各类质粒载体图谱、序列及酶切位点大全(非常有用)
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载体主要有病毒和非病毒两大类,其中质粒DNA是一种新的非病毒转基因载体。
一、一个合格质粒的组成要素a复制起始位点Ori 即控制复制起始的位点。
原核生物DNA分子中只有一个复制起始点。
而真核生物DNA分子有多个复制起始位点。
b 抗生素抗性基因可以便于加以检测,如Amp+ ,Kan+c 多克隆位点MCS 克隆携带外源基因片段d P/E 启动子/增强子e Terms 终止信号f 加poly(A)信号可以起到稳定mRNA作用二、如何阅读质粒图谱第一步:首先看Ori的位置,了解质粒的类型(原核/真核/穿梭质粒)第二步:再看筛选标记,如抗性,决定使用什么筛选标记。
(1)Ampr 水解β-内酰胺环,解除氨苄的毒性。
(2)tetr 可以阻止四环素进入细胞。
(3)camr 生成氯霉素羟乙酰基衍生物,使之失去毒性。
(4)neor(kanr)氨基糖苷磷酸转移酶使G418(长那霉素衍生物)失活(5)hygr 使潮霉素β失活。
第三步:看多克隆位点(MCS)。
它具有多个限制酶的单一切点。
便于外源基因的插入。
如果在这些位点外有外源基因的插入,会导致某种标志基因的失活,而便于筛选。
决定能不能放目的基因以及如何放置目的基因。
第四步:再看外源DNA插入片段大小。
质粒一般只能容纳小于10Kb的外源DNA片段。
一般来说,外源DNA片段越长,越难插入,越不稳定,转化效率越低。
第五步:是否含有表达系统元件,即启动子-核糖体结合位点-克隆位点-转录终止信号。
这是用来区别克隆载体与表达载体。
克隆载体中加入一些与表达调控有关的元件即成为表达载体。
选用那种载体,还是要以实验目的为准绳。
启动子-核糖体结合位点-克隆位点-转录终止信号a 启动子-促进DNA转录的DNA顺序,这个DNA区域常在基因或操纵子编码顺序的上游,是DNA分子上可以与RNApol特异性结合并使之开始转录的部位,但启动子本身不被转录。
b增强子/沉默子-为真核基因组(包括真核病毒基因组)中的一种具有增强邻近基因转录过程的调控顺序。
LentiCRISPRV2载体使用说明
一载体简要说明
1 克隆gDNA使用BsmBI酶切位点,载体可以切出1.9kb的filter,便于确定载体酶切成功,并且利于胶回收。
2 BsmBI酶切位点如图酶切后不需要用CIP脱磷,也不会自连。
3在cas9的C端有FLAG,可以WB或Immunostaining来检测。
4 EFS被优化的小而强,方便慢病毒的包装,极大的提高了慢病毒包装的效率。
5 优化的内部核糖体插入位点P2A,可以在只有EFS启动的情况下独立表达puromycin来筛选转染或感染成功的细胞。
二 gDNA设计说明
对于lentiCRISPR V2克隆,其合成的oligo末端与px330不同如下图所示:
具体举例如下:一定注意oligo的方向,载体的hU6的下游正义链一定是基因组序列的有义链,否则编辑无效,且5’端必须第一个碱基必须是G如果不是G也要认为加一个G满足U6启动子的需求。
将引物稀释 100uM 后,再 10 倍稀释
退火
50ul 体系
引物 20ul(上下游各 10ul)、
水 25ul、
NEB buffer 2(10*)5ul 95℃,5min。
然后关闭 PCR 仪,自然降温 40min。
LentiCRISPR V2 载体酶切
200ul体系:
BsmBI 2ul;
10*buffer 20ul;
质粒 10ul(2ug)
水 16ul 55℃,酶切 2 小时胶回收
连接
2*solutionI 5ul
退火引物 4.5ul
线性化载体 0.5ul 16℃连接过夜,转化挑菌送测序。
【原创】找质粒.载体图谱及序列的方法
在相关版面看到n个这样的帖子:“请问....质粒的图谱?" "请问质粒...的酶切位点?"....
诸如此类的问题,多之甚多。
因此,友情提醒按以下方法查找质粒相关信息:
1.Vectorpedia:输入质粒骨架,直接查询,非常方便;
2. google
检索式子:质粒名+ map
质粒名+sequence +filetype:txt or filetype:pdf
或者:进入google,点击"图片搜索",直接查找图谱.
3.google scholar: /
有些质粒是经过改造的,所以通过上述方法不能查询到相应信息。
这时,可以在google scholar中输入质粒名称,可以直观地看哪些学者在何文章中使用了该质粒,从而可了解到质粒的来源;或者籍此向作者咨询或索取。
4.尝试从各大生物公司,例如invitrogen网站查询.
5. 这个网站收录了大量图谱:
PET系列载体信息:
本人一点想法,供参考。
希望版面内不要出现类似的帖子,浪费
斑竹和其他战友的时间,也影响自己的工作。
:P。