放线菌检测标准版本

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微生物总数检测方法(放线菌)
一、检测用培养基配方与培养条件
1.培养基:高氏1号培养基
配方:可溶性淀粉 2g ,KNO3 0.1g ,K2HPO4 0.05g ,MgSO4• 7H2O 0.05g ,NaCl 0.05g ,FeSO4• 7H2O 0.001g (母液),琼脂 2g ,自来水 100mL 。

先把淀粉放在烧杯里,用5毫升水调成糊状后,倒入95毫升水,搅匀后加入其他药品,使它溶解。

在烧杯外做好记号,加热到煮沸时加入琼脂,不停搅拌,待琼脂完全溶解后,补足失水。

调整pH值到~,分装后灭菌,备用。

2. 培养条件:温度:27℃-30℃;时间:36--48小时。

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二、检测与计数方法
1. 系列稀释
称取适量的样品,加入带玻璃珠的三角瓶中,加入100mL的无菌水(无菌水中事先加入了分散剂1—2滴,分散剂可以是吐温,OP—10,用来分散菌团),用玻璃棒搅拌使之
溶解吸水均匀后上旋转式摇床200 r/min充分振荡40—60 min,,即成母液菌悬液(基础液)。

2. 用1mL无菌移液管分别吸取上述母液菌悬液加入9 mL无菌水中,按1:10进行系列稀释,分别得到1:1×101,1:1×102,1:1×103,1:1×104……1:1×k稀释的菌悬液(每个
稀释度应更换无菌移液管)。

3. 加样及培养
取1个适宜的稀释度,用移液枪吸取菌悬液 mL,加至预先制备好的固体培养基平板上,用无菌玻璃刮刀将菌悬液均匀地涂于琼脂表面。

此稀释度重复3次,同时以空白作对照,于适宜的条件下培养。

4. 菌落识别
根据所检测菌种的技术资料,每个稀释度取不同类型的代表菌落通过涂片、染色、镜检等技术手段确认有效菌。

当空白对照培养皿出现菌落数时,检测结果无效,应重做。

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5. 菌落计数
以出现20—150个菌落数的稀释度的平板为计数标准,分别统计有效活菌数目和杂菌数目。

有效菌平均菌落数在20—150之间时,则以该菌落数计算。

有效活菌数按式(1)计算,同时计算杂菌数:
nm = x kv1/(m0v2) ×10-8 或 nv = x kv1/(v0v2) ×10-8 (1)
式中:

nm —质量有效活菌数,亿/g
nv —体积有效活菌数,亿/mL
x—有效菌落平均数,个
k —稀释倍数
v1 —基础液体积, mL
v2 —菌悬液加入量, mL
v0 —样品量,mL
m0 —样品量, g
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重点需要注意的部分在菌悬液的制备及震荡过程上,因为固态发酵的的产品大部分为聚集状态不容易分散开来,这点与液态发酵产品不同。

所以:
①悬液中要加分散剂分散菌团;
②震荡时间也要较液态发酵产品时间长,使用旋转式摇床控制在180——
200r/min 。