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花粉管生长观察及核型分析

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开放性试验

Giemsa染液：Giemsa粉0.5g，加甘油33ml，充分研磨1h，56度保温2h，加甲醇33ml，混匀；使用前1：20稀释

苯胺蓝染液配方:水溶性苯胺蓝0.1g,溶于磷酸钾溶液(1/30 mol/L)100mL,避光冷藏至近无色.

FAA 配方:福尔马林(38%甲醛)5 ml: 冰醋酸5ml:70%酒精90 ml

幼嫩材料用50%酒精代替70%酒精,可防止材料收缩;还可加入5 ml甘油(丙三醇)以防蒸发和材料变硬.

参考资料：/view/736903.html?tp=7_01

苯胺蓝-藏红O染液:水溶性苯胺蓝0.75g,藏红O 0.25g,溶于加热的的45%醋酸，过滤。

花粉管生长途径的显微观察

实验材料1:授粉后的雌蕊,FAA固定液 mL,5%的KOH(NaOH)溶液 mL，蒸馏水，载玻片,苯胺蓝染液，50%的甘油，盖玻片，荧光显微镜

实验步骤

1,将授粉后的雌蕊用FAA固定液固定( )小时

2,将固定好的雌蕊用5%的NaOH溶液离析透明,大致(1h,)(75min)(90min),[视情况而定,总之要离析至透明]

3,用蒸馏水漂洗3次 4取适量 材料于载玻片上,加上1~2滴苯胺蓝染液染色大约1h,再加上50%的甘油1滴.

5盖上盖玻片之后(必要时可轻压),至于荧光显微镜下观察.

实验材料2：授粉后的雌蕊，酒精-三氯甲烷-醋酸（3：4：1）溶液，70%酒精，50%酒精，30%酒精，蒸馏水，苯胺蓝-藏红O染液，45%醋酸溶液，乳酸酚

实验步骤

1,将授粉后的雌蕊在酒精-三氯甲烷-醋酸（3：4：1）溶液中固定30min.

2,在70%酒精,50%酒精，30%酒精，蒸馏水依次浸泡2min后取出,

3,用苯胺蓝-藏红O染液染色( )min,取出

4将材料置于45%醋酸溶液中透明约1h

5,取出材料,用乳酸酚装片,置于显微镜下观察(视野中浅紫色的为花柱组织,深蓝色的为花粉管).

植物的核型分析(去壁低渗法)

实验材料:分生组织的根尖茎尖,蒸馏水,, 根尖和花粉母细胞，卡诺固定液，秋水仙碱（0.01%-0.2%），对二氯苯饱和溶液，8-羟基喹啉（0.002-0.004mol/L）,70%酒精，纤维素酶-果胶酶混合液，双蒸水，无水酒精-冰醋酸（3：1），无水酒精，Giemsa染液

实验步骤:

1预处理;有以下几种方法

（1） 用低浓度的秋水仙素溶液（0. 01 %～0. 2 %）对材料进行预处理

特点：秋水仙素有很强的毒性,如果秋水仙素用量过大或处

理时间过长,会引起染色体收缩过度或产生多倍体，但用秋水仙素进行预处理效果较好。

（2） 用饱和的对二氯苯水溶液对材料进行预处理

特点： 对二氯苯也有毒性,其效果和秋水仙素

相似,但价格较为便宜。

（3）用低浓度的8-羟基喹啉溶液(0.02-0.04mol/L)对材料进行预处理。

特点; 适合处理具有较大染色体的植

物。经过该溶液处理后,染色体的缢痕区比较清晰。

（物理方法即低温处理因时间较长建议与化学方法混合使用）。

2，固定

通常用卡诺液Ⅰ(无水酒精∶冰醋酸= 3 ∶1) 对材料固定 24h 左右。

3，将材料浸泡在蒸馏水中做前低渗处理30min，

4，转入纤维素-果胶酶混合酶溶液中，25度下酶解2-4小时。

5，吸取酶液，以双蒸水漂洗3次，在双蒸水中25度下停留30min作为后低渗处理

6，将材料固定于无水酒精-冰醋酸（3:1）中并使分生组织细胞分散制成细胞悬浮液；

7，取此细胞悬浮液滴在无水酒精浸泡的遇冷的载玻片上，让细胞迅速分散，酒精灯上迅速过火使材料干燥。

8，Giemsa染液染色，自来水冲洗载玻片，自然干燥。即可镜检拍照。

数据处理：选择中期着丝点清晰的染色体照片配对，测量每条染色体的长臂，短臂根据臂比确定每条染色体类型

M:（1） m（1.01-1.70） sm(1.71-3.00) st(3.01-7.00) t(>7.01) T(端部着丝点)

鉴别植物种类通过染色体类型。 时间大约1天半

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观察花粉粒在柱头上萌发的实验

观察花粉粒在柱头上萌发的实验

观察花粉粒在柱头上萌发的实验

用玉米观察花粉粒在柱头上萌发及花粉管伸长穿入柱头的情况，效果很好。它取材方便，花粉量多、易收集，萌发快（授粉后约5～6min开始萌发）。花粉粒较大且染色后花粉管与柱头区别明显，便于观察。在玉米花丝将要抽出之前套纸袋，到花丝抽出1～3天内，于上午7～9时在田间收集花粉，拉开果穗上的纸袋，将花粉均匀地撒在花丝上。5～6min后，剪下撒有花粉的花丝，放于载片上，加一滴乳酚棉蓝染液染色，镜检，可清楚地观察到花粉粒萌发和花粉管伸长并伸入柱头的情形。花粉粒及花粉管呈鲜蓝色，柱头仍为透明无色，时间久了柱头也会变蓝。

乳酚棉蓝染液的配制：先配制Ⅰ、Ⅱ两种母液。Ⅰ棉蓝水溶液：取0.1g棉蓝（水溶性苯胺蓝）溶于10mL蒸馏水中。Ⅱ乳酚甘油液：取乳酸40mL，酚（石炭酸）40mL，甘油80mL，蒸馏水40mL，混匀后加入母液Ⅰ即可

双受精的教案

双受精的教案

1 / 9 1．理解受精和双受精的概念及过程。

2.理解果实和种子的形成过程。

3．通过学习受精和双受精过程；以及果实和种子的形成，使学生继续树立事物是发展变化的观点。

4．结合果实和种子的形成，向学生介绍我国农业科学工整理，在培育新品种方面的贡献，进行生物科学价值观的教育。

重点、难点分析

1．双受精的概念和过程及受精后子房的发育是本节教学的重点。因为：

①“双受精”是果实和种子形成的前提。只有彻底弄清楚“双受精”的概念及过程，才能更好地理解果实和种子的形成。

②“双受精”是绿色开花植物特有的。它是指：花粉管中的两个精子进入胚囊后，分别与卵细胞和极核融合的现象。融合后，受精卵和受精的极核就要发育变化，它们变化的同时，也就是子房发育的过程，子房发育的结果，就意味着果实和种子的形成。不论是双受精过程，还是子房发育的过程，都是动态的、变化的，而且内容又都较为抽象，学生不能观察到。因此，双受精的概念和过程以及受精后子房的发育过程既是本节的重点又是难点。

2．双受精的过程及受精后子房的发育也是本节教学内容的难点。因为：

（1）学生对“受精”“极核”“胚囊”“胚孔”等这些名词很陌生，要马上记住，而且还要知道它们的发育变化情况，对初一学生来说是有一定的难度的。

（2）如前所述，双受精过程和子房发育过程是一个动态的变化过程，而且内容较为抽象，学生接受起来确有难度，教师在讲这部分内容时，要尽量配合一些教具（如：投影片、动画片，或自制移动教具、自画板书等）辅助讲解，使学生把这部分知识理解透彻。

教学过程 设计

一、本课题的参考课时为一课时。

二、教学过程 ：

1．关于引言：上节课讲的内容是“开花和传粉”。所以，教师在讲新课前，可以先复习提问如①什么叫开花？什么叫传粉？②传粉的方式有几种？③虫媒花和风媒花的结构特点？然后，教师可以这佯说：“不论什么样的传粉方式，最终是花粉落到雌蕊的柱头上了，下一步会发生怎样的变化呢？”有的学生会接着教师的话说出：“形成果实，形成种子。”教师马上又可接着问：“果实和种子是怎样形成的呢？这就是今天所要探讨的问题。”（写出课题）

染色体

染色体

第 1 页 共 6 页

一． 名词解释（每题2分，共30分）

B染色体：有些生物的细胞中出现的额外染色体

双受精：1个精核（N）与卵细胞（N）结合为合子（2N），将来发育成胚。另一精核（N）与两个极核（N+N）受精结合为胚乳核（3N），将来发育成胚乳的过程

体细胞联会：在一些动植物的体细胞有丝分裂中观察到一些非随机分布现象，其同源染色体在空间分布上有相互靠近的倾向，出现同源染色体紧密、平行配对的现象。

花粉直感：如果在3n胚乳的性状上由于精核的影响而直接表现父本的性状，这种现象称为胚乳直感或花粉直感。

遗传图谱：将一对同源染色体上的各个基因的位置确定下来，并绘制成图叫做遗传图谱

结构异染色质：除复制期外在细胞的所有时期都保持聚缩状态的染色质

假连锁：两对染色体上原来不连锁的基因，由于靠近易位断点，易位杂合体总是以相间分离方式产生可育的配子，因此就表现出假连锁现象。

染色体干扰：一个交叉的发生对第二个或以后的其他交叉会有一定的影响

复合易位：涉及染色体的三次以上的断裂，各染色体间发生复杂的相互易位。

端粒：末端特化的染色较深的部位，是染色体的天然末端，对染色体的稳定起着非常重要的作用

异源多倍体：指不同物种杂交产生的杂种后代经过染色体加倍形成的多倍体。

NOR（核仁组织区）：是染色体上与核仁形成有关的区域。也叫次缢痕。

染色体消减：指双翅类、膜翅类等昆虫的胚在特定的卵核分裂中，部分染色体不进入核而丢失的现象

孪生现象：有丝分裂发生联会，产生交叉互换，使隐性基因重合

孤雄生殖：在正常的有性胚囊中，卵细胞未经受精而直接发育成胚的现象

单端单体：当某对染色体缺失但保留其1条染色体臂的端着丝粒染色体

细胞融合：指人工的或自然发生的细胞合并形成多核细胞的现象

部分同源染色体：来源相同，具有部分相同的基因和序列的染色体

染色体消减：指双翅类、膜翅类等昆虫的胚在特定的卵核分裂中，部分染色体不进入核而丢失的现象 第 2 页 共 6 页 多线染色体： 核内DNA多次复制产生的子染色体平行排列, 且体细胞内同源染色体配对, 紧密结合在一起, 从而阻止了染色体纤维进一步聚缩, 形成体积很大的由多条染色体组成的结构

苯胺蓝染色花粉管步骤

苯胺蓝染色花粉管步骤

苯胺蓝染色花粉管步骤

苯胺蓝染色是一种常用的花粉染色方法，用于观察花粉管的生长和发育情况。以下是一般的苯胺蓝染色花粉管的步骤：

1. 准备花药，首先，从植物中采集花药，将其放置在含有适当培养基的离心管中。

2. 处理花药，将花药在室温下处理一段时间，使其适当膨大。

3. 制作玻片，取一块玻片，在玻片上滴上适量的苯胺蓝溶液。

4. 加入花粉，用镊子将处理好的花药轻轻撒在含有苯胺蓝溶液的玻片上。

5. 加热处理，将玻片放置在50℃左右的温水中，用显微镜观察花粉管的生长情况。

6. 观察结果，经过一段时间后，用显微镜观察玻片上的花粉管，观察其生长和分枝情况。

以上是一般的苯胺蓝染色花粉管的步骤，这个方法可以帮助研究者观察花粉管的生长和发育情况，从而更好地了解植物的生殖过程。希望这些步骤能够对你有所帮助。