植物淀粉含量试剂盒(分光光度法)使用说明

直链淀粉含量检测试剂盒说明书微量法注意：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。

货号：BC4265规格：100T/96S产品简介：直链淀粉是D-葡萄糖基以α-(1,4)糖苷键链接的多糖链，直链淀粉含量影响着食品的食用品质和外观品质，与食品安全息息相关。

直链淀粉和碘形成蓝色络合物，利用乙醇分开样品中的可溶性糖和淀粉，再用碘与其反应得到直链淀粉含量。

试验中所需的仪器和试剂：可见分光光度计/酶标仪、天平、台式离心机、微量玻璃比色皿/96孔板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、乙醚、无水乙醇、EP管。

产品内容：试剂一：液体110mL×1瓶，4℃保存；试剂二：乙醚100mL×1瓶，自备；试剂三：液体55mL×1瓶，4℃保存；O=9mL：91mL混匀，现用现配，4℃保存半年。

试剂四：将试剂三：H2试剂五：液体0.5mL×1支，4℃保存；粉剂一：粉剂×1瓶，4℃保存；粉剂二：粉剂×1瓶，4℃保存；试剂六的配制：将粉剂一倒入粉剂二，用蒸馏水定容至10mL，4℃避光保存一个月。

标准品：10mg直链淀粉×1支，4℃避光保存。

临用前加入0.1mL无水乙醇和0.9mL试剂三，混匀后封口膜封口，沸水浴至溶解，即10mg/mL的直链淀粉。

吸取0.1mL加入0.9mL蒸馏水配制为1mg/mL的标准溶液待用。

操作步骤：一、直链淀粉的提取：称取0.005g烘干样本于研钵中研碎，加入1mL试剂一，充分匀浆后转移到EP管中，80℃水浴提取30min，3000g，25℃离心5min，弃上清，留沉淀，加入1mL试剂二（乙醚）振荡5min，3000g，25℃离心5min，弃上清，留沉淀，加入5mL试剂四充分溶解，90℃水浴10min，冷却后3000g，25℃离心5min，取上清待测。

二、测定步骤：1、分光光度计/酶标仪预热30min以上，调节双波长至550nm和485nm，蒸馏水调零。

淀粉检验操作规程淀粉是广泛存在于植物中的一种碳水化合物，是植物储存能量的主要形式。

淀粉的存在对人类起着重要的作用，因此淀粉的检验也显得十分重要。

下面是淀粉检验的操作规程。

1.实验材料与试剂准备：(1)实验材料：需要检验的淀粉样品(2)试剂：1%碘酒溶液、1%淀粉酶溶液、蒸馏水2.实验仪器准备：显微镜、试管架、试管夹、移液管、显微镜玻片、滴管、可调光显微镜等。

3.操作步骤：(1)取一小段透明的淀粉样品，放置在显微镜盒中。

(2)在显微镜盒中加入适量的蒸馏水，用移液管充分搅拌溶解。

(3)加入一滴1%碘酒溶液，再次充分搅拌。

(4)然后观察淀粉颗粒的表现情况，通过在显微镜下进行观察淀粉颗粒的颜色和形态来判断样品中是否含有淀粉。

(5)如果样品中含有淀粉，那么淀粉颗粒会呈现出蓝色、黑色或紫色。

而纯净的蒸馏水不会变色。

(6)如果初步检验结果显示样品中含有淀粉，可以进一步进行淀粉的酶解试验。

(7)取一部分检验样品，加入适量的1%淀粉酶溶液，同时在控制组中加入相同体积的蒸馏水作为对照。

(8)将试管放置在37℃恒温箱中，保持恒温1-2小时。

(9)取出试管，加入适量的碘酒溶液进行观察。

(10)观察结果显示，如果样品中的淀粉被完全酶解，那么样品会变成无色，而对照组中的样品仍然呈现淀粉的蓝色。

4.结果分析与结论：(1)如果观察结果显示样品中的颗粒呈现蓝色、黑色或紫色，可以判断样品中含有淀粉。

(2)如果样品经过酶解试验后呈现无色，说明淀粉已经被酶解，不存在于样品中。

(3)结合实验结果和观察现象，可以得出对样品中是否含有淀粉的结论。

通过以上的操作规程，可以较准确地对淀粉样品进行检验，从而判断样品中是否含有淀粉。

这对于食品行业、农业、医药等领域的品质检验具有重要意义。

分光光度计总淀粉测定方法
分光光度计在总淀粉的测定中起到了关键作用。

以下是基于分光光度计的总淀粉测定方法：
原理：淀粉颗粒与碘反应可生成深蓝色的络合物，在波长660nm 处具有最大光吸收峰。

根据生成络合物颜色的深浅，用分光光度计测定吸光度值，对照标准曲线，可以计算出淀粉的含量。

材料：马铃薯、香蕉、苹果、葡萄等。

仪器及试剂：
仪器：刻度试管（25mL）、电子天平、容量瓶（100mL）、漏斗、滤纸、试管、电炉、刻度吸管（或移液器）、水浴锅、分光光度计、记号笔。

试剂：0.5%碘液。

步骤：
取不少于20g去壳种子磨粉，磨至95%的粉样通过0.25mm筛。

称取1g粉样，精确到1mg，放入20ml刻度试管中。

加入5ml 0.33mol/L盐酸溶液，振荡混匀后，继续加入5ml
0.33mol/L盐酸溶液。

将试管置于沸水中煮沸10min。

取出冷却后，加入0.5ml 30%（m/V）硫酸锌溶液，振荡混匀，释出蛋白质。

加入0.5ml15%（w/v）亚铁氰化钾溶液，振荡混匀（如有泡沫加几滴95%乙醇）。

定容至20ml刻度处，摇匀后过滤。

在20~25℃环境中，用空白液调整旋光仪的零点，测定样品液的旋光度。

注意事项：
盐酸的浓度必须控制在0.31~0.33mol/L内。

蛋白质含量高的作物应适当增加硫酸锌溶液的用量。

淀粉的比旋度因不同作物略有差异。

结果计算：通过分光光度计测得吸光度值后，可以对照标准曲线计算出淀粉的含量。

请注意，此方法仅供参考，具体操作请根据实际情况和实验室条件进行调整。

植物β-淀粉酶（β-amylase，β-AL）试剂盒使用说明分光光度法正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定货号：BC2040规格：50管/24样产品内容：试剂一：50mL×1瓶，常温保存，若有黄色晶体析出，需90℃加热溶解后再用；试剂二：40mL×1瓶，4℃保存。

若有沉淀析出，需70℃加热溶解后再用。

产品说明：淀粉酶负责水解淀粉，主要包括α-淀粉酶和β-淀粉酶。

β-淀粉酶(EC 3.2.1.2)可随机地作用于淀粉中的α-1,4-糖苷键，生成葡萄糖、麦芽糖、麦芽三糖、糊精等还原糖。

还原糖还原3,5-二硝基水杨酸生成棕红色物质。

α-淀粉酶不耐酸，β-淀粉酶不耐热。

根据上述特性，钝化其中之一，就可测出另一种淀粉酶的活力。

需自备的仪器和用品：可见分光光度计、恒温水浴锅、离心机、可调式移液器、玻璃比色皿、研钵和蒸馏水。

操作步骤：一、粗酶液提取：称取0.1~0.2g样本（建议称取约0.1g样本），加入1mL蒸馏水，研磨匀浆；将匀浆倒入离心管中，提取液在室温下放置提取15min，每5min振荡1次，使其充分提取；3000g，25℃离心10min，取上清液加蒸馏水定容至10mL，摇匀，即淀粉酶原液。

吸取上述淀粉酶原液1mL，加入4mL蒸馏水，摇匀，即为淀粉酶稀释液，用于（α＋β）淀粉酶总活力的测定。

二、测定步骤：1.分光光度计预热30min以上，调节波长到540nm，蒸馏水调零。

2.试剂一或试剂二40℃预热10min。

3.测定操作表：α-淀粉酶活力测定总淀粉酶活力测定试剂名称（μL）对照管测定管对照管测定管淀粉酶原液25025070℃水浴15min左右，冷却淀粉酶稀释液250250蒸馏水250250试剂二25025040℃恒温水浴中保温5min试剂一500500500500混匀，95℃水浴5min，冷却，在540nm下测定吸光度，从左到右分别记为A1、A2、A3和A4。

三、酶活性计算：1、标准条件下测定回归曲线为y=3.7215x-0.1778；x为标准品浓度（mg/mL），y为吸光值。

直链淀粉含量检测试剂盒说明书(货号：NM-W-0214 微量法100T/96S)一、产品简介：直链淀粉是D-葡萄糖基通过α-(1,4)糖苷键以直链状结构连接而成的大分子物质。

直链淀粉的含量是影响食品感官品质和加工特性的一个重要因素，并且与淀粉的特性密切相关，其含量测定对食品营养价值评价、粮食的合理加工，淀粉的合理利用和农业育种等具有重要意义。

直链淀粉与碘能够形成蓝色络合物，通过测定605 nm 和435 nm 处吸光值的变化即可定量检测直链淀粉的含量。

二、试剂盒组分与配制：三、需自备的仪器和用品：酶标仪、96孔板、台式离心机、恒温水浴锅/培养箱、研钵/匀浆器、天平、60目筛、可调式移液器、乙醚、蒸馏水。

四、操作步骤：建议正式实验前选取2个样本做预测定，了解本批样品情况，熟悉实验流程，避免实验样本和试剂浪费！1、预实验样本制备℃ 将样本烘干后充分研磨，准确称取0.01g样本至2mL的EP管中，加入1mL试剂一，充分匀浆，80℃水浴提取30min，冷却至室温，4000g，25℃离心5min，弃上清，留沉淀（尽量保留沉淀）。

℃ 向沉淀中加入1mL试剂二，混匀并振荡5min，4000g，25℃离心5min，弃上清，留沉淀（尽量保留沉淀）。

℃ 向上步沉淀中，加入1mL试剂三，混匀（使样本全部浸在液体中），封口，90℃水浴10min（密封以防止水分散失）。

℃ 冷却至室温，将EP管中全部液体转移至10mL EP管中（用1mL蒸馏水冲洗EP管，全部转至10mL EP管中，重复三次），再加蒸馏水准确定容至10mL，混匀，4000g，25℃离心5min,取上清液作为待测样本。

2、标准溶液的配制：把10mg/mL的标准品母液用试剂四稀释成2、1、0.5、0.25、0.125、3、预实验上机操作：℃ 酶标仪预热30min以上，调节双波长至605 nm 和435 nm。

℃ 操作表：4、正式实验：℃ 若预实验测定吸光值超出标准吸光值线性范围：高于最高值建议将待测样本用试剂四适当稀释后再进行测定，低于最低值建议适当增加样本质量W后再进行测定，并将改变后的D和W代入公式计算；℃ 确定好最适实验条件后，正式实验样本制备同预实验样本制备；℃ 正式实验按照预实验上机操作步骤进行（标准管和空白管预实验已做，正式实验可选做）。

结合态淀粉合成酶（GBSS）活性检测试剂盒说明书紫外分光光度法注意：正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定。

货号：BC3290规格：50T/48S25T/24S产品内容：提取液：液体100mL×1瓶，4℃保存；试剂一：液体40mL×1瓶，4℃保存；试剂二：粉剂×2瓶，4℃保存；临用前每支加入7mL试剂一。

试剂三：粉剂×2瓶，-20℃保存；试剂四：粉剂×2瓶，-20℃保存；临用前每支加入5mL试剂一。

试剂五：粉剂×2瓶，-20℃保存；临用前每支加入8mL试剂一。

试剂六：粉剂×2支，-20℃保存；临用前加入416μL双蒸水，充分溶解备用，用不完的试剂4℃保存；试剂七：液体250μL×3支，-20℃保存；试剂八：液体12.5μL×2瓶；每支临用前加入溶解好的4mL试剂四反应液Ⅰ的配制：临用前在试剂二中加入7mL试剂一，缓慢加热，逐渐升温使其溶解，冷却后加入试剂三混合溶解。

这样可以分两批配制并且测定。

产品说明：GBSS（EC 2.4.1.21）以束缚态存在于淀粉体中，催化淀粉链的加长反应，主要负责直链淀粉的合成。

GBSS催化ADPG与淀粉引物(葡聚糖)反应,将葡萄糖分子转移到淀粉引物上，同时生成ADP；进一步通过反应体系中添加的丙酮酸激酶、己糖激酶和6-磷酸葡萄糖脱氢酶依次催化NADP+还原为NADPH，其中NADPH 生成量与前一步反应生成的ADP数量呈正比，通过340nm下测定NADPH的增加量，可以计算GBSS活性。

需自备的的仪器和用品：紫外分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

操作步骤：一、粗酶液制备称取约0.1g组织加入1mL提取液，冰浴中匀浆。

10000g，4℃离心10min，弃上清，在沉淀中加入1mL 提取液充分混匀，置冰上待测。

二、测定步骤试剂名称（μL）测定管样本200反应液Ⅰ270混匀，30℃保温20min，置沸水浴中1min（盖紧，防止水分散失），冰浴冷却试剂八150混匀，30℃保温30min，置沸水浴中1min（盖紧，防止水分散失），冰浴冷却，10000g常温离心10min，取上清液。

直链/支链/总淀粉含量（酶法）试剂盒说明书（货号：G0548F分光法48样）一、产品简介：常用直链淀粉测定方法有电位测定法、旋光分析法或碘与直链淀粉结合力的比色法，然而这些方法存在不确定性。

因为支链淀粉-碘复合物在此过程中同样会形成，导致直链淀粉含量的高估，因此需要修正。

本试剂盒利用伴刀豆球蛋白A只与支链淀粉结合而不与直链淀粉结合的特性，使其分离，再用仅水解淀粉的酶复合物使淀粉水解为葡萄糖，通过检测葡萄糖含量得到直链、支链和总淀粉的含量。

二、试剂盒的组成和配制：试剂名称规格保存要求备注试剂一粉体g×1瓶4℃保存用前加100mL蒸馏水溶解，并用50%的乙酸（1mL 蒸馏水+1mL冰乙酸）逐滴加入约40μL，务必核定PH为6.4,（不能低于6.4，否则重新配置）试剂一稀释液：30mL试剂一+70mL蒸馏水混匀试剂二粉剂mg×1瓶-20℃保存用前甩几下使试剂落入底部，再加5.5mL的试剂一稀释液溶解备用。

试剂三液体50mL×1瓶4℃保存试剂四粉剂mg×1瓶-20℃保存用前甩几下使试剂落入底部，再加5.5mL的试剂三溶解备用。

试剂五粉剂mg×瓶-20℃保存用前甩几下使试剂落入底部，再加8.2mL的蒸馏水溶解备用。

试剂六液体56mL×1瓶4℃保存标准品粉剂mg×1支4℃保存用前甩几下使试剂落入底部，再加2mL的试剂三溶解，即为1mg/mL葡萄糖。

三、所需的仪器和用品：可见分光光度计、1mL玻璃比色皿（光径1cm）、水浴锅、可调式移液器、研钵、冰、二甲基亚砜（DMSO）、乙醇、乙酸和蒸馏水。

四、淀粉含量测定：建议正式实验前选取2个样本做预测定，熟悉实验流程，避免实验样本和试剂浪费！1、样本制备：①取1-5g样本烘干（50℃）至恒重，磨碎并过筛（如0.5mm筛）得到待检均匀粉末样本；取10mg粉末样本至2mL的EP管中，加入0.5mL的DMSO并涡旋振荡使样本分散悬浮于液体中（勿沉积于管底或块状悬浮）。

支链淀粉含量检测试剂盒说明书微量法注意：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。

货号：BC4275规格：100T/96S产品简介：支链淀粉又称胶淀粉，一般由几千个葡萄糖残基组成，淀粉中直链淀粉和支链淀粉的比例和含量对淀粉产品的加工、物化特性、糊化温度等有着直接的影响。

支链淀粉和碘形成红紫色络合物，利用乙醇分开样品中的可溶性糖和淀粉，再用碘与其反应得到支链淀粉含量试验中所需的仪器和试剂：可见分光光度计/酶标仪、天平、台式离心机、微量玻璃比色皿/96孔板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、乙醚、无水乙醇、EP管。

产品内容：试剂一：液体110mL×1瓶，4℃保存；试剂二：乙醚100mL×1瓶，自备；试剂三：液体55mL×1瓶，4℃保存；O=9mL：91mL混匀，现用现配，4℃保存半年。

试剂四：将试剂三：H2试剂五：液体2mL×1瓶，4℃保存；粉剂一：粉剂×1瓶，4℃保存；粉剂二：粉剂×1瓶，4℃保存；试剂六的配制：将粉剂一倒入粉剂二，用蒸馏水定容至10mL，4℃避光保存一个月。

标准品：10mg支链淀粉×1支，4℃避光保存。

临用前加入0.1mL无水乙醇和0.9mL试剂三，混匀后封口膜封口，沸水浴至溶解，即10mg/mL的支链淀粉。

吸取0.1mL加入0.9mL蒸馏水配制为1mg/mL的标准溶液待用。

操作步骤：一、支链淀粉的提取：称取0.005g烘干样本（建议称取约0.01g）于研钵中研碎，加入1mL试剂一，充分匀浆后转移到EP 管中，80℃水浴提取30min，3000g，25℃离心5min，弃上清，留沉淀，加入1mL试剂二（乙醚）振荡5min，3000g，25℃离心5min，弃上清，留沉淀，加入5mL试剂四充分溶解，90℃水浴10min，冷却后3000g，25℃离心5min，取上清待测。

二、测定步骤：1、分光光度计/酶标仪预热30min以上，调节双波长至530nm和755nm，蒸馏水调零。

本试剂盒只能用于科学研究，不得用于医学诊断植物（Plant）淀粉酶（Amylase）ELISA检测试剂盒使用说明书检测原理试剂盒采用双抗体一步夹心法酶联免疫吸附试验（ELISA）。

往预先包被淀粉酶（Amylase）抗体的包被微孔中，依次加入标本、标准品、HRP标记的检测抗体，经过温育并彻底洗涤。

用底物TMB显色，TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。

颜色的深浅和样品中的淀粉酶（Amylase）呈正相关。

用酶标仪在450nm波长下测定吸光度（OD值），计算样品活性。

样品收集、处理及保存方法1.样本不能含叠氮钠（NaN3），因为叠氮钠（NaN3）是辣根过氧化物酶（HRP）的抑制剂。

2.标本采集后尽早进行提取，提取按相关文献进行。

3.植物萃取液或其它相关样本：请1000x g离心20分钟，取上清即可检测。

4.保存：如果样本收集后不及时检测，请按一次用量分装，冻存于-20℃，避免反复冻融，在室温下解冻并确保样品均匀地充分解冻。

自备物品1.酶标仪（450nm）2.高精度加样器及枪头：0.5-10uL、2-20uL、20-200uL、200-1000uL3.37℃恒温箱操作注意事项1.试剂盒保存在2-8℃，使用前室温平衡20分钟。

从冰箱取出的浓缩洗涤液会有结晶，这属于正常现象，水浴加热使结晶完全溶解后再使用。

2.实验中不用的板条应立即放回自封袋中，密封（低温干燥）保存。

3.浓度为0的S0号标准品即可视为阴性对照或者空白；按照说明书操作时样本已经稀释5倍，最终结果乘以5才是样本实际浓度。

4.严格按照说明书中标明的时间、加液量及顺序进行温育操作。

5.所有液体组分使用前充分摇匀。

试剂盒组成名称96孔配置48孔配置备注微孔酶标板12孔×8条12孔×4条无标准品0.3mL*6管0.3mL*6管无样本稀释液6mL3mL无检测抗体-HRP10mL5mL无20×洗涤缓冲液25mL15mL按说明书进行稀释底物A6mL3mL无底物B6mL3mL无终止液6mL3mL无封板膜2张2张无说明书1份1份无自封袋1个1个无注：标准品（S0-S5）浓度依次为：0、250、500、1000、2000、4000U/L试剂的准备20×洗涤缓冲液的稀释：蒸馏水按1：20稀释，即1份的20×洗涤缓冲液加19份的蒸馏水。

分光光度计总淀粉测定方法分光光度计是一种用于测定物质浓度或物质的吸收、发射、透射等光学特性的仪器。

在化学分析中，分光光度计广泛应用于各种测定方法中，包括总淀粉的测定。

总淀粉是指在植物中所含的淀粉总量，通过使用分光光度计进行总淀粉测定，可以帮助我们了解样品中淀粉的含量，对于农业、食品加工等领域具有重要的意义。

本文将介绍分光光度计在总淀粉测定方法中的应用及相关步骤。

一、仪器和试剂准备1. 分光光度计：确保分光光度计处于正常工作状态，光源和检测器都处于正常工作范围内。

2. 样品制备：将待测样品进行适当的加工和制备，确保含有足够的淀粉供测定。

3. 乙醇：用于提取淀粉的试剂，浓度为80%左右。

二、样品制备1. 取适量的样品（例如植物组织）进行粉碎和加工，以便提取其中的淀粉。

2. 将粉碎后的样品置于乙醇中进行浸泡，溶解其中的淀粉成分。

3. 使用离心机等设备加速样品中淀粉的沉淀，获得淀粉样品。

三、操作步骤1. 使用分光光度计进行基准校准：将纯水设置为基准，调整光度计使其读数为零。

2. 将提取得到的淀粉样品溶液放入分光光度计样品池中，测定其吸光度。

3. 进行标准曲线的制备：分别取不同浓度的标准淀粉溶液进行测定，绘制吸光度与浓度的标准曲线。

4. 通过标准曲线计算样品中淀粉的浓度：根据样品的吸光度值，结合标准曲线，计算出样品中淀粉的浓度。

四、结果分析1. 将测得的样品淀粉浓度与实际情况进行比对，得出样品中淀粉的含量。

2. 根据测定结果，可以对不同样品进行比较，了解它们之间淀粉含量的差异，为相关领域的研究提供数据支持。

分光光度计在总淀粉测定方法中起着重要作用，通过准确测定样品中淀粉的含量，帮助我们了解样品的化学组成和特性。

在农业、食品科学、生物化学等领域的研究和生产中，分光光度计总淀粉测定方法具有广泛的应用前景。