人凝血因子Ⅻ基因多态性与血栓性疾病
- 格式:doc
- 大小:26.50 KB
- 文档页数:10
血液凝血功能异常指标解析及其临床意义血液凝血功能异常是指在人体凝血系统发生障碍时,引起血液凝结和溶解平衡失调,从而导致凝血功能异常。
凝血功能异常可能会引发出血或血栓等问题,严重的情况下甚至会威胁生命。
因此,准确评估和解析血液凝血功能异常指标对于临床医生而言至关重要。
本文将探讨常见的几个血液凝血功能异常指标,并解析它们的临床意义。
1. 凝血酶原时间(PT):凝血酶原时间是衡量纤维蛋白原转变为纤维蛋白的时间。
PT偏长可能是由于凝血因子Ⅶ、Ⅹ、Ⅴ和Ⅱ的功能缺陷,以及肝脏疾病或维生素K缺乏引起的凝血因子合成不足等原因。
此外,某些药物,如华法林等,也会延长PT。
PT的延长可能会导致凝血功能降低,从而增加出血的风险。
2. 部分凝血活酶时间(aPTT):部分凝血活酶时间用于评估体内凝血因子Ⅻ、Ⅺ、Ⅸ、Ⅷ、Ⅹ和Ⅱ之间的血栓形成效应。
aPTT延长可能是由于凝血因子缺乏、肝脏疾病、维生素K缺乏、血液稀释等原因。
一些特定的遗传性疾病,如血友病,也会导致aPTT延长。
延长的aPTT可能意味着凝血功能异常,易导致出血问题。
3. 血小板计数(PLT):血小板是血液中的重要凝血成分,负责血管破损时的血栓形成。
当血小板计数过低时,可能导致出血倾向。
相反,血小板计数过高可能导致血栓形成。
PLT的异常可以反映出凝血功能的紊乱,临床医生需要密切关注并评估相关的风险。
4. D-二聚体(D-Dimer):D-二聚体是纤维蛋白降解产物,在血液中的浓度可以反映体内的血栓溶解活性。
正常情况下,D-二聚体的水平较低。
然而,当存在血栓形成的情况下,D-二聚体的水平会升高。
因此,通过检测D-二聚体的水平,可以评估血液凝血功能的状态,以及判断血栓溶解的活性。
总结:血液凝血功能异常指标提供了评估患者凝血功能的重要依据。
对于临床医生而言,及时准确地解析这些指标的意义,可以帮助他们判断患者是否存在凝血异常,并制定相应的治疗方案。
然而,值得注意的是,这些指标的异常并不一定意味着存在明显的凝血问题,因此,医生需要结合临床症状和其他检查结果进行综合判断。
凝血因子活性测定凝血因子活性测定介绍:凝血因子活性测定是对人体内的各种凝血因子进行活性测定,凝血因子在血液凝固过程中,起着非常重要的作用,测定各个凝血因子的活性,有助于判断血友病的类型,血友病的轻重程度以及某些病理情况下的凝血状况。
凝血因子活性测定正常值:因子Ⅱ:C 、因子Ⅴ:C 、因子Ⅶ:C 、因子Ⅶ:C 、因子Ⅸ:C、因子Ⅹ:C、因子Ⅺ:C、因子Ⅻ:C均为 0.80~1.20因子Ⅷ:C为 0.60~1.60凝血因子活性测定临床意义:异常结果:降低:1. Ⅷ:C降低见于血友病A,血管性血友病,弥散性血管内凝血等;2.因子Ⅸ:C降低见于血友病C,肝脏疾病,维生素K缺乏,弥散性血管内凝血,口服抗凝药等;3.因子Ⅺ:C降低可见于先天性因子Ⅺ缺乏,维生素K缺乏,弥散性血管内凝血等;4.因子Ⅻ:C降低可见于先天性因子Ⅻ缺乏,弥散性血管内凝血,肝脏疾病等;5.因子Ⅱ:C ,因子Ⅴ:C ,因子Ⅶ:C ,因子Ⅹ:C降低,见于先天性凝血因子缺乏或获得性凝血因子降低,如肝脏疾病,维生素K缺乏,弥散性血管内凝血,口服抗凝药及血液中存在抗凝物质等。
升高:见于血液高凝状态和血栓性疾病,如深部静脉血栓形成,肺栓塞,肾病综合征,妊娠高血压综合征,恶性肿瘤等。
因子Ⅷ也见于肝脏疾病。
需要检查的人群:患有血液病的人群。
凝血因子活性测定注意事项:不合宜人群:长期服用阿司匹林的人群。
检查前禁忌:检查前一天不吃过于油腻、高蛋白食物,避免大量饮酒。
血液中的酒精成分会直接影响检验结果。
体检前一天的晚八时以后,应禁食。
禁止服用阿司匹林,检查前禁止服用各种药物,以免造成影响。
检查时要求:抽血时应放松心情,避免因恐惧造成血管的收缩、增加采血的困难。
凝血因子活性测定检查过程:取标准品,用生理盐水配制成效价(U/mL)分别为5、6、7、8、9、10的标准品溶液。
另取1×10 cm的塑料试管6支,各加入0.1 %纤维蛋白原溶液450 μl,置37℃水浴预热5 min,再分别取已37℃预热的上述6个浓度的标准品溶液各50 μl,迅速加入上述各试管中,立即计时并摇匀,记录凝固时间。
血凝四项是研究参与外源性及内源性凝血途径因子常用的临床检验试验。
主要用于诊断怀疑有凝血系统病变的患者。
血凝四项在国内外早已广泛应用于口服抗凝药治疗的监控,手术,导管插入术,透析和重症监护患者凝血功能的监测,筛查某些与凝血有关疾病等。
凝血酶时间(TT):该实验检查受试者血浆纤维蛋白原转变为纤维蛋白能力的过筛试验。
TT延长:见于肝素增多或肝素类物质存在。
SLE、肝病、肾病、低[无]纤维蛋白原血症,异常球血症或免疫球蛋白增多等疾病。
凝血酶原时间(PT):PT的测定是外源性凝血系统较理想和常用的筛选试验,也可作为外源性途径及共同途径凝血因子的定量试验。
同时,也可作为口服抗凝剂治疗的监控。
PT延长:见于先天性凝血因子Ⅱ、Ⅴ、Ⅶ、Ⅹ缺乏症。
低(无)纤维蛋白原血症。
DIC、原发性纤溶症、VitK缺乏、肝病、口服抗凝剂、肝素和FDP等,PT缩短:见于先天性凝血因子V增多,口服避孕药,高凝状态,血栓性疾病等。
活化部分凝血活酶时间(APTT):APTT是测定内源性凝血系统较敏感的筛选试验,也可作为内源性途径凝血因子的定量试验,可检测除Ⅶ因子外的其他血浆凝血因子,特别是用于因子Ⅷ、Ⅸ、Ⅺ、Ⅻ和前激肽释放酶的测定。
同时,APTT 测定可用于肝素治疗监控。
APTT延长:见于凝血因子Ⅱ、Ⅴ、Ⅷ、Ⅸ、Ⅺ、Ⅻ减低,纤维蛋白原缺乏症,纤溶活力增强,抗凝物质存在(如血内肝素含量增加及口服抗凝剂)是监控肝素治疗的重要指标。
APTT缩短:见于高凝状态,血栓性疾病,如心肌梗塞、不稳定性心绞痛、脑血管病变、肺梗死、深静脉血栓形成、妊高血压综合症和肾病综合症。
血浆纤维蛋白原(Fbg):血浆纤维蛋白原增高,见于血液呈高凝状态,如糖尿病伴血管病变、急性心机梗死、脑血管病变、妊娠高血压综合症,也见于各类急性时相反应,如急性细菌性感染,急性传染病,大的手术或创伤之后,恶性肿瘤等。
血浆纤维蛋白原减低,见于DIC消耗性低凝期及纤溶期,原发性纤维蛋白溶解症,重症肝炎,肝硬化,先天性低(无)纤维蛋白原血症等。
血栓形成病理学名词解释血栓形成是静脉或动脉里流动的血液,由于某种原因凝固成血凝块将血管堵塞,造成堵塞的远端或近端出现一系列的临床表现。
血栓形成主要有血流缓慢、血管内皮细胞受损或损伤、血液凝固性增加等三大因素,凡是能够造成三大因素的各种情况,都可能出现血栓形成。
血栓形成以后,堵塞的血管如果很重要,就会造成一系列后果,比如深静脉血栓形成以后,堵塞的远端肢体可能出现肿胀甚至于疼痛。
血栓形成以后可能会脱落,脱落的血栓会顺着血液流动到肺,引起严重的后果,称为肺栓塞,严重的肺栓塞会导致病人突然死亡。
动脉里的血栓形成以后,会造成远端缺血,缺血以后会出现脏器功能障碍。
如果是冠状动脉血栓形成,会出现心梗、心绞痛,如果是颅内血栓形成,会出现脑梗、中风。
如果肢体动脉出现血栓形成,会出现肢体远端缺血、剧烈疼痛,严重时必须截肢才能挽救生命。
血栓形成是指,在活体的心脏和血管内血液发生凝固,或者血液中某些有形成分聚集,形成固体质块的过程。
血栓形成可以根据体内的解剖部位分为静脉血栓、动脉血栓和微血栓。
也可以按照血栓的组成成分,分为血小板血栓、红细胞血栓、混合血栓和纤维蛋白血栓。
还有些人根据肉眼所见到的血栓颜色,分为白色血栓、红色血栓和混合血栓等等。
心血管内膜损伤、血流缓慢、血液凝固性增加,是形成血栓的三个重要因素。
血栓对人体的危害很大,可以造成相关供血区域内的器官、组织坏死,引发诸如脑血管病、心肌梗死等血栓性血管疾病。
最为常见的是血管的老化、血管壁的受损、血流缓慢,以及血液黏稠度不断升高的情况,这些都促成了血栓的形成。
一般来说,预防血栓要比血栓后的治疗更为重要。
血栓形成一、概念:在活体的心脏或血管腔内,血液中某些成分互相粘集形成固体质块的过程称为血栓形成。
所形成的固体质块叫血栓。
二、血栓形成的条件(一)心血管内膜损伤:主要用条件。
(二)血流缓慢或涡流(三)血液凝固性增高三、血栓的类型1.白色血栓:由血小板和纤维素构成,见于血栓的头,以及心瓣膜血栓。
有关血栓与止血检测项目的临床应用一.凝血障碍性疾病1.筛选试验选用APTT和PT作为筛选试验,根据筛选试验的结果,大致有以下四种情况:(1)APTT和PT都正常:除正常人外,仅见于遗传性和继发性因子ⅩⅢ缺乏症。
获得性者常由于严重肝病、肝脏肿瘤、恶性淋巴瘤、白血病、抗因子ⅩⅢ抗体、自身免疫性溶血性贫血和恶性贫血等引起。
(2)APTT延长伴PT正常:多数是由于内源性凝血途径缺陷所引起的出血性疾病,如血友病A、血友病B、因子Ⅺ缺陷症;血循环中有抗因子Ⅷ、抗因子Ⅸ或抗因子Ⅺ抗体存在;DIC时可见因子Ⅷ、因子Ⅸ、Ⅺ减低;肝脏疾病时可见因子Ⅸ、Ⅺ减少;口服抗凝剂时可见因子Ⅸ减少。
(3)APTT正常伴PT延长:多数是由于外源性凝血途径缺陷所引起的出血性疾病,如遗传性和获得性因子Ⅶ缺乏症,获得者常见于肝脏疾病、DIC、血循环中有抗因子Ⅶ抗体存在和口服抗凝剂等。
(4)APTT和PT都延长:多数是由于共同途径缺陷所引起的出血性疾病。
如遗传性和获得性因子Ⅹ、Ⅴ、凝血酶原(因子Ⅱ)和纤维蛋白原(因子Ⅰ)缺乏症;获得性者主要见于肝脏疾病和DIC,口服抗凝剂时凝血因子Ⅹ和凝血酶原减低。
此外,血循环中有抗因子Ⅹ、抗因子Ⅴ和抗因子Ⅱ抗体存在时,它们也相应延长。
临床应用肝素治疗时,APTT和PT也都相应延长。
2.血友病和血管性血友病的基因诊断:(1)血友病A:可采用:a.间接基因诊断b.直接基因诊断(2)血友病B:由于因子Ⅸ基因小,所以血友病B可用直接基因测序的方法来解决:(3)血管性血友病(von Willebrand disease, vWD)的基因诊断:vWD携带者检测和产前诊断也是利用多态性标记进行间接诊断。
当然,对于明确缺陷的家系,亦可用缺陷基因作直接诊断。
①可变数目的串联重复顺序(ATCT),其杂合子频率高,在白种人群中杂合子频率为98%;②限制性内切酶片段长度多态性(RFLP),利用这些多态性标记,可对部分家系作携带者检测和产前诊断。
・190・ 江苏临床医学杂志2002年第6卷第3期 凝血酶原基因G202 1 0A与血栓性疾病的关系 赵广圣 顾健 (江苏省扬州大学临床医学院,江苏扬州,225001)
关键词凝血酶原基因;G20210A;变异;静脉血栓形成;动脉血栓形成 中图分类号:R542.2 2 文献标识码:A 文章编号:1007—6514(2002)03—0190—03
1996年,Poort SR等【 j对有静脉血栓形成家 族史的患者,将凝血酶原(F lI)基因作为候选基 因尝试寻找与静脉血栓形成相关的新的遗传危险 因素,发现在凝血酶原基因3 端非编码区的第 20210位核苷酸G—A的改变与血浆凝血酶原水 平增高有关,可增加静脉血栓栓死的患病风险。 1997年Rosendaal FR[2j首次报道了凝血酶原基 因G20210A(F lI G20210A)突变可增加心肌梗死 (MI)的发病机会。据此凝血酶原基因G20210A 的变异与血栓形成的联系引起了研究者的极大兴 趣,并且成为血栓形成领域新的研究热点。作者 就凝血酶原基因G20210A变异与血栓形成的研 究动态作一综述。 1凝血酶原概述 血栓形成是多因素参与的复杂病理生理过 程,其中凝血酶起着关键作用。凝血酶可使纤维 蛋白原转变为纤维蛋白,致血液凝固;活化血小板 使之聚集;同时可活化凝血因子V、Ⅷ、Ⅻ等一系 列正反馈环促进血液的凝固。另一方面,它可以 激活蛋白C系统,促发其抗凝活性,维持机体促 凝和抗凝作用的动态平衡。凝血酶原作为凝血酶 前体经凝血酶原酶作用转变成凝血酶,其基因已 被克隆,全长21Kb,包括14个外显子和13个内 含子,在5 端上游区及3 端下游区为非编码区, 对基因的表达可能起调控作用。 2凝血酶原基因G20210A突变与静脉血 栓形成 在1996年以前,有关凝血酶原基因同静脉血 收稿日期:2oo2一O3—25 作者简历:赵广圣(1976~).男.江苏仪征市人.硕士研究生。 栓形成的报道较少。后Poort SR等【1j对经过严 格筛选的28例有静脉血栓形成家族史的患者凝 血酶原基因的编码区、5 端及3 端非编码区的测 序(排除蛋白C、蛋白S、抗凝血酶、纤溶酶原缺乏 或纤溶蛋白酶原功能缺陷),同时设置群体一病例 对照。发现18%的患者有FlI G20210A突变,同 时G—A改变可引起血浆凝血酶原水平升高,他 们认为G20210A突变可增加静脉血栓的患病风 险。 继Poort等的研究之后,英国学者Brown 等 J研究了584例血栓栓塞患者和508位健康对 照者,结果FlI G20210A突变率分别为5%和2. 5%,且在病例组中,有3例患者同时具有凝血因 子V Leiden突变(FV Arg506G1u,由于FV的这 一突变,使得蛋白C对活化的FV的灭活产生“抵 ’,不能发挥其抗凝作用)。作者认为F lI
血凝实验原理血凝实验是一种常用的临床检测方法,用于评估血液凝固功能是否正常。
它基于血液中的凝血因子在一定条件下相互作用形成凝块的原理。
血凝实验可以帮助医生诊断和监测各种凝血系统疾病,如血栓性疾病、出血性疾病和凝血因子缺乏等。
血液凝固是一个复杂的生物学过程,涉及多种凝血因子的相互作用。
这些凝血因子包括血小板、凝血酶原、纤维蛋白原等。
在正常情况下,这些凝血因子处于非活化状态,不会引发血液凝固。
然而,当血管受损时,凝血因子会被激活,形成一系列的酶反应,最终导致纤维蛋白原转化为纤维蛋白,形成血栓。
血凝实验主要通过观察血液在一定条件下的凝固时间来评估凝血功能。
最常用的血凝实验是凝血酶时间(PT)和活化部分凝血活酶时间(APTT)。
PT主要用于检测凝血因子Ⅶ、Ⅹ、Ⅴ、Ⅱ和纤维蛋白原的功能,而APTT则主要用于检测凝血因子Ⅻ、Ⅺ、Ⅸ、Ⅷ、Ⅹ、Ⅴ和纤维蛋白原的功能。
在PT实验中,血浆样本与钙离子和磷脂酰胆碱等试剂混合,形成复合物。
随后,加入凝血酶原激活剂,激活凝血酶原,使其转化为凝血酶。
凝血酶进一步促使纤维蛋白原转化为纤维蛋白,形成凝块。
通过测量血浆样本凝固的时间,就可以得出PT值,用于评估凝血功能。
而在APTT实验中,血浆样本与活化部分凝血活酶时间试剂混合。
这个试剂中含有磷脂酰胆碱、凝血酶原激活剂和凝血因子Ⅻ。
凝血因子Ⅻ通过激活凝血酶原,引发一系列的酶反应。
这些酶反应使凝血酶原转化为凝血酶,促使纤维蛋白原转化为纤维蛋白,形成凝块。
通过测量血浆样本凝固的时间,就可以得出APTT值,用于评估凝血功能。
除了PT和APTT,还有其他一些血凝实验可以用于评估凝血功能。
如凝血酶原时间(TT)用于检测凝血酶原的功能,纤维蛋白原定量检测用于评估纤维蛋白原的含量。
这些实验都基于血液凝固的原理,通过观察血浆样本在一定条件下的凝固时间,来评估凝血功能是否正常。
血凝实验在临床上有着广泛的应用。
通过血凝实验可以帮助医生诊断和监测各种凝血系统疾病。
人凝血因子Ⅻ基因多态性与血栓性疾病【关键词】凝血因子Ⅻ基因多态性冠状动脉粥样硬化性心脏病缺血性脑卒中凝血因子Ⅻ(FⅫ)又称Hageman因子,是一条80 ku的丝氨酸蛋白酶,该酶被激活后产生的FⅫa,参与凝血过程的起始、纤维蛋白溶解、补体的激活、缓激肽及血管紧张素的产生,尤其是其纤溶作用越来越受到重视。
关于FⅫ基因多态性与其血浆水平及血栓性疾病的相关性研究近年来已有较多报道,但其结论尚存在争议。
1 FⅫ的结构和功能人FⅫ产生于肝脏,在血液循环中以无活性的酶原形式存在。
其纯化的分子是一条80 ku的多肽链,沉降系数为45s[1]。
这个单链酶原被激活后形成一个双链的丝氨酸蛋白酶,即一条重链(αFⅫa)和一条轻链。
重链由2个分子质量分别为52 ku和28 ku的多肽链以二硫键连接而成,氨基末端序列分析显示αFⅫa的52 ku 片段源于FⅫ氨基末端区域并包含表面结合位点,该重链包含2个纤维结合蛋白型区域、2个类表皮生长因子(EGF)区域、1个富含脯氨酸的结构域和6个kringle结构域,此结构域在大多数纤维溶解系统相关蛋白中存在[2]。
而轻链仅含有一个催化区。
重链进一步被裂解后产生βFⅫa,该分子由2个分子质量分别为2 ku和28 ku的多肽链以二硫键连接而成,其2 ku片段未与负电荷表面结合。
αFⅫa和βFⅫa的28 ku片段相同,其源于FⅫ羟基末端,包含有催化区。
该催化区与其他丝氨酸蛋白酶(包括许多凝血因子)有多个相同的序列,序列同源性在活化区是最高的,且接近于这些酶的活化位点。
在体外,FⅫ易与带负电荷的表面如硅酸盐、硫酸葡聚糖、硫脂类等结合;在体内,FⅫ与胶原或血小板膜接触而被激活。
此时,FⅫ对前激肽释放酶和FⅪ等蛋白质底物具有酶活性,这2种蛋白质在血浆中与高分子量激肽原结合成无活性的酶原复合物。
在活化的凝血系统表面,高分子量激肽原前激肽释放酶复合物、高分子量激肽原FⅪ复合物及FⅫ结合于损伤部位的负电荷表面。
结合于表面的FⅫ通过限制性蛋白酶激活前激肽释放酶,而产生的激肽释放酶裂解FⅫ产生FⅫa。
FⅫa的产生使前激肽释放酶与FⅫ进一步相互激活。
FⅫa 接着激活与表面结合的FXI,进而引发后继的凝血级联反应[3]。
FⅫa 能直接或间接激活纤溶酶原,生成纤溶酶,进而引起纤维蛋白(原)溶解,尤其是αFⅫa,其纤溶特性越来越受到重视。
2 FⅫ基因多态性与FⅫ活性的相关性2.1 FⅫ基因结构及多态性人FⅫ基因定位于5q33qter染色体上[4],约含12 000个碱基对,包括13个内含子和14个外显子[5],编码2048 bpm RNA,翻译成含615个氨基酸残基的糖蛋白。
FⅫ的内含子/外显子基因在结构上有着与组织型纤溶酶原激活物(tPA)和尿激酶型纤溶酶原激活物(uPA)相似的丝氨酸蛋白酶部分,但不同于其他凝血因子基因[6]。
关于FⅫ多态性目前报道得最多的是FⅫ启动子区第46位核苷酸C→T (C46T)的多态性。
Georg Endler[6]等检测了100个澳大利亚健康新生儿,其结果显示64%的个体携带野生型46C等位基因,29%的个体携带C46T等位基因,7%的个体携带46T等位基因。
另外,有个别报道指出在FⅫ缺乏的患者中发现了新的突变点[710],如A7832G、T224G、G11396A、Q421K及R123P,但这些突变点在普通人群中的比例尚无报道。
2.2 FⅫ基因多态性与FⅫ血浆浓度的相关性 FⅫ血浆浓度在不同个体与种族间有较大差异,平均为30 μg/ml,波动于15~47 μg/ml之间[11]。
Ishii等[12]报道血浆FⅫ活性与FⅫa的水平呈正相关。
Georg Endler等[7]报道FⅫ启动子区第46位核苷酸C→T的多态性破坏了启动子区域的一个Kozak共有序列,从而导致了FⅫ的低翻译效率和血浆水平的下降。
他们还评估了80例随机选择的无关个体FⅫ血浆活性与基因型的关系,发现FⅫ的46T等位基因和减少的FⅫ血浆水平具有显著的统计学意义(P<0.001)。
携带FⅫ 46C基因型的纯合子的个体平均血浆水平为1.17 u/ml(±0.31 u/ml),而携带F Ⅻ 46T纯合子的个体平均血浆水平仅0.44 u/ml(±0.10 u/ml)。
Kanaji 等[11]研究发现,在东方人中,46C/T等位基因的频率为0.27/0.73,而在高加索人中则相反,为0.8/0.2,并研究了这种多态性与FⅫ血浆水平的关系,结果显示这3种等位基因类型与对应的FⅫ血浆水平具有显著性差异。
另外还在RT PCR中发现杂合子C46T的2个等位基因在肝细胞被同等的转录,提示这种多态性在转录水平或mRNA稳定性上很少受到影响,在体外的转录或翻译分析显示包含46T的cDNA比包含46C的cDNA产生更少的FⅫ,进而推测很可能F Ⅻ 46T多态性降低翻译效率并导致低FⅫa水平是由于翻译起始模式中另一个ATG密码子的产生或共有序列的破坏引起的。
3 FⅫ基因多态性与血栓性疾病的相关性血栓性疾病的发生是环境因素及遗传相互作用的结果,当前对于这一类疾病发病学研究的热点在于对遗传性变异的探寻,而FⅫ作为凝血及纤溶系统中的重要因子,对其基因多态性也有相关研究。
目前国外有较多报道FⅫ基因C46T多态性和多种血栓性疾病之间的相关性,但结论各不相同,仍存在着争议。
3.1 FⅫ C46T多态性与缺血性脑卒中的相关性 Santamaria 等[13]对西班牙205例缺血性脑卒中(IS)患者和231例年龄、性别、种族匹配的受试者进行病例对照研究,发现等位基因T突变的纯合子与IS增加的危险度相关联,并提出C46T多态性在西班牙人群中是IS 的一个基因危险因素。
而 Oguchi 等[14]研究了日本人中FⅫ基因C46T多态性的分布并提出该多态性与缺血性脑血管疾病无关联。
3 2 FⅫ C46T多态性与冠心病的相关性 Zito 等[15]在西苏格兰冠状动脉预防研究(WOSCOPS)中评估了高胆固醇男性FⅫ基因C46T多态性对冠心病(CAD)发病的危险度。
441例冠心病患者和990例对照者都检测了基因型,对照组TT纯合子的频率为8.3%,病例组为11.8%。
与CC和CT组相比较,TT基因型在CAD中是一个独立的危险因素,进而提出在高胆固醇男性中FⅫ基因C46T多态性的TT基因型与高CAD风险相关联,并推测FⅫa血浆水平低导致纤维溶解作用减弱可能是CAD风险增高的机制。
Francesco Zito等[16]研究发现FⅫ C46T多态性对FⅫa及纤维蛋白肽A(FPA)有决定性作用,提示在体内FⅫ影响凝血途径的活性状态及纤维蛋白裂解为FPA,指出FⅫa水平在CAD高危中年男性中是升高的。
Endler 等[17]对303例急性冠脉综合征(ACS)患者和227例稳定型冠心病(SCAD)患者的FⅫC46T基因型进行了比较发现,在SCAD组54.2%的个体携带野生型FⅫ46C,37.9%的个体是杂合子FⅫ C46T,7.9%的个体是纯合子FⅫ 46T。
相反,在ACS组,54.1%是野生型FⅫ 46C,42.6%是杂合子FⅫ C46T,仅3.3%携带纯合子FⅫ 46T基因型。
提示FⅫ 46T基因型对以前发生过冠心病的患者发生ACS具有保护效应。
Kohler 等[18]等研究了266例经血管造影发现的可疑冠状动脉疾病患者和185例健康对照者,发现这种多态性在心肌梗死病人、无心肌梗死的病人及对照组之间和所有病人与对照组之间均无区别,从而提出FⅫ基因型与冠状动脉疾病的程度无相关性。
3 3 FⅫ C46T多态性与静脉血栓形成的相关性 Tirado 等[19]对西班牙人群FⅫ C46T基因型及静脉血栓形成的关系进行了病例对照研究,包括250例静脉血栓形成的无关连续病例和250例性别及年龄匹配的受试者,证实不同基因型的个体FⅫ血浆水平显著不同,基因型46T与血栓形成风险升高相关联,提出该多态性在西班牙人群中是静脉血栓形成的一个独立危险因素。
而Orth 等[20]研究发现其实验数据不支持FⅫ基因分型对深静脉血栓形成有作用的假说。
综上所述,对FⅫ基因多态性与FⅫ血浆水平及血栓性疾病之间的相关性已有较多研究,但各种报道结果尚不一致,究其原因,可能有如下几点:①血栓形成是多基因和多重环境因素相互作用的结果,而上述研究都是单个基因结论,可能受到其他因子及环境的干扰;②种族及地域不同;③研究方法的差异。
今后需着重于大样本、多中心及前瞻性研究,以便进一步明确二者之间的相关性,以对血栓性疾病发病机制的研究提供依据。
【参考文献】[1] REVAK SD,COCHRANE CG,JOHNSTON AR,et al. Structural changes accompanying enzymatic activation of human Hageman factor [J]. J Clin Invest,1974, 54: 619627.[2] KANAJI T,OKAMURA T,OSAKI K,et al. A common genetic polymorphism (46 C to T substitution) in the 5'untranslated region of the coagulation factor XII gene is associated with low translation efficiency and decrease in plasma factor XII level [J]. Blood,1998, 91: 20102014.[3] COOL DE, EDGELL CJ, LOUIE GV, et al. Characterization of human blood coagulation factor XII cDNA. Prediction of the primary structure of factor XII and the tertiary structure of beta factor XIIa [J]. J Biol Chem, 1985, 260:1366613676.[4] ROYLE NJ, NIGLI M, Cool D, et al. Structural gene encoding human factor XII is located at 5q33qter [J]. Somat Cell Mol Genet, 1988, 14: 217221.[5] COOL ED,MACGILLIVRAY RT Characterization of the human blood coagulation factor XII gene. Intron/exon gene organization and analysis of the 5'flanking region [J]. J Biol Chem, 1987, 262: 1366213673.[6] ENDLER G, EXNER M, MANNHALTER C, et al. A common C>T polymorphism at nt 46 in the promoter region of coagulation factor XII is associated with decreased factor XII activity [J]. Thromb Res, 2001, 101: 255260.[7] KONDO S, TOKUNAGA F, KAWANO S, et al. Factor XII Tenri,a novel cross reacting material negative factor XII deficiency, occurs through a proteasome mediated degradation [J]. Blood, 1999, 93: 43004308.[8] HOFFERBERT S, MULLER J, KOSTERING H, et al. A novel 5'upstream mutation in the factor XII gene is associated with a TaqI restriction site in an Alu repeat in factor XII deficient patients [J]. Hum Genet,1996, 97: 838841.[9] SCHLOESSER M, HOFFERBERT S, BARTZ U, et al. The novel acceptor splice site mutation 11396(G→A) in the factor XII gene causes a truncated transcript in cross reacting material negative patients [J]. Hum Mol Genet, 1995, 4: 12351237.. .。