猪传染性胸膜肺炎的诊断与防控
王华听1，
（1.上海恒丰强动物药业有限公司，上海松江201600；）
【摘要】猪传染性胸膜肺炎是由胸膜肺炎放线杆菌引起的一种猪呼吸道传染病。因本病血清型较多，各血清型之间缺乏很好的交叉免疫保护力[3]，故其诊断与防治都较为困难，近几年给养猪业造成了严重的经济损失。为此，本文重点在于阐述猪传染性胸膜肺炎的诊断和综合防治，进而为该病的防控提供参考和帮助。
【关键词】猪传染性胸膜肺炎；诊断；综合防治
猪传染性胸膜肺炎（Porcine contagious pleuropneumonia，PCP）又称猪胸膜肺炎，是由猪胸膜肺炎放线杆菌（Actinobacillus pleuropneumoniae，APP）引起猪呼吸系统的一种严重的接触性传染病。本病在临床上以急性出血性纤维性胸膜肺炎和慢性纤维性坏死性胸膜肺炎为特征[1]。APP目前鉴定的有15种血清型，在我国流行的优势血清型主要是血清型1型、2型、3型和7型。
猪传染性胸膜肺炎，因病菌血清型众多，各血清型之间很少有交叉免疫保护作用，故疫苗的应用也受到了一定的限制。抗生素使用存在着诊断不确切和细菌的耐药性问题，进而防治成本增大。因此，快速的诊断技术、疫苗和药物的合理应用对于预防和控制该病具有十分重要的意义。
1.流行病学特点
1.1易感性：各种年龄的猪均易感，通常以6周～6月龄的猪较为多发，病重病例多发生于育肥晚期，死亡率约20%～100%不等，这可能与饲养管理和气候条件有关。
1.2传染源与传播途径：病猪和带菌猪是本病的主要传染源，猪与猪之间的密切接触和排泄污染物是本病传播的主要途径。病菌主要存在于患猪的支气管、肺脏和鼻汁中，从鼻腔排出后形成飞沫，经空气传播，拥挤和通风不良可加速传播 [1]。
1.3本病具有明显的季节性，多在4～5月和9～11月发生。饲养环境突然改变、密集饲养、通风不良、气候突变以及长途运输等应激因素可引起本病的发生，因此又称为“运输病”。此外，临床上多与猪地方性肺炎、猪副嗜血杆菌病等混合感染，进而可加重病情。
2临床诊断：本病潜伏期1-2天，临床上可见最急性型、急性型、亚急性或慢性型。
2.1 最急性型：病猪突然发病，未见任何临床症状就突然死亡，或者可以看到体温升高达42 ℃ 以上，有轻微的腹泻和呕吐症状，死前口鼻流出带泡沫血样分泌物。
2.2急性型：精神不振，食欲减退，体温高达 41.5 ℃ 以上，腹泻；喘气、咳嗽、呼吸困难常呈犬坐犬卧姿势，张口伸舌，从口鼻流出带泡沫的血样分泌物；个别猪的口、鼻、耳、四肢等皮肤呈暗紫色；心跳加快，一般于48小时左右因心力衰竭而死亡。
2.3 亚急性和慢性型：
病猪体温略高或正常，但呼吸道症状明显，不断咳嗽、喘气，尤其是受到外界刺激或驱赶后会表现明显的腹式呼吸；食欲减退，增重减慢，饲料转化率降低。
2.4病理变化
死亡的猪只多表现为双侧性纤维素性胸膜肺炎，以肺的心叶、尖叶和部分隔叶见多见。病灶区呈暗紫色，质度较硬，切面发脆，常与胸膜粘连，肺间质内积有许多血色胶样液体；
急性病例可见整个肺脏呈现充血、出血、肿大，肺间质增宽，气管、支气管内充满泡沫样血色渗出物；
亚急性病例整个肺脏的色泽与正常肺脏相似，但有时肿大或呈斑驳状；慢性病例主要表现肺脏的纤维素性坏死病变，一般不肿大，多见肺脏的囊肿或与胸腔粘连。
3鉴别诊断：
本病主要与猪支原体性肺炎、肺炎性巴氏杆菌病、猪副嗜血杆菌病以及病毒性呼吸道疾病相区别：
3.1 支原体性肺炎一般体温不升高，食欲基本正常，多表现气喘与咳嗽，剖见主要表现为肺部两侧对称性肉样变或胰变，很少见死亡。
3.2 多杀性巴氏杆菌病肺部病变多见前下部，胸膜肺炎的肺部病变多见后上部且有局灶性的纤维素性胸膜炎。
3.3 猪副嗜血杆菌病的病变为多系统性，除了胸腔组织脏器的病变外，腹腔、脑膜以及关节都有不同程度的病变。
3.4 病毒性呼吸道疾病，如蓝耳病、伪狂犬等均有母猪流产、神经症状等临床表现，具体的诊断需要借鉴各自的流行病学以及血清学检测。
4. 实验室诊断
4.1 病原学诊断技术
病原分离鉴定是细菌病原微生物诊断最经典方法。从病猪的鼻腔、气管/支气管、扁桃体、肺部组织及分泌物中采取新鲜病料，按照常规革兰氏染色法染色后用光学显微镜观察，胸膜肺炎放线杆菌为革兰氏阴性菌。利用加有抗生素的选择性培养基进行初代分离培养，特别是混合感染时。初次分离可用10%绵羊血液琼脂平板（添加烟酰胺腺嘌呤二核苷酸NAD），与表皮葡萄球菌交叉划线，在10%CO2温箱中过夜培养后，可以看到β-溶血的小菌落在划线周边生长。然后挑选可疑菌落纯培养后作生化鉴定，主要包括CAMP实验、脲酶活性及甘露糖发酵等。胸膜肺炎放线杆菌CAMP试验、脲酶试验及甘露糖发酵试验等为阳性。
4.2 ApxIV-PCR病原诊断
目前已经鉴定APP的外毒素有ApxI、ApxII、ApxIII和ApxIV四种，其中前三种具有溶血和/或细胞毒性，目前尚未发现ApxIV具有明显的毒力。每种血清型的菌株只分泌四种毒素中的2-3中[2,3]。
所有15种血清型的APP 菌株均能在感染动物体内分泌ApxIV，但在体外培养条件下
不分泌，而且ApxIV是其他种的放线杆菌所不具有的Apx毒素，因此基于ApxIV的诊断方法可用于猪传染性胸膜肺炎的特异性诊断。陈焕春、周锐等用ApxIV-PCR诊断技术检测了139份临床病料（91份肺脏、16份扁桃体和32份鼻拭子），并与细菌分离的结果相比较，符合率为99%[2 ]。
4.3 血清学诊断技术
现在用于APP实验室诊断的血清学技术比较多，比如补体结合试验（CFT）、凝集试验（AT）、间接血凝试验（IHA）、酶联免疫吸附试验（ELISA）、乳胶凝集实验（LAT）、免疫扩散试验（IT）、环状沉淀试验（RPT）以及间接荧光体试验（IFA）等，其中最实用的是间接血凝试验（IHA）和酶联免疫吸附试验（ELISA），现在简单介绍如下：
4.3.1 间接血凝试验（IHA）
Nielson在1985年报道IHA能将APP血清型4和7分开，其他的许多检测方法都不能将这两种血清型分开。国内逮忠新等[4]报道，经戊二醛鞣酸化处理的绵羊红细胞用胸膜肺炎放线杆菌抗原致敏，以IHA检测猪传染性胸膜肺炎病猪血清抗体，对人工感染14天的猪血清阳性
