抗旱水稻种子转基因成分检测技术研究
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水稻转基因育种的研究进展与应用现状刘志宏1 田 媛2 陈红娜1 周志豪1 郑 洁2 杨晓怀1(1深圳市农业科技促进中心,广东深圳518000;2暨南大学食品科学与工程系,广东广州510632)摘要:随着生物技术发展的不断深入,我国水稻种业的发展也面临着全新的机遇和挑战。
目前,改善水稻品种质量的主要方法有分子标记技术、基因编辑技术和转基因技术。
其中,转基因水稻是利用生物技术手段将外源基因转入到目标水稻的基因组中,通过外源基因的表达,获得具有抗病、抗虫、抗除草剂等优良性状的水稻品种。
近年来,国内外在采用转基因技术进行水稻育种,提升水稻产量、改善水稻品质方面具有较多的研究进展。
在阐述转基因技术工作原理的基础上,概述国内外利用转基因技术在优质水稻育种方面的研究进展,进一步探究转基因技术在我国水稻育种领域的发展前景。
关键词:转基因育种;水稻;病虫害;除草剂Research Progress and Application Status of Rice Transgenic Breeding LIU Zhihong1,TIAN Yuan2,CHEN Hongna1,ZHOU Zhihao1,ZHENG Jie2,YANG Xiaohuai1(1Shenzhen Agricultural Technology Promotion Center,Shenzhen 518000,Guangdong;2Department of Food Science and Engineering,Jinan University,Guangzhou 510632)水稻(Oryza sativa L.)作为世界上重要的粮食作物之一,为世界超过1/3的人口提供了主粮,全球种植面积约1.4亿hm2[1]。
“十二五”以来,我国水稻产量连续稳定在2亿t以上[2]。
水稻作为我国的主要粮食作物,在我国粮食生产领域占据着十分重要的地位,水稻品种改良仍是保障种业持续发展和国家粮食安全的重点。
水稻抗病机制中的基因功能研究水稻作为世界上最重要的粮食作物之一,在全球粮食安全中发挥着至关重要的作用。
然而,与各种病原微生物的竞争给水稻生产带来了严重的挑战。
由此产生的病害问题导致了严重的粮食损失,给农民带来了严重的经济损失,在全球粮食生产中也是一个不容忽视的因素。
因此,研究水稻的抗病机制,特别是基因功能研究,对于解决这个挑战至关重要。
此外,如何提高水稻的免疫力也是一个重要的命题。
目前,我们已经发现了一些参与水稻抗病和免疫相关的基因。
通过研究这些基因的功能和作用机制,我们可以更好地了解水稻的免疫机制,为提高水稻的病害抗性和优化水稻品种提供有力的科学依据。
水稻的基因功能研究针对水稻的基因功能研究是水稻基因组研究的重要组成部分。
通过研究水稻中不同基因的功能,我们可以更好地了解基因的作用和调控机制,揭示抗病免疫的相关性,为研发基于基因编辑技术的优化品种提供理论支持。
研究显示,水稻中有一些关键基因参与到免疫的防御机制中。
例如Ca2+和NADPH氧化酶(NOX)通路,在水稻面对抗病和免疫挑战时发挥了重要的作用。
研究人员通过基因编辑和测序技术,确定了这些基因的作用机制和表达规律。
此外,水稻中Xa21基因也是抗病性的关键基因。
该基因编码膜结合蛋白,参与到水稻的抗细菌病免疫中。
研究表明,Xa21基因可以激活水稻的免疫系统,并保护水稻免受细菌病害的侵害。
基于Xa21基因,研究人员通过基因编辑技术,研发了高度抗病的水稻品种,使得水稻产量显著提高。
水稻免疫机制研究水稻作为一种重要的粮食作物,在不断地与各种病原微生物进行斗争,从而产生了一系列的免疫机制。
因此,研究水稻的免疫机制也至关重要。
水稻免疫机制包括类型Ⅰ和类型Ⅱ免疫反应。
类型Ⅰ免疫反应是通过基因表达调控,活化急性免疫反应,从而产生抗原特异性T细胞,从而识别和杀死入侵微生物。
类型Ⅱ免疫反应是通过免疫细胞的功能活化,促进针对外来微生物产生的抗体生产,从而消灭病原体。
转基因水稻Bt汕优63外源插入结构验证和定量检测方法建立一、背景介绍Bt汕优63是一种经过基因工程技术改造的转基因水稻品种,通过引入Bt基因,使其具备抗虫特性,有效减少农药使用,保障粮食安全。
为确保Bt汕优63中外源基因插入结构的稳定性和表达量,本研究旨在建立一套针对其外源插入结构的验证和定量检测方法。
二、外源插入结构验证方法1. DNA提取从Bt汕优63植株中提取基因组DNA,作为后续实验的模板。
2. PCR扩增设计特异性引物,针对Bt基因及其侧翼序列进行PCR扩增。
通过琼脂糖凝胶电泳检测扩增产物,验证Bt基因是否成功插入水稻基因组。
3. 序列分析将PCR扩增产物进行测序,与预期序列进行比对,确认插入位点和序列的正确性。
三、定量检测方法建立1. 实时荧光定量PCR(qPCR)以Bt基因为目标,设计特异性引物和探针,建立qPCR检测体系。
通过标准曲线法对Bt基因在水稻基因组中的表达量进行定量分析。
2. qPCR实验步骤(1)制备cDNA:以提取的RNA为模板,反转录合成cDNA。
(2)配制qPCR反应体系:包括cDNA模板、引物、探针、dNTPs、Taq酶等。
(3)设置qPCR反应程序:包括预变性、变性、退火、延伸等步骤。
(4)数据分析:采用软件分析Ct值,根据标准曲线计算Bt基因的相对表达量。
四、方法优化与验证1. 优化实验条件:对qPCR反应体系中的引物浓度、探针浓度、退火温度等进行优化,确保检测体系的灵敏度和特异性。
2. 重复性实验:进行多次独立实验,验证检测方法的重复性。
3. 线性范围验证:通过制备不同浓度的标准品,构建标准曲线,验证检测方法的线性范围。
本研究成功建立了Bt汕优63外源插入结构的验证和定量检测方法,为后续转基因水稻的监管、研究和应用提供了有力的技术支持。
通过这些方法,可以确保Bt汕优63中外源基因的稳定性和表达量,为我国转基因作物的发展和安全提供保障。
六、实验操作注意事项1. DNA提取过程中的注意事项确保实验过程中使用的器械和容器无菌,避免DNA污染。
作物学报 ACTA AGRONOMICA SINICA 2018, 44(1): 24 31/ISSN 0496-3490; CN 11-1809/S; CODEN TSHPA9E-mail: xbzw@本研究由国家自然科学基金项目(31171466, 31570250)和国家重点基础研究发展计划(2012CB114306)资助。
This study was supported by the National Natural Science Foundation of China (31171466) and the National Basic Research Program of China (2012CB114306).*通信作者(Corresponding author): 朱国辉, E-mail: ghzhu@第一作者联系方式: E-mail: 2214553605@Received(收稿日期): 2016-11-30; Accepted(接受日期): 2017-09-10; Published online(网络出版日期): 2017-10-27. URL: /kcms/detail/11.1809.S.20171027.1757.020.htmlDOI: 10.3724/SP.J.1006.2018.00024水稻ABA 生物合成基因OsNCED3响应干旱胁迫徐学中 汪 婷 万 旺 李思慧 朱国辉*华南农业大学生命科学学院, 广东广州 510642摘 要: 9-顺-环氧类胡萝卜素双加氧酶(NCED)是植物内源脱落酸(ABA)生物合成的限速酶, 由NCED 基因家族编码, 水稻中响应干旱胁迫并以此调节ABA 水平的OsNCED 基因尚未见报道。
本研究发现在水稻已报道的5个OsNCED 基因中, OsNCED3的表达受干旱胁迫诱导, 复水处理后其表达快速下调, 其表达模式与此过程中内源ABA 含量变化趋势一致。
利用转基因技术改良水稻抗性和品质的研究的开题报告
题目:利用转基因技术改良水稻抗性和品质的研究
研究背景和意义:
水稻是我们国家的主要粮食作物之一,也是世界范围内最为重要的粮食作物之一。
然而,水稻产量与品质方面仍然存在一些问题,例如长时间的病虫害侵袭和过度使用农药导致的农产品质量下降等。
因此,通过转基因技术来提高水稻的抵抗力和品质已成为当前水稻研究的一个重要领域。
研究内容:
本研究旨在利用转基因技术改良水稻的抗性和品质,包括以下方面:
1. 构建抗病虫害的转基因水稻。
通过转基因技术,将一些与病虫害相关的基因转移到水稻中,以提高水稻的抗病虫害能力。
2. 改进水稻的逆境适应性。
通过转基因技术,将一些逆境适应相关的基因引入到水稻中,以提高水稻的抗逆能力。
3. 提高水稻品质。
通过转基因技术,将一些水稻品质相关的基因引入到水稻中,以提高水稻的口感、色泽、香味等品质指标。
研究方法:
1. 通过PCR扩增目标基因,在原核系统中进行克隆并纯化。
2. 将目标基因构建入适当载体中,通过农杆菌介导转化法将其转化入水稻中。
3. 对转化后的植株进行PCR检测和基因表达水平测试。
4. 对转化后的水稻进行田间试验,评价其抗性和品质等指标变化。
预期成果:
1. 通过转基因技术,成功构建抗病虫害、逆境适应性和品质优良的水稻。
2. 通过田间试验,验证转基因水稻的抗性和品质变化。
3. 为今后水稻品种选育和改良提供参考和借鉴。
一、实验目的本实验旨在通过基因工程技术,将具有特定功能的基因导入水稻中,培育出具有抗病、抗虫、抗逆等优良性状的转基因水稻,为我国水稻育种提供新的途径。
二、实验原理转基因技术是指将外源基因导入目标生物体基因组中,使目标生物体获得新的性状或功能。
本实验采用农杆菌介导法将目的基因导入水稻中,通过基因重组,使水稻获得抗病、抗虫、抗逆等优良性状。
三、实验材料1. 水稻品种:Oryza sativa L.(籼稻)2. 抗病基因:Xa213. 抗虫基因:Bt蛋白基因4. 抗逆基因:海藻糖合成酶基因5. 农杆菌:Agrobacterium tumefaciens EHA1056. 实验试剂:限制酶、DNA连接酶、质粒、抗生素等四、实验方法1. 目的基因的克隆与构建(1)从基因库中获取抗病基因Xa21、抗虫基因Bt蛋白基因和抗逆基因海藻糖合成酶基因的DNA序列。
(2)利用PCR技术扩增目的基因。
(3)将扩增的目的基因与载体质粒连接,构建重组质粒。
2. 农杆菌转化(1)将重组质粒转化农杆菌EHA105。
(2)将转化后的农杆菌接种于含有抗生素的培养基中,筛选阳性克隆。
3. 转化水稻(1)将阳性农杆菌接种于含有抗生素的培养基中,培养至对数生长期。
(2)将农杆菌与水稻叶片接触,进行转化。
4. 筛选转基因植株(1)将转化后的水稻苗移栽至田间,进行抗性鉴定。
(2)根据抗性表现,筛选出转基因植株。
5. 分子鉴定(1)提取转基因植株的DNA。
(2)利用PCR技术检测目的基因是否整合到水稻基因组中。
五、实验结果1. 成功构建了含有抗病基因Xa21、抗虫基因Bt蛋白基因和抗逆基因海藻糖合成酶基因的重组质粒。
2. 转化后的农杆菌能够将目的基因导入水稻中。
3. 通过抗性鉴定,筛选出具有抗病、抗虫、抗逆等优良性状的转基因水稻。
4. 分子鉴定结果显示,目的基因已整合到水稻基因组中。
六、实验结论本实验成功培育出具有抗病、抗虫、抗逆等优良性状的转基因水稻,为我国水稻育种提供了新的途径。
转基因水稻抗旱性的筛选与观察
张舜;廖子荣;黄东益
【期刊名称】《黑龙江农业科学》
【年(卷),期】2008(000)006
【摘要】为了研究转NCED基因水稻的抗旱性,对转基因T1代和对照种子进行PEG处理,观测发芽率;发现转NCED基因水稻的发芽率比对照的高.选其中发芽率较高的NCED3-6-1和NCED3-7-6种子种植并进行干旱胁迫,测定转基因水稻NCED3-6-1和NCED3-7-6的部分农艺性状,结果表明,转基因水稻NCED3-6-1和NCED3-7-6的抗旱性比对照强.
【总页数】3页(P5-6,9)
【作者】张舜;廖子荣;黄东益
【作者单位】海南大学农学院,儋州,571737;海南大学农学院,儋州,571737;海南大学农学院,儋州,571737
【正文语种】中文
【中图分类】S511
【相关文献】
1.干旱胁迫对分蘖期转基因水稻抗旱性生理生化指标的影响 [J], 尉荣蓉;隋亚珍;许萌萌;刘杨;赵昕
2.广西栽培稻种质资源抗旱性指标筛选与抗旱性分析 [J], 夏秀忠;曾宇;李丹婷;农保选;刘开强;陈仁天;邓国富
3.油菜抗旱性及鉴定方法与指标Ⅲ.油菜苗期抗旱性及鉴定指标筛选 [J], 王道杰;
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水稻抗旱性鉴定方法及鉴定指标的研究进展2009/6/9中国种业近年来,在大范围缺水的情况下,我国每年用水总量为5000亿m3,农业用水占80%,而水稻又是耗水的第一大户,每年水稻用水量占农业用水量的65%以上,因此,节水农业生产责无旁贷,水稻抗旱节水更具重大意义。
有效利用水资源已成为21世纪最重要的问题之一。
当前水稻节水除采用节水灌溉技术外,筛选和应用抗旱品种应是水稻节水栽培的重要措施之一。
因此,建立水稻抗旱性鉴定指标体系,对现有生产上表现较好的丰产品种进行抗旱性鉴定,进而在生产上推广应用,将产生巨大的经济、社会和生态效益。
近年来,国内外农业科技工作者对水稻旱种和抗旱性作了一系列研究,取得了一定成就,本文主要就水稻抗旱性鉴定的研究进展作一简要综述。
1 水稻抗旱性鉴定方法要鉴定作物的抗旱性,首先要给作物创造一个适当的干旱胁迫环境,然后选择恰当的指标来区分作物间的抗旱性差异。
近年来,水稻抗旱性研究方面取得了一系列进展,在水稻抗旱性状的筛选和抗旱材料的鉴定方面也有重大突破,形成了一套行之有效的鉴定方法,主要有直接鉴定和间接鉴定。
1.1 直接鉴定主要有田间直接鉴定法、干旱棚鉴定法、人工气候室鉴定法、土壤干旱胁迫鉴定法等方法。
田间直接鉴定法即自然环境鉴定法,就是将供试品种在不同地区的旱地上栽种,以自然降水造成干旱胁迫,或在自然环境下灌水调控土壤水分,形成不同程度的干旱胁迫环境,就水稻所表现的形态或产量特征来评价其抗旱性,直接按照作物产量或生长状况来评价品种的抗旱性。
此方法简便易行,无特殊设备要求,既真实地反映了作物在不同干旱地区的生长状况,又有产量指标,结果很有说服力,是目前筛选抗旱性品种的主要方式。
它的缺点是受自然环境制约程度大,特别是年际间降水量变化幅度大,每年的鉴定结果很难重复,需多年鉴定才能评价出材料的抗旱性。
干旱棚或人工气候室法是在干旱棚或在能控制温度、湿度和光照的人工气候室内,研究不同生育期内水分胁迫对生长发育、生理生化过程或产量的影响来鉴定作物抗旱性。
水稻转基因实验技术手册遗传工程实验室Genetic Engineering Laboratory Discipline of Crop Genetics and BreedingFujian agricultural and Forestry University目录第一章DNA提取与纯化第二章引物设计与PCR第三章感受态细胞制备与转化(E. coli & 农杆菌)第四章电泳技术、琼脂糖凝胶DNA回收第五章质粒回收第六章RT-PCR第七章构建载体互补实验过量表达GFPGUSRNAi第八章水稻组织培养第九章原位杂交第十章石蜡切片技术第十一章扫描电子显微镜附录:第一章SDS-DNA微量提取法1、取新鲜叶片5cm 左右于1.5ml 离心管中,加入液氮研磨(电钻)。
2、加入700μl 预热至65℃的SDS 抽提液,迅速搅匀后置于65℃水浴30min 。
3、加入200μl 5M KAc ,颠倒混匀,-20℃冰浴30min 后,10,000rpm 离心5min ,将上清夜倒入另一新的1.5ml 离心管中。
注:若溶液中仍有植物组织,可进行二次离心。
4、加入等体积的异丙醇(700 μl ),-20℃冰浴30min ,11,000rpm 离心5min 。
5、弃上清,加入70%乙醇清洗液晾干。
6、将风干的DNA 溶于100 μl TE 溶液中,55℃水浴溶解1h ,再室温放置1d 。
实验准备:溶液配制:SDS-抽提液:1M Tris-HCl :100ml 5M NaCl :100ml 0.5M EDTA :100ml 10% SDS :125mlTE (pH8.0):1M Tris-HCl (pH8.0):5ml 0.5M EDTA (pH8.0):1ml第二章 PCR定容至1000ml定容至500mlPrimeSTAR HS DNA Polymerase with GC Buffer & TaKaRa LA Taq with GC BufferPCR体系和程序第四章琼脂糖凝胶DNA回收*第一次使用前请先在15ml漂洗液WB中加入60ml无水乙醇1、在长波紫外下,用干净刀片将所需回收的DNA条带切下,尽力切除不含DNA的凝胶,得到凝胶体积越小越好。
一、实验目的本实验旨在探究农杆菌介导法在水稻遗传转化中的应用效果,通过构建基因表达载体,将目的基因导入水稻细胞中,从而实现基因功能的验证和水稻性状的改良。
二、实验材料1. 实验材料:水稻品种为南桂占,农杆菌菌株为Agrobacterium tumefaciens EHA105,目的基因(GFP基因)载体为pBI121。
2. 试剂:农杆菌转化培养基、抗生素、潮霉素、DNA提取试剂盒、PCR试剂盒等。
3. 仪器:PCR仪、电泳仪、凝胶成像系统、显微镜等。
三、实验方法1. 目的基因的克隆:将GFP基因从质粒载体pBI121中切出,插入到农杆菌载体pBin19中,构建重组载体pBin19-GFP。
2. 农杆菌的活化:将农杆菌菌株EHA105接种于YEB培养基中,在28℃条件下培养过夜。
3. 农杆菌转化:将活化后的农杆菌与重组载体pBin19-GFP混合,用涂布法将混合液涂布于农杆菌转化培养基上,28℃条件下培养2-3天。
4. 水稻叶片的消毒:将水稻叶片用70%酒精浸泡30秒,再用无菌水冲洗3次,然后用无菌滤纸吸干水分。
5. 农杆菌侵染:将农杆菌转化菌液滴加到水稻叶片上,用无菌滤纸轻轻擦拭叶片,使农杆菌均匀分布在叶片表面。
6. 愈伤组织诱导:将侵染后的水稻叶片放入农杆菌转化培养基中,28℃条件下培养5-7天,诱导愈伤组织形成。
7. 抗性筛选:将愈伤组织转入含有潮霉素的筛选培养基中,28℃条件下培养3-4周,筛选出转化成功的愈伤组织。
8. 转化植株再生:将筛选出的转化愈伤组织转入再生培养基中,28℃条件下培养2-3周,诱导再生植株。
9. 抗性鉴定:将再生植株种植于田间,对植株进行潮霉素筛选,筛选出抗潮霉素植株。
10. PCR检测:对筛选出的抗潮霉素植株进行PCR检测,验证GFP基因是否成功导入水稻基因组。
四、实验结果1. 目的基因的克隆:成功构建了重组载体pBin19-GFP。
2. 农杆菌转化:农杆菌转化效率较高,大部分叶片出现愈伤组织。
⽔稻转基因实验操作[2]⽔稻转基因实验操作(谢越、赵建宁、艾鹏慧、孙淑斌整理)(2006.7)⼀、⽔稻(⽇本晴)愈伤组织的诱导(以⽔稻成熟胚为试材诱导愈伤组织)1.消毒:取⽔稻成熟种⼦,⼈⼯或者机械脱壳,挑选饱满光洁⽆菌斑的种⼦,按以下步骤消毒:1)将种⼦放⼊100ml⽆菌烧杯中,倒⼊70%酒精消毒1分钟;2)倒去酒精,加⼊100ml 30%次氯酸钠(NaClO)溶液(5.2%次氯酸钠),浸泡30分钟;3) 倒去次氯酸钠溶液,⽤⽆菌蒸馏⽔清洗种⼦4-5遍,最后⼀遍浸泡30分钟。
2.诱导与继代培养:(以下步骤需⽆菌操作)1)种⼦放在⽆菌滤纸上吸⼲,置成熟胚于诱导培养基中,每⽫12-14颗;2)操作完毕⽤封⼝膜(Micropore TM Surgical Tape)封好培养⽫,在30℃光照培养箱,培养4周;3)在超净⼯作台上打开培养⽫,⽤镊⼦挑取⾃然散落的胚性愈伤组织(淡黄⾊,致密呈球状),在30℃光照培养箱,继代培养1-2周。
(没有脱落的可在原培养基上继续培养7天,次数多了效果会减弱)⼆、农杆菌(⼯程菌)培养挑取农杆菌单克隆或吸取所保藏的农杆菌(EHA105)菌液100µl于4ml YEP(含50mg/LSpec和50mg/L Str)培养液中,28℃,250rpm振荡培养20-36h⾄菌液OD600为0.8-1.0。
三、感菌与共培养1)取培养好的⼯程菌液1ml于1.5ml离⼼管中,4℃,5000rmp,离⼼1min,去上清。
⽤含200µmol/LAs的30ml AAM感菌液制成悬浮液。
2)将长到⼀定⼤⼩的⽔稻愈伤组织挑出,放⼊农杆菌悬浮液侵染5分钟(愈伤量没过50ml离⼼管锥形部位即可)。
3)将愈伤组织取出,置于⽆菌的滤纸上沥⼲30-40分钟;4)将愈伤组织置于共培养基上(共培养基上⾯垫上⼀层9cm⽆菌滤纸)。
28℃(组培室)暗培养2.5天。
四、愈伤组织的抗⽣素筛选将愈伤组织取出,⽤⽆菌⽔清洗6次,其间需不停的振荡(组培室震荡机最⼤速率)。
水稻抗逆性基因筛选及鉴定水稻是世界上最重要的粮食作物之一,也是许多人的日常主食。
然而,由于各种自然和人为因素的影响,水稻的产量和质量经常受到影响。
因此,对水稻的抗逆性进行研究至关重要,这有助于开发出更为强大的水稻品种,保证粮食安全。
现今,基因技术的不断发展,许多研究人员正在努力筛选和鉴定水稻中的抗逆性基因。
本文将简要介绍这个过程以及它如何有助于改善水稻的质量和产量。
筛选基因筛选基因是一个漫长而复杂的过程,它通常包括以下几个步骤。
1. 确定关键基因:在筛选水稻的抗逆性基因时,研究人员首先需要确定哪些基因对水稻的抗逆性起关键作用。
为了做到这一点,他们通常会对不同变种的水稻进行各种测试,例如在不同气候条件下的生长、暴露于不同环境压力下时的生长等。
这项工作需要计算机模型等不断发展的技术支持。
2. 分离基因:一旦关键基因确定下来,研究人员需要找出如何分离出这些基因。
这个过程规模较大。
计算机软件会生成成千上万条候选基因序列,然后需要通过一系列基因检测技术来缩小范围并确定最终的基因。
3. 定位基因:分离出所需基因后,需要对其进行定位。
定位基因是指将特定基因的DNA序列与已知数据库中的其他DNA序列进行比对,以确定它所在的位置。
这通常需要进行复杂的分析和计算。
4. 鉴定基因:鉴定基因是确定所找到的基因真正与水稻的抗逆性有关联的过程。
这通常需要进行实验室测试,例如将基因转移到其他植物种类中,以评估它们是否能增强这些植物的抗性。
应用基因一旦确定了具有抗逆性的基因,它们就可以被用于开发出更加强大的水稻品种,以及用于改善现有品种的性能。
例如,研究人员可以利用转基因技术将这些基因引入水稻品种中,从而增强它们的抗逆性。
另外,他们还可以通过交叉育种和后代选择等传统育种方法来选择具有良好基因组合的水稻品种,以获得更优秀的抗逆性。
除此之外,基因技术的发展也为培育出适应不同环境条件的水稻品种提供了更多可能性。
例如,在干旱地区,可以选择更快速和有效地利用水分的水稻品种。
转基因技术与水稻生产分析报告摘要本报告旨在分析转基因技术在水稻生产中的应用和影响。
首先,介绍了转基因技术的概念和原理。
其次,分析了转基因水稻的优势和挑战。
最后,探讨了转基因水稻对农业生产和环境的影响,并提出合理建议。
1. 转基因技术的概念和原理转基因技术,即基因工程技术,是一种通过人为方式将外源基因导入目标生物体的方法。
其原理是通过DNA分子的剪切和重组,将具有特定功能的基因导入到目标生物体的染色体中。
转基因技术可以用于改良作物的品质、耐逆性和抗病性等方面。
2. 转基因水稻的优势和挑战2.1 优势转基因水稻具有以下优势: - 高产性:转基因水稻通过改良植物的生长特性,可以提高产量。
- 抗性:转基因水稻可以引入抗虫、抗草害和抗病性等特征,提高作物对环境和病原体的抵抗能力。
- 耐逆性:转基因水稻可以增加作物对干旱、盐碱等环境逆境的适应能力。
2.2 挑战转基因水稻也面临一些挑战: - 安全性问题:转基因水稻可能对生物多样性和生态系统产生不可预见的影响。
- 遗传污染风险:转基因水稻的基因可能会通过杂交途径传播到非转基因水稻品种中,导致遗传污染。
- 道德和伦理问题:转基因技术在公众中存在争议,涉及到食品安全和道德等方面的考量。
3. 转基因水稻对农业生产和环境的影响3.1 农业生产影响转基因水稻对农业生产有以下影响: - 提高产量:转基因水稻通过提高作物的耐逆性和抗病性,可以增加农作物的产量。
- 减少农药使用量:转基因水稻的抗虫性可以减少农药的使用,降低农业生产成本。
- 改善食物品质:转基因水稻可以增加食用作物的营养价值和品质。
3.2 环境影响转基因水稻对环境的影响主要包括: - 遗传污染:转基因水稻的基因可能逃逸到野外水稻种群中,引起基因污染。
- 生态系统稳定性:转基因水稻可能对生态系统造成破坏,影响生物多样性和生态平衡。
- 非目标物种的影响:转基因水稻可能对与其接触的非目标物种产生影响,如对昆虫、鸟类等造成毒性。
PEG模拟干旱胁迫对水稻抗氧化酶基因表达的影响干旱是水稻生长过程中常见的胁迫因素之一,干旱条件下水稻的生长发育受到严重影响,导致产量减少。
为了解水稻受干旱胁迫时抗氧化酶基因的表达变化,本实验利用聚乙二醇(PEG)模拟干旱条件,研究了干旱对水稻抗氧化酶基因表达的影响,为进一步了解水稻抗旱机制提供理论依据。
一、实验材料与方法1. 实验材料实验材料选用水稻品种为常用的水稻杂交种,选取生长健壮的水稻幼苗作为试验材料。
2. 实验方法(1) 样品处理将水稻幼苗随机分为两组,分别置于含有10% PEG和无PEG的培养基中,进行处理。
处理时间为0h、3h、6h、12h和24h。
(2) 抽提RNA采用TRIzol法抽提水稻样品总RNA,测定RNA的浓度和纯度,提取合格的RNA用于后续的实验。
(3) qRT-PCR检测利用提取的RNA合成cDNA,采用qRT-PCR技术检测抗氧化酶基因表达。
选择一些已知与抗氧化酶相关的基因作为研究对象,分析其在干旱条件下的表达变化。
二、实验结果与分析1. RNA提取和纯度检测利用TRIzol法提取了处理后的水稻样品RNA,经过检测,RNA的浓度和纯度符合实验要求。
2. qRT-PCR分析经过实验处理后的水稻样品RNA合成cDNA,用于qRT-PCR检测。
结果显示,在干旱条件下,水稻中多种抗氧化酶基因的表达发生了变化,部分抗氧化酶基因表达上调,部分抗氧化酶基因表达下调。
SOD(超氧化物歧化酶)、CAT(过氧化氢酶)、APX(抗坏血酸过氧化物酶)等抗氧化酶基因在不同时间点下的表达情况各异。
在干旱处理的早期,有些抗氧化酶基因的表达呈上调趋势,而在处理的后期则出现下调趋势。
三、实验讨论1. 干旱胁迫对水稻抗氧化酶基因的影响本实验结果表明,干旱胁迫条件下,水稻的抗氧化酶基因表达受到了明显影响。
一方面,可能由于干旱胁迫导致水稻产生了大量活性氧自由基,诱导了抗氧化酶的表达;可能是由于干旱胁迫下水稻细胞内环境的变化,调控了抗氧化酶的表达。
水稻耐盐性和抗旱性候选基因的筛选和功能鉴定水稻是世界上最受欢迎和重要的食物作物之一,但是全球气候变化带来的高温、干旱和盐碱化等问题给水稻生产带来了很大的挑战。
因此,寻找耐盐和抗旱的水稻品种成为了近年来许多科研工作者的关注点。
这其中,对水稻耐盐性和抗旱性候选基因的筛选和功能鉴定尤为重要。
一、水稻盐碱胁迫和水分胁迫对生长发育的影响盐碱化是指土壤中含有过量的盐分及钠离子,这会对水稻的生长发育造成不利影响。
角叉菜素的积累使得细胞内钾离子和钙离子水平下降,细胞质膨胀基本停止并导致细胞的活性下降,影响根吸收水分和养分、进行气体交换和水分输导。
水分胁迫则指土壤中水分严重不足导致植物生长发育停滞。
长时间水分胁迫会影响水稻植株的代谢过程,导致植物的死亡和产量的下降。
二、水稻耐盐基因的筛选耐盐基因的筛选通常会经过多步骤,包括对水稻种质的选择,产生转化水稻基因工程的材料,以及进行基因转化等。
在这里,我们可以通过PCR技术、基因芯片等高通量技术来快速鉴定诸如Na+/H+和K+/Na+等离子转运基因、钾膜转运基因、糖脯氨酸代谢相关基因等与耐盐性相关的基因。
三、水稻抗旱基因的筛选抗旱基因的筛选同样需要多步骤,包括对水稻种质的选择,在不同水分胁迫环境下筛选出“抗旱型”材料,进行基因定位和克隆等。
基于RNA测序和DNA芯片技术的转录组学和代谢组学技术可以广泛应用于水稻抗旱基因筛选的过程。
例如通过比较受胁迫和未受胁迫的样品之间的转录组差异得到抗旱基因的筛选结果。
四、水稻耐盐基因的功能鉴定功能鉴定是为了确定基因是否与特定的生物学特征相关。
基于基因克隆技术,通常会将某些耐盐基因进行克隆和表达,进而转入水稻材料进行转化。
之后,我们可以通过形态学和生理学对转化水稻进行发育和响应盐碱胁迫的观察,可以发现盐胁迫时,转化水稻有较强的生长能力。
此外,我们还可以利用CRISPR/Cas9等基因编辑技术,剔除某些耐盐基因后观察生长发育和胁迫响应,来进一步验证这些基因是否与耐盐性有关。
水稻转基因技术的研究与应用水稻是我国的主要粮食作物之一,也是全球最重要的粮食作物之一。
随着社会和经济的不断发展,人们对水稻品质和产量的要求也不断提高。
而转基因技术作为一种创新性技术,为水稻的改良提供了新的途径。
本篇文章将探讨水稻转基因技术的研究与应用。
一、水稻转基因技术的研究1.背景水稻转基因技术是将外源基因导入水稻细胞中,使水稻获得某些特定基因的性状。
这样可以通过调整水稻的生长和发育,使其在抗病、耐旱、提高产量等方面得到改善。
2.研究方法水稻转基因技术主要包括以下三种方法:(1) 农杆菌介导转化:将所需基因导入农杆菌载体,经过处理后将其导入水稻细胞中,使细胞产生抗病、提高产量等性状。
(2) 基因枪法转化:将所需基因载入金属小粒子上,压缩空气将粒子“射”入水稻细胞中。
(3) 电穿孔法转化:利用电场作用使水稻细胞短暂性开放,使基因能够有效导入细胞中。
3.研究进展目前,水稻转基因技术已取得了一些重要的进展,主要体现在以下几个方面:(1) 抗虫基因的成功导入:2007年,我国科学家成功将抗虫基因导入水稻,并以此培育了多个抗虫水稻品种。
(2) 抗病基因的成功导入:我国科学家通过细胞融合技术,将米瘟抗病基因导入一种水稻品种中,并获得了抵御米瘟病的水稻品种。
(3) 抗旱基因的成功导入:我国科学家成功将抗旱基因导入水稻,良种生长在干旱条件下的产量大大提高。
二、水稻转基因技术的应用1. 抗虫作物的生产目前,我国已经培育了多个抗虫作物品种。
这些品种通过导入相关基因并与优良品种杂交,产生出的基因工程作物比传统种植方法的作物更加耐虫。
2. 抗病作物的生产目前,我国已经获得了多个抗病作物品种。
这些品种通过导入相关基因并与优良品种杂交,产生出的基因工程作物比传统种植方法的作物更加耐病。
3. 提高产量基因工程水稻的生产方式与传统水稻生产方式相比,具有很大的优势。
通过导入相关基因,可以提高水稻的产量,并缩短生长周期。
4. 改善品质基因工程水稻的应用还可以改善水稻品质,如改良失酬水稻的品质和味道等。
水稻转基因实验操作(谢越、赵建宁、艾鹏慧、孙淑斌整理)(2006.7)一、水稻(日本晴)愈伤组织的诱导(以水稻成熟胚为试材诱导愈伤组织)1.消毒:取水稻成熟种子,人工或者机械脱壳,挑选饱满光洁无菌斑的种子,按以下步骤消毒:1)将种子放入100ml无菌烧杯中,倒入70%酒精消毒1分钟;2)倒去酒精,加入100ml 30%次氯酸钠(NaClO)溶液(5.2%次氯酸钠),浸泡30分钟;3) 倒去次氯酸钠溶液,用无菌蒸馏水清洗种子4-5遍,最后一遍浸泡30分钟。
2.诱导与继代培养:(以下步骤需无菌操作)1)种子放在无菌滤纸上吸干,置成熟胚于诱导培养基中,每皿12-14颗;2)操作完毕用封口膜(Micropore TM Surgical Tape)封好培养皿,在30℃光照培养箱,培养4周;3)在超净工作台上打开培养皿,用镊子挑取自然散落的胚性愈伤组织(淡黄色,致密呈球状),在30℃光照培养箱,继代培养1-2周。
(没有脱落的可在原培养基上继续培养7天,次数多了效果会减弱)二、农杆菌(工程菌)培养挑取农杆菌单克隆或吸取所保藏的农杆菌(EHA105)菌液100µl于4ml YEP(含50mg/LSpec和50mg/L Str)培养液中,28℃,250rpm振荡培养20-36h至菌液OD600为0.8-1.0。
三、感菌与共培养1)取培养好的工程菌液1ml于1.5ml离心管中,4℃,5000rmp,离心1min,去上清。
用含200µmol/LAs的30ml AAM感菌液制成悬浮液。
2)将长到一定大小的水稻愈伤组织挑出,放入农杆菌悬浮液侵染5分钟(愈伤量没过50ml离心管锥形部位即可)。
3)将愈伤组织取出,置于无菌的滤纸上沥干30-40分钟;4)将愈伤组织置于共培养基上(共培养基上面垫上一层9cm无菌滤纸)。
28℃(组培室)暗培养2.5天。
四、愈伤组织的抗生素筛选将愈伤组织取出,用无菌水清洗6次,其间需不停的振荡(组培室震荡机最大速率)。
抗旱水稻种子转基因成分检测技术研究
邓汉超1,2 刘玉琛3 邓国标3,4 刘 晋1,2 陈惠芳1,2 杨启鹏1,2 周向阳1,2(1深圳市农业科技促进中心,深圳 518040;2农业部农作物种子质量监督检验测试中心(深圳),广东深圳 518040;
3深圳市作物分子育种研究院,深圳 518107;4广东省龙门县卫生和计划生育局,惠州 516800)
摘要:利用组织研磨仪快速处理水稻种子样品,采用高通量的磁珠纯化系统提取样本DNA,提取的核酸通过紫外吸收检测其纯度,应用普通PCR检测方法和实时荧光PCR方法对水稻内源基因SPS、靶基因ATAF1进行检测。
结果表明,普通PCR方法和实时荧光PCR方法均表现快速、准确、特异性高的特点。
关键词:普通PCR;实时荧光PCR;转基因
转基因作物的大量种植和推广同时对转基因生物的检测技术提出要求,发达国家的转基因及相关检测技术远远超过发展中的国家。
美国、加拿大等国已有近百种转基因食品上市,并且他们的目标是把大量的转基因食品出口到发展中国家[1-3]。
在这些正式获批进行生产和贸易的产品之外,更有数目众多的品种处于试验阶段或未经正常手续进入市场,我国已经加入WTO,正在面临着转基因产品贸易和安全监测的挑战。
同时随着商品化转基因生物的种类不断增加,转基因生物本身的安全性以及它们对人类健康和生态环境的潜在威胁成为国际社会和广大民众广泛关注的热点问题之一[4-6];包括我国在内的越来越多的国家制定并实施了转基因食品的强制标识制度。
因此,转基因产品的科学管理和应用需要得到转基因产品及其成分检测技术的支持。
追踪转基因生物研发动态,研发相适应的检测技术,制定相应的检测标准,是转基因生物安全监管的重要措施。
本文以转抗旱基因ATAF1水稻种子为材料,初步建立外源基因的普通PCR和实时荧光PCR检测方法。
1 材料与方法
1.1 材料 本实验室获得的转ATAF1基因水稻70株,种子保存于本实验室种子低温低湿储藏库中备用。
主要仪器和试剂:MP组织研磨仪(24样)、Themo磁珠核酸自动提取纯化仪(96样)、Omega核
基金项目:转基因新品种培育重大专项(2009ZX08001-023B);深圳市技术创新项目(CXZZ20120614165508810)
通信作者:刘晋酸提取试剂盒、Premix Ex Taq酶、Neno1000紫外分光光度计、BIO-RAD iCycler PCR扩增仪、ABI7500实时荧光PCR扩增仪、RAININ edp3 plus排枪(12通道)等。
1.2 方法
1.2.1 样品处理 水稻种子取5粒,置于2mL离心管中,放入1粒陶瓷珠,加入500μL Buffer SLX
Minus裂解液(Omega 核酸提取试剂盒)或500μL 2% CTAB 裂解液,浸泡数小时后采用MP组织研磨仪设置震荡速度4.0 M/s、震荡时间30s,震荡粉碎5 6次,备用。
1.2.2DNA的提取 磁珠自动提取法:粉碎样品在65℃水浴1h,其间上下颠倒2 3次。
12000r/min离心10min。
取上清200μL于深孔96平板、800μL Buffer PHB于深孔96平板、800深孔96平板、100深孔96平板、一个Tip按照表1依次加入Omega 核酸提取试剂盒中的试剂。
启动Themo磁珠核酸自动提取纯化系统,根据系统提示依次放入上述试剂板。
当DNA提取完毕,取出5号板,将DNA保存在-20℃下备用。
表1 磁珠核酸自动提取纯化系统物品
板类型板序号内容物试剂量
A1磁珠/Lysis Buffer3/样品20μL/500μL/200μL A2Buffer PHB800μL
A3SPM Buffer800μL
A4SPM Buffer800μL
B5Elution Buffer100μL
A6Tip Loading Plate。