细胞的换液

细胞培养基本步骤细胞培养是一项重要的生物技术，涉及到多个步骤。

以下是细胞培养的基本步骤：1. 准备细胞培养环境：细胞培养需要在无菌的环境中进行，因此需要准备无菌操作台、培养箱、显微镜、细胞计数器等设备，确保培养环境符合要求。

2. 细胞复苏：从液氮或-80℃冰箱中取出冻存的细胞，快速转移到37℃水浴中解冻。

然后将细胞移至培养瓶中，加入适量培养基，轻轻摇动培养瓶，使细胞均匀分布。

3. 细胞传代：当细胞密度达到80%-90%时，可以进行传代。

将原培养瓶中的培养基吸出，加入适量胰蛋白酶，轻轻摇动培养瓶，使胰蛋白酶与细胞接触。

等待几分钟，待细胞变圆并从瓶底脱落，将胰蛋白酶吸出。

然后加入新配置的培养基，用吸管吹打细胞团块，使其分散成单个细胞。

最后将细胞悬液移至新的培养瓶中，放在培养箱中继续培养。

4. 细胞冻存：当需要进行长期保存时，可以将细胞冻存。

将细胞从培养箱中取出，离心收集，用适量细胞冻存液重悬细胞。

然后将细胞悬液分装到冻存管中，放入-80℃冰箱或液氮中保存。

5. 细胞观察：在细胞培养过程中，需要定期观察细胞的生长情况。

通过显微镜观察细胞的形态、密度等指标，判断细胞的生长状态和是否发生异常。

如发现异常情况，应及时采取措施处理。

6. 细胞计数和活力检测：采用细胞计数器或血球计数板进行细胞计数，同时检测细胞的活力。

一般采用台盼蓝染色法或荧光染色法进行检测。

7. 细胞换液和传代：根据需要，定期更换新鲜的培养基，以保证细胞的营养需求。

同时，在传代过程中要注意细胞的消化程度和生长情况，避免过度生长或未充分消化导致细胞状态不佳。

总之，细胞培养是一项技术性很强的工作，需要严格的操作规程和细致的观察。

通过不断实践和总结经验，可以提高细胞培养的成功率和稳定性。

细胞增殖快非常好养，但是要及时换液，否则也很容易死亡、或变形。

我养的最
好的时候，天天都在换液，两三天就要消化传代。

我用的消化液一般是消化用
含EDTA的胰酶0.25%，个人感觉效果比较好一点。

消化步骤：吸出培养液，加入PBS洗涤（视培养瓶大小加入相应的量，25CM加
入1-2ML）而后加一次胰酶（25CM培养瓶加0.6ML）作用 2-3分钟，轻轻摇晃使
均匀作用在细胞层面上。

要一直在显微镜下观察，以防消化过头，等细胞从梭形
变成椭圆形（或是棱角变钝），本来连成片的细胞之间开始有小小的空间，细
胞与细胞好象是一粒粒的，界限清楚，这时是消化的最佳时机。

（细胞的活力最
好，又非常容易吹打）加入培养液进行吹打十几次即可。

如果消化到细胞全部飘起来，就消化的稍微有点过了。

如果细胞的形态还是老样
子，就消化的有点不足，吹打起来十分费力，有大片的细胞就会贴在壁上，起不
来，而且很不均匀。

只好重新加胰酶消化。

还有就是细胞长的比较密时，胰酶可以比平时多加一点，消化时间适当延长。

雅吉货号中文名称英文名称种属组织来源形态学生长方式培养基血清
YJ255 小鼠黑色素瘤细
胞
B16 小鼠黑素瘤
成纤维细胞
样
贴壁RPMI-1640 C S
B16用加10%血清，加双抗的RPMI-1640培养液，0.25%胰酶消化对数生长期B16细胞，传代比约1:5.
倒置相差显微镜下，对数生长期品源B16细胞形态为梭形或不规则形。

BHK-21（幼仓鼠肾传代细胞）一、细胞复苏：1、从液氮罐取出一支装有BHK-21的细胞冻存管，用镊子立刻将冻存管置于37℃水浴箱中融解，将冻存管盖口以下面积浸入水中，不时摇动冻存管加速融化，直至管内冰块融化，约1~2min。

2、将融化后的冻存管放入超净台中。

取出一支15ml离心管，加入6ml DMEM，用1000µl 移液枪移取全部冻存管内细胞液至离心管中，盖上离心管盖，轻轻上下颠倒混匀后离心（800r/min，5min）。

3、用移液枪将液面气泡吸走，倒去上清液。

4、加入2ml生长液（10% FBS，89% DMEM，1% 双抗），用移液枪吹打均匀。

5、用移液枪将生长液移至25cm2细胞培养瓶中，补加4ml生长液。

6、盖上透气滤膜盖，置于37℃、CO2 5%培养。

备注：1、细胞复苏后5h，镜下观察细胞已贴壁，贴壁细胞密度50%~60%。

二、细胞换液（复苏后24h换液）1、取出细胞，镜下观察，细胞已长至80~90%，有部分细胞漂浮在培养液中。

2、倒去培养液，加入6ml生长液（10% FBS，89% DMEM，1%双抗），盖上透气滤膜盖，置于37℃、CO2 5%培养。

备注：1、一般复苏后的第一天（24h）需换液，复苏后第二天（48h）才能考虑传代，若没有传代，第三天（72h）必须传代。

2、处理过程不需用PBS或HASS洗涤，因细胞刚复苏，不需过多处理细胞。

三、细胞传代（复苏后48h传代）1、镜下观察，细胞已长满整个细胞瓶底，有部分细胞漂浮。

2、倒去培养液，用移液枪吸取1ml PBS或HASS，沿培养瓶细胞对侧壁加入洗液，盖上盖子，轻摇瓶子让洗液洗涤整个瓶壁。

细胞培养的过程及注意事项（2）细胞培养的过程及注意事项5）培养液略呈黄色换液。

吸出部分旧培养液，加入新鲜培养液即可。

（2）注意事项1）进行悬浮细胞培养时必须保持细胞的悬浮状态。

可以通过增加培养液的黏度来帮助细胞呈悬浮状态，如给培养液中加入低浓度的透明质酸复合物。

在有搅拌装置的培养器皿内加入培养液是，以5ml为最低限度，否则搅拌时会产生气泡对细胞造成伤害。

使用这种方式需注意勿使搅拌速度过快，否则即可使培养液溢出又容易造成污染。

如果培养液的量在5ml以下，可以采用旋转瓶培养。

给悬浮培养的细胞换液时要注意不要吸出细胞。

2）能够进行悬浮培养的细胞，其生命力一般都比较旺盛，体外分-裂增殖的速度较快，营养成分消耗大，换液时间隔一般较短。

（二）原代培养的注意事项1、在原代培养的1天到2天内，要特别注意观察是否有细菌、真菌的污染，一旦发现，要及时清除，防止造成其它细胞的交叉感染；2、随着培养的进程，培养液中的营养物质被逐渐的消耗，营养成分越来越少，细胞代谢产物越来越多，有细胞呼吸过程中释放出来的CO2及其它产物如乳酸、丙酮酸等也逐渐增加。

随着酸性物质的增加，培养液中的pH值越来越低，培养液的颜色也越来越黄。

因此，在细胞培养的过程中，要注意培养液颜色的变化，并根据培养液的颜色来决定换液时间。

正常情况下，培养液呈桃红色；当培养液呈橙黄色时，细胞一般生长情况良好；呈淡黄色时，可能培养时间较长，营养不足，死亡细胞较多；呈紫红色时，可能是细胞生长状态不好或已经死亡。

所以，应在培养液略黄时吸出部分旧培养液，然后补加同等数量的新鲜培养液。

换液过程中，不要吸出细胞，不要使培养液溢出培养瓶，避免各种微生物的污染。

换液时，应将培养液事先预温至37℃。

一般培养一天，组织细胞即可在培养瓶皿底壁黏附并贴壁生长。

2天到3天后，细胞恢复增殖活动。

随着培养时间的延长，细胞数量逐渐增多，消耗的营养物越来越多，需要换液的时间越来越短，当细胞逐渐长满培养瓶壁并形成一单层细胞时，细胞之间相互发生接触和联系，逐渐产生接触抑制作用，培养物生长速度减慢。

培养基的配置：基础培养基500ml+胎牛血清50ml+双抗5ml冻存液的配置：DMSO18ml+胎牛血清2ml。

依次比例酌量配置。

超净工作台常规配置移液器1套（μl、20μl、200μl、1ml），酒精灯1盏，液器1台，斜架1台，酒精喷壶1个，酒精棉球缸1个，污缸1个，常规耗材：培养瓶（50㎝2），定量移液管（5ml、10ml），枪头（1ml、200μl、10μl），培养皿，6/24/48/96孔板，医用脱脂棉球，保种管所需试剂：gibco高糖培养基，胎牛血清，双抗，DMSO，胰酶，苯扎溴氨，75%酒精……实验前准备：所需的各项高压后的耗材放于超净工作台内，用酒精喷壶喷洒实验台面，并关闭工作台打开紫外灯照射30min后开始实验操作。

首次传代前细胞的复苏，首先用一大烧杯盛满37℃的温水放于液氮罐旁边，待细胞株取出后留上端1/3于37℃水面上尽最大速摇动管使其在2min内迅速融化。

若种管顶部含有冻存的细胞液在摇动期间用力甩动使其降于管底后再摇动。

这一过程可在超净工作台外操作。

实验步骤一、原代细胞的培养1.紫外消毒30min后关闭紫外灯，开启超净台正常工作状态，用酒精消毒操作者的双手。

2.将所需的培养基确保瓶身干净后放于工作台面内，点燃酒精灯，将培养基瓶口用酒精棉球擦拭后，再将瓶口对准在酒精灯上消毒2-3次，旋开瓶盖后再次分别消毒瓶口和瓶盖，分别放于酒精灯的两侧。

特别是将培养基瓶放于斜架上，瓶口对准酒精灯，且放在距离酒精灯最近的位置，瓶盖置于酒精灯的另一侧。

3.取1个高压后的新培养瓶，瓶口在酒精灯上消毒2-3次，旋开后分别再次消毒瓶口和瓶盖2-3次分别放于酒精灯两侧，把保种管在超净台外用酒精棉球擦拭下2/3后拿进超净台内在酒精灯上消毒保种管口2-3次放于台面左手边，取1ml移液器快速移动在酒精灯上消毒1-2次，然后再装上枪头吸取保种管内的细胞液，悬空移入培养瓶内。

4.拿出1支高压后的5ml定量移液管，在酒精灯上灼烧尾部后装于电动移液器上，再次放于酒精灯上灼烧整个定量移液管管身2-3次，悬空进入培养基瓶内吸取4ml培养基再悬空移入培养瓶内，将培养瓶瓶口和瓶盖在酒精灯上消毒2-3次后拧紧平放，在瓶身做好实验标记。

细胞培养工作流程一、Vero细胞复苏流程1、准备1、1工作地点检查:检查台面、地面就是否洁净,确认无不相关物品。

1、2设施检查:确认空调、传递窗工作状态完好。

1、3层流罩准备:开启层流罩,观察其运行就是否正常,用消毒剂将台面、墙面、地面、保护帘及层流罩内设备进行清洁消毒。

并运行30分钟后开始生产操作。

1、4操作工具与试剂检查:检查本次操作所用灭菌物品外包装就是否严密,就是否在效期内。

检查本次操作所用溶液/试剂瓶内就是否有异物,瓶表面就是否有裂纹,瓶塞就是否松动,溶液名称、批号、数量、有效期就是否符合要求。

合格后用消毒剂擦拭外表面后拿入层流罩。

复苏、换液用液体:MEM液、新生牛血清、3%谷氨酰胺溶液、庆大霉素、7、5%NaHCO3溶液。

1、5复苏用水准备:(1)融化种子用溶液:按1L/1支种子准备39±1℃含0、1%新洁尔灭溶液。

(2)百级内消毒种子用水:1L/1支种子准备36、5±1℃含0、1%新洁尔灭溶液。

1、6操作人员进入层流罩:穿一层无菌连体服并戴无菌手套,静止5分钟后方可操作。

1、7溶液使用前处理:辅助人员用止血钳夹酒精棉球点燃后消毒瓶塞外表面,旋转1周,操作人员将翻塞翻开,再用点燃的酒精棉球消毒瓶口及瓶塞。

2、配液配方辅助人员将配制所需的液体按顺序打开后放至盐水瓶架上,操作人员按配方加量用吸管依次吸取新生牛血清等溶液至MEM液中,每吸完一种液后辅助人员应立即用无菌翻塞将其盖紧,在其瓶身用记号笔注明用量、日期等。

复苏液及生长液配完后辅助人员立即用无菌翻塞将其盖紧,充分混匀待用。

辅助人员打开混匀后的复苏液,放置盐水瓶架上。

操作人员将培养瓶(T175)盖打开,倾斜或直立放置酒精灯附近,将复苏液用吸管吸取或直接倒入其中(加量:0、3～0、4 ml/cm2),拧紧瓶盖并放在恒温室待用。

3、种子支领依据种子库管理规定进行支领,依据生产指令按数量支领。

本操作规格按复苏1支细胞种子到1个T75 cm2瓶规定各项操作。

细胞体外培养实验流程一、细胞复苏1.准备：紫外照台30min,准备好高压灭菌好的吸管、移液管、离心管、废液缸、培养瓶、培养基含FBS,水浴箱开启到37℃,75%乙醇清洗双手,培养基用前37℃温育20min,酒精擦拭后放入无菌操作台,点燃酒精灯;2.灼烧离心管管口、塞子和滴管,用滴管取5mL培养基加入离心管中;3.戴好防护用具,从液氮中取出冻存管后立即放入37℃水浴箱中,轻轻摇晃冻存管,保证细胞1min内融化;以75%酒精擦拭冻存管外部,移入无菌工作台;4.用吸细胞液的从冻存管中将细胞悬液完全吸出加入到已装有培养基的离心管中,塞子塞离心管,2000rpm,离心4min,弃上清;5.往离心管中加培养基含FBS5mL,用吸细胞悬液的滴管轻轻吹打,使细胞混匀,将离心管中的细胞悬液全部吸出加入到培养瓶中,培养瓶平放,轻轻晃动,使细胞均匀贴壁,标记好细胞名称、日期、培养人,放入37℃,5%的CO2恒温培养箱培养;6.收拾所用物品,75%酒精喷洒消毒;注意：1.离心时转速太高,离心时间过久都易对细胞造成伤害;2.滴管一定要严格分开,不能混用,防止细胞污染;3.DMSO常温下对细胞毒性较大,故冻存细胞复苏后应立即洗涤冷冻保护剂;二、细胞换液1.将培养瓶从CO2培养箱中取出,倒置显微镜下观察细胞生长状态判断生长情况,并确证未发生污染后转入无菌操作台内;2.准备：紫外照台30min,准备好高压灭菌好的吸管、移液管、离心管、废液缸、培养瓶、培养基含FBS,水浴箱开启到37℃,75%乙醇清洗双手,培养基用前37℃温育20min,酒精擦拭后放入无菌操作台,点燃酒精灯;3.酒精灯外焰灼烧培养瓶瓶口、瓶塞和滴管,培养瓶倾斜,吸出旧液,尽量吸净;4.吸取培养基含FBS5mL,加到培养瓶中FBS终浓度为10%;若死细胞较多则可以先用PBS洗一次,再加培养基;5.将培养瓶与瓶盖过火,旋紧瓶塞后回旋半圈,平放回CO2培养箱;6.收拾所用物品,75%酒精喷洒消毒;注意：1.打开和盖紧培养基、培养瓶前后均需旋转灼烧瓶口和瓶盖;2.各滴管一定要严格分开,不能混用;3.将PBS注入到培养瓶中,应将液体打到没有细胞的那一面;4.培养液以没过细胞为宜;5.细胞溶液变黄或死细胞过多时换液;6.倒掉培养瓶中的培养液,瓶口应尽量远离废液缸,以免造成污染三、细胞计数和活力测定一细胞计数细胞数/mL=4大格细胞总数/4×104×稀释倍数1.紫外照台30min,75%酒精棉签清洁盖玻片及计数板,用干纱布或棉签再擦一遍,放好盖玻片;2.用滴管从已经吹打混匀的细胞悬液中吸出少许,滴加在盖玻片边缘,使悬液充满盖玻片和计数板之间,静置3min;3.观察计数：压线的记左不计右,记上不记下,成团细胞只记为1个;先用4×倍镜找出大位置,再用10×镜计数;4.计数完用75%酒精棉签擦洗盖玻片和计数板;二细胞活力测定1. 紫外照台30min,吸取细胞悬液加入试管中;2. 加入%台盼兰染液,染色2～3min;3. 吸取少许悬液涂于载玻片上,加上盖片;4. 镜下取几个任意视野分别计死细胞和活细胞数,计细胞活力;死细胞能被台盼兰染上色,镜下可见深兰色的细胞,活细胞不被染色,镜下呈无色透明状;注意：1.细胞计数时盖玻片下不能有气泡,也不能让悬液流入旁边凹槽中;2.活力测定可以和细胞计数合起来进行,但要考虑到染液对原细胞悬液的加倍稀释作用;四、细胞传代1.配完全培养基：基础培养基:FBS=1:92.取出细胞,显微镜下观察细胞形态和密度,确定细胞生长状况,是否需要传代 ;3.紫外照台30min,75%酒精擦拭双手,将预热后的培养基、PBS、胰酶培养基等用酒精擦拭后移入超净台,将废液缸喷足酒精移入超净台,取酒精棉放入超净台;4.点燃酒精灯,将培养瓶用75%酒精擦拭后移入工作台,将瓶口和瓶盖过火灼烧;5.在确定细胞生长状况良好且没有污染的情况下,用适量PBS清洗细胞表面,并弃去PBS;6.加入1mL %胰酶消化细胞,此时可将细胞置于37℃细胞培养箱内消化;胰酶以铺平培养瓶底部为宜;倒置显微镜下观察,若胞质回缩,细胞之间不再连接成片,表明此时细胞消化适度一般2-5min;立即弃去消化液加入3mL完全培养基终止消化;注意更换吸管7.用吸细胞液的滴管轻柔吹打,保证培养瓶底的每个角落都吹打到,斜坡处不能忽略,把培养瓶中所有细胞悬液用吸细胞液的滴管移入离心管中,再用滴管吹打混匀细胞悬液;8.取一滴细胞悬液进行计数,计算好细胞传代培养时稀释倍数细胞传代密度不低于5×105个/mL;9.传代：先用滴管吹打混匀细胞悬液,按一定比例稀释,标记好细胞名称,传代培养时间,培养员,细胞个数,平放入CO2培养箱继续培养;10.收拾所用物品、用75%酒精喷洒操作台;附：培养细胞若需给动物注射,在消化后用PBS清洗3-5次后收集细胞并计数,用PBS清洗细胞是为防止给动物注射时残留的FBS造成动物炎症;注意：1. 对于难消化的细胞在用胰酶消化前,先用1～2mL 4 ℃PBS冲洗一遍,较易消化的细胞不需要此步骤;2. 一定要防止细胞过消化因过消化,使细胞成团,不均匀,且对细胞伤害很大,影响细胞贴壁和导致生长状态差等;过消化特征：a.在没有加入完全培养基终止消化前就有成团细胞从培养瓶壁上脱落,胰酶里出现很多悬浮物,为掉下来的细胞;b.培养瓶底板上本身为白茫茫细胞贴壁生长,而过消化后细胞脱壁掉下来,则可见培养瓶底板有一片片空隙;出现过消化时立即加入含FBS的培养基终止消化;3. 把试管中细胞悬液转移到培养瓶中时,每次滴管在试管中取液时都要轻柔吹打液体,以防止细胞成团不均,用力吹打和气泡产生对细胞都有伤害,影响在培养瓶中生长;5. 一般细胞生长铺至瓶底约80%,则可传代或用来做实验,否则细胞进入生长平台期进而缺少营养而状态老化,不易用于后续实验;五、细胞冻存1.选对数增生期细胞证明无支原体污染,在冻存前1天换半量或全量培养基;与冷冻细胞应生长良好且存活率高,约为80-90%致密度;2.配制冷冻保存溶液使用前配制：另取一离心管,加入培养基、FBS10%,逐滴加入二甲基亚砜DMSO至20%浓度,即制成双倍的冻存液,置于室温下待用; 3.依细胞传代培养的操作,收集细胞于离心管中,取少量细胞悬液计数细胞浓度及冻前存活率,一般细胞冻存浓度为1-5×106个/mL;4.离心管管口和管塞过火灼烧,塞好后,2000rpm离心4min,去上清,加适量完全培养基,混匀;5.取与细胞悬液等量的冻存液,缓慢逐滴加入细胞悬液,并晃动试管,制成细胞冻存悬液DMSO最后浓度为5～10％,使细胞浓度为1～5×106cells/mL,混合均匀,分装于已标示完全之冷冻保存管中,1～2mL/vial,并取少量细胞悬浮液作污染检测;严密封口后,注明细胞名称、代数、日期;6.4℃静置10min,-20℃静置30min,-80℃过夜放置,液氮槽冷冻保存;。