【精品】植物组织培养快繁技术
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植物组织培养是一种重要的生物技术,它能够实现植物的快速繁殖、脱毒和基因转化。
在植物学研究和植物育种领域,植物组织培养技术的应用非常广泛。
本文将深入探讨植物组织培养中的快繁与脱毒技术及其应用,以帮助读者更深入地理解这一重要领域。
1. 快繁技术在植物组织培养中,快繁技术是指利用植物体的一小部分组织或细胞,通过体外条件培养,实现植物的快速繁殖。
这种技术可以大大提高繁殖速度,缩短繁殖周期,是进行新种质创制、遗传改良和疫病防治的重要手段。
快繁技术的主要方法包括离体培养、愈伤组织培养和微繁殖等。
1.1 离体培养离体培养是将植物体表层(如幼叶、幼茎)或内部组织(如胚乳、子叶)分离出来,移入含有适当营养盐和植物生长调节物的培养基中培养。
通过控制培养条件和添加合适的植物生长激素,可以诱导组织分化和再生形成新植株。
1.2 愈伤组织培养愈伤组织是植物在受到外界刺激或损伤后,经过细胞分裂和组织再生形成的一种未分化的组织。
愈伤组织培养是利用这种特殊组织进行快速繁殖的一种方法,通过控制培养条件和添加植物生长调节物,可以诱导愈伤组织再生形成新植株。
1.3 微繁殖微繁殖是利用植物的微小芽或胚珠进行快速繁殖的方法。
通过培养条件的控制和植物激素的添加,可以诱导微小芽或胚珠快速生长并形成新植株。
2. 脱毒技术在植物组织培养中,由于植物体内可能携带病毒、细菌等病原体,因此会影响到组织培养的效果。
脱毒技术是为了解决这一问题而出现的一种重要技术。
脱毒技术能够有效地清除植物体内的病原体,提高组织培养的成功率和繁殖效率。
2.1 生物脱毒生物脱毒是利用生物制剂对植物体内的病原体进行清除的方法。
通过培养环境中添加含有特定菌株或真菌的生物剂,可以促进植物体内病原体的清除和组织的健康再生。
2.2 生理脱毒生理脱毒是利用植物自身的生理代谢特性进行脱毒的方法。
通过调节培养条件和添加特定的营养物质,可以激活植物的生理代谢活性,加速病原体的清除和组织的再生。
植物快繁技术绪论1、植物组织培养:是指在无菌和人工控制的环境条件下,利用适当的培养基,对离体的植物器官、组织、细胞及原生质体进行培养,使其再生细胞或完整植株的技术。
又称为植物离体培养。
2、无菌:是指使培养皿、器械、培养基和培养材料等处于无真菌、细菌、病毒等微生物的状态,以保证培养材料在培养器皿中正常生长发育。
3、外植体:植物组织培养中,使用的各种器官、组织和细胞统称为外植体。
4、愈伤组织:是指外植体因受伤或在离体培养时,其未分化的细胞和已分化的细胞进行活跃的分裂增殖而形成的一种无特定结构和功能的组织。
5、组织培养的特点(1)整个过程无菌(2)多数利用成分完全确定的人工培养基,植物材料处于异养(3)培养材料可以是器官、组织、细胞,处于离体状态,在不同水平表现细胞全能性(4)可形成克隆,或达到其他目的(5)在封闭容器中进行(6)环境温度、光照都是人为设定6、组织培养的研究类型(1)组织培养(2)器官培养(3)胚胎培养(4)细胞培养(5)原生质体培养7、植物组织培养的应用n 植物离体繁殖n 无病毒苗木培育n 培育新品种或创制新物种n 次生代谢物生产n 植物种质资源的离体保存n 人工种子8、植物组织培养的形成与发展▪1902年,Haberlandt发表了植物组织培养的第一篇论文,提出了植物细胞全能性的观点。
▪1934年,White首次建立了第一个活跃生长并能继代增殖的无性繁殖系。
▪1952年,Morel获得第一株植物脱毒苗▪1978年,Melchers获得了第一个属间体细胞杂种—“Pomato”。
第一章实验室及基本操作1、常用的灭菌方法n 高压蒸汽灭菌n 干热灭菌n 化学药剂灭菌n 紫外灯灭菌n 过滤除菌2、高压蒸汽灭菌法▪使用高压锅前添加足够水▪锅内气压太高会引起部分有机物的分解▪灭菌后气压表归零之前不要打开锅盖▪橡胶等有机物会因高温高压而变性▪不要堵塞排气孔,否则会引起危险3、无菌操作▪实验之前30min将超净工作台的紫外灯打开,进行灭菌。
植物组织培养快繁技术摘要:本文简要介绍植物组织培养的基本原理和方法,综述植物脱除病毒的热处理、茎尖培养和抗病毒药剂3种方法的原理、发展史和技术方法,并介绍了几种常用的病毒检测方法。
同时还对植物组织培养脱毒快繁技术的应用前景作了预测分析.关键词:茎尖培养;组织培养;快繁脱毒技术;病毒检测;应用前景正文:1植物组织培养研究概况1。
1研究简史自从1943年怀特(White)提出植物细胞“全能性”(Totipotency)学说及诸多后学者(Steward,1958,Guha和Marteshwari,1964)相继证实后,引发植物组织和细胞培养快繁技术的快速发展.我国的专家学者在20世纪70年代后也在此领域做了大量的研究和开发工作,创造了很多新方法、新技术,提出不少新成果,开拓了植物组织培养快繁技术的新局面.目前采用组织培养脱病毒快繁及离体快繁生产株苗的技术已发展相当成熟[2]。
脱毒株苗具有无杂菌、适应能力较强、繁育较快、质量优、抗性好、分蘖性强、繁殖系数高、大批量生产、周年供应、便于运输等优点,已得到有关专家的鉴定及高度评价和种植试验区、种植产区果农的认可。
例如脱毒马铃薯、脱毒红薯、脱毒生姜、脱毒大蒜、脱毒草莓、脱毒苗木、脱毒花卉等,已成为现代农民致富的新宠.1。
2植物组织培养和脱毒快繁的定义植物组织培养(Planttissueculture)是指在无菌的条件下,将离体的植物(根、茎、叶、花、果实、种子等)、组织(形成层、花药组织、胚乳、皮层等)、细胞(体细胞和生殖细胞)以及原生质体,培养在人工配制的培养基上,给予适当的培养条件,使其长成完整的植株。
由于培养物是脱离植物母体,在玻璃瓶中进行培养,所以也叫做离体培养。
其完整过程是:脱分化再分化生长外植体愈伤组织生长点或根茎叶完整植株发生胚状体在有些情况下,再分化也可不经愈伤组织阶段,而直接发生于脱分化的细胞。
植物组织培养脱毒快繁是人工在无菌条件下利用植物体的一部分,在人工控制的营养和环境条件下繁殖植物,脱除病毒得到无毒苗株,继而在大田快速繁殖的技术。
脱毒及离体快繁,这是目前植物组织培养应用最多、最广泛和是有效的一个方面。
主要是进行茎尖培养脱除病毒。
对于脱毒苗、新育成、新引进、稀缺良种、优良单株、濒危植物和基因工程植株等可通过离体快速繁殖,同时可不受地区和气候的影响,比传统的繁殖方法快数万倍.植物组织培养已发展成为一门富有生命力的学科.追究植物组织培养脱毒快繁技术的发展简史,在11世纪就出现的热处理脱毒法,最早解决一些作物的病毒病害问题。
20世纪50年代发展的植物组织培养技术为脱毒提供了一条有效途径。
现在植物的脱毒技术有多种,其中应用最广泛的有3种:热处理法、茎尖培养脱毒法、抗病毒药剂法,将不同的方法相结合起来应用效果更好,它们的脱毒原理各不相同.2脱毒技术及其原理2.1热处理法2。
1.1概述热处理法是利用病毒和寄主植物对高温的忍耐性的差异,使植物的生长速度超过病毒的扩散速度,得到一小部分不含病毒的植物分生组织,然后进行无毒个体培育.热处理法中,最主要的影响因素是温度和时间。
热处理可通过热水浸泡或湿热空气进行。
热水浸泡对休眠芽效果较好,湿热空气对活跃生长的茎尖效果较好,既能消除病毒又能使寄主植物有较高的存活机会。
热空气处理比较容易进行,把旺盛生长的植物移入到1个热疗室中,在35~40℃下处理一段时间即可,处理时间的长短,可由几分钟到数月不等[4].热处理的方法有恒温处理和变温处理,处理的材料可以是植株,也可以是接穗。
2.1。
2原理热处理脱毒是根据病毒与寄生细胞对高温的忍耐程度不同,选择适当的温度和处理时间,植物组织中的很多病毒被部分地或完全地钝化而可控制其的活动,但很少伤害甚至不伤害寄主组织,从而让植物细胞加快生长,使生长点附近不带病毒,从而达到脱毒的目的。
2.1。
3简史用热处理脱除马铃薯卷叶病毒(PLRV)是世界上脱除已知病毒最早的例子。
早在1889年,印度尼西亚爪哇人就把繁殖用的甘蔗切断放在50℃左右的热水中浸泡30min来防止枯萎病(现已知是病毒病)的发生。
现在世界许多国家在种植前仍使用这种方法处理甘蔗。
但是后来人们发现热水对植物的伤害大,Bake(1972)研究表明在热水处理中,由于植物组织经过淋洗,在水中长期浸泡常常会窒息死亡,并且这种处理也会打破或延长植物的休眠期.所以现在更常用的方法是将病毒感染的植物用35~38℃热空气处理14~28d或者更长时间进行脱毒[4]。
此法尤其适合处理生理干旱的材料和处于休眠状态的果树。
热处理脱毒法已应用多年,被世界多个国家利用.该项技术要求的设备条件比较简单,脱毒操作也比较容易.主要缺点是脱毒时间长,脱毒不完全,例如TMV这类杆状病毒就不能用这种方法脱除,因而该方法有一定的局限性。
2.2茎尖培养脱毒法2.2.1概述茎尖培养脱毒就是采取茎尖分生组织离体培养的方法获取无病毒试管苗,其方法是在解剖镜下,用锋利的解剖刀进行迅速准确地茎尖剥离,因为茎尖分生组织基本不带病毒,利用植物茎尖分生组织进行离体培养,再结合病毒检测,就可以获得无病毒的植株.茎尖培养中最主要的影响因素就是切取茎尖的大小,一般要求茎尖长度小于1mm。
技术上通常切取茎尖越小,脱毒效果越好,但是茎尖培养成活率变低。
曹为玉等研究发现葡萄茎尖长度与存活率成正相关,与脱毒率成反相关。
当切取茎尖长度为0.2~0。
3mm时,存活率为21%~38%,脱毒率为91.4%~97%;当切取0。
5mm以上时,存活率为75%~83%,脱毒率仅为70.6%~76.5%[8]。
茎尖培养脱毒法脱毒率高,脱毒速度快,能在较短的时间内得到较多的原种繁殖材料,但这种方法存在的缺点是植物的存活率低。
为了克服这一缺点,现在经常是将茎尖培养与热处理相结合来使用。
茎尖培养与热处理相结合之所以能够提高脱毒效果,是由于热处理可使植物生长本身所具有的顶端免疫区得以扩大,有利于切取较大的茎尖(在1mm左右),从而能够提高培养或嫁接的成活率。
如大樱桃置于45℃的恒温培养室内,培养35d,再切取0.2~0。
4mm的茎尖培养,平均脱毒率为98%。
2.2。
2原理茎尖培养脱毒的原理是植物体内病毒靠维管束系统移动,分生组织中没有维管束存在,病毒只靠胞间连丝移动,速度很慢,难以追上生长活跃的分生组织,所以旺盛生长的根尖、茎尖一般都无病毒或很少有病毒分布。
2.2.3简史White于1943年首先发现在感染烟草花叶病毒的烟草生长点附近病毒的浓度很低,甚至没有病毒.这一发现为茎尖培养脱除病毒提供了理论依据。
怀特(White,1934)在体外培养感染了TMV病毒的马铃薯根,并用枯斑寄主法测定了根不同部位的病毒含量,发现根尖部位的病毒含量比其他部位少,甚至不存在病毒。
Morel等1952年首先从感染了花叶病毒和斑萎病毒的大丽花植株上切取茎尖,通过组织培养获得了无病毒的大丽花,证明了前人假设的正确性.此后,人们采用茎尖培养技术相继获得了多种植物的无病毒植株。
现在茎尖培养脱毒法已经成为植物无毒苗生产中应用最广泛的一种方法。
据研究,植物体内某一部分组织器官不带病毒的原因是:分生组织的细胞生长速度快,病毒在植物体内繁殖的速度相对较慢,而且病毒的传播是靠筛管组织进行转移或通过细胞间连丝传递给其他细胞,因此病毒的传递扩散也受到一定限制,这样便造成植物体的部分组织细胞没有病毒。
根据这个原理,可以利用茎尖培养来培育无病毒苗木。
2.3抗病毒药剂法2。
3.1概述抗病毒药剂法,这是一种新的脱毒方法,运用一些抗病药剂的作用影响病毒RNA的复制形成,干扰病毒的正常生长,从而达到除去病毒的目的.常用的抗病毒化学药物有三氮唑核苷(病毒唑),5—二氢尿嘧啶(DHT)和双乙酰-二氢-5—氮尿嘧啶(DA-DHT)。
这些药物常常通过直接注射到带病毒的植株上,或者加到植株生长的培养基上。
这种方法一般要与茎尖培养相结合应用。
经过抗病毒药剂处理的嫩茎,切取茎尖,再进行组织培养,就会提高脱毒率和成活率。
采用病毒抑制剂与茎尖培养相结合的脱毒方法,可以较容易的脱除多种病毒,而且这种方法对取材要求不严,接种茎尖可大于1mm,易于分化出苗,提高存活率。
2.3。
2原理抗病毒药剂法的作用原理是抗病毒药剂在三磷酸状态下会阻止病毒RNA帽子结构形成而达到除去病毒的效果。
2。
3。
3简史罗晓芳等于1996年曾在培养基中加入病毒唑,脱除了2种苹果潜隐病毒[1]。
除了以上3种脱毒方法以外,花药培养法、茎尖嫁接脱毒、愈伤组织培养法、胚珠培养法也可用于植物组织培养快繁脱毒.3脱毒效果的检测方法经过脱毒处理的植株是否还存在病毒,必须经过病毒学检测才能确定。
可靠的病毒检测方法与建立有效的脱毒方法同等重要。
传统上一直沿用的检测方法是目测法,但是这种方法无法剔除潜隐性病毒。
后来出现的指示植物法,扩大了检测范围.近年来随着生物科学的快速发展,免疫学方法、分子生物学方法等许多先进的理化技术的应用,促进了病毒检测技术的改进与发展。
下面简要介绍几种检测脱毒苗的方法。
3。
1植株直接测定法直接观察植株茎叶有无某种病毒引起的可见症状,是最简单的测定方法。
不过,由于某些寄主植物感染病毒后需要较长的时间才出现症状,有的并不能使寄主植物出现可见的症状,因而无法快速检验。
3.2指示植物法此法最早是美国的病毒学家Holmesl929年发现的。
利用病毒在其他植物上出现症状的特征,作为鉴别种类的标准。
当原始寄主的症状不明显时,就可用指示植物法,这是因为指示植物比原始寄主更容易表现症状.具体做法是将病叶研磨,把汁液接种到寄主植物上,对于木本植物,是将原始寄主嫁接到指示植物上。
指示植物法简便易行,成本低,但它灵敏性差,所需时间长,难以区分病毒种类。
3。
3血清学方法抗血清鉴定法要进行抗原的制备(包括病毒的繁殖,病叶研磨和粗汁液澄清等),抗血清的采收、分离等.血清可分装到小玻璃瓶中,贮存在-15~—25℃的冰冻条件下。
测定时,把稀释的抗血清与未知的病毒植物在小试管内混合,这一反应导致形成可见的沉淀,然后根据沉淀反应来鉴定病毒。
此法灵敏度高,获得检测结果迅速,是目前检测病毒的一种最好方法.此外,PCR微量板杂交法[5]、蛋白质电泳法、嫁接检测法、电子显微镜检定法、病毒症状学诊断法等也可以用来检测植物病毒。
4植物组织培养脱毒快繁技术应用前景的简述植物组织培养技术在作物上主要用于育种和良种繁殖,其次用于无性繁殖作物的脱毒和快繁以及种质的保存等,可见植物组织培养脱毒快繁技术对于农作物苗木的生产具有极其重要的地位。
一些农作物或是花卉植物等因长期的栽培和种植,植物体内被侵染携带病毒、种性退化现在能利用组织培养及快繁脱毒方法开发出的植物脱毒新品种有马铃薯、甘薯、生姜、大蒜、草莓、罗汉果、棕榈、剑麻、香蕉、甘蔗以及花卉植物等几百种再生植株.目前这种技术已得到了广泛应用,前景及范围非常广阔。