1)ꎮ表1㊀随机扩增多态性DNA(RAPD)分子标记在果树上的应用Table1㊀ApplicationofrandomamplifiedpolymorphicDNA(RAPD)molecularmarkersonfruittrees物种(属)功能主要结果参考文献苹果(MalusMill.)筛选抗病基因从5种不同的RAPD标记中筛选出与Vf基因紧密相关OPAM192200和OPAL07580标记苹果抗赤霉病Vf基因[2]葡萄(VitisL.)筛选抗旱基因以燕山葡萄和河岸葡萄的F1代为材料ꎬ通过7个RAPD标记对其抗旱性进行研究ꎬ获得了抗旱基因的RAPD标记[3]柑橘(CitrusL.)遗传多样性分析以16份柑橘包括11份琯溪蜜柚为材料用15条RAPD引物对其遗传多样性进行分析ꎬ将16份材料分为2大类[4]李(PrunusL.)绘制遗传图谱利用RFLP(限制性内切酶片段长度多态性)和RAPD标记绘制桃的遗传连锁图谱[5]品种鉴定使用360个RAPD引物进行大片段分析ꎬ以鉴定桃与桃㊁桃与杏仁杂交中特定位点相关的标记[6]遗传多样性分析用RAPD分子标记技术对7个樱桃品种进行多态性分析ꎬ将7个樱桃品种分为4类[7]杧果(MangiferaL.)遗传多样性分析从20个RAPD引物中筛选15个引物ꎬ分析了34份传统杧果种质的遗传变异和亲缘关系[8]1.2㊀AFLP分子标记分析果树遗传多样性ꎬ有助于果树的分类ꎮ董美超等[9]针对90份鳄梨品种材料从24对AFLP引物中筛选出8对进行遗传多样性分析ꎬ根据遗传相似系数可划分为4个类群ꎮLai等[10]采用AFLP和甲基化敏感扩增多态性(Methylationsensitiveampli ̄fiedpolymorphismꎬMSAP)的分子标记技术探究车道晚脐橙与芽变南瓜状脐橙之间的基因和基因组甲基化差异ꎬ结果表明芽变南瓜状脐橙的出现是由于基因突变ꎮ可见AFLP结合MSAP分子标记技术可以研究橙的早熟及果实形状的基因突变ꎬ这为此方面其他果树的研究提供了理论及技术的支持(表2)ꎮ表2㊀扩增片段长度多态性(AFLP)分子标记在果树上的应用Table2㊀Applicationofamplifiedfragmentlengthpolymorphism(AFLP)molecularmarkersonfruittrees物种(属)㊀㊀㊀功能㊀主要结果参考文献鳄梨(PerseaMill.)遗传多样性分析为了研究90份鳄梨品种材料ꎬ从24对AFLP引物中筛选出8对进行遗传多样性分析ꎬ根据遗传相似系数可划分为4个类群[9]苹果(MalusMill.)遗传多样性分析用AFLP对泰山红星㊁沂蒙短枝红星㊁红星和金冠4个苹果品种进行了遗传分析ꎬ结果表明ꎬ泰山红星苹果多态性显著高于其他品种[11]柑橘(CitrusL.)筛选果实形状基因采用AFLP和MSAP分析车道晚脐橙及其芽变南瓜状脐橙的基因和基因组甲基化差异ꎬ结果表明基因突变发生在车道晚脐橙和其芽变南瓜状脐橙之间[10]遗传多样性分析用AFLP技术对3个亲本和16个辐射诱变和芽变的柑橘品种进行了遗传差异分析[12]筛选早熟基因以脐橙试验材料ꎬ用AFLP和MSAP对其在基因组㊁甲基化修饰水平与脐橙早熟性状之间的关系进行探究ꎬ结果表明ꎬ果实熟期与去甲基化相关[13]猕猴桃(ActinidiaLindl.)遗传多样性分析使用AFLP技术对33份猕猴桃的遗传多样性进行分析ꎬ可以将33份种质分为3个类群[14]MSAP:甲基化敏感扩增多态性ꎮ1.3㊀SSR分子标记SSR标记的优点是大量标记及其共显性遗传ꎬ也正因如此SSR分子标记被广泛应用在果树育种中ꎮ王立新等[15]从144对SSR引物中筛选出3对引物对40481江苏农业学报㊀2024年第40卷第1期份苹果进行检测ꎬ结果表明ꎬ这3对引物可以鉴定区分40份苹果ꎮKimura等[16]用9个SSR标记鉴别60个亚洲梨品种ꎬ研究结果表明其中7个SSR标记能将58个品种区分开ꎮ刘国彬等[17]以19种欧李种质及其近缘种杏李㊁李资源为试验材料ꎬ利用SSR标记进行品种鉴定并构建分子身份证ꎮ魏姗姗等[18]以95份桃品种为试材ꎬ利用18对SSR引物对桃进行遗传多样性分析ꎬ发现了桃品种的8个连锁群ꎮ胡光明等[19]以红阳猕猴桃为材料ꎬ从435对SSR引物中筛选出67对引物ꎬ用于猕猴桃属种质资源的亲缘关系及遗传多样性分析ꎮMahjbi等[20]以20个突尼斯柑橘品种为材料ꎬ通过7个SSR位点建立了它们的亲缘关系来探究其遗传多样性ꎮ此外SSR分子标记也被用于果树品质育种㊁抗性育种以及遗传图谱构建(表3)ꎮ表3㊀简单序列重复(SSR)分子标记在果树上的应用Table3㊀Applicationofsimplesequencerepeat(SSR)molecularmarkersonfruittrees物种(属)㊀㊀㊀功能㊀主要结果参考文献苹果(MalusMill.)品种鉴定用144对SSR引物对40份苹果进行检测ꎬ最少用3对引物进行组合即可鉴定40份苹果[15]筛选品质位点以短枝富士和粉红女士216株F1代群体为试验材料ꎬ使用SSR标记获得了2个与果实酸度连锁的分子标记[21]筛选抗病基因从144对SSR引物中选出17对在抗病和感病之间表现出多态性的引物标记苹果抗褐斑病ꎬ结果表明标记基因位于苹果第8连锁群LG8上[22]梨(PyrusL.)品种鉴定以亚洲梨为材料ꎬ用9个SSR标记鉴别60个品种的亚洲梨能将58个品种区分开[16]李(PrunusL.)品种鉴定以19种欧李种质及其近缘种杏李㊁李资源为试验材料ꎬ利用SSR标记进行品种鉴定并构建分子身份证[17]遗传多样性分析以95份不同的桃品种为研究材料ꎬ用SSR标记对桃遗传多样性进行分析ꎬ可将桃分为扁球形和球形2个类群[18]柑橘(CitrusL.)遗传多样性分析以20个突尼斯柑橘品种为材料ꎬ通过7个SSR位点建立了它们的亲缘关系[20]葡萄(VitisL.)筛选无核基因20个个体被选为无籽葡萄育种研究的遗传资源ꎬVMC7f2标记被鉴定为与无核性状最相关的标记[23]绘制遗传图谱在96个个体的全同胞群体的2个亲本上共测试了346对引物ꎬ成功扩增了310个标记ꎬ基于2个群体中245个SSR标记的分离ꎬ构建了4个图谱[24]筛选抗性基因使用葡萄参考连锁图的SSR标记ꎬ在连锁群15(LG15)上确定抗性位点的位置[25]猕猴桃(ActinidiaLindl.)性别鉴定利用毛花猕猴桃的基因组来开发与性别鉴定相关SSR标记ꎬ从中筛选出了1对可以鉴定毛花猕猴桃雌雄株的引物[26]1.4㊀SRAP分子标记相关序列扩增多态性(Sequencerelatedampli ̄fiedpolymorphismꎬSRAP)标记与RAPD标记的原理和步骤极为相似ꎬ但SRAP相对于RAPDꎬ稳定性高ꎬ重复性好ꎬ多态性较高ꎮ董星光[27]以黄冠和鸭梨为试材ꎬ用SRAP和AFLP标记对其抗病基因进行分析ꎬ发现与抗黑星病相关的1条SRAP标记和1条AFLP标记ꎬ可见SRAP与AFLP可联合用于梨的抗病品种的选育ꎮ冯涛等[28]以小白桃㊁津柳早红为试材ꎬ用12条SRAP引物对其早熟基因进行分析ꎬ结果表明SRAP标记可以用于鉴定桃成熟期芽变(表4)ꎮ表4㊀相关序列扩增多态性(SRAP)分子标记在果树上的应用Table4㊀Applicationofsequencerelatedamplifiedpolymorphism(SRAP)molecularmarkersonfruittrees物种(属)㊀功能㊀主要结果参考文献梨(PyrusL.)筛选抗病基因以黄冠梨和鸭梨为试材ꎬ用SRAP标记对其抗病基因进行分析ꎬ从120对引物中筛选出1条与抗黑星病相关的SRAP标记[27]李(PrunusL.)筛选早熟基因以小白桃㊁津柳早红为试材用12条SRAP引物对其早熟基因进行分析ꎬ结果表明SRAP标记可以鉴定桃成熟期芽变[28]苹果(MalusMill.)筛选耐盐基因以西府海棠和S19杂交组的F1单株为试材ꎬ用SRAP标记对其耐盐基因进行分析ꎬ获得了4条与耐盐基因相关的标记[29]柑橘(CitrusL.)遗传多样性分析以51份酸橙(Citrusaurantium)为研究材料ꎬ用21个SRAP引物来研究其与亲本的遗传关系和多样性[30]葡萄(VitisL.)遗传多样性分析以39个玫瑰香系葡萄品种为试材ꎬ利用SRAP标记技术对其遗传多样性进行分析并构建其DNA指纹图谱[31]椰子(CocosL.)遗传多样性分析使用SRAP标记分析从湄公河三角洲收集的19个椰子品种的遗传多样性ꎬ并绘制其遗传关系[32]581孙雨桐等:果树分子标记辅助育种研究进展1.5㊀SCAR分子标记测序的扩增区段(Sequencecharacterizedampli ̄fiedregionꎬSCAR)标记最初是从RAPD分子标记技术衍生而来的ꎬ并且重复性和特异性比RAPD更好ꎮ为减少农药对环境和人体的危害ꎬ选育抗病品种具有重要意义ꎬSCAR分子标记在果树抗病育种方面发挥着重要的作用ꎮ祁楠等[33]以秦冠和富士F1代群体为试材ꎬ将苹果抗斑点落叶病相关基因的1个RAPD标记转换为SCAR标记(表5)ꎮDeng等[34]以柑橘为材料克隆并测序了20个与抗柑橘三叶草病毒基因连锁的RAPD片段中的7个ꎬ并将它们转化为SCAR标记ꎮ赵伟[35]以用8种葡萄作为亲本的杂交后代为材料ꎬ用SCAR标记SCO11 ̄914对其白粉病抗性进行检测ꎮ表5㊀测序的扩增区段(SCAR)分子标记在果树上的应用Table5㊀Applicationofsequencecharacterizedamplifiedregion(SCAR)molecularmarkersonfruittrees物种(属)㊀功能㊀主要结果参考文献苹果(MalusMill.)筛选抗病基因以秦冠和富士F1代群体为试材ꎬ将苹果抗斑点落叶病基因的1个RAPD标记转换为SCAR标记[33]柑橘(CitrusL.)筛选抗病基因克隆并测序了20个与抗柑橘三叶草病毒基因连锁的RAPD片段中的7个ꎬ并将它们转化SCAR标记[34]梨(PyrusL.)筛选矮化基因以矮化梨与茌梨的杂交后代共111个单株为试材ꎬ获得了1个控制梨树矮化性状基因的RAPD标记S1172 ̄940ꎬ并转换成了SCAR标记[36]葡萄(VitisL.)筛选无核基因利用SCF27 ̄2000和SCC8 ̄1018对32个杂种株系进行分子标记检测ꎬ其中有17个株系都出现了无核的特异性条带[37]筛选抗病基因以8种葡萄作为亲本的杂交后代材料ꎬ用SCAR标记SCO11 ̄914对其白粉病抗性进行检测[35]1.6㊀SNP分子标记SNP检测方法主要有酶切扩增多态性序列(CAPS)㊁单链构象多态性(SSCP)㊁直接测序和基因芯片等ꎮBaldi等[38]通过2个苹果品种Fiesta和Discovery之间杂交的分离群体开发CAPS和SSCP标记ꎬ标记其抗性基因的定位ꎬ实现了克隆序列的遗传作图ꎮSNP多用于遗传图谱的构建ꎮAntan ̄aviciute等[39]使用来自28种海棠基因型的SNP数据为海棠开发了全基因组基因分型阵列ꎮ该阵列为任何给定的海棠后代提供了高通量基因分型和连锁图谱开发的前景ꎮ将2272个SNP标记的数据整合到M432子代的图谱中ꎬ并展示了最完整和最饱和的普米拉分枝杆菌17个连锁群的图谱ꎮ唐海霞等[40]以冬枣和金丝4号的F1代103株群体为材料ꎬ用简化基因组测序技术(GBS)开发的SNP构建了1张包含12条连锁群的遗传图谱ꎮ相关研究(表6)为果树数量性状定位㊁功能基因挖掘以及图位克隆等研究提供了有效的理论依据ꎮ表6㊀单核苷酸多态性(SNP)分子标记在果树上的应用Table6㊀Applicationofsinglenucleotidepolymorphism(SNP)molecularmarkersonfruittrees物种(属)㊀㊀㊀功能㊀主要结果参考文献苹果(MalusMill.)绘制遗传图谱将2272个SNP标记的数据整合到M432子代的图谱中ꎬ并展示了最完整和最饱和的普米拉分枝杆菌17个连锁群的图谱[39]枣(ZiziphusMill.)绘制遗传图谱以冬枣和金丝4号杂交的F1代103株群体为材料ꎬ用SNP分子标记构建了1张包含12条连锁群的遗传图谱[40]柑橘(CitrusL.)品种鉴定利用SNP分子标记区分Haryejosaeng与其他7个温州蜜柑品种的DNA序列差异[41]葡萄(VitisL.)筛选抗虫基因SNP标记可用于葡萄对爪哇根结线虫抗性基因(MJR1)的标记辅助选择[42]龙眼(DimocarpusLour.)绘制遗传图谱以200株凤梨朵和大乌圆的杂交后代F1作为作图群体ꎬ利用RAD ̄seq技术开发SNP分子标记构建遗传图谱[43]2㊀果树遗传图谱构建概况分子标记已被广泛用于构建遗传图谱ꎬ遗传图谱是基于遗传距离的图谱ꎬ它反映的是不同基因座之间的遗传距离和连锁程度ꎮ目前ꎬ大量分子标记如SNP㊁SCAR㊁SSR㊁AFLP㊁SRAP等被用于果树遗传作图ꎮWu等[44]以八月红和砀山酥梨杂交的102个梨F1代单株为作图群体ꎬ用SNP与SSR整合构建681江苏农业学报㊀2024年第40卷第1期了梨的高密度连锁图谱ꎬ该图谱是用快速和稳健的限制性相关DNA测序技术(RADseq)绘制的ꎮ连锁图谱由SNP标记和SSR标记组成ꎬ共3241个标记ꎬ跨度为2243.4cMꎬ平均标记距离为0 70cMꎮ刘更森[45]以富士和金冠杂交的F1代122个单株为作图群体ꎬ选用已开发的SNPꎬ结合SSR标记构建了苹果遗传图谱ꎮ以杧果金黄和贵妃杂交的98株F1代植物为作图群体ꎬ用SRAP㊁AFLP和ISSR分子标记进行作图ꎬ该图谱由33个连锁群组成ꎬ总遗传距离为1561.1cM[46]ꎮ已构建遗传图谱的果树品种见表7ꎮ表7㊀果树遗传图谱构建概况Table7㊀Overviewoffruittreegeneticmappingconstruction物种㊀㊀㊀(属的拉丁名)㊀㊀㊀作图亲本㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀标记类型㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀群体大小(株)连锁群数量(个)参考文献苹果(MalusMill.)富士ˑ坂田津轻SNP15017[47]蜜脆ˑ秦冠SNP35034[48]富士ˑ金冠SNP㊁SSR12217[45]梨(PyrusL.)崇化大梨ˑ新世纪梨SSR㊁SRAP㊁ISSR21014[49]红茄梨ˑ晚秀梨SNP㊁SSR16117[50]八月红ˑ砀山酥梨AFLP㊁SRAP㊁SSR9717[51]李(PrunusL.)黄水蜜ˑ中油桃14号SNP868[52]红垂枝ˑ白花山碧SSR㊁AFLP㊁SRAP5211[53]柑橘(CitrusL.)梨橙2号ˑ晚蜜2SSR㊁COS8010[54]Murcott橘橙ˑPêra甜橙AFLP879[55]Cravo橘ˑPêra甜橙RAPD9412[56]葡萄(VitisL.)赤霞珠ˑ左优红SNP㊁SSR18119[57]枣(ZiziphusMill.)JMS2ˑ邢16SNP16712[58]冬枣ˑ金丝4号SNP㊁SSR11112[59]荔枝(LitchiSonn.)马贵荔ˑ焦核三月红RAPD㊁SRAP㊁AFLP7620[60]芒果(MangiferaL.)金黄ˑ贵妃SRAP㊁AFLP㊁ISSR9833[46]龙眼(DimocarpusLour.)凤梨朵ˑ大乌圆RAPD㊁ISSR㊁SRAP㊁AFLP9421[61]SNP:单核苷酸多态性ꎻSSR:简单序列重复ꎻSRAP:相关序列扩增多态性ꎻISSR:简单重复系列区间ꎻAFLP:扩增片段长度多态性ꎻCOS:保守直系同源序列ꎻRAPD:随机扩增多态性DNAꎮ3㊀QTL基因定位在果树育种中的应用通常没有一种基因能唯一决定某些性状ꎬ一般一组基因作为一个整体控制着某一特性ꎮ与特定数量性状相关的基因所在的基因组区域称为QTLꎬ即数量性状位点ꎮ自从分子标记出现以来ꎬ研究人员和育种人员一直致力于识别与这些QTL相关的功能标记ꎬ在果树的重要性状QTL定位和分子标记辅助育种等方面均取得较好的成果ꎬ如果树生长发育㊁果实的品质㊁抗逆性的强弱等ꎮ前人已对苹果㊁梨㊁柑橘等多种果树的生长发育特性(开花㊁生根能力㊁矮化等)㊁果实品质(质量㊁大小㊁颜色㊁硬度㊁风味等)㊁抗生物胁迫㊁抗非生物胁迫(耐盐碱㊁抗干旱㊁抗寒等)等重要农艺性状进行分析ꎬ有助于培育特定目标性状的果树品种ꎮ3.1㊀与苹果相关的QTL苹果QTL的鉴定集中于其主要农艺性状[如矮化㊁果实品质(包括果实质量㊁果实大小㊁果实颜色以及果肉的糖酸含量)㊁苹果的抗逆性(抗寒㊁抗旱㊁耐盐碱等)]ꎮFoster等[62]对41份M93Robusta5(非矮化)与Braeburn接穗嫁接的砧木群体的QTL进行分析ꎬ结果表明ꎬ连锁群LG5上的一个主要QTL对接穗的矮化有显著影响ꎮZheng等[63]用来自海棠㊁红富士㊁金冠㊁乔纳森家系9422株苹果F1代杂交种为试材ꎬ检测得到9个与苹果果皮颜色遗传变异有关的微效QTL(表8)ꎮ孙瑞[64]以红玉㊁金冠以及红781孙雨桐等:果树分子标记辅助育种研究进展玉和金冠的F1代杂交群体297株苹果为试材ꎬ对其品质性状进行QTL定位ꎬ共得到12个QTL位点ꎮ3.2㊀与梨相关的QTL迄今ꎬQTL定位在梨的研究上取得了一定的成果ꎮ赵亚楠[65]利用苹果梨和八月红150株F1代材料对14个果实品质性状进行基因定位分析ꎬ共获得28个QTL位点ꎬ其中与单果质量相关的QTL位点有5个㊁与果心大小相关的QTL位点有2个㊁与果肉硬度相关的QTL位点有3个㊁与果实横径相关的QTL位点有6个㊁与果梗长度相关的QTL位点有1个㊁与可溶性固形物含量相关的QTL位点有6个㊁与可滴定酸含量相关的QTL位点有2个ꎬ共扫描到2266个基因ꎮSun等[66]以131个亚洲梨和欧洲梨为试验材料ꎬ在已被鉴定的病害相关QTL区域中找到41个核苷酸结合位点(NBS)编码基因(表9)ꎮ表8㊀苹果相关的数量性状座位(QTL)Table8㊀Quantitativetraitlocus(QTL)relatedtoapple亲本功能㊀㊀㊀群体大小(株)QTL数量(个)参考文献Malling9ˑRobus ̄ta5标记矮化的位点416[62]海棠㊁红富士㊁金冠㊁乔纳森标记果皮颜色的位点94229[63]红玉ˑ金冠标记果实质量的位点2972[64]红玉ˑ金冠标记果实酸度的位点2976[64]红玉ˑ金冠标记糖含量的位点2972[64]红玉ˑ金冠标记抗病的位点53429[67]BalengCrabˑM9标记耐盐碱的位点325842[68]MalusdomesticaˑM.asiatica标记果肉硬度的位点266432[69]MalusdomesticaˑM.asiatica标记果肉脆度的位点266430[69]FortuneˑMurcott标记苹果酸的位点14638[70]秦冠ˑ蜜脆标记抗旱的位点35055[71]3.3㊀与柑橘相关的QTL通过分子标记构建柑橘的遗传连锁图谱可以获得果实发育等农艺性状和应答逆境胁迫的QTLꎮ罗艾等[72]以晚蜜2号和梨橙2号的94株F1代材料为群体ꎬ进行QTL定位分析ꎬ发现4个与果实质量相关的QTL定位ꎬ7个与果实大小相关的QTL定位ꎮ马喜军[73]以晚蜜2号和梨橙2号的350株F1代为试验材料对柑橘抗寒性相关的QTL进行定位ꎬ得到7个与柑橘抗寒性相关的QTLꎬ分布于4个连锁群上ꎬ分别为LW1㊁LW2㊁LW3和LW8ꎮHuang等[74]对甜橙ˑ枳橙属间杂交的170株F1代进行基因分型分析ꎬ在枳遗传图谱上鉴定到4个与柑橘黄龙病相关的QTL(表10)ꎮ表9㊀梨相关的数量性状座位(QTL)Table9㊀Quantitativetraitlocus(QTL)relatedtopear亲本㊀㊀功能㊀㊀㊀群体大小(株)QTL数量(个)参考文献苹果梨ˑ八月红标记果实大小的位点1506[65]苹果梨ˑ八月红标记果肉硬度的位点1503[65]苹果梨ˑ八月红标记可溶性固形物的位点1506[65]苹果梨ˑ八月红标记可滴定酸的位点1502[65]苹果梨ˑ八月红标记果实质量的位点1505[65]亚洲梨ˑ欧洲梨标记抗病的位点13141[66]八月红ˑ砀山酥梨标记果实质量的位点1022[75]八月红ˑ砀山酥梨标记果实大小的位点1022[75]表10㊀柑橘相关的数量性状座位(QTL)Table10㊀Quantitativetraitlocus(QTL)relatedtocitrus亲本㊀㊀功能㊀㊀㊀群体大小(株)QTL数量(个)参考文献晚蜜2号ˑ梨橙2号标记果实质量的位点944[72]晚蜜2号ˑ梨橙2号标记果实大小的位点947[72]梨橙2号ˑ晚蜜2号标记抗寒的位点3507[73]甜橙ˑ枳橙标记抗病的位点1704[74]红橘ˑ枳壳标记果肉色泽的位点792[76]FortuneˑMurcott标记挥发性物质的位点116206[77]TrifoliataˑCleopatramandarin标记耐盐碱的位点98[78]3.4㊀与其他果树相关的QTL除常见果树外ꎬ其他果树重要性状相关的QTL定位研究也取得了很大进展ꎮCirilli等[79]评估133份桃种质ꎬ定位到1个可以推迟桃花期的QTLꎮ鲍荆凯[80]用JMS2和交城5号枣的150株F1代材料对其QTL定位进行分析ꎬ共获得104个QTL位点ꎬ其中与果实大小相关的QTL位点57个㊁与果实糖组分相关的QTL位点17个㊁与果实酸组分相关的QTL位点30个ꎮ刘春燕[81]以桂海4号和山梨猕猴桃的杂交后代开展QTL定位研究ꎬ共检测到44个QTL位点ꎬ其中与果实质量相关的QTL位点7个ꎬ与果实横纵径相关的QTL位点21个ꎮ史晓畅[82]以881江苏农业学报㊀2024年第40卷第1期山东大绵球和新宾软籽山楂的130株杂交F1代为材料ꎬ检测到2个与单果质量相关的QTL位点ꎬ6个与果皮穿刺硬度相关的QTL位点ꎬ3个与果实大小相关的QTL位点ꎬ5个与果皮脆性相关的QTL位点ꎬ5个与果肉平均硬度相关的QTL位点ꎮ这些研究(表11)不仅丰富了果树的遗传学研究ꎬ也为果实品质及果树抗逆的遗传机制和育种研究提供了理论基础ꎮ4㊀展望在果树的品种鉴定㊁辅助育种(早熟㊁无核㊁矮化㊁品质以及抗性等)㊁遗传图谱的构建和农艺性状基因定位等方面ꎬDNA分子标记被广泛应用ꎮDNA分子标记技术种类多样ꎬ大致可分为三类ꎮ第一类:以电泳技术和分子杂交技术为核心的分子标记技术ꎬ如RFLPꎻ第二类:以DNA聚合酶链式反应(PolymerasechainreactionꎬPCR)为基础的分子标记技术ꎬ包括RAPD㊁SSR㊁SCAR等ꎻ第三类:以DNA测序为核心的分子标记技术ꎬ如SNP标记[83]ꎮRFLP具有共显性且不需要先验序列信息ꎬ但它耗时长ꎬ需要大量纯DNAꎬ价格也比较昂贵[84]ꎮRAPD操作简单ꎬ所需DNA量少ꎬ多态显性ꎬ但需要高度纯化的DNA并且再现性低ꎮDNA的数量和质量㊁PCR缓冲液㊁氯化镁浓度㊁退火温度和TaqDNA聚合酶是影响RAPD标记再现性的一些重要因素[85]ꎮAFLP标记将RFLP和PCR技术结合在一起ꎬ先对DNA进行消化ꎬ然后进行PCRꎮAFLP标记物具有低成本ꎬ并且不需要先前的序列信息ꎮ在AFLP中ꎬ既可以使用高质量的DNAꎬ也可以使用部分降解的DNAꎬ但是ꎬ该DNA不能含有任何限制性内切酶或PCR抑制剂[86]ꎮ相较于RFLP㊁RAPD㊁AFLP等分子标记ꎬSSR标记具有多态性检出率高㊁基因组中分布广泛㊁结果稳定可靠等特点ꎬ是检测品种真实性㊁分析品种间遗传差异以及鉴定纯度的理想标记[87]ꎮSNP可以提供最简单和最大数量的标记ꎮSNP在植物和动物中大量存在[88 ̄91]ꎬ植物中的SNP频率为每100~300bp中有1个SNPꎮSNP成本低ꎬ在基因组中广泛分布ꎬ无需先验序列信息ꎬ再现性高ꎬ共显性标记ꎬ但其开发成本较高ꎮ人们基于不同的等位基因识别技术和检测平台已经开发了大量的SNP基因分型方法ꎬ其中ꎬRLFP(SNP ̄RFLP)是最简单的方法ꎬCAPS标记技术也可以应用于SNP检测[92]ꎮ分子标记种类繁多ꎬ功能优势也有所不同ꎬ根据试验的目的选择合适的分子标记有助于解决具体问题ꎮ表11㊀与其他果树相关的数量性状座位(QTL)Table11㊀Quantitativetraitlocus(QTL)relatedtootherfruittrees物种(属)㊀㊀㊀㊀㊀㊀亲本㊀㊀㊀㊀㊀功能㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀群体大小(株)QTL数量(个)参考文献李(PrunusL.)标记开花的位点1331[79]枣(ZiziphusMill.)JMS2ˑ交城5号标记果实大小的位点15057[80]JMS2ˑ交城5号标记果实糖组分的位点15017[80]JMS2ˑ交城5号标记果实酸组分的位点15030[80]猕猴桃(ActinidiaLindl.)桂海4号ˑ山梨猕猴桃标记果实质量的位点1747[81]桂海4号ˑ山梨猕猴桃标记果实大小的位点17421[81]山楂(CrataegusL.)山东大绵球ˑ新宾软籽标记果实质量的位点1302[82]山东大绵球ˑ新宾软籽标记果实大小的位点1303[82]山东大绵球ˑ新宾软籽标记果皮硬度的位点1306[82]山东大绵球ˑ新宾软籽标记果肉脆度的位点1305[82]葡萄(VitisL.)赤霞珠ˑ左优红标记抗寒的位点1818[93]枣(ZiziphusMill.)DavisˑGeorgiaBelle标记抗寒的位点21112[94]㊀㊀为同时提高育种效率㊁缩短育种周期ꎬ寻找与农艺性状密切相关的分子标记至关重要ꎮ分子标记辅助育种(MAS)的优势可以体现在以下3个方面ꎮ一㊁允许提前选择ꎮ在育种中ꎬ有些性状需要特定的生长环境和一定的生长周期ꎮ二㊁同一性状利用多个等位基因ꎮ在不同的育种材料中ꎬ可能存在多个基因影响同一性状(如抗病性和品质)ꎬ利用表型很难识别这些等位基因ꎮ三㊁允许同时选择多个性状ꎮ所选单株或品系不仅要在单株抗病㊁品质㊁产量等方面表现良好ꎬ综合性状也要相对较好ꎮ因此ꎬ有必要对育种的种群981孙雨桐等:果树分子标记辅助育种研究进展中每个目标性状逐一进行识别和筛选ꎮ以往的研究大多将目的基因的分子标记与育种工作分离ꎬ不能很好地应用于实际ꎮ今后分子标记技术的发展将与传统育种相结合ꎬ使其尽快为育种工作服务ꎮ这有助于提高果树作物育种效率ꎬ加快育种发展进程ꎮ参考文献:[1]㊀KATULA ̄DEBRECENIDꎬLENCSESAKꎬSZOKEAꎬetal.Marker ̄assistedselec ̄tionfortwodominantpowderymildewresistancegenesintrogressedintoahybridgrapepopulation[J].ScientiaHoriculturaeꎬ2010ꎬ126(4):448 ̄453.[2]㊀TARTARINIS.RAPDmarkerslinkedtotheVfgeneforscabre ̄sistanceinapple[J].TheoreticalandAppliedGeneticsꎬ1996ꎬ92:803 ̄810.[3]㊀杨亚州ꎬ王跃进ꎬ张剑侠ꎬ等.中国葡萄属野生种抗旱基因的分子标记及遗传分析[J].园艺学报ꎬ2007ꎬ34(5):1087 ̄1092. [4]㊀余智城ꎬ何雪娇ꎬ林秀香ꎬ等.琯溪蜜柚芽变种质遗传多样性的RAPD分析[J].福建热作科技ꎬ2022ꎬ47(3):38 ̄41. [5]㊀RAJAPAKSESꎬBELTHOFFLEꎬHEGꎬetal.GeneticlinkagemappinginpeachusingmorphologicalꎬRFLPandRAPDmarkers[J].TheoreticalandAppliedGeneticsꎬ1995ꎬ90(3/4):503 ̄510. [6]㊀WARBURTONMLꎬBECERRA ̄VELáSQUEZVLꎬGOFFREDAJCꎬetal.UtilityofRAPDmarkersinidentifyinggeneticlinkagestogenesofeconomicinterestinpeach[J].TheoreticalandAppliedGeneticsꎬ1996ꎬ93(5/6):920 ̄925.[7]㊀黄晗达ꎬ杨静慧ꎬ龚无缺ꎬ等.7个樱桃品种亲缘关系的RAPD分析[J].天津农学院学报ꎬ2018ꎬ25(1):5 ̄8.[8]㊀HIMABINDUAꎬRAJASEKHARM.CharacterizationoftraditionalmangogermplasmofcoastalAndhraPradeshusingRAPDmarkers[J].ElectronicJournalofPlantBreedingꎬ2021ꎬ12(4):1261 ̄1267.[9]㊀董美超ꎬ杨㊀帆ꎬ李进学ꎬ等.90份鳄梨种质资源AFLP遗传多样性分析[J].福建农业学报ꎬ2020ꎬ35(1):13 ̄19.[10]LAICWꎬLINYLꎬZHOUXJꎬetal.AFLPandMSAPanalysisof LaneLate navelorangeanditsbudsportpumpkin ̄likenavelorange[J].PlantDiseasesandPestsꎬ2022ꎬ13(1):20 ̄25. [11]王晓英ꎬ郭廷松ꎬ王新花ꎬ等.4个苹果品种的AFLP分子标记研究[J].山东农业大学学报(自然科学版)ꎬ2018ꎬ49(1):90 ̄93.[12]王㊀平ꎬ唐小浪ꎬ马培恰ꎬ等.辐射诱变和芽变柑橘品种(系)的AFLP分析[J].果树学报ꎬ2012ꎬ29(1):130 ̄134.[13]赖春旺ꎬ周小娟ꎬ米兰芳ꎬ等.脐橙早熟芽变及其早熟性状回复型材料的AFLP和MSAP分析[J].果树学报ꎬ2022ꎬ39(8):1346 ̄1357.[14]张㊀慧ꎬ张世鑫ꎬ吴绍华ꎬ等.猕猴桃属33份种质资源的AFLP遗传多样性分析[J].生物学杂志ꎬ2018ꎬ35(2):29 ̄33. [15]王立新ꎬ张小军ꎬ史星雲ꎬ等.苹果栽培品种SSR指纹图谱的构建[J].果树学报ꎬ2012ꎬ29(6):971 ̄977.[16]KIMURATꎬSHIYZꎬSHODAMꎬetal.Identificationofasian ̄pearvarietiesbySSRanalysis[J].BreedingScienceꎬ2002ꎬ52(2):115 ̄121.[17]刘国彬ꎬ姚砚武ꎬ曹㊀均.利用荧光SSR标记构建欧李种质分子身份证[J].东北林业大学学报ꎬ2022ꎬ50(10):10 ̄17. [18]魏姗姗ꎬ杨敏生ꎬ梁海永.桃品种遗传多样性SSR分析[J].耕作与栽培ꎬ2022ꎬ42(1):1 ̄5ꎬ9.[19]胡光明ꎬ张㊀琼ꎬ韩㊀飞ꎬ等.猕猴桃属植物通用型SSR分子标记引物的筛选及应用[J].中国农业科学ꎬ2022ꎬ55(17):3411 ̄3425.[20]MAHJBIAꎬOUESLATIAꎬBARAKETGꎬetal.AssessmentofgeneticdiversityofTunisianorangeꎬCitrussinensis(L.)osbeckusingmicrosatellite(SSR)markers[J].GeneticsandMolecularResearchꎬ2016ꎬ15(2):1 ̄12.[21]王雷存ꎬ樊红科ꎬ高㊀华ꎬ等.苹果酸度基因(Ma)SSR标记及遗传分析[J].园艺学报ꎬ2012ꎬ39(10):1885 ̄1892.[22]寿园园.苹果抗褐斑病性遗传分析与SSR分子标记[D].哈尔滨:东北农业大学ꎬ2009.[23]AKKURTMꎬÇAKIRAꎬSHIDFARMꎬetal.UsingSCC8ꎬSCF27andVMC7f2markersingrapevinebreedingforseedlessnessviamarkerassistedselection[J].GeneticsandMolecularRe ̄searchꎬ2012ꎬ11(3):2288 ̄2294.[24]ADAM ̄BLONDONAFꎬROUXCꎬCLAUXDꎬetal.Mapping245SSRmarkersontheVitisviniferagenome:atoolforgrapege ̄netics[J].TheoretischeandAngewandteGenetikꎬ2004ꎬ109(5):1017 ̄2227.[25]KUCZMOGAꎬGALAMBOSAꎬHORVáTHSꎬetal.MappingofcrowngallresistancelocusRcg1ingrapevine[J].TheoretischeandAngewandteGenetikꎬ2012ꎬ125(7):1565 ̄1574.[26]刘嘉艺ꎬ岳俊阳ꎬ刘永胜.基于毛花猕猴桃基因组的性别相关SSR分子标记的开发[J].合肥工业大学学报(自然科学版)ꎬ2022ꎬ45(8):1135 ̄1138ꎬ1146.[27]董星光.梨抗黑星病基因的分子标记研究[D].北京:中国农业科学院ꎬ2009.[28]冯㊀涛ꎬ刘㊀娟ꎬ华夏雪.利用SSR㊁SRAP分子标记鉴定桃早熟芽变[J].江苏农业科学ꎬ2017ꎬ45(6):42 ̄44.[29]孙叶红ꎬ张㊀媛ꎬ李中勇ꎬ等.苹果砧木耐盐性基因SRAP标记的鉴定及序列分析[J].华北农学报ꎬ2015ꎬ30(2):59 ̄63. [30]POLATIꎬKACARYAꎬYESILOGLUTꎬetal.Molecularcharac ̄terizationofsourorange(Citrusaurantium)accessionsandtheirrelativesusingSSRandSRAPmarkers[J].GeneticsandMolecu ̄larResearchꎬ2012ꎬ11(3):3267 ̄3276.[31]尚晓星ꎬ张安世ꎬ刘㊀莹ꎬ等.玫瑰香系葡萄种质资源SRAP遗传多样性分析及指纹图谱构建[J].分子植物育种ꎬ2020ꎬ18(6):1916 ̄1922.[32]XUANDTKꎬNGUYENQTꎬKHANGNHMꎬetal.Molecularcharacterizationofcoconut(CocosnuciferaL.)varietiesinViet ̄namusingsequence ̄relatedamplifiedpolymorphism(SRAP)markers[J].Biologiaꎬ2022ꎬ77(11):183 ̄191.[33]祁㊀楠ꎬ万怡震ꎬ高㊀华ꎬ等.苹果抗斑点落叶病基因的一个091江苏农业学报㊀2024年第40卷第1期。
畜禽分子标记辅助育种技术规程随着科技的不断发展,分子标记辅助育种技术已经成为畜禽育种的重要手段之一。
分子标记技术可以通过标记遗传物质上的特定序列,从而实现对畜禽基因组的分析和筛选。
本文将介绍《畜禽分子标记辅助育种技术规程》,旨在为畜禽分子标记辅助育种提供规范和指导。
一、技术原理畜禽分子标记辅助育种技术是利用分子标记技术对畜禽基因组进行分析,筛选出具有优良性状的个体或群体,以实现畜禽品种改良的目的。
该技术主要依靠PCR扩增技术,对标记遗传物质进行检测分析。
PCR扩增技术是在酶的作用下,将DNA序列进行复制,从而扩大检测的灵敏度和准确性。
二、技术流程畜禽分子标记辅助育种技术的主要流程包括:样本采集、DNA提取、PCR扩增、电泳分析、数据分析等步骤。
具体流程如下:1. 样本采集:选取具有代表性的样本,包括不同品种、不同性别、不同年龄、不同环境等因素的畜禽个体。
2. DNA提取:将畜禽组织样本中的DNA提取出来,可采用CTAB 法、盐酸法、酚氯仿法等方法进行提取。
3. PCR扩增:选择合适的引物和PCR反应体系,对DNA进行扩增。
该步骤需要考虑PCR反应体系的温度、时间、引物浓度等因素,以保证PCR反应的成功和准确。
4. 电泳分析:将PCR扩增产生的DNA片段通过琼脂糖凝胶电泳分析,根据不同电泳迁移速度,判断是否存在目标基因型。
5. 数据分析:根据电泳分析结果,进行数据分析和统计,筛选出具有优良性状的个体或群体。
三、技术应用畜禽分子标记辅助育种技术在畜禽育种中有着广泛的应用。
它可以用于畜禽品种间的遗传多样性分析,为畜禽种质资源保护和利用提供技术支持。
同时,该技术也可以用于畜禽品种改良和优化,通过筛选出具有优良性状的个体或群体,实现畜禽品种的提高和优化。
四、技术优势畜禽分子标记辅助育种技术相比传统育种技术具有以下优势: 1. 高效性:该技术可以快速、准确地筛选出具有优良性状的个体或群体,大大提高了育种效率。
植物分子育种新方法与技术植物育种一直是人类的重要任务之一,随着科技的不断更新迭代,植物育种技术手段也在不断发展。
分子育种作为一种新兴的育种技术,正逐步成为植物育种的重要手段之一。
下面就来谈谈植物分子育种的新方法与技术。
一、单倍型选择单倍型选择是指在育种过程中选择最优基因单倍型,以加速育种进程和提高育种效率。
单倍型选择最初是在小麦、玉米等大型单倍型植物上进行的,但现在也已经开始在一些复杂重要的作物上应用。
单倍型选择的原理是在育种过程中产生蒸汽小单倍型植物,然后通过对这些植物的重组进行选择,最终得到优异基因单倍型,进行杂交育种或者直接转基因育种。
二、分子标记辅助选择分子标记技术是指在植物基因组上选择和鉴定不同的DNA序列,以判断该物种植物的基因性状、种类、父系与母系等信息。
这种技术常被用于育种,称为分子标记辅助选择。
分子标记辅助选择的原理是通过标记与目标基因的DNA序列的配对,快速、准确地鉴定某一确定基因型,进而选择“指定”基因型的杂交对象。
这种方法可用于选择抗病、耐旱等种植物。
三、组学和生物信息学组学和生物信息学是新兴的研究方向,在分子育种中也有着广泛的应用。
组学是指对组织中所有基因的表达进行分析,以了解组织基因表达的全貌,从而掌握基因运作的规律,而生物信息学则对所有生物信息进行研究,如分析基因的序列、结构等。
组学分析可研究种植物在不同环境下的变化、不同类型植物基因组的结构和功能等。
生物信息学则可用于全基因组重组、拼接基因组序列和植物基因家族的鉴定等领域。
四、基因编辑技术基因编辑技术是指利用酵素来对目标DNA进行剪切、粘合并插入、删除特定基因的方法,达到改变基因表型的效果。
这种技术被广泛应用于植物育种中。
基因编辑技术的原理是以某些基因为模板,利用DNA合成技术合成一串DNA,再用这串DNA替代原DNA,实现对基因序列的改变。
这种方法可用于植物病害的抵抗、提高产量等。
总之,植物分子育种技术是育种领域中发展最快的前沿技术之一,其应用范围广泛,极大地促进了植物育种的发展。
水稻育种中的分子标记辅助选择技术水稻是我国的主要粮食作物之一,也是世界上最为重要的粮食作物之一。
为了满足人们的需求,不仅需要增加产量,还需要提高水稻的抗病性、耐旱性等方面的性状,从而提高稻米的质量和产量。
为了实现水稻优良性状的选育,目前的育种工作中,分子标记辅助选择技术被广泛应用,成为水稻育种的重要手段。
一、什么是分子标记辅助选择技术分子标记辅助选择技术是指利用分子标记技术对水稻种群进行筛选和选择,以实现快速、高效、精准的选育。
分子标记是一种基于DNA序列的分析方法,是利用分子生物学技术分析和鉴定生物体间或同一生物体内不同基因型的分析方法。
通过在DNA序列上标记其不同的基因型,可以识别水稻种群中存在的不同基因型,从而实现对水稻的选育。
二、分子标记辅助选择技术的应用分子标记辅助选择技术在水稻育种中应用广泛。
主要包括四个方面:1.遗传多样性鉴定水稻遗传多样性是指不同地域、不同种类、不同品种水稻之间的遗传变异。
通过分子标记技术可以对水稻的遗传多样性进行鉴定,研究水稻种群之间的亲缘关系,为水稻遗传资源的保护和利用提供重要的科学依据。
2.形态指标筛选水稻的形态指标是指生长发育各阶段的形态特征,包括穗长、穗粒数、茎粗、叶片长度等。
通过分子标记技术,在水稻种群中寻找与形态指标相关的分子标记,可以快速、高效、精准地筛选出拥有优良形态性状的杂交种。
3.抗病性状筛选水稻的抗病性状是指抵御外界环境压力的能力,包括对病害菌的抵御能力、对病害环境的适应能力等。
通过分子标记技术,在水稻种群中寻找与抗病性状相关的分子标记,可以快速、高效、精准地筛选出拥有优良抗病性状的杂交种。
4.耐旱性状筛选水稻的耐旱性状是指适应干旱环境的能力,包括耐旱、耐盐碱、耐寒等。
通过分子标记技术,在水稻种群中寻找与耐旱性状相关的分子标记,可以快速、高效、精准地筛选出拥有优良耐旱性状的杂交种。
三、分子标记辅助选择技术的优点1.快速高效分子标记技术可以快速、高效地对水稻种群进行筛选和鉴定,可以在很短时间内筛选出具有优良性状的水稻种群。
分子育种知识点总结分子育种是利用分子生物学和生物技术手段来辅助传统育种方法,提高植物和动物的遗传育种效率的一种育种方法。
它利用分子标记和遗传图谱技术来加速育种过程,为育种者提供更多的选择和决策依据。
分子育种技术包括遗传标记辅助选择、基因定位、基因克隆和应用、基因组学、蛋白质组学、转基因和细胞工程等。
本文将对分子育种的相关知识点进行总结。
1. 遗传标记辅助选择遗传标记是指位点特异、遗传稳定的DNA片段,可被检测和分离,并可用于进行种群和个体间的遗传关系与遗传地图构建。
遗传标记辅助选择是根据遗传标记与目标性状之间的关系,通过分子标记技术进行筛选和分选,选育目标基因型的材料的育种方法。
2. 基因定位基因定位是指将一个特定的基因定位到染色体上的位置。
通过基因定位,可以找到携带特定性状的染色体区域,为进一步克隆和应用相关基因提供重要的依据。
3. 基因克隆和应用基因克隆是指通过分子生物学技术将一段特定的DNA片段从一个生物体中分离出来并在另一个生物体或在体外进行繁殖的过程。
通过基因克隆技术,可以将特定的基因转移到其他物种中,以改良其性状。
4. 基因组学和蛋白质组学基因组学是研究生物体基因组的组成、结构和功能的科学。
基因组学在分子育种中的应用,可对植物和动物的基因组进行全面的分析和研究,为育种材料的选择和育种目标的确定提供重要的信息。
蛋白质组学是研究蛋白质组的组成、结构和功能的科学。
在分子育种中,蛋白质组学可以帮助鉴定植物和动物的蛋白质组,了解其在特定性状表达上的作用,并为育种材料的选择和性状改良提供重要的依据。
5. 转基因和细胞工程转基因是指通过基因工程技术,在一个生物体中引入来自其他物种的外源基因,并使之在宿主物种的基因组中稳定表达。
转基因技术在植物和动物育种中的应用,可以通过引入特定基因来改良其性状,提高产量、抗病性、抗逆性等。
细胞工程是通过细胞培养、植物体细胞的真核基因转移和使植物体重新分化生成新的器官、新的植株,对植物进行改良。
标记育种是利用与目标性状基因紧密连锁的遗传标记,对目标性状进行跟踪选择的一项育种技术。
与育种有关的遗传标记主要有四种类型: 形态标记(morphological marker)、细胞标记(cytological markers)、生化标记(Biochemical marker)和分子标记(molecular marker)。
早在1923年,Sax等就提出利用微效基因与主基因的紧密连锁,对微效基因进行选择的设想。
但由于形态标记数目有限,而且许多标记对育种家来说是不利性状,因而难以广泛应用。
细胞标记主要依靠染色体核型和带型,数目有限。
同工酶标记在过去的二、三十年中得到了广泛的发展与应用。
作为基因表达的产物,其结构上的多样性在一定的程度上能反映生物DNA组成上的差异和生物遗传多样性。
但由于其为基因表达加工后的产物,仅是DNA全部多态性的一部分,而且其特异性易受环境条件和发育时期的影响;此外同工酶标记的数量有限,不能满足育种需要。
近年来,分子生物学的发展为植物遗传标记提供了一种基于DNA变异的新技术手段,即分子标记技术。
与其它标记方法相比,分子标记具有无比的优越性。
它直接以DNA形式出现,在植物体的各个组织、各发育时期均可检测到,不受季节、环境的限制,不存在表达与否的问题;数量极多,遍及整个基因组;多态性高,利用大量引物、探针可完成覆盖基因组的分析;表现为中性,即不影响目标性状的表达,与不良性状无必然的连锁;许多标记为共显性,能够鉴别出纯合的基因型与杂合的基因型,提供完整的遗传信息分子标记的概念分子标记Molecular Markers 是以个体间遗传物质内核苷酸序列变异为基础的遗传标记,是DNA水平遗传多态性的直接的反映。
与其他几种遗传标记——形态学标记、生物化学标记、细胞学标记相比,DNA分子标记具有的优越性有:大多数分子标记为共显性,对隐性的性状的选择十分便利;基因组变异极其丰富,分子标记的数量几乎是无限的;在生物发育的不同阶段,不同组织的DNA都可用于标记分析;分子标记揭示来自DNA 的变异;表现为中性,不影响目标性状的表达,与不良性状无连锁;检测手段简单、迅速。
分子标记辅助育种技术
分子标记辅助育种技术
第一节
分子标记的类型和作用原理
遗传标记是指可以明确反映遗传多态性的生物特征。
在经典遗传学中,遗传多态性是指等位基因的变异。
在现代遗传学中,遗传多态性是指基因组中任何座位上的相对差异。
在遗传学研究中,遗传标记主要应用于连锁分析、基因定位、遗传作图及基因转移等。
在作物育种中,通常将与育种目标性状紧密连锁的遗传标记用来对目标性状进行追踪选择。
在现代分子育种研究中,遗传标记主要用来进行基因定位和辅助选择。
1、形态标记
形态标记是指那些能够明确显示遗传多态性的外观性状。
如、株高、穗型、粒色等的相对差异。
形态标记数量少,可鉴别标记基因有限,难以建立饱和的遗传图谱。
有些形态标记受环境的影响,使之在育种的应用中受到限制。
2、细胞学标记
细胞学标记是指能够明确显示遗传多态性的细胞学特征。
如染色体的结构特征和数量特征。
核型:染色体的长度、着丝粒位置、随体有无。
可以反映染色体的缺失、重复、倒位、易位。
染色体结构特征
带型:染色体经特殊染色显带后,带的颜色深浅、宽窄
和位置顺序,可以反映染色体上常染色质和异染
色质的分布差异。
染色体数量特征—是指细胞中染色体数目的多少。
染色体数量上的
遗传多态性包括整倍体和非整倍体变异。
细胞学标记
优点:克服了形态标记易受环境影响的缺点。
缺点:
(1)培养这种标记材料需花费大量的人力物力;
(2)有些物种对对染色体结构和数目变异的耐受性差,难以获得相应的标记材料;(3)这种标记常常伴有对生物有害的表型效应;
(4)观察鉴定比较困难。
3、蛋白质标记
用作遗传标记的蛋白质分为酶蛋白质和非酶蛋白质两种。
非酶蛋白质:用种子储藏蛋白质经一维或二维聚丙烯酰胺凝胶电泳,根据显示的蛋白质谱带或点,确定其分子结构和组成的差异。
酶蛋白质:利用非变性淀粉凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳及特异性染色检测,根据电泳谱带的不同来显示酶蛋白在遗传上的多态性。
蛋白质标记的不足之处:
(1)每一种同工酶标记都需特殊的显色方法和技术;
(2)某些酶的活性具有发育和组织特异性;
(3)标记的数量有限。
4 、 DNA标记
DNA分子标记是DNA水平上遗传多态性的直接反映。
DNA水平的遗传多态性表现为核苷酸系列的任何差异,包括单个核苷酸的变异。
二、分子标记的类型及作用原理
三大类:
(1)基于DNA-DNA杂交的DNA标记
利用限制性内切酶酶解及凝胶电泳分离不同生物体的DNA分子,然后用经标记的特异DNA探针与之进行杂交,通过放射性自显影或非同位素显色技术来揭示DNA的多态性。
(2)基于PCR的DNA标记
根据所用引物的特点分为随机引物PCR标记和特异引物PCR标记。
(3)基于单核苷酸多态性的DNA标记
何谓PCR?
聚合酶链反应
(Polymerase Chain Reaction)简称PCR
是一项在短时间内大量扩增特定的DNA片段的分子生物学技术。
PCR原理
类似于DNA的体内复制。
首先待扩增DNA模板加热变性解链,随之将反应混合物冷却至某一温度,这一温度可使引物与它的靶序列发生退火,再将温度升高使退火引物在DNA聚合酶作用下得以延伸。
?这种热变性-复性-延伸的过程就是一个PCR 循环,PCR就是在合适条件下的这种循环的不断重复。
三个基本步骤:
(1) 变性(Denature):目的双链DNA片段在94℃下
解链;
(2) 退火(Anneal):两种寡核苷酸引物在适当温度
(50℃左右)下与模板上的目的序列通过氢键配对;
(3) 延伸(Extension):在Taq DNA聚合酶合成DNA的最适
温度下,以目的DNA为模板进行合成.
由这三个基本步骤组成一轮循环,理论上每一轮循环将使目的DNA 扩增一倍,这些经合成产生的DNA又可作为下一轮循环的模板,所以经25-35轮循环就可使DNA扩增达倍。
PCR反应中的主要成份
1. 引物
2. 4种三磷酸脱氧核苷酸(dNTP)
3. Mg2+
4. 模板DNA
5. Taq DNA聚合酶
6. 反应缓冲液
遗传性疾病的基因诊断
在临床医学上,PCR被用于鉴别遗传疾病和快速检测病毒、病菌感染。
法医学
个人识别、亲子鉴定
1985年,英国遗传学家Jeffreys采用DNA
指纹图谱进行个人识别和亲子鉴定。
有时犯罪物证量很少,不足以用来进行DNA指纹分析,PCR有效解决这些问题。
对于犯罪现场中遗留的少量生物物证,如一根毛发、一滴血等都可用于分析,在法医学上认证罪犯、亲子鉴定以及人的性别鉴定中PCR技术被普遍采用。
植物遗传育种
构建遗传图谱、分离目的基因、基因定位
分子标记辅助育种
了解不同品种间的亲缘关系、系统进化
畜牧
畜禽病诊断:猪伪狂犬病毒、猪口蹄疫病毒、猪瘟病毒、牛白血病毒、牛病毒、性腹泻病毒、免疫缺陷病毒等检测
性别鉴定:牛、绵羊Y染色体上特异DNA片段
构建基因图谱
检测基因整合与表达:转基因鱼
植物保护
病原微生物的基因型鉴定
植物病原微生物分类
形态学上相似性和潜在的血清学交互反应,用常规方法难以区分,采用反转录PCR (RT-PCR)可准确快速区分.
理想的DNA标记的应具备以下特点:
(1)表现稳定;
(2)数量多;
(3)多态性高;
(4)对目标性状表达无不良影响;
(5)部分标记的遗传方式为共显性,可鉴别纯合体和杂合体;
(6)信息量大,分析效率高;
(7)检测手段简单快捷,易于实现自动化;
(8)开发成本和使用成本低。
引物长度为9~10个碱基。
由于引物较短,在PCR中必须使用较低的退火温度,以保证引物能与模板DNA结合。
RAPD标记的优点:对DNA需要量极少;对DNA的质量要求不高;操作简单易行;一套引物可用于不同生物的基因组分析。
AFLP标记
优点:可靠、高效。
可在一个反应内检测大量限制性片段。
不足:需用同位素或非同位素标记引物,较费时耗材。
三个步骤
(1)DNA?酶切及人工接头连接,对提取DNA质量要求较高,需避免其它DNA?污染和抑制物质的存在;
(2) 扩增反应;
(3) 通常在4%-6%的变性聚丙烯酰胺凝胶上分离.
(四)SSR标记
( Simple sequence Repeat )
=(microsatellite)
=(Short Tandem Repeat,STR)
简单序列重复标记
优点:多态性丰富;操作简便,稳定可靠。
缺点:依赖测序设计引物,开发成本高。
第二节
重要农艺性状基因
连锁标记的筛选技术
分子标记为实现对基因型的直接选择提供了可能,因为分子标记的基因型是可以识别的。
如果目标基因与某个分子标记紧密连锁,那么通过分子标记基因型的检测,就能获知目标基因的基因型。
因此,可以借助分子标记对目标性状的基因型进行选择,这称为分子标记辅助选择(MAS)。
用于MAS育种的分子标记需具备的条件:
1.分子标记与目标基因紧密连锁;
2.标记适用性强,重复性好;
3.不同遗传背景选择有效.
一、遗传图谱的构建
主要环节:
1、根据遗传材料的多态性确定亲本组合,建立作图群体;
2、群体中不同植株的标记基因型分析;
3、用计算机程序构建连锁群。
暂时性分离群体:F2、F3、F4、
BC、三交群体等。
两类分离群体
永久性分离群体:RIL、DH群体等。
二、近等基因系(NIL)的培育
近等基因系:一组遗传背景相同或相近,只是在个别染色体区段上存在差异的株系。
如果一对近等基因系在目标性状上表现差异,那么,凡是能在这对近等基因系间揭示多态性的分子标记,就可能位于目标基因的附近。
近等基因系是一系列回交过程的产物。
三、利用群体分离法进行性状标记
利用NIL寻找质量性状基因的分子标记的基本策略是比较轮回亲本、NIL及供体亲本三者的标记基因型。
当NIL与供体亲本具有相同的标记基因型,但与轮回亲本的标记基因型不同时,则该标记基因就可能与目标基因连锁。
四、数量性状的基因定位
控制数量性状的基因在基因组中的位置称为数量性状基因座(QTL)。
利用分子标记进行连锁遗传分析,可以检测出QTL,即QTL定位(QTL mapping)。
第三节
作物MAS育种
一、作物MAS育种需具备的条件
1、分子标记与目标基因共分离或紧密连锁;
2、具有在大群体中利用分子标记进行筛选的有效手段(PCR);
3、重复性好、经济、简单、易操作;
4、有相应的计算机数据处理软件。
二、MAS育种方法
1、回交育种
应用于单基因或寡基因控制的质量性状。
2、MAS聚合育种
基因聚合就是将分散不同品种中的有用基因聚合到同一基因组中。
局限性:
(1)标记数量不够多,尤其是多基因控制的数量性状标记少;
(2)受遗传背景影响,一些QTL在不同作图群体中结果不一致;
(3)遗传图密度不够,标记与目标性状之间的遗传距离太大;
(4)分子标记辅助选择的技术要求高,成本高。