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药理学实验讲义南方医科大学药学院２０１０－７目录实验一实验动物操作的基本机能 (2)实验二不同给药途径对药物作用的影响 (4)实验三全血水杨酸二室模型药物代谢动力学参数测定 (5)实验四肝肾功能对药物作用的影响 (6)实验五药物镇痛实验 (7)实验六巴比妥类药物的抗惊厥作用 (9)实验七利多卡因对抗氯化钡引起的心律失常实验 (13)实验八有机磷酸酯类中毒及解救 (14)附录1 药理学实验基本要求 (19)附录2 药理学在新药研究中的应用 (22)实验一、实验动物操作的基本机能一、目的：学习实验动物编号、捉持、给药、采血等基本操作方法。
二、实验材料（一）动物：小白鼠10只，雌雄各半，体重18g ~ 22g。
家兔1只，雌雄均可。
（二）器材：1 ml注射器，5 ml注射器，针头，灌胃针头，大烧杯，天平。
三、方法1. 性别鉴别小鼠的性别鉴别通常以肛门与生殖孔之间的距离来判断，距离近者为雌性，距离远者为雄性。
家兔可以从生殖器分辨其性别。
2. 编号可根据情况和习惯而定，符合清晰易辨、简便耐久的要求即可。
例如小鼠，右前肢皮肤外侧涂色标记为1号，腹部右外侧皮肤涂色标记为2号，右后肢皮肤外侧涂色标记为3号，头部皮肤涂色标记为4号，背部正中皮肤标记为5号，尾巴根部标记为6号，7、8、9号在左侧同1、2、3号，第10号不色。
3.捉持右手提起鼠尾，放在粗糙物（如鼠笼）上面，轻轻向后拉其尾，此时小鼠前肢抓住粗糙面不动；用左手的拇指和食指捏住其头部皮肤和双耳；其余三指和掌心夹住其背部皮肤及尾部。
这样小鼠便可被完全固定在手中。
4. 给药(1)小鼠的给药方法①灌胃（po）：将小鼠固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角处插入口腔，沿上腭插入食道。
如遇阻力，可将灌胃针头抽出再另插，以免穿破食道或误入气管，造成动物死亡。
灌注量一般为0.1～0.2ml/10g，不超过0.5ml/只。
②肌内注射（im）：两人合作，注射部位多选后腿上部外侧。
针对药理学有关知识内容与实验课的要求，拟开设以下几个方面的实验：实验一:药理学实验的基本知识及基本技能训练（4学时）实验目的与要求：通过实验使学生掌握药理实验有关的动物选择、应用、捉拿、给药、采血等基本知识及基本技能的训练。
要点：一、常用动物捉持方法⑴小鼠捉持⑵家兔捉持二、常用动物给药方法⑴小鼠灌胃——；皮下注射——；腹腔注射——；肌肉注射——；尾静脉注射——；⑵家兔灌胃——；耳缘静脉给药——；三、常用动物取血方法⑴小鼠后眼眶静脉丛取血——用拇指和食,中指捏住鼠颈部,利用捏紧的压力,使静脉丛淤血.将一特制硬玻璃吸管(约长15cm,前端拉成管壁略厚的毛细管),从内眼角插入眼睑和眼球之间,轻轻香眼底方向移动，并略加捻转，血即自然顺便玻璃管流出。
⑵眼眶动脉、静脉取血——左手抓住小鼠，拇指和食指尽量将头部皮肤捏紧，使眼球突出，用无钩弯镊将眼球摘除，将鼠倒置，血即流出1. 小鼠捉持法以右手捉小鼠尾，将小鼠放于粗糙面上，向后轻拉小鼠尾部，使小鼠固定于粗糙面上。
用左手的拇指、食指和中指捏住小鼠两耳及头部皮肤，无名指、小指和掌心夹住背部皮肤和尾部，使头部朝上，颈部拉直但不宜过紧，以免窒息（见图1—1）。
另一种捉持方法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾巴，后用手掌及小指和无名指夹住其尾部，再以拇指及食指抓住两耳和头部皮肤（见图1—2）。
前者易学，后者便与快速捉拿给药。
图1—1 小鼠的捉拿方法1 图1—2 小鼠的捉拿方法22. 小鼠灌胃以左手捉持小鼠，头部朝上，使其头颈充分拉直。
右手拿起装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，再从舌面紧沿上腭进入食道（见图1—3）如插入正确，灌胃针头容易进入，如遇阻力，可能插入气管，应退出再插。
灌胃液最多不超过0.1ml 。
图1—3 小鼠的灌胃法 图1—4 小鼠的皮下注射法 3. 小鼠皮下注射将小鼠至于铁丝网上，左手抓住小鼠，以拇指扣食指捏起背部皮肤，右手持注射器刺入背部皮下注射药液。
药理学基础知识
药理学是研究药物在体内作用机理、作用效果及其适应症、副作用和药代动力学等方面的学科。
以下是药理学基础知识的介绍。
药物的作用机理：药物通过与身体内的特定分子相互作用，从而改变了身体的生理和/或病理状态。
这些分子可以是受体、离子通道、酶、蛋白质、核酸等。
药物的分类：根据药物的作用机理、化学结构和临床应用等方面，药物可以被分为多个类别，如抗生素、抗炎症药、抗肿瘤药、镇痛药、抗抑郁药、抗焦虑药等。
药物的剂型：为了方便口服或外用，药物可以制成不同的剂型，如片剂、胶囊、口服液、注射液、贴剂、乳膏等。
药代动力学：药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄被称为药代动力学。
这些过程会影响药物的作用效果和毒副作用。
药物的治疗指标：药物的治疗指标是指药物的适应症，即用于治疗特定疾病或症状的药物。
药物的不良反应：药物的不良反应通常包括副作用、过敏反应和药物相互作用等。
这些反应可能会影响药物的治疗效果和患者的安全。
因此，医生和患者需要注意
药物的使用和监测。
以上是药理学基础知识的简介，希望对您有所帮助。
实验一动物实验基本知识一、实验目的通过药理学实验的基础知识的学习和练习,掌握药理学实验的基本技能和方法。
二、实验内容（一）教学电影：动物基本知识与实验技术；（二）实验：三、实验仪器、设备实验动物：家兔、小鼠、实验器材：小鼠固定器家兔固定器、注射器兔台，手术器械，注射器，丝线，纱布等四、实验方法与步骤1、教师示教过程小鼠、大鼠的捉拿灌胃，腹腔注射，皮下注射，标记.家兔捉拿、固定、灌胃、静脉注射，肌肉注射等。
重点示教小鼠、大鼠的捉拿灌胃.2、学生自己做实验操作练习。
小鼠、大鼠的捉拿灌胃，腹腔注射，皮下注射，标记.家兔捉拿、固定、灌胃、静脉注射，肌肉注射等。
1、捉持法以右手提鼠尾，将小鼠放于粗糙面上，将鼠尾轻轻向后拉，以左手的拇指及其食指捏双耳及头部皮肤，无名指、小指及掌心夹其背部皮肤及其尾部，便可将小鼠固定。
2、灌胃左手持小鼠，使腹部朝上，颈部拉直，右手拿灌胃器子口交插入口腔，从舌面紧沿上颚进入食道。
若遇阻力，应退出后再插。
3、皮下注射一人抓小白鼠头部皮肤，右手拉鼠尾，另一人左手捏背部皮肤，右手持注射器刺入背部皮肤。
4、腹腔注射左手抓小白鼠，右手持注射器。
取30º将针头从下腹部刺入腹腔。
5、尾静脉注射将小白鼠置于固定筒内或倒置的大漏斗下，使鼠尾露出在外。
用酒精棉球擦鼠尾，使血管扩张。
左手拉住尾尖，选一条扩张最明显的尾静脉将针头刺入血管，推药。
若有阻力，且局部变白，则需从新刺入血管。
小结: 实验的认真及参与情况,实验室守则和实验的基本要求。
同学在实验过程中出现的问题。
五、实验报告要求实验中认真观察实验现象，将实验记录在原始数据表格中，实验结束后，指导教师检查并签字。
撰写实验报告要求内容完整、结论正确、书写规范、条理清楚、有分析、有讨论，并在规定时间内完成，及时交予实验指导教师。
六、实验注意事项注意实验动物编号；动物捉拿、固定、给药、取血方法七、思考题动物捉拿、固定、给药方法有哪些？实验二不同剂量对药物作用影响[目的和原理]观察药物不同剂量对药物作用的影响。
药理学基础知识点药理学是研究药物在生物体内发生作用的科学，它涉及药物的起源、性质、制备、使用和评价等方面。
了解药理学的基础知识，不仅可以帮助我们更好地理解药物的作用机制，还有助于合理用药和预防药物副作用。
本文将介绍一些药理学的基础概念和知识点。
1. 药物分类药物可以根据不同的分类标准进行归类。
根据药物的起源和性质，药物可以分为天然药物、化学合成药物和生物制品等。
天然药物是指从自然界中提取的药物，如植物药物、动物药物和矿物药物；化学合成药物是指通过化学合成方法合成的药物，如大部分现代药物；生物制品是指通过生物技术制备的药物，如基因工程药物和单克隆抗体药物等。
2. 药物代谢和排泄药物在体内经历代谢和排泄过程，这是药物在体内发挥药效和产生药物作用的关键步骤之一。
代谢是指药物在体内经过化学反应转化为其他物质，主要是经过肝脏进行代谢。
排泄是指将药物或其代谢产物从体内排出，主要通过肾脏和肠道完成。
3. 药物作用机制药物产生作用的过程主要涉及药物与靶点的相互作用。
药物可以通过结合受体、酶、离子通道等靶点来发挥药理效应。
例如，抗生素通过抑制细菌细胞壁的合成来产生抗菌作用；降压药通过阻断血管收缩物质的合成或作用来降低血压。
4. 药物药效学药物药效学是研究药物在生物体内产生效果的学科。
药物的药效学参数包括最大有效浓度、半数致效浓度、最大有效时间等。
了解药物的药效学参数可以帮助医生和药师更好地指导药物的使用。
5. 药物相互作用药物相互作用是指两种或多种药物同时使用时可能产生的相互影响。
药物相互作用可以导致药物的药效增强或减弱，甚至产生不良反应。
了解药物相互作用可以帮助医生避免不良的药物组合。
6. 药物副作用药物的副作用是指治疗作用以外的药物对机体产生的不良反应。
不同的药物具有不同的副作用，副作用可以影响患者的生活质量和治疗效果。
了解药物的副作用可以帮助医生和患者更好地进行合理用药。
7. 个体差异不同的个体对药物的反应可能存在差异，这是由于个体的遗传差异、生理差异和环境差异等因素影响引起的。
药理学实验基础知识实验报告
药理学实验基础知识实验报告
一、实验对象：
本次实验的主要对象是大学生，其中包括了药学院的学生和其他学院的学生，这些学生都通过本次实验学习药理学的基础知识，以为他们日后的实践做准备。
二、实验内容：
药理学是生命科学的一个分支，是专门研究药物用于治疗疾病的方式及其机制的学科，且以研究活性物质及其分子方法为基础。
本次实验室的主要内容是学习药理学基础知识，包括药物谱、药物作用机制、药物代谢、药物毒性和药物副作用等等。
三、实验方法：
1、首先，选择药理学相关书籍作为参考，仔细阅读，深入了解药理学的基本概念和原理。
2、在理论学习之后，结合实验实践，进行有关药理学的实验，熟悉药理学实验的基本流程及其实验技术。
3、实验完成以后，通过讨论、总结和分析，形成药理学实验基础知识的实验报告。
四、总结
本次实验是为了让参与者深入了解药理学的基本概念和原理，掌握药理学实验的基本流程及实验技术。
通过本次实验，参与者可以更加熟悉药理学的学习，并能为他们日后的临床实践打下良好的基础。
医学免疫药理学基础知识项操作医学免疫药理学是一门关于人体对病原体的抵抗和治疗机制的学科。
通过药物的干预，可以有效加强人体免疫系统的防御功能。
本文将介绍医学免疫药理学的基础知识，以及相关的实验操作。
一、免疫系统的基础知识人体的免疫系统是由一系列不同的细胞和分子组成的。
其中，主要的免疫细胞包括T细胞、B细胞、巨噬细胞和自然杀伤细胞。
这些细胞可以分别执行不同的免疫功能，包括识别和攻击外来病原体、产生抗体以及清除已受损细胞等。
为了确保免疫系统能够正常地运作，还需要有一些重要的分子和信号通路。
这些分子包括白细胞介素、细胞因子、趋化因子等。
它们能够在免疫系统的各个环节中发挥重要作用，促进免疫细胞之间的相互作用和通讯。
二、免疫药理学的基础知识免疫药理学是一门探讨药物干预免疫系统的学科。
在免疫药理学中，常见的药物包括免疫抑制剂、免疫调节剂、免疫增强剂等。
它们能够影响免疫系统的各个环节，从而在治疗疾病和预防感染方面发挥重要作用。
在免疫药理学的研究中，药物的药效和毒性是非常重要的关注点。
药效是指药物对免疫系统的影响程度，包括免疫细胞的活化或抑制、细胞因子的产生和分泌等。
毒性是指药物对人体的有害反应，包括免疫功能的下降、免疫器官的损伤等。
充分了解药效和毒性是确保药物安全和有效的关键。
三、实验操作1. 细胞培养实验细胞培养技术是免疫药理学中常用的实验操作之一。
在细胞培养实验中，首先需要准备需要研究的免疫细胞来源，比如从小鼠的骨髓或人类的外周血中分离出淋巴细胞。
然后将这些细胞种植在适合的培养基中，并添加相应的生长因子和激活剂，以诱导细胞的活化或增殖。
最后可以通过检测细胞表面标记分子或细胞因子的产生等方式，对细胞的活化效果进行评估。
2. 动物实验动物实验是免疫药理学中不可或缺的实验技术之一。
主要的动物模型包括小鼠、大鼠、兔子等。
在动物实验中，研究者可以通过给动物注射药物、感染病原体等方式，模拟人体免疫反应或治疗疾病。
在实验过程中，需要注意动物福利、安全防护等问题，遵守相关的伦理法规。
药理学概论实验讲义药理学概论实验讲义一、药理学实验设计的基本知识1.实验设计的基本原则药理研究的目的是通过动物实验来认识药物作用的特点和规律，为开发新药和评价药物提供科学依据。
由于生物个体之间存在着差异性，且实验过程也存在系统误差和操作误差，因此要取得精确可靠的实验结论，必须进行实验设计。
进行实验设计必须遵循三条原则，即重复、对照、随机。
重复是保证实验结果可靠的重要措施之一。
重复具有两方面的含义，即重现性和重复性。
重现性就是精确可靠的实验结果，应能在相同条件下重复出现。
重复性就是实验要有足够的次数或例数。
由于个体差异和实验误差，仅根据一次实验或少数样本所得的结果，往往难以下结论。
在适当的范围内重复愈多，则放可靠。
究竟用多少动物或多大样本进行药理实验，是研究者遇到的首要问题。
样本过少不行，过多则增加实际工作中的困难，也不符合经济的原则，而且单纯加大样本量也不能完全排除偏差，所以，在实验设计时对样本大小的估计应在保证结论可靠的条件下确定最小的例数。
在实验研究中，为消除个体差异和各种无关因素对实验结果的影响，须设对照组。
对照应符合可比原则，除实验药物或处理因素的差别外，其他一切条件(包括实验对象的种局、年龄、性别、体重和实验方法、仪器、环境、时间等)应力求一致，这样才能从实验组与对照组比较中得出药物作用的准确结论。
对照一般可分为如下两类。
①自身对照。
即在同一个体观察给药前后某种观测指标的变化，或者两种药物前后交叉比较，这样可以减少个体差异的影响。
②组间对照。
即在实验中设若干平行组进行比较，或分不给药物(或不加处理)的空白对照组及已知药物的标准品对照组。
前者最常用，后者便于与已知药物比较，并可检验实验方法及技术的可靠性。
随机分组的目的是使样本的差异平均分配到各组，而不受实验者主观因素或其他偏性误差的影响。
例如，动物分组时先被抓到的往往是不活泼考，后抓到的是活泼者，前者分入同一组，后者分入另一组，这样得出的结论是不可靠的。
第一章药理学实验的基础知识 第一节药理学实验的目的和要求 药理学实验的目的在于通过循序渐进的常规实验，使学生验证和巩固所学的基木理论； 通过综合实验了解较为先进的科研方法和技能，同时培养学生联想及综合分析问题的能力； 通过设计性实验，培养学生独立思考、科学思维及创新的能力，建立实事求是、严谨的科学 态度，提高解决实际问题的能力，为后续知识的学习和毕业麻的科研工作奠定良好的基础。 为了达到上述H的，要求学生做到以下几点。 【实验前】 1. 仔细阅读实验指导，了解实验目的、原理、要求、方法和操作步骤。
2. 结合实验内容，复习有关药理学、生理学、生物化学及免疫学等方面的理论知识，做 到充分
理解。 3. 预测实验屮可能岀现的情况和发生的问题。
【实验时】 1. 实验器材的放置力求稳当、桀齐、有条不紊。
2. 严格按照实验指导上的步骤进行操作，准确计算给药量，节省器材和药品。要注意保 护实验
动物和标本，避免与实验内容无关的刺激。 3. 仔细、耐心地观察实验过程屮岀现的各种现象，实事求是地记录药物出现反丿'V的时间、 表
现以及最后的转归，联系课堂讲授的内容进行思考。 4. 在实验过稈屮遇到疑难之处，先要白己设法解决，如一时解决不了，应向指导教师 说明情
况，请求教师协助解决。对于贵重仪器，在未熟悉其性能Z前，不可轻易调试。 5. 实验室内保持安静、整洁。用药示须用原瓶塞塞好，公丿IJ药品和器材不可随意挪动。
【实验后】 1. 将实验用器材清洗擦干，清点整理后放到指定位置。如有损坏、缺少，应及时报告 老师。将
存活和死亡动物分别送至指定处所。 2. 认真整理实验记录，经过分析思考，撰写实验报告，按时交给指导老师。
3. 做好实验室的清洁一卫生工作。
第二节药理学实验设计的基本原则 在进行药理学实验时，为保证实验结果的客观性和可信性必须遵循以下基木原 则: %1. 对照原则：进行实验时必须设对照组。设置对照组是为了使观察指标通过 对比而发现其在处理因索（如药物等）的作用下而表现出的某种特异性变化，消除各 种无关因素的影响。这就要求在比较的备组实验对彖Z间除了处理因素不同外，所有 非处理因素应尽量保持相同，从而根据处理与不处理之间的差异，了解处理因素带来 的特殊效应。对照有多种形式，如空H对照（又称正常对照），即对照组不施加处理因 素，但给予同容积的溶剂；模型对照，即造成疾病模型，但不给予药物处理，给予同 容积的溶剂；阳性对照，即给予相同适应症的市售药物，以监控实验条件；假手术对 照，即除造成某种疾病模型的关键步骤外，所有手术操作均同模型对照组。H身对照， 对照与实验均在同一实验对象进行，即同一个体处理前后的对照，如给药前后的对比等。 若观察给药前后的指标变化，此种对照必须以指标木身对时间变化相对稳定为首要前提。 %1. 随机原则：随机是指对实验对象的实验顺序和分纟R进行随机处理。在分组时， 对实验对彖进行随机抽取可保证被研究的样本能代表总体，从而减少抽样误差；在施 加多个处理因素时采用随机原则，可保证各组样木的条件基木一致，可减少组间人为 的误差。 %1. 重复原则：“重复”在这里有两方面的含义，一是指实验结果的可再现性，一是指 实验结果应该来自足够大的样木。样木越大，重复的次数越多，实验结果的误差越小，可信 度越咼O
第三节 药理学实验中分组方法 药理学实验一般应当设有正常对照组、模型对照组、阳性药对照组及受试药2个以上剂量 组（新药研发时要求至少设立三个给药剂量组，以考察量效关系）等，如需手术造成疾病模 型，还应设假手术对照组。而学生药理学实验课时，由于时间等条件的限制，可酌情减少实 验分组，只设空H对照组或模型对照纽•及受试药一个剂量组。 %1. 动物分组的一般原则 实验时，要遵循受试药组与对照组一致性原则，即两组只允许在被实验因素方面有所不 同，在其他方面（包括实验对象、实验者、实验条件、环境、时间以及仪器等）丿应力求一致。除 了被实验因索外，如果两组还有不一致的地方，则对照组的存在失去其应有意义。两组Z例 数应相等或相近似，认为对照组只有少数几例即可，是不正确的。 分纟R时，为了满足以上要求，避免主观因素需要采取随机抽样的方法。所谓随机抽样就 是指按看机会的安排来抽取样木，换言Z,不论任何被实验的对彖都有相等的机会被抽出。 随机抽样的方法很多，如应用散子法、单双号法、卡片法以及随机数表等。
必须指出，随机抽样比较适宜大样木时的分组，而小样木时随机抽样不能保证备组的一 致性，故小样木时必须用人为的方法来保证各组的一致性，其目的是更好地贯彻随机抽样原 则，与主观选择有木质上的区别。 %1. 小样本的分组法 主要有分群法（Stratify）和配对（群）法。分群法是按某几个因素将对象先分为数群，而后再 按随机抽样法将每群屮的对象分到各组屮去。有时先分为儿个大群，而后每大群再分为数小 群，最后将每小群屮的对象再随机抽样地分到笛纟H.屮去。分群可按性别、体重或血压等生理 或病理因素进行，一般应以观测指标或对观测指标有主要影响的因素为准来分群，如降压实 验，应以血压为准来分群；豚鼠的平喘实验，须对豚鼠进行初筛，分组时，应以哮喘潜伏期 来分群；降血脂实验，应以血脂水平为准来分群。而多数是按性别、体重分群。 配对（群）法，是把备方面相近似的对象配成多数的对或群（二组则二个一对，三组则三个 一群），然后每对（群）屮的对象按随机抽样原则分到备组屮去。 以最常用的分群法为例，说明如下： 【举例】 由实验动物中心取来同种属并且出生口期相近似的小白鼠36只，欲就性别及体重将其分 为实验及对照两组，可进行如下分组： 先就性别将动物分为雌雄两大群，毎群再按体重分为数小群（以lg为组距），假定其性别 及体重分布情况如表M Z左侧所表示，贝IJ可按随机抽样原则将各小群的动物分到两组屮去。 如果有的小群动物数是奇数时，则应尽力照顾到两组的均衡来分配Z,最终的分组情况正如 表1-1之右侧所表示。 表分组法 分布情况 分组情况 性别 体重（g） 动物数（只） 实验纟R 对照纟H. 雌 18-19 6 19- 20 6 20- 21 3 21- 22 3 3 3 3 3 2 1 1 2 S 18 9 9 雄 18-19 5 19- 20 3 20- 21 6 21-22 4 3 2 1 2 3 3 2 2
18 第四节药理学实验数据的分析处理 一、实验结果的记录及表示方法 实验过程屮，要对实验数据进行及时、客观的记录。凡是属于量反应资料（又称 计量资料，即药物作用可以用数值的变化来表示，如血压的高低、时间的长短、心率 的快慢、肿瘤轻重、心输出量的多少等）均应以正确的单位和数值标定。凡是由曲线 记录测量指标的实验，应尽量用曲线记录实验结果，在所记录的曲线中应标注有给药 或刺激记号、时间记号等。为便于对实验结果进行分析、比较，多以备组数据的均值 加减标准差来制表或绘图来表示实验结果，表格要行表题，图要有图题。制作表格及 作图时，应注意以下儿点： 1. 表格应制三线表，表格屮不用纵向线。一般按照纟H.别、剂量、动物数、观测 指标的顺序在
表内由左至右填写。 2. 作图时，通常是以实验观察指标的变化为纵坐标，以时间或给药剂星为横坐标 而作图，例如呼
吸曲线、肌肉收缩曲线等；横、纵坐标轴均应加以标注，如药物剂量、 时间单位、测量指标及单位等。 3. 实验数据若呈连续性变化，则以Illi线形式体现实验结果，绘制经过各点的Illi线 或折线应光
滑；实验数据若不呈连续性变化，则不用汕线表示，可采用尙方图的形 式表示。 4. 表及图下面应有必要的说明，如统计学显著性的表示等。
二、差值的显著性测验 实验结朿后，实验者必须对所获得的实验结果进行统计学分析处理，才能发现问 题，得出结论。药理学实验往往要在两组或两组以上实验对彖上进行，如一组为实验组，一 纟R为对照纟R,然示就两组所获得的实验数据进行比较，判断两者有无差异，从而确定被实验 因素是杏对实验对彖确实具冇某种影响，例如药物疗效Z观察等。但药理学研究的实验对彖 大都是各种动物（临床药理学研究的对象是人），所以实验中生物个体茅异所造成的谋芜是 不可避免的，此外也还有一些其他性质的谋羌，可统称Z为实验谋差。从而两组实验获得数 据的旁异就有可能是实验误差所造成，而在被实验对象的数目很少
时（小样木），此种可能性更 大。两组数据的差值究竟是被实验因索所致，还是实验误差影响所致，这不能主观决 定，而一定要通过生物统计学的客观方法来判断，以确定此差值是否有意义。此种 方法就称为并值的显著性测验。 如果测验的结果是两组Z间差界“显著”，则提示两组Z间的差异可能是因处理因 素（如药物）造成的；若“不显著”，就说明此差值很可能是实验误差所造成的，没有 实际意义。但不应只根据一次的结果而轻率地下结论，在动物数少时尤其如此。应视具 体情况，进行重复实验。需要指出的是，统计学方法Z运用需建立在对实验对象客观的、 科学的分组和正确的实验资料的基础Z上。不当的实验设计与错误的实验资料，即使经 过统计处理，其结论仍然是不可靠的。因实验指标有量反应指标和质反应指标的不同， 其统计处理方法也不同。分述如下： 1. 量反应指标的差值显著性测验法
羌值显著性测验最常应用的方法为“t检验法”。t值即差值的绝对值与羌值标准误之 比。亦即用谋
