Tunel标记原位杂交细胞凋亡检测步骤(精)
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Tunel 标记原位杂交细胞凋亡检测步骤
By Boehriner Nannheim(Catalog NO. 1684809) modifid by Josiah N Wilcox,Jose C. Rodriguez,
and Hector de Leon Emory University Apriil 1996
用于石蜡切片步骤
1. 石蜡切片脱蜡
切片55℃-30℃烤片
二甲苯2次每次2分钟
100%乙醇2次每次2分钟
95%乙醇2次每次2分钟
80%乙醇2分钟
75%乙醇2分钟
50%乙醇2分钟
2. 蒸馏水冲洗
3. 切片用1µg/ml/蛋白酶K/10mM Tris 液,孵化15分钟,室温(7.5µl of 20µg/µl PK in 150ml
10Mm Tris,Ph7.4-8.0)
4. 所有切片1ⅹPBS冲洗2次(非阳性对照片需要10 分钟以上)
5. (阳性对照片:DNase I 液(100µl of 200µg/ml)10分钟,室温 1ⅹPBS冲洗,2次,
放到一个单独容器中然后和其他玻片放到一起)
6. 擦干组织的周边。
7. 配制阴性对照液(只标记有FITC)和TUNEL液一起使用:
A. 从试管2取出100µl(标记液)作为2份阴性对照液(每个管50µl)这样做即
节省了阴性对照液的使用量,还能保持标记液的浓度不变。
B. 试管1(TdT)总量(50µl)加到试管2剩余的(450µl)中
8. 每张切片滴加100µl TUNEL混合反应液(或100µl对照标记液作为阴性对照)
9. 湿盒内37℃孵育60分钟。
10. 1×PBS洗 3次。
11. 将组织周围檫干。
12. 每张切片滴加100µl抗-FITC-AP 连接(转换-AP)
13. 湿盒内37℃中孵育30分钟。
14. 1×PBS洗 3次。
15. 100mM Tris 缓冲液,pH 8.2 室温5分钟。
16. 滴加50-100µl替换液(底物溶液)(5-6滴 Vector Blue or Vector Red substrate/per slide)
混合:
5ml 100mM Tris, pH 8.2
左旋咪唑 1滴
Vector substrate 1,2和3底物液各 2滴
17. 孵育避光室温 Vector Blue 10分钟;每种Vector Red 5-8分钟。
18. 双蒸水 1次 终止颜色反应。
用Vector Blue对比染色:
Gill’s 苏木精,No.2,5秒
水洗
Scott;s 液,20秒
水洗
70%乙醇,30秒
95%乙醇,2次,30秒 每次
100%乙醇,2次,30秒 每次
Histoclear(组织透明液) 1分钟
Histoclear(组织透明液) 1分钟
Coverslip with Accumount medium.
封固
用Vector Red对比染色:
Gill’s 苏木精,No.2,5秒
水洗
Scott;s 液,20秒
水洗
70%乙醇,30秒
95%乙醇,2次,30秒 每次
100%乙醇,2次,30秒 每次
二甲苯透明1分钟
二甲苯透明1分钟
Coverslip with Accumount medium.
封固
需要的试剂
3L 1×PBS
10mM Tris-HCl
20㎎/ml 蛋白酶K
100µl/片 x-phosphate/BCP或核固红替换剂
DNase I 液(1㎎/ml-1µg/ml)用于阳性对照
100Mm Tris-HCl,pH 8.2