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实验名称：橘子营养成分分析及抗氧化活性研究实验目的：1. 分析橘子中主要营养成分的含量。
2. 探讨橘子中抗氧化成分的种类及其活性。
实验材料：1. 新鲜橘子若干个（品种不限）。
2. 分析天平、研钵、滤纸、剪刀、镊子等实验器材。
3. 试剂：无水乙醇、硝酸、硫酸、盐酸、苯酚、福林酚试剂、铁氰化钾、三氯化铁等。
实验方法：1. 样品处理：将新鲜橘子洗净，剥皮去核，切成小块，用研钵研磨成浆状，用滤纸过滤，得到橘子浆液。
2. 营养成分分析：（1）可溶性固形物含量：采用折光仪测定。
（2）总糖含量：采用苯酚-硫酸法测定。
（3）维生素C含量：采用2,6-二氯靛酚法测定。
（4）蛋白质含量：采用双缩脲法测定。
（5）矿物质含量：采用原子吸收光谱法测定。
3. 抗氧化活性研究：（1）自由基清除活性：采用DPPH自由基清除法测定。
（2）抗氧化酶活性：采用超氧阴离子自由基清除法测定。
实验步骤：1. 样品处理：将新鲜橘子洗净，剥皮去核，切成小块，用研钵研磨成浆状，用滤纸过滤，得到橘子浆液。
2. 营养成分分析：（1）可溶性固形物含量：取适量橘子浆液，用折光仪测定其折光率，根据标准曲线计算可溶性固形物含量。
（2）总糖含量：取适量橘子浆液，加入苯酚-硫酸试剂，沸水浴加热，在540nm波长下测定吸光度，根据标准曲线计算总糖含量。
（3）维生素C含量：取适量橘子浆液，加入2,6-二氯靛酚试剂，在560nm波长下测定吸光度，根据标准曲线计算维生素C含量。
（4）蛋白质含量：取适量橘子浆液，加入双缩脲试剂，在540nm波长下测定吸光度，根据标准曲线计算蛋白质含量。
（5）矿物质含量：取适量橘子浆液，加入硝酸、硫酸等试剂，用原子吸收光谱法测定矿物质含量。
3. 抗氧化活性研究：（1）自由基清除活性：取适量橘子浆液，加入DPPH自由基溶液，室温下反应30分钟，在517nm波长下测定吸光度，计算自由基清除率。
（2）抗氧化酶活性：取适量橘子浆液，加入超氧阴离子自由基溶液，室温下反应30分钟，测定反应体系的吸光度变化，计算抗氧化酶活性。
武汉地区设施栽培柑橘果实发育及其品质变化研究的开题报告一、研究背景和意义柑橘是我国南方地区的重要经济作物之一，其中以武汉地区的柑橘栽培规模较大。
柑橘在生长发育过程中，果实品质的变化与栽培设施的影响密切相关。
因此，研究武汉地区柑橘果实发育及品质变化规律，对于优化柑橘栽培设施、提高柑橘果实质量具有重要意义。
二、研究内容和方法1. 研究对象选取武汉地区种植的几种典型柑橘，包括甜橙、柚子、酸橙等。
2. 研究内容（1）柑橘果实发育过程中主要生理指标的变化，例如果实大小、外观颜色、可溶性固形物含量、总酸含量等。
（2）不同栽培设施对柑橘果实发育和品质的影响，例如温室、大棚等。
3. 研究方法（1）采集样品，测定柑橘果实各项生理指标变化情况。
（2）结合观察和测定结果，探究柑橘实发育及品质变化的规律。
（3）利用SPSS等统计软件进行数据处理和分析。
三、预期目标和价值1. 预期目标（1）探究武汉地区柑橘果实发育及其品质变化规律。
（2）分析不同栽培设施对柑橘果实的影响。
2. 价值（1）为武汉地区柑橘栽培提供科学依据，优化柑橘栽培设施。
（2）为柑橘果实营养价值和保鲜增加基础研究。
四、研究计划1. 时间节点（1）第1-2个月：文献调研，制定研究方案。
（2）第3-4个月：采集样品，测定柑橘果实指标。
（3）第5-7个月：数据处理和分析，撰写结论。
（4）第8-9个月：论文修改、定稿及答辩准备。
2. 研究预算本研究主要涉及样品采集和基础实验室设施，预算约为10000元。
HPLC法检测柑橘中赤霉酸残留量的色谱条件包琴;唐洁;马力;祝瑞博;姚开【期刊名称】《食品研究与开发》【年(卷),期】2010(031)011【摘要】在确定了赤霉酸适宜检测波长的基础上,以保留时间、分离度、拖尾因子、谱图峰型、相对标准偏差等为指标.分别考察流动相甲醇与水的体积比、流动相流速及柱温对柑橘中赤霉酸检测结果的影响.结果显示,采用反相C18柱的HPLC法检测赤霉酸的适宜色谱条件为:柱温为35℃,流动相为体积比为40/60的甲醇-水溶液(pH4.0),流速为1.0mL/min,检测波长为210nm.在此条件下,HPLC检测柑橘中赤霉酸含量的灵敏度高(最低检出限0.0334μg,S/N=3),准确度较好(平均加标回收率为86.0%～91.0%,n=5),精密度较高(平均RSD为1.4097%,n=5).【总页数】5页(P141-145)【作者】包琴;唐洁;马力;祝瑞博;姚开【作者单位】西华大学生物工程学院,四川,成都,610039;西华大学生物工程学院,四川,成都,610039;四川大学轻纺与食品学院,四川,成都,610065;西华大学生物工程学院,四川,成都,610039;四川大学轻纺与食品学院,四川,成都,610065;四川大学轻纺与食品学院,四川,成都,610065【正文语种】中文【相关文献】1.采用最优色谱条件检测大米农药残留量 [J], 王功2.色谱条件对HPLC检测大豆中赤霉酸含量的影响 [J], 祝瑞博;唐洁;姚开;贾冬英;何强3.固相萃取-HPLC法同时测定浓缩柑橘汁中噻菌灵、多菌灵的残留量 [J], 刘晓松;高欣;童张法;刘军义4.HPLC法检测牛奶中喹诺酮类药物残留色谱条件的优化 [J], 吴建勇;梁秋艳;马雷;杨宇5.HPLC法检测石榴皮中鞣花酸的色谱条件优化(英文) [J], 夏小龙;彭蓉;李树垠;李端阳;干霞;白琦因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
超高效液相色谱法测定柑橘果肉中四种植物性内源激素的含量作者：蒋艳芳黄岛平陈秋红黄艳来源：《湖北农业科学》2012年第01期摘要：利用超高效液相色谱法同时测定柑橘（Citrus reticulate Bance）果肉中的玉米素、赤霉素、吲哚乙酸和脱落酸的含量。
以Ｃ８色谱柱，甲醇－０．１％冰乙酸为流动相梯度洗脱，检测波长为２６２ｎｍ，流速０．２２ｍＬ／ｍｉｎ。
结果表明，玉米素含量在０．１４～０．３８μｇ／ｍＬ间线性关系良好，Ｒ２为０．９９９５，平均回收率为９８．７％，ＲＳＤ为０．９９％；赤霉素含量在０．６７～１．７９μｇ／ｍＬ间线性关系良好，Ｒ２为０．９９９３，平均回收率为９８．６％，ＲＳＤ为０．７０％；吲哚乙酸含量在０．２５～０．６７μｇ／ｍＬ间线性关系良好，Ｒ２为０．９９９６，平均回收率为９９．０％，ＲＳＤ为０．６８％；脱落酸含量在０．０３６～０．０９６μｇ／ｍＬ间线性关系良好，Ｒ２为０．９９９９，平均回收率为９９．１％，ＲＳＤ为０．６１％。
该方法简便、快速、精密度高、准确性好，可用于植物样品中激素含量的测定。
关键词：柑橘（Citrus reticulate Bance）；植物激素；超高效液相色谱法中图分类号：Ｏ６５６．２文献标识码：Ａ文章编号：0439－８114（２０12）01－0165-04ＤｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｏｆＦｏｕｒＥｎｄｏｇｅｎｏｕｓＨｏｒｍｏｎｅｓｉｎＯｒａｎｇｅＰｕｌｐｂｙＵＰＬＣＪＩＡＮＧＹａｎ－ｆａｎｇ，ＨＵＡＮＧＤａｏ－ｐｉｎｇ，ＣＨＥＮＱｉｕ－ｈｏｎｇ，ＨＵＡＮＧＹａｎ（ＧｕａｎｇｘｉＣｅｎｔｅｒｆｏｒＡｎａｌｙｓｉｓａｎｄＴｅｓｔＲｅｓｅａｒｃｈ，Ｎａｎｎｉｎｇ５３００２２，Ｃｈｉｎａ）Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｏｆｆｏｕｒｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓｈｏｒｍｏｎｅｓｓｕｃｈａｓｚｅａｔｉｎ（ＺＴ），ｇｉｂｂｅｒｅｌｌｉｎ（ＧＡ），ｉｎｄｏｌｅａｃｅｔｉｃａｃｉｄ（ＩＡＡ）ａｎｄａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄ（ＡＢＡ） was proceeded ｂｙＵＰＬＣ．ＴｈｅｍｅｔｈｏｄｕｓｅｄａＣ８ｃｏｌｕｍｎ，ａｎｄａｄｏｐｔｅｄｔｈｅｇｒａｄｉｅｎｔｅｌｕｔｉｏｎｍｅｔｈｏｄｗｉｔｈｍｅｔｈａｎｏｌ－０．１％ａｃｅｔｉｃａｃｉｄａｓｍｏｂｉｌｅｐｈａｓｅａｎｄｔｈｅＵＶｄｅｔｅｃｔｉｏｎｗａｖｅｌｅｎｇｔｈｗａｓ２６２ｎｍ，ａｎｄｆｌｏｗｒａｔｅｗａｓ０．２２ｍＬ／ｍｉｎ．Ｔｈｅｃａｌｉｂｒａｔｉｏｎｃｕｒｖｅｏｆ ZT ｗａｓｌｉｎｅａｒｂｅｔｗｅｅｎ０．１４μｇ／ｍＬ and ０．３８μｇ／ｍＬ，Ｒ２ｗａｓ０．９９９５，ｔｈｅａｖｅｒａｇｅｒｅｃｏｖｅｒｙｗａｓ９８．７％，ａｎｄＲＳＤｗａｓ０．９９％．ＴｈｅｃａｌｉｂｒａｔｉｏｎｃｕｒｖｅｏｆＧＡｗａｓｌｉｎｅａｒｂｅｔｗｅｅｎ０．６７μｇ／ｍＬ and １．７９μｇ／ｍＬ，Ｒ２ｗａｓ０．９９９３，ｔｈｅａｖｅｒａｇｅｒｅｃｏｖｅｒｙｗａｓ９８．６％，ａｎｄＲＳＤｗａｓ０．７０％．Ｔｈｅｃａｌｉｂｒａｔｉｏｎｃｕｒｖｅｏｆ IAA ｗａｓｌｉｎｅａｒｂｅｔｗｅｅｎ０．２５μｇ／ｍＬ and ０．６７μｇ／ｍＬ，Ｒ２ｗａｓ０．９９９６，ｔｈｅａｖｅｒａｇｅｒｅｃｏｖｅｒｙｗａｓ９９．０％，ａｎｄＲＳＤｗａｓ０．６８％．ＴｈｅｃａｌｉｂｒａｔｉｏｎｃｕｒｖｅｏｆＡＢＡｗａｓｌｉｎｅａｒｂｅｔｗｅｅｎ０．０３６μｇ／ｍＬ～０．０９６μｇ／ｍＬ，Ｒ２ｗａｓ０．９９９９，ｔｈｅａｖｅｒａｇｅｒｅｃｏｖｅｒｙｗａｓ９９．１％，ａｎｄＲＳＤｗａｓ０．６１％．Ｔｈｉｓｍｅｔｈｏｄｗａｓｐｒｏｖｅｄｔｏｂｅｓｉｍｐｌｅ，ｐｒｅｃｉｓｅ，ａｃｃｕｒａｔｅａｎｄｃould ｂｅｕｓｅｄｆｏｒｔｈｅｑｕａｌｉｔｙｃｏｎｔｒｏｌｏｆｈｏｒｍｏｎｅｃｏｎｔｅｎｔｉｎｔｈｅｐｌａｎｔｓａｍｐｌｅｓ．Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：Ｏｒａｎｇｅｐｕｌｐ（Citrus reticulate Bance）；ｐｌａｎｔｈｏｒｍｏｎｅ；ＵＰＬＣ植物性内源激素是植物体内合成的对植物生长发育有显著作用的微量有机物，其生理效应复杂多样，对植物生长发育有重要的调节控制作用［１，２］。
柑橘采后黑腐病菌的分离、鉴定及其拮抗酵母菌研究的开题报告一、研究背景作为一种重要的果树，柑橘的生产受到很多病害的困扰，其中黑腐病是柑橘采后常见的一种病害。
黑腐病菌是一种常见的真菌，能侵染柑橘等水果，导致水果表面产生褐黑色斑点，并逐渐扩散腐烂，进而使柑橘失去商品价值。
当前，采后黑腐病的防治主要采用化学药剂，但由于长期使用药物导致多种病原菌耐药性的出现，使柑橘及其制品安全和质量受到了挑战。
因此，寻找一种环境友好、有效的防治手段势在必行。
近年来，许多研究表明，拮抗微生物是一种可行的生物防治手段。
拮抗微生物具有对病原菌具有抑制和杀灭作用，不会导致环境和人体的污染。
鉴定拮抗微生物对黑腐病的阻效性能有助于发掘新型的生物防治手段，提高柑橘的品质和增加产量。
二、研究目的本研究旨在分离并鉴定柑橘采后黑腐病菌，寻找具有抑制黑腐病菌生长的拮抗酵母菌，并研究其抑制黑腐病菌生长的机制，以期为柑橘采后黑腐病的防治提供理论依据和技术支持。
三、研究内容1.分离并鉴定柑橘采后黑腐病菌：选取黑腐病病害较重的柑橘，采用常规的分离鉴定方法，将病斑样品进行分离、纯化、培养和鉴定，确定黑腐病菌的种属和类型。
2.筛选拮抗酵母菌：采用筛选法从自然界的微生物资源中获得一批酵母菌，并通过培养和鉴定，筛选出具有较强的抑制黑腐病菌生长的酵母菌株。
3.研究酵母菌的抑菌机制：对优良的拮抗酵母菌进行进一步的鉴定和分析，探究其对黑腐病菌的生长抑制机制，以期从分子水平上理解其防治黑腐病的机制。
四、研究意义本研究将为柑橘采后黑腐病的防治提供新的思路和技术支持。
筛选并鉴定出具有较强抑菌能力的酵母菌，将为生物农药的开发和使用提供新的选材依据，同时将对柑橘采后病害防治提供指导意义，也有利于提高柑橘的产量和质量。
五、研究方法1.柑橘采后黑腐病菌的分离、鉴定：采用常规的分离鉴定方法，将病斑样品进行分离、纯化、培养和鉴定，确定黑腐病菌的种属和类型。
2.拮抗酵母菌的筛选：采用筛选法从自然界的微生物资源中获得一批酵母菌，通过培养和鉴定，筛选出具有较强的抑制黑腐病菌生长的酵母菌株。
QuEChERS-GC/MS快速检测柑橘农药多残留的方法研究的开题报告一、研究背景及意义柑橘是我国的主要经济作物之一，也是消费者日常饮食中重要的水果类。
但是，在柑橘生产过程中，为了保证产量和质量，农业生产中使用的农药会残留在柑橘表面或内部，对人体健康构成潜在威胁。
因此，柑橘中农药残留的监测和控制成为关键的研究方向之一。
常规的农药残留检测方法主要有高效液相色谱和气相色谱等，但这些方法需要样品预处理和较长的分析时间，且对于某些农药或者复杂的基质样品不够灵敏、不太稳定，而且检测成本昂贵。
近年来，QuEChERS (quick, easy, cheap, effective, rugged, and safe)技术应用于农药残留检测中，并结合气相色谱/质谱法，成为一种快速、简单、高灵敏、高通量、低成本的方法，因其具有操作简便，样品处理快速，绿色环保等特点，被广泛应用于农药残留检测领域。
二、研究内容及方法本研究旨在开发一种QuEChERS-GC/MS快速检测柑橘中农药残留的方法，主要研究内容包括：1. 样品处理方法优化：通过对不同样品的预处理方法进行比较，确定最适合柑橘样品的处理方法；2. 质检方法建立：建立适合本地柑橘农药的残留检测方法，并对方法进行优化；3. 方法的稳定性和重现性验证：通过重复实验验证该方法的重现性，以及长期运行的方法稳定性。
三、预期结果经过本研究，预计可以建立一种快速、简便、高灵敏度、高复现性的QuEChERS-GC/MS方法，用于柑橘中农药残留的检测。
同时，该方法可以降低柑橘农药检测的成本和时间，提高效率和检测数量，为农药残留监测和食品安全保障提供技术支持。
蔬菜水果中赤霉素残留量HPLC检测方法的研究作者：万凯丁晨红邓义才骆冲梁应坤来源：《热带农业科学》2014年第08期摘要对蔬菜水果样品中的赤霉素残留量采用高效液相色谱方法进行测定。
结果表明：样品中赤霉素经80%甲醇溶液提取，用石油醚脱色，经过乙酸乙酯液液萃取和磷酸缓冲液反萃取，再用乙酸乙酯萃取净化，然后采用C18色谱柱分离，以甲醇和0.1%的冰乙酸水溶液为流动相洗脱，用高效液相色谱紫外检测器206 nm波长检测，以保留时间定性，外标法定量。
在此优化实验条件下，赤霉素标准溶液在0.25～50 mg/L呈良好线性，r=0.999 9，检出限为0.067 mg/kg。
6种蔬菜水果的添加回收率为71.6%～105.2%，RSD为2.1%～9.8%。
关键词赤霉素；高效液相色谱法；蔬菜；水果；残留分类号 O657.7+2Determination of Gibberellin Residue in Vegetables and Fruits by High Performance Liquid ChromatographyWAN Kai1，2） DING Chenhong1） DENG Yicai2） LUO Chong3） LIANG Yingkun1）（1 Public Monitoting Center for Agro-product of Guangdong academy of agricultural science，guangzhou， Guangdong 510640；2 Ministry of Agriculture Laboratory of Quality & Safety Risk Assessment for Agro-product （Guangzhou）， guangzhou， Guangdong 510640；3 Centre for Quality Safety and Standard Research of Agricultural Products，Guangdong Academy of Agricultural Sciences， guangzhou， Guangdong 510640）Abstract Researched the analytical method for the determination of gibberellin acid residue in vegetables and fruit by high-performance liquid chromatography. The GA3 ， after being extrated by using 80% methoanol water solution，decolored by petroleum ether， extracted by ethyl acetace，and then， purged by reversed extraction with Phosphate Buffer（PB） and extrated with ethyl acetate again， was separated on C18 column using methonl and 0.1% acetic acid solution as mobile phases and 206 nm as HPLC detected wavelength. The samples were qualitatived by retention time and quantified with the external calibration method. The results showed the method performed well within the linear range between 0.25 mg/L and 50 mg/L （r=0.999 9）， and the limit of detectionwas 0.067 mg/kg. The method was used to detect the contents of GA3 in 6 kinds of vegetables and fruit， the recoveries for the spiked samples were ranged from 71.6% to 105.2%， and the variation coefficients were from 2.1% to 9.8%.Keywords gibberellic acid （GA3）； high performance liquid chromatography （HPLC）；vegetable ； fruit ； residue近年植物生长调节剂应用日益广泛，主要用作调节农作物的生长发育、提高产量和改良品质[1]。
毕业论文开题报告食品质量与安全橘子及其加工制品中的赤霉素检测一、选题的背景与意义赤霉素是一种广谱性植物生长调节剂，几乎在植物生长、发育的各个阶段都起着调节作用。
自1935年日本科学家从水稻赤霉菌中分离出一种活性制品，并得到结晶，定名为赤霉素（GA）以来，目前已从高等植物和微生物中分离出70余种赤霉素。
赤霉素是植物的四大类激素之一，广泛地存在于植物组织中。
橘子(Citrus)，芸香科，柑橘属，原产地中国。
在我国栽培橘子已经有4000多年历史，而且分布十分广泛。
我国生产柑橘包括台湾省在内有19个省(市、自治区)，种植的县(市、区)有985个。
柑橘果实营养丰富，胡萝卜素(维生素A原)含量仅次于杏，比其他水果都高。
除含多种维生素外，还含镁、硫、钠、氯和硅等元素。
同时，它色香味兼优，既可鲜食，又可加工成以果汁为主的各种加工制品，广受消费者的青睐。
世界有135个国家生产柑橘，年产量10282.2万吨，面积10730万亩，均居百果之首。
我国水果总产量5000万吨，位居世界首位，但出口量仅为16万吨，占世界水果出口总量的3%。
中国加入世界贸易组织后，我国对外贸易的国际环境得到较大改善。
然而，我国的农产品出口并没有因此而大幅度提高，直接原因是农残超标，检验检疫方面不过关。
根据日本肯定列表最终数据查询 (2006年5月29日起实施)暂定菠菜、菠萝、草菇、草莓、橙(包括脐橙)、葱(包括韭葱) 大白菜、大蒜、豆瓣菜、鳄梨、番木瓜、番茄、番石榴、繁殖洋葱等使用的最高限量MRL为0.2 ppm；美国(USA )允许苹果中的农药残留限量要求（1999年3月15日）联邦法律条款（40 CFR 120）赤霉素残留限量（Tolerance, ppm）为0.5。
然而据相关资料显示，我国现在对于赤霉素检测的标准只有两个：SN 0350-1995出口水果中赤霉素残留量检验方法（行业标准）和DB11/ T 379-2006 豆芽中4-氯苯氧乙酸钠6-苄基腺嘌呤、2,4-滴、赤霉素、福美双的测定（北京地方标准）。
由此可见我国产品标准的制定与国际标准和国外先进标准差距较大。
同时，检验检疫实验室作为技术执法的主体，检测力量不足，检测技术和方法落后，不仅严重阻碍中国农产品的出口，而且造成控制产品质量上的空缺，使我国农产品质量难以与国际接轨。
因此，建立一种高效、准确检测水果中赤霉素的检测方法，已是迫在眉睫。
橘子在我国出口水果的重要组成部分，通过研究橘子及其加工制品中赤霉素的检测方法，一方面，可以确保橘子及其加工制品的正常出口，另一方面，对研究其他农产品中赤霉素检测也可以提供参考。
二、研究的基本内容与拟解决的主要问题：基本内容：以橘子及其加工制品（如橘子罐头等）中的赤霉素为研究对象，采用SPE固相萃取结合高效液相色谱、液质联用仪等方法，对橘子及其加工制品中的赤霉素的检测进行研究，并优化其条件。
1、筛选适合样品（橘子及其加工制品）的前处理方法；2、采用色谱分析方法，对橘子及其加工制品中的赤霉素进行检测，优化分析条件；3、建立相关的检测方法，并明确相关检测方法的回收率、检测限等。
拟解决的问题：1、样品中赤霉素提取溶剂的选择；2、筛选出样品中赤霉素浓缩和净化的前处理方法；3、固相萃取（SPE）与高效液相色谱检测路线的条件优化；4、色谱条件对于标准品检出的影响，确定优化的色谱条件。
三、研究的方法与技术路线：1、资料检索：以“赤霉素”、“GA3”、“高效液相”、“液质联用”、“气相色谱”等为检索词，检索中国期刊全文数据库（1989－2010）、万方数据库（1989－2010）和维普数据库（1989－2010）等数据库，以“gibberellin”、“GA3”、“HPLC”、“LC-MS”等为关键词检索Science Director(1989,2010)，查找相关文献。
2、优化色谱条件：采用高效液相色谱和LC-MS检测器对标准样品溶液进行检测，分析得到赤霉素的保留时间。
通过分析色谱图，研究色谱条件的改变对标样检测的影响。
3、筛选前处理方法：根据相关文献，采用SPE固体萃取柱将前处理后的样品进行净化，并通过色谱分析的结果筛选出适合样品（橘子及其加工制品）的前处理方法。
4、建立检测方法：根据实际样品的色谱结果，进一步完善色谱条件等，建立相应的检测方法。
并在此检测方法下，确定赤霉素的检出限，绘制标准曲线，计算RSD值等。
5、技术路线：橘子及其制品中赤霉素的检测四、研究的总体安排与进度：2009年9月—2010年11月：1、实验前的准备工作：查找资料，文献综述的撰写，英文参考文献的翻译；2、文献整理，实验方案的确定，完成开题报告。
2010年10月—2011年３月：1、开展实验；2、优化实验方案中的各条件；3、获得实验过程中的各类数据。
2011年3月—2011年5月：1、整理和补充相关数据，整理实验结果；2、撰写论文初稿；3、论文定稿。
五、主要参考文献：[1]中国农科院植保研究所等编.农药分析,化学工业出版社,北京,1998.[2]李金,石晶,赵晓亮等.分析化学，1994,22 (8):80 1-804.[3]丁静,沈镇德,方亦雄,等. 植物内源激素的提取分离和生物鉴定[J]. 植物生理学通讯,1979 ,5 (2) :28[4]罗正荣,吴谋成,章文才. 植物组织中赤霉酸含量的高效液相色谱测定[J]. 植物生理学通讯, 1990 ,26 (2) :50-52.[5]上海市“920”协作组.“九二○”的应用和土法生产[M ]. 上海: 上海人民出版社, 1973.[6]印天寿, 陈世勇, 于群英, 等. 赤霉素的快速分光光度测定法的研究[J]. 分析化学, 1990, 18 (10) : 966- 969.[7]中国科学院植物研究所、遗传研究所“920”编写小组.“920”农药技术资料汇编.第l集.北京:科学出版社1970.[8]陈玉銮, 王占文, 孙思祥. 赤霉素的磷钼杂多酸光度测定法研究[J]. 南京化工学院学报, 1993, 15 (1) : 51- 54.[9]白玉明, 赵良启. 赤霉素荧光比色测定方法的研究[J]. 山西大学学报(自然科学版) , 1990, 13 (4) :430- 433.[10]薛泉宏, 李东, 汤莉.赤霉素荧光测定法改进研究[J].西北农业大学学报,2000,28(4):34-39.[11]Shengjie Hou, Jiang Zhu, Mingyu Dinga, et al.Simultaneous determination of gibberellic acid, indole-3-acetic acid and abscisic acid in wheat extracts by solid-phase extraction and liquid chromatography–electrospray tandem mass spectrometry[J].Talanta,2008(76):798–802.[12]王勇,程金芬.高效液相色谱法检测赤霉素A3组份[J].中国抗生素杂志,1990,4:35-37.[13]陈小鹏,王秀峰,孙小镭,等.高效液相色谱测定黄瓜瓜条中赤霉素和脱落酸含量[J].山东农业科学,2005(1):65-67.[14]唐根源,吴红京.高效液相色谱法测定小麦幼苗中植物生长调节剂[J].分析试验室,1997,16(5):66-69.[15]朱智甲,郝振芳,张晓惠,等.高效液相色谱紫外检测法测定小麦幼苗中的内源激素[J].光谱实验室,1999,16(3):281-283.[16]湛社霞,孙世宏,臧李纳,等.高效液相色谱法测定水果中的赤霉素、苯甲酸、糖精钠和胭脂红[J].中国卫生检验杂志,2008,18(7):1330-1332.[17]陈波浪,郑春霞,盛建东,等.HPLC分离和测定棉花中3种植物激素[J].新疆农业大学学报,2006,29(1):28-30.[18]XIE JUN，ZHANG Yizheng. Determination of plant intrinsic hormones by reversed-phase high-performance liquid chromatography [J].Journal of Instrumenta1 Analysis.2001,1:60-62.[19]WANG Ruozhong, XIAO Langtao, LAN Wanhuang, et a1. High performance liquid chromatographic determination of internal hormones in inter-subspecific hybrid rice [J].Chinese．Journal of Chromatography.2002,2:148-157.[20]张有林,党娅,张静,等.高效液相色谱法同时测定银凤桃中的赤霉素和脱落酸[J].西北植物学报,2005,25(7):1467-1471.[21]Grolamys Castillo , Servando Martinez. Reversed-phase C18 high-performance liquid chromatography of gibberellins GA3 and GA1[J].Journal of Chromatography A,1997, 782 (1):137-139.[22]葛雅琨,张元新,胡睿,等.蔬菜中赤霉素残留量的高效液相色谱检测方法研究[J].吉林化工学院学报,2005,22(2):13-16.[23]张政,张强,王转花.高效液相色谱法测定赤霉素A3的含量[J].色谱,1993,11(4):254-255.[24]顾觉奋,王义明,刘文华.赤霉素A3的反相高压液相色谱分析[J].中国抗生素杂志,1991,16(5):370-375.[25]张玉宗,陈振玲,吕杏者,等.高效液相色谱法测定谷子幼苗中的GA1和GA3[J].色谱,1999,17(5):469-472.[26]乔坤云,张敏.高压液相色谱测定新疆库尔勒香梨中赤霉素(GA3)方法研究[J].特产研究,2002(4):25-26.[27]朱曙东,赵琛,赵文君,等.反相高效液相色谱分析赤霉素GA3含量[J].药学学报,1993,28(10):788-791.[28]黄红林,刘实,张桃芝.固相萃取一高效液相色谱测定番茄中的赤霉素GA3残留[J].分析科学学报,2005,25(1):75-77.[29]付磊,陶燕飞.气相色谱法测定草莓中的赤霉素[J].武汉科技大学学报(自然科学版),2002,25(4):359-360.[30]许庆琴，范哲锋,杜黎明.大口径毛细管气相色谱法快速测定植物组织中的赤霉素[J].分析科学学报，2000,16(6):524.[31]黄红林,张桃芝,刘实,等.SPE—GC—MS选择离子法直接测定果品中赤霉素残留量[J].理化检验-化学分册,2006,3:194-196.[32]马焕普.用GC—MS检测苹果种子层积过程中内源MeJA,GA3,GA4和GA7的变化[J].植物生理学报,1996,22(1):81-88.[33]吴萍,刘玲.芥蓝未熟种子赤霉素的GC／MS定性分析[J].质谱学报,1997,18(2):67-76.[34]梁沛,张桃芝,黄红林.固相萃取-液相色谱串联质谱法测定水果中的赤霉素GA3残留[J].第四届海峡两岸分析化学学术会议论文集,2006(11):68-69.[35]刘艳琴,王浩,杨红梅,等.高效液相色谱一串联四极杆质谱联用测定水果和蔬菜中赤霉素残留量[J].现代农业科技,2009(16):330-331.[36]王骏,张卉,胡梅,等.液相色谱一质谱测定猕猴桃中赤霉素和脱落酸的含量[J].食品工业,2008(4):74-76.[37]Shengjie Hou, Jiang Zhu, Mingyu Dinga,et al. Simultaneous determination of gibberellic acid, indole-3-acetic acid and abscisic acid in wheat extracts by solid-phase extraction and liquid chromatography–electrospray tandem mass spectrometry[J].Talanta,2008(76):798–802.[38]何解定.中国突破农产品出口技术壁垒的对策研究[J].社会纵横,2009,24(14):28-29.。
