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酵母菌活菌数含量的测定操作规程一、目的本操作规程旨在规范酵母菌活菌数含量的测定方法，保证测量结果的准确性和可靠性。
二、适用范围该测定操作规程适用于酵母菌活菌数含量的测定，适用于食品、饮料、制药等相关行业。
三、仪器和试剂1.培养皿2.显微镜3.正交培养箱4.蒸馏水5.酵母菌粉末6.擦拭纸7.恒温水浴器四、操作步骤1.准备培养基：将酵母菌粉末加入适量蒸馏水中，搅拌均匀，制备成固体培养基。
2.制作菌液：取适量的培养基，在无菌条件下加入酵母菌粉末，搅拌均匀。
3.接种菌液：将制作好的菌液均匀涂于培养皿上。
4.培养酵母菌：将培养皿置于正交培养箱中，设置适当的温度和湿度条件。
5.观察培养情况：经过一定时间的培养，用显微镜观察培养皿中酵母菌的形态和数量。
6.统计酵母菌活菌数：随机选择多个视野，在显微镜下观察并计数活菌数目。
7.数据处理：根据得到的数据，计算出平均活菌数。
五、注意事项1.操作过程需保持无菌环境，避免外界污染。
2.培养箱的温度和湿度应根据酵母菌的生长条件进行调整。
3.在显微镜下观察时，要注意调整焦距和光线，确保观察清晰。
4.培养皿使用后要进行彻底清洗和消毒，避免交叉污染。
六、结果记录和分析1.将每次测量得到的活菌数目记录在数据表中。
2.根据记录的数据，计算出平均菌数，并进行进一步的分析和比较。
七、附录附录中可以包括酵母菌的分类、培养基配方等相关信息，以及实验中使用的仪器和试剂的详细介绍和使用方法。
以上是酵母菌活菌数含量的测定操作规程的详细内容，希望能对您的工作有所帮助!。
酵母发酵力的测定一、目的通过测定酵母发酵力，筛选发酵力强的酵母。
二、实验原理酵母在微酸性糖液中起发酵作用，其中的糖逐渐减少，乙醇及CO2则依比例而增大，CO2是气体，除溶解于醪中者外，都跑向外面，所以测定酵母的发酵力，或测糖液比重的减小，或测糖的减少，或乙醇的增加，或称培器为减轻量，以CO2的失去多少，或用NaOH等固定CO2然后称其量，或将培养器密闭，由其中压力的增大，而定发酵的强弱等。
本实验采用乙醇浓度增大、CO2含量、糖的减少、培养器的减轻四个方面测定其发酵力强弱。
三、实验材料1．菌种：本公司实验室分离所得。
2．试剂：葡萄糖、果糖、蔗糖、硫酸镁、磷酸二氢钾、蛋白胨、酵母浸膏、菲林试剂、碳酸氢钠。
3．器具：大三角瓶、小三角瓶、胶塞、玻璃管、1ml移液管、10ml移液管、天平、酒精计、温度计、蒸馏器、培养箱。
4．培养基四、方法步骤1．从斜面菌种接种到小三角瓶（100ml培养基）28℃培养24h；2．摇匀小三角瓶菌种，吸取10ml接种到大三角（1000ml），装好CO2收集装置，称重，记录其重量，置28℃培养，每天称重一次，直到重量减少量小于0.5g；3．发酵结束后，通过测量排水量测定CO2含量；4．取一定量的发酵醪液，测定其残糖量，以测定其发酵力；5．取100ml发酵醪液，加100ml水蒸馏出100ml溶液，用酒精计测定其乙醇含量。
（注：如果用酒精计不能测出，则改用重铬酸比色法或气相色谱法）重铬酸比色法所需试剂如下：（1）0.1％（v/v）标准乙醇溶液；（2）2％重铬酸钾溶液；（3）浓硫酸；铬酸比色法酒精糟中微量乙醇的测定酒精糟中乙醇的含量是蒸馏时的一个重要指标。
但酒精糟中乙醇含量甚微，不宜采用酒精计测量，需用比色法测定，比色法测定乙醇其浓度下限可达0.02％。
1、原理酒精糟中残余乙醇的测定采用蒸馏法，蒸出的乙醇用重铬酸钾氧化为乙酸，而六价铬被还原为三价铬，以比色法测定。
3CH3CH2OH+2K2CrO7+8H2SO4=3CH3COOH+2Cr2(SO4)3+2K2SO4+1 1H2O2、试剂（1）0.1％（v/v）标准乙醇溶液（2）2％重铬酸钾溶液（3）浓硫酸3、测定步骤（1）标准系列管的制备在10毫升比色管中，按下列加入各溶液各管中加1毫升重铬酸钾溶液，5毫升浓硫酸，摇匀。
酵母水解物中小肽的测定方法及意义酵母中含有三类大分子：蛋白质、核酸和多糖，其中蛋白质几乎占了干物质一半以上的含量，必需氨基酸充足，呈味氨基酸丰富，总谷氨酸含量在6%以上，色氨酸在1%以上，所以酵母水解物诱食性绝佳。
新鲜酵母中的蛋白质经水解后产生的肽类物质，曾引起专家和配方师们的广泛关注与讨论，那么酵母水解物中的小肽具体含量应该是多少?是否可以精确、重复检测?以下内容是由湖北海宜为大家整理的小肽的定义及检测方法：一、什么是小肽?肽是蛋白质降解为游离氨基酸过程中的中间产物，通常将大于20个的氨基酸残基构成的肽称为多肽(Poly-peptide)，2-20个氨基酸残基构成的肽称为寡肽(Oligopeptide)，而将仅由2个或3个氨基酸残基构成的二肽和三肽称之为小肽(Small peptide)。
(参考《动物营养学》第三版)二、小肽含量的检测方法：1、大豆肽粉，国标：GB/T 22492-2008原理：采用高效凝胶过滤色谱法测定。
即以多孔性填料为固定相，依据样品组分相对分子质量大小的差别进行分离，在肽键的紫外吸收波长220nm条件下检测，使用凝胶色谱法测定相对分子质量分布的专用数据处理软件(即GPC软件)，对色谱图及其数据进行处理，计算得到大豆肽的相对分子质量大小及分布范围。
本法适用于以大豆粕或大豆蛋白等为原料，用酶解或微生物发酵法生产的，相对分子质量在5000以下，主要成分为肽的粉末状物质。
2、海洋鱼低聚肽粉，中国轻工行业标准：QB/T 2879-20072.1 低聚肽方法原理：低分子量的蛋白质水解物(包含低聚肽及游离氨基酸)可溶于三氯乙酸溶液;高分子质量的蛋白质在三氯乙酸溶液中易沉淀。
样品经三氯乙酸溶液溶解后，离心分离出沉淀蛋白质，收集离心清液。
按照GB/T5009.5规定的方法测定离心清液的酸溶蛋白质水解物含量，清液的酸溶蛋白质水解物含量减去游离氨基酸含量即得到低聚肽的含量。
该法仅可以粗略测出样品中的三氯乙酸可溶性氮，并且不能扣除核酸中的含氮碱基对检测结果的干扰，更加不能精确检测二肽、三肽具体含量是多少。
第1篇一、实验目的本次实验旨在了解发酵工艺的基本原理，掌握发酵过程中的关键参数和操作方法，提高对发酵产品的质量控制和品质提升能力。
通过实验，使学生掌握以下知识点：1. 发酵的基本原理和分类；2. 发酵过程中的关键参数及其对发酵效果的影响；3. 发酵设备的操作与维护；4. 发酵产品的质量控制和品质提升方法。
二、实验原理发酵是指微生物在一定条件下，利用有机物质进行代谢，产生有用产物的过程。
发酵过程包括微生物的生长、繁殖和代谢等阶段。
发酵工艺主要包括微生物的培养、发酵和后处理等环节。
三、实验内容1. 微生物的培养（1）菌种选择：选择具有良好发酵性能的菌种，如酵母菌、乳酸菌等。
（2）培养基制备：根据菌种需求，制备合适的培养基，包括碳源、氮源、无机盐、维生素等。
（3）菌种活化：将菌种接种于培养基中，在适宜条件下培养，使其恢复活力。
2. 发酵过程（1）发酵条件：根据菌种特性，确定发酵温度、pH、溶氧量等条件。
（2）发酵设备：选择合适的发酵设备，如发酵罐、发酵池等。
（3）发酵操作：将活化后的菌种接种于发酵设备中，控制发酵条件，进行发酵。
3. 发酵产品的后处理（1）分离：将发酵液与固体物质分离，得到发酵液。
（2）精制：对发酵液进行精制，去除杂质，提高产品纯度。
（3）干燥：将发酵液或固体物质进行干燥，得到干燥产品。
四、实验步骤1. 菌种选择与活化（1）选择具有良好发酵性能的菌种，如酵母菌。
（2）制备培养基，将菌种接种于培养基中，在适宜条件下培养。
2. 发酵过程（1）根据菌种特性，确定发酵温度、pH、溶氧量等条件。
（2）将活化后的菌种接种于发酵设备中，控制发酵条件，进行发酵。
3. 发酵产品的后处理（1）分离：将发酵液与固体物质分离。
（2）精制：对发酵液进行精制，去除杂质。
（3）干燥：将发酵液或固体物质进行干燥。
五、实验结果与分析1. 发酵过程（1）发酵温度：控制在25-30℃，有利于菌种生长和发酵。
（2）pH：控制在4.5-5.5，有利于菌种生长和发酵。
发酵豆粕各项指标检测方法与标准发酵工艺2010-12-31 15:16:17 阅读86 评论0 字号：大中小订阅1、水份、粗蛋白、粗脂肪、粗纤维、灰份、钙和磷的分析方法全部采用国标法。
2、总有机酸测定采用氢氧化钠滴定的方法和乳酸测定采用气象色谱。
3、pH的测定采用玻璃电极pHS-3C型pH计测定。
4、可溶蛋白的测定方法5、小肽含量的测定水份的测定水份测定直接参见国标测定完水分后的样品需要测定其中的总有机酸的含量，其数值为A，并计算有机酸的挥发量。
水份含量的计算时应当扣除这部分有机酸的挥发量，否则会出现水分超标现象。
总有机酸检测试剂：NaOH标准溶液（邻苯二甲酸氢钾标定），酚酞指示剂仪器:磁力搅拌器离心机方法：（1）取发酵后鲜样品15g 置于150ml烧杯中加入溶于100ml去离子水，在磁力搅拌器上浸提30min。
（2）取部分浸提样离心10min(3000r/min)。
（3）取上清液15ml, 加30ml去离子水稀释（以消除底色的影响），加酚酞指示剂四滴，用0.1molNaOH 标准溶液滴定，并记录到终点消耗NaOH体积。
（终点到溶液呈现粉红）计算乳酸（％）＝N(NaOH)×V(NaOH) ×0.09008/15×115/15gN(NaOH):NaOH标准溶液的浓度；V(NaOH) ：消耗NaOH标准溶液体积；0.09008：乳酸的毫克当量。
0.1mol氢氧化钠的配制与标定1、配制：称取9.6g氢氧化钠，溶于100ml水中，摇匀，注入聚乙烯容器中，密闭放置至溶液清亮。
用塑料管虹吸5ml的上清液，注入2000ml无二氧化碳水中(将去离子水煮沸5分后冷却)，摇匀。
2、标定称取0.67g于105~110℃烘至恒重的基准的邻苯二甲酸氢钾，准确至0.0001g，溶于50ml的无二氧化碳水中，加4滴酚酞指示剂（0.1％），用配制好的氢氧化钠溶液滴定至溶液呈粉红色，同时作空白试验。
一.样品前处理湿法：向样品中加入一定量的强氧化剂并加热煮沸，使其中的碳氢氧等元素以二氧化碳、水等形式逸出，待测组分以无机物的状态留在消化液内。
干法灰化：将一定质量的样品置于坩埚中加热，再经过高温（500~600）灼烧，使其中有机物脱水、炭化、氧化、分解，直至残灰变为白色或浅灰色，所得残灰即为无机成分。
二.水分食品中的水分含量直接影响食品的感官性状和品质，是微生物生长繁殖的重要条件，影响到食品中的各种营养素的搭配。
控制食品中的水分含量，可以防止食品的腐败变质和营养成分的水解，延长食品的保质期。
直接测定法：利用水分的物理性质，直接去除水分后再定量的方法。
如“干燥法、卡尔费休法、蒸馏法。
优点：精确度高、重复性好；缺点：话费时间多，主要靠人工操作，广泛应用于实验室。
间接测定法：利用食品的密度、电导、折射率等物理性质测定水分含量的方法，不需要去除食品中的水分。
优点：测定速度快，可以连续测量，适用于食品工业生产；缺点：准确度比直接法低。
1.干燥法干燥法：在一定的温度和压力下，通过加热的方式将样品中的水分蒸发完全并根据样品加热前后质量差来计算水分含量。
应用干燥法测定水分含量的条件：1.水分是样品中唯一的挥发性物质2.样品可以较彻底地去除水分，如果样品中的凝胶态物质过多，就很难通过直接干燥法排除水分。
3.在加热过程中各组分因发生化学反应，由此产生的质量变化可忽略。
干燥时间和温度：温度一般控制在101~105℃，对热稳定样品如谷物可以提升到120~130℃，含糖量高的先低温50~60℃0.5h，再用101~105干燥。
时间有两种确定方式：干燥至恒重；规定干燥时间。
前一种更为准确，可保证水分完全蒸干，后一种准确度不如前者，适用于对测定结果要求不高的样品。
干燥过程中加海沙的作用：防止表面硬皮的形成；使样品分散减少挥发阻力。
1.1直接干燥法：适用于在101~105摄氏度下，不含或是挥发性化合物含量很低的谷物、水产品、豆制品等，不适于水分含量低于0.5g/100g的样品。
一、实验目的1. 掌握米酒中总糖含量的测定方法。
2. 了解米酒发酵过程中糖分的转化规律。
3. 分析不同发酵条件下米酒总糖含量的变化。
二、实验原理米酒的制作过程中，糯米中的淀粉在微生物（如酵母菌）的作用下，被分解为葡萄糖，进而转化为乙醇和二氧化碳。
本实验采用苯酚硫酸法测定米酒中的总糖含量，该方法基于糖与苯酚在硫酸作用下的颜色反应，颜色深浅与糖含量成正比。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 糯米- 酵母菌- 水浴锅- 研钵- 研杵- 移液管- 试管- 烧杯- 酒精灯- 苯酚- 硫酸- 氢氧化钠- 蒸馏水2. 实验仪器：- 分光光度计- 移液器- 移液管- 烧杯- 玻璃棒- 试管四、实验方法1. 制备米酒：- 将糯米洗净，浸泡8小时后，蒸煮30分钟。
- 将蒸熟的糯米冷却至35℃左右，加入酵母菌，搅拌均匀。
- 将混合物装入发酵瓶中，密封，置于28℃的恒温培养箱中发酵。
2. 测定总糖含量：- 取一定量的发酵液，加入苯酚和硫酸，混合均匀。
- 将混合液置于沸水浴中加热10分钟。
- 取出冷却至室温，用蒸馏水定容至一定体积。
- 使用分光光度计在波长620nm处测定吸光度值。
- 根据标准曲线计算发酵液中总糖含量。
五、实验结果与分析1. 不同发酵时间对米酒总糖含量的影响：- 随着发酵时间的延长，米酒总糖含量逐渐降低，发酵第5天时总糖含量达到最低值。
2. 不同发酵温度对米酒总糖含量的影响：- 在28℃的恒温培养箱中发酵，米酒总糖含量最低，表明该温度有利于酵母菌的生长和淀粉的分解。
3. 不同酵母菌种类对米酒总糖含量的影响：- 实验中使用的酵母菌为酿酒酵母，其发酵效果较好，总糖含量较低。
六、实验结论1. 本实验采用苯酚硫酸法成功测定了米酒中的总糖含量。
2. 发酵过程中，糯米中的淀粉被酵母菌分解为葡萄糖，进而转化为乙醇和二氧化碳。
3. 发酵温度、发酵时间和酵母菌种类等因素对米酒总糖含量有显著影响。
七、实验讨论1. 本实验结果表明，发酵温度对米酒总糖含量有显著影响，适宜的发酵温度有利于酵母菌的生长和淀粉的分解。
