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动物生理学实验指导简

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1 动物生理学实验指导教案 动物生理学研究性实验的程序与基本要求 《动物生理学》不仅是一门理论性很强的基础性学科，而且是实验性很强的学科，它的许多理论都来自科学实验结果。因此，在学生经过了一段时间的《动物生理学》理论的学习和一定的实验基本技术操作训练及经典性实验实践之后，进一步进行有关的《动物生理学》研究性实验的基本训练是非常必要的。通过实验设计、探索性实验过程，能使学生充分认识实验在科学理论产生和发展中的作用；培养学生的创新精神及观察和发现问题的能力；解决实际问题和分析、综合实验结果的能力；通过撰写研究性论文使学生学会用逻辑性语言表达研究结果的能力；为今后独立进行科学研究打下良好的基础。

实验一 实验技术与实验仪器 一、动物生理学实验课程的教学目的 本课程旨在通过实验教学训练学生基本操作技能，培养其动手能力，并使学生通过该课程的学习与理论知识融会贯通；培养学生实事求是、严谨的科学作风和严密的科学逻辑思维方法，以及观察、分析、解决问题的综合能力。同时，通过学习实验课程中的新技术、新方法，使学生了解和掌握机能学科实验方法的更新和发展方向，启发学生在机能学科实验研究中的创新性思维。为培养学生的科学研究思维和科学研究能力奠定良好基础。 二、学习动物生理学实验课程的要求 1．做好实验前理论与操作准备 (1)熟悉相关理论知识，以明确相关实验的设计目的、实验原理以及正确的实验结果。 (2)预习实验教材中拟进行的实验内容，掌握实验目的与原理，了解实验步骤及操作要点、注意事项等。 2．以严谨的科学态度进行实验 (1)实验中严格按操作程序进行。实验小组各成员合理分工并密切合作，注意培养自己的动手能力与独立解决实验过程中的问题的能力。 (2)仔细、耐心观察实验现象，认真做好记录。主动联系理论思考、分析 2

实验结果和各种实验现象。认真总结实验成败原因。培养实事求是的科学作风。 (3)所进行的实验结果均应完整记录。整理分析其结果后书写出实验报告。 三、实验结果的记录方法与实验报告的书写要求 1．实验结果表示方法 (1)图形表示法：实验结果如以图形记录在实验仪器上的，可通过输出设备打印，再附在实验报告上。如神经肌肉的电活动记录，心肌、肠肌收缩曲线，血压曲线等。某些数据亦可经统计学处理后做成图形表示。如不同血药浓度与相应时间的对应关系，此时血药浓度为纵坐标、时间为横坐标，描记出药时曲线图形。 (2)数据表示法：实验结果以测定数据记录的，也可以统计数据表格形式表示，如：各组动物不同情况下的血液、体液电解质浓度，PC02、P02等数据。 2．实验报告的书写要求 在实验报告封页上应写上姓名、学号、年级、班次和实验组别。字迹清楚，工整。按格式要求逐一书写 （1）实验题目：一般将实验题目放在实验报告纸的第一行或第一行正中。 （2）实验目的：字数不宜繁多。一般用1～2句话阐明实验所要证实的论点或要研究的内容即可。 （3）实验方法：应注明实验动物名称，麻醉方法。其余实验操作如实验仪器、实验药物或试剂、实验步骤与过程等，可用“按XX章XX实验项下的实验方法进行”等字样表示。 （4）实验结果：根据实验结果真实、完整地以图形、表格或文字方式表示出来。如因操作失误或实验动物发生意外未能完成所需观察的实验结果，应在实验报告中如实说明。 （5） 讨论和结论：讨论应结合实验结果进行，宜简明扼要。主要是分析解释所观察到的实验结果和现象，如为预期结果，应结合理论知识进行其作用、作用机制的阐述。如未达预期结果，应找出原因，总结其经验教训。 结论放在实验讨论后，作为结尾完成。结论应以实验结果为依据，在讨论的基础上概括、总结具有代表性的实验结果的论点或推论。 四、实验室规则和操作规程 1．按时进入实验室，不得迟到早退或随意缺席。 3

2．养成良好的学习和工作作风，保持实验室安静。严禁在实验室里高声喧哗、打闹。 3．爱护实验室设施。实验中严格按实验步骤和方法进行。未经教师同意不得随意动用实验室仪器或器械。切忌违规操作或粗暴使用精密仪器。如微机操作应掌握如何正确开机、如何进入实验程序、如何启动记录、如何存储与输出、如何打印实验结果及关机等。严禁在微机上玩游戏、作个人文件、随意启动其他程序，甚至损坏实验程序等与实验无关甚至非法的活动。 4．实验前认真按教材清点实验桌上的实验器材，如有实验器械缺少或损坏应及时向教师报告。实验完毕后应将器械清洗干净，摆放整齐。如在实验过程中意外损坏实验器械，应向教师报告说明，以及时检修或更换。故意损坏实验仪器或器械者，除照价赔偿外，学校将给予行政处罚。 5．养成节约用物的良好习惯，不得随意浪费动物标本、器材、药品和试剂。能重复利用的器材如纱布、缝合针、试管、插管、针头等，应洗净再用。实验中不得图个人方便而随意移走公用物品。实验废物不得乱倒、乱扔，尤其是强酸、强碱试剂或具放射性的液体或污物，动物皮毛，组织器官，纸屑等不得倒入水槽内，应统一放置在指定地点。 6．实验完成后，应及时关闭微机。离开实验室以前应安排值日小组打扫实验室清洁，整理桌面物品，关闭总电源及稳压器开关、水开关、门窗等。最后请实验室管理人员检查验收后方能离开。

五、 动物生理实验常用手术器械 1 常用手术器械 动物生理学实验常用手术器械与医学外科手术器械大致相同,但也有一些专用器械.现仅介绍常规的手术器械。 4 (1)手术刀 手术刀主要用来切开皮肤和脏器。手术刀片有圆刃、尖刃和弯刃三种。刀柄也分多种，最常用的是4号刀柄和7号刀柄（图3.1-1）。可根据手术部位、性质的需要自由拆装和更换变钝或损坏的手术刀片（图3.1-2）。 持刀的方式有4种(图3.1-3)，其中“执弓式”是一种常用的的持刀方式。其动作范围广泛而灵活，用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。 5

(2)手术剪和粗剪刀 手术剪分钝头剪、尖头剪。其尖端有直、弯之分。主要用于剪皮肤、肌肉等软组织。也可用来分离组织，即利用剪刀尖插入组织间隙，分离无大血管的结缔组织。另外，还有一种小型的眼科剪，主要用于剪血管和神经等软组织。一般 说来，深部操作宜用弯剪，不致误伤。剪线大多为钝头直剪，剪毛用钝头、尖端上翘的。正确执剪姿势是用拇指与无名指持剪，食指置于手术剪的上方（图3.1-4）。 粗剪刀，为普通的剪刀。在蛙类的实验中，常用来剪蛙的脊柱、骨和皮肤等粗硬组织。

(3)手术镊 手术镊种类很多，名称也不统一，常用的有无齿镊和有齿镊两种,用于夹住或提起组织，以便剥离、剪断或缝合。有齿镊用于提起皮肤、皮下组织、筋膜、肌腱等较坚韧的组织，使其不易滑脱。但有齿镊不能用以夹持重要器官，以免造成损伤。无齿镊用于夹持神经、血管、肠壁或其他脏器,较脆弱组织，而不致使之受损伤。正确执镊方法如图3.1-5，用力适当地把持着。 (4)血管钳 血管钳又称止血钳，有直、弯、带齿和蚊式钳等数种。主要用于夹血管或止血点，以达止血的目的。也用于分离组织、牵引缝线，把持或拔缝针等。正确持钳和持剪方法相同（图3.1-6）。开放血管钳的方法是利用右手已 6

套入血管钳的拇指与无名指相对挤压，继而两指向相反的方向旋开，放开血管钳(图3.1-7)。

(5) 骨钳 在打开颅腔和骨髓腔时，用于咬切骨质。 (6)颅骨钻 用于开颅时钻孔。 (7)气管插管 急性动物实验时，插入气管，以保证呼吸通畅，或做人工呼吸。将一端接气鼓或换能器，可记录呼吸运动。 (8)血管插管 有动脉插管和静脉插管。一些小型动物的动脉插管可用16号输血针头磨平来替代。在急性实验时插入动脉，另一端接压力换能器或水银检压计，以记录血压。静脉插管插入静脉后固定，以便在实验过程中随时用注射器向静脉血管中注入药物和溶液。 (9)金属探针 专门用来毁坏蛙类脑和脊髓。 (10)玻璃分针 专用于分离神经与血管等组织。 (11)蛙心夹 使用时将夹的前端在蛙心室舒张时夹住心室尖，尾端用线系在换能器（或扛杆）上。 (12)动脉夹 用于阻断动脉血流。 (13)蛙板 一块20 cm×15 cm的木板，用于固定蛙类。 各种手术器械使用后，都应及时清洗，齿间、轴间的血迹也应用小刷刷洗干净。洗净后用干布擦拭干，忌用火烤烘干或重击。久置不用的金属器械应檫油保护。 7

2. 实验动物 六、 计算机生物信号采集处理系统在生理学实验中的应用 生物信号采集、处理系统是应用大规模集成电路、计算机硬件和软件技术开发的一种集生物信号的放大、采集、显示、处理、存储和分析的电机一体化仪器。该系统可替代传统的刺激器、放大器、示波器、记录仪，一机多用，功能强大。广泛地被应用于生理学、病理学、药理学实验。 1 计算机生物信号采、集处理系统的基本组成和工作原理 目前我国的生物信号采集处理系统多达十余种,因各制造商开发的年代和使用风格不同,相互之间存在着一定的差异。早期的产品基于DOS操作系统，而近期产品多以Windows操作系统，虽然产品有不同的特点，但基本的结构和工作原理具有一定的共性,现做一简要的介绍。 该系统由硬件和软件两大部分组成。硬件主要完成对各种生物电信号(如：心电、肌电、脑电)与非电生物信号(如：血压、张力、呼吸)的采集。并对采集到的信号进行调理、放大，进而对信号进行模／数(A／D)转换，使之进入计算机。软件主要用来对已经数字化了的生物信号进行显示、记录、存储、处理及打印输出，同时对系统各部分进行控制，与操作者进行人机对话(图2.5-1)。

（1） 传感器和放大器 生物所产生的信息，其形式多种多样，除生物电信号可直接检取外，其它形式的生物信号必须先转换成电信号，对微弱的电信号还需经过放大，才能作进一步的处理。生物信号采集处理系统中的刺激器和放大器都是由计算机程控的,其工作原理和一般的刺激器、放大器完全一样。主要的区别在于一般仪器是机械触点式切换，而生物信号采集系统是电子模拟开关，由电压高低的变化控制，是程序化管理，提高了仪器的可靠性，延长了仪器的寿命。 （2） 生物信号的采集 计算机在采集生物信号时，通常按照一定的时间间隔对生物信号取样，

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动物生理学实验设计

动物生理学实验设计

动物生理学实验设计引言：动物生理学实验是研究动物生理功能和机制的重要手段。

通过设计合理的实验方案，可以揭示动物身体各个系统的运作规律，深入理解生命的奥秘。

本文将从呼吸、循环和消化三个方面，设计一系列动物生理学实验，以探究动物的生理过程。

一、呼吸系统实验1. 实验目的：观察不同动物在不同环境条件下的呼吸变化，并探究呼吸与环境的关系。

2. 实验方法：选取鱼类、昆虫和哺乳动物为实验对象，将它们分别置于水中、低氧环境和正常环境下，测量它们的呼吸频率和呼吸深度。

3. 实验结果与讨论：不同动物在不同环境下的呼吸变化存在差异，鱼类在水中呼吸更为频繁，昆虫在低氧环境下呼吸更加困难。

这些结果表明动物的呼吸与其生活环境密切相关。

二、循环系统实验1. 实验目的：研究动物的心脏功能和血液循环过程，并探究身体活动对循环系统的影响。

2. 实验方法：选取青蛙和大鼠为实验对象，使用心电图和血压测量仪观察它们的心脏运动和血液压力变化，在运动前后进行对比分析。

3. 实验结果与讨论：实验结果显示，运动会导致心率和血压的升高，心脏的收缩力增强。

这说明运动对循环系统有促进作用，有利于保持心血管系统的健康。

三、消化系统实验1. 实验目的：研究动物的消化过程和消化酶的活性，探究食物对消化系统的影响。

2. 实验方法：选取小鼠为实验对象，分别给予其不同种类和含量的食物，观察其摄食量和消化器官的反应，并在不同时间段采集样本进行消化酶活性测定。

3. 实验结果与讨论：实验结果显示，不同食物对小鼠的摄食量和消化酶活性有不同的影响。

高蛋白饮食可以促进消化酶的分泌，高脂饮食会导致摄食量增加。

这些结果揭示了食物对消化系统的重要影响。

结论：通过以上实验设计，我们可以更深入地了解动物的呼吸、循环和消化等生理过程。

这些实验不仅可以为人类生理学研究提供参考，还有助于揭示动物适应环境的生存机制。

动物生理学实验的设计和探究将为人类提供更多关于生命奥秘的启示，推动科学的进步。

10-11(上)动物生理实验

10-11(上)动物生理实验

动物生理学实验指导刘红云编写动物生理学实验规则动物生理学是生命科学教育的基础学科，动物生理学的实验目的是使学生理论联系实际，验证与巩固课堂理论知识，培养学生独立思考、独立工作的能力，通过实验使学生树立实事求是的科学态度和严谨细致的工作作风，具有良好的社会公德和团结互助精神。

在实验中学生应遵守下列规则：1．实验前必须预习实验指导，对实验内容应有所了解，做到实验时心中有数。

2．认真听讲了解重点、难点和注意事项，听从老师的指导，严格遵守操作规范。

3．实验时应细心操作和观察，认真做好实验记录，分析实验结果。

实验后，应按指导老师要求，独立完成实验报告。

4．遵守课堂纪律，不无故迟到和早退。

保持课堂安静，不喧哗，不谈笑，不乱丢纸屑与实验废弃材料，保持实验室的整洁。

5．培养良好的社会公德。

爱护国家财产，爱惜仪器设备和标本，节约实验材料。

损坏标本、仪器应立即报告教师，做好登记，按规定赔偿或酌情处理。

6．每次实验完毕后，应将器皿处理干净，放回原处，解剖后的动物尸体，应集中放在指定地点，不能随便丢弃。

轮流做好值日工作，保持实验室的清洁卫生和正常的教学秩序。

实验一计算机生物信号采集处理系统在生理学实验中的应用实验目的：掌握计算机生物信号采集处理系统在生理学实验中应用的方法。

实验原理：计算机生物信号采集处理系统（Pclab）是近些年来开发出来的一个供机能实验使用的软件系统，它是根据电生理实验的特点，将传统仪器的优点与计算机强大处理功能相结合而设计的系统，由硬件和软件两大部分组成。

Pclab硬件主要完成对特种生物信号(如：心电、肌电、脑电)与非电生物信号(如：血压、张力、呼吸)的调整、放大，并进而对生物信号进行模/数（A/D）转换，使之进入计算机。

硬件是由3802型（或其它型号）内置四通道生物信号放大端（内含刺激器）与NSA4型数据采集卡两部分组成。

这种将模拟信号与数字信号分开处理的硬件实现方案符合数字化仪器设计要求，完全解决了“一块卡”设计中不同性质信号间相互干扰问题，使系统的抗干扰性能大为提高，生物信号放大。

动物生理学实验报告

动物生理学实验报告

动物生理学实验报告动物生理学实验报告一、引言动物生理学是研究动物体内生理功能的科学，通过实验方法可以深入了解动物的生理特征和机制。

本实验旨在探究动物在不同环境条件下的生理反应，以及这些反应对其生存和适应能力的影响。

二、实验设计本实验采用小鼠作为实验对象，将其分为两组，分别置于不同环境条件下进行观察和记录。

第一组小鼠置于低温环境中，第二组小鼠置于高温环境中。

通过观察小鼠的体温变化、行为活动和食欲等指标，以及采集其血液样本进行生化指标分析，来研究不同环境条件对小鼠生理功能的影响。

三、实验结果与讨论1. 体温变化在低温环境中，第一组小鼠的体温明显下降，表现出寒冷的生理反应。

而在高温环境中，第二组小鼠的体温明显上升，表现出热应激的生理反应。

这说明小鼠能够通过调节体温来适应不同的环境条件。

2. 行为活动在低温环境中，第一组小鼠的活动减少，呈现出较为迟缓的行动。

而在高温环境中，第二组小鼠的活动增加，表现出较为活跃的行为。

这说明小鼠的行为活动受到环境温度的影响，其活动水平会随环境条件的改变而发生变化。

3. 食欲在低温环境中，第一组小鼠的食欲减退，摄食量明显下降。

而在高温环境中，第二组小鼠的食欲增加，摄食量明显增加。

这说明小鼠的食欲受到环境温度的影响，其摄食行为会随环境条件的改变而发生变化。

4. 生化指标分析通过对小鼠血液样本的生化指标分析，发现在低温环境中，第一组小鼠的代谢率明显下降，体内的能量消耗减少。

而在高温环境中，第二组小鼠的代谢率明显增加，体内的能量消耗增加。

这说明小鼠的代谢活性受到环境温度的影响，其代谢过程会随环境条件的改变而发生变化。

四、结论通过本实验的观察和分析，我们可以得出以下结论：1. 动物能够通过调节体温来适应不同的环境条件。

2. 动物的行为活动水平会随环境温度的改变而发生变化。

3. 动物的食欲会受到环境温度的影响，其摄食行为会随环境条件的改变而发生变化。

4. 动物的代谢活性会受到环境温度的影响，其代谢过程会随环境条件的改变而发生变化。

血压动物生理学实验

血压动物生理学实验

家兔动脉血压系列实验家兔动脉血压系列实验I. 家兔动脉血压测定及神经、体液调节。

II. 家兔减压神经放电。

1.掌握学习动脉插管直接测量和记录动脉血压的实验方法；2.了解减压神经放电的引导记录方法；3.观察某些神经和体液因素对动脉血压的调节；4.观察减压神经传入冲动的发放特征，进一步认识动脉血；5.压变动与减压神经传入冲动发放的相互关系。

动脉血压的动态平衡和相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的；参与支配心脏活动的神经主要有心交感神经和心迷走神经，支配血管的神经有缩血管神经和舒血管神经。

在神经调节中以颈动脉窦-主动脉弓的减压反射尤为重要。

支配血管的交感缩血管神经兴奋时，使血管收缩、外周阻力增加，动脉血压升高。

体液因素主要为肾上腺素和去甲肾上腺素。

它们的作用主要是调节心脏的心输出量、外周阻力等。

心脏的神经支配--心交感神经其节前神经纤维发自脊髓的第1~5胸段的中间外侧柱，节后神经元位于星状神经节或颈交感神经节内。

节后神经元的轴突形成心脏神经丛，分布在心脏的窦房结、房室交界、房室束、心房肌和心室肌等处。

心交感节后神经元末梢释放的去甲肾上腺素与心肌细胞膜上的β-肾上腺素受体结合，通过增加自律细胞和心室肌细胞钙内流，导致心率加快，房室交界的传导加快，心房肌和心室肌的收缩能力加强（正性变时、变力、变传导作用）。

心脏的神经支配--心迷走神经节前神经元的胞体位于延髓的迷走神经背核和疑核，在胸腔内与心交感神经一起组成心脏神经丛，相伴行进入心脏，与心内神经节细胞发生突触联系；节后神经纤维支配心脏的窦房结、房室交界、心房肌、房室束及其分支；心迷走神经节后纤维末梢释放神经递质乙酰胆碱，作用于心肌细胞膜的M型胆碱受体，通过抑制钙内流和自律细胞的内向电流，导致心率减慢，心房肌不应期缩短，房室传导速度减慢，心房肌收缩能力减弱（负性变时、变力、变传导作用）；血管的神经支配与生理作用交感缩血管神经交感舒血管神经副交感舒血管神经中枢延髓的缩血管中枢(T1-L2-3侧角) 皮质运动区脑干副交感核S2-3外侧核链递质去甲肾上腺素乙酰胆碱乙酰胆碱分布绝大多数血管多为单一支配）骨骼肌血管软脑膜、消化腺、外生殖器血管作用α受体→血管缩β受体→血管舒血管舒张血管舒张特点①调节血压作用大②持续发放紧张性冲动紧张性↑→血管缩紧张性↓→血管舒①不参与血压调②平时无作用③与情绪、运动有关①不参与血压调节②参与调节局部血流效应器（心、血管）心血管中枢（延髓）感受器（颈动脉窦和主动脉弓）交感缩血管神经心交感神经心迷走神经迷走神经窦神经心血管活动的神经调节血压升高时，可引起压力感受性反射，其反射效应是使心率减慢，外周血管阻力降低，血压回降，这一反射也称为减压反射；减压反射是一种负反馈调节机制。