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植物多倍体诱发及细胞学鉴定一、实验目的1、通过实验掌握人工诱导多倍体植物的方法和技术，观察多倍体的特点。
2、利用染色体分析的方法对多倍体细胞做出准确判断。
二、实验原理（一）多倍体1、多倍体是指细胞中具有3个或3个以上染色体组的细胞或个体。
多倍体可以分为:同源多倍体(具有3个以上相同染色体组的细胞或个体，且染色体组来源于同一物种（AAA，AAAA）；异源多倍体(具有3个以上染色体组且染色体组来源于不同物种，通常由不相同的种杂交的杂种再经过染色体加倍而来（AABB，AABBDD）。
2、多倍体是适应恶劣环境条件的结果。
3、自然界多倍体产生的原因：温度骤变，使细胞分裂时染色体不分离造成；有丝分裂时染色体分离而细胞没有分裂，导致体细胞染色体加倍；减数分裂时染色体没有减数，使生殖细胞染色体加倍。
4、多倍体植物的特性：A巨大性B可孕性低C适应性强D有机合成速率增加E克服远缘杂交的不结实性（二）人工诱导多倍体的方法、原理及鉴定方法1、人工诱导多倍体的方法A、物理方法温度剧变、机械损伤、各种射线处理等B、化学方法各种植物碱、麻醉剂、植物生长激素等。
秋水仙素是诱导多倍体的最有效的方法之一。
2、秋水仙素的作用A、细胞分裂时抑制纺锤体的形成B、抑制细胞板的形成C、无残效3、诱导方法A种子浸渍处理B点滴法(滴定法) C 毛细管法D 羊毛脂法E球根处理F复合处理G离体组织水平上诱导单个细胞内染色体加倍3、鉴定方法A、间接鉴定：观察气孔的大小和花粉粒的体积最为可靠。
B、直接鉴定：直接检查花粉母细胞或根尖细胞内的染色体数目。
三、实验步骤1、取材：取大蒜（洋葱、蚕豆、小麦等）发根至0.5-1cm，然后转入盛有0.15%秋水仙素水溶液的培养皿中继续培养24小时，待观察到根部有膨大时取出固定。
与在水中培养的材料做对照。
2、固定：在卡诺固定液中固定24小时，移至70%乙醇中保存或备用。
3、解离：植物的分生组织如根尖、茎尖等需要经过处理以便除去细胞之间的果胶层并使细胞壁软化，经解离的组织才能使压片步骤顺利进行。
实验二十一多倍体的人工诱发和鉴定【实验目的】1、通过实验掌握诱导植物多倍体的方法和技术，观察多倍体的特点及染色体加倍后的细胞学表现；2、学习植物材料的固定方法和常规压片技术；3、利用染色体分析的方法对多倍体的细胞做出准确判断。
【实验原理】各种生物细胞中的染色体数目一般是恒定的，在自然因素和人工诱变因素（物理的、化学的）作用下，生物体细胞中的染色体数目也会发生变异，从而导致生物性状、育性、生活力等一系列改变。
多倍体是指具有了三套或三套以上完整染色体组的个体，分为三类。
同源多倍体（autoploid）：是指增加的染色体组来自同一物种（如水稻的同源三倍体、同源四倍体等）。
异源多倍体：是指增加的染色体组来自不同的物种（如普通栽培小麦）。
同源异源多倍体；是指使异源多倍体的染色体数再加倍所得个体，如人工合成的八倍体小粒野生稻。
自然发生多倍体的概率很低，如水稻中发生同源三倍体的频率为1/50000~1/30000。
利用一些诱发因素可以人工诱变植物产生多倍体，这些因素包括物理的温度剧变、机械损伤、各种射线处理等，还有化学因素，如植物碱、麻醉剂、植物生长激素等处理方法。
其中，秋水仙素（colchicine）是诱导多倍体形成最为有效和常用的药品之一。
它是从百合科植物秋水仙属秋水仙（Colchicum autumnale）的种子和鳞茎中提炼出来的一种植物碱，对植物种子、幼芽、花蕾、花粉、嫩枝等都可产生诱变作用，其分子式C22H25NO6。
商品秋水仙素为淡黄色粉末，易溶于冷水、酒精、氯仿和甲醛，但在热水中溶解度较低，不易溶于苯和乙醚。
毒性极强，可导致眼睛暂时失明及使中枢神经系统麻痹而导致呼吸困难。
使用时要注意安全并需做好药品管理工作。
一般认为，秋水仙素的主要作用是抑制细胞分裂时纺锤体的形成，使染色体不能向两极移动而被阻止在中期，染色体数目加倍，当秋水仙素处理停止后，细胞继续分裂，就形成多倍体的组织。
若多倍体组织分化产生的是性细胞，则所产生的配子也是多倍性的，因而可以通过有性生殖途径把多倍体特性遗传下去。
不同植物同源多倍体的诱发与鉴定实验设计引言：植物的多倍化是指由于染色体加倍而产生的具有多个完整染色体组的个体。
不同植物的同源多倍体（autopolyploid）可以通过各种实验诱发和鉴定，本文将就多种诱发和鉴定方法进行阐述。
一、诱发同源多倍体的方法1. 化学诱导：可以通过化学物质诱导多倍化，如染色体稳定化剂Colchicine、Oryzalin等。
将适宜的浓度的诱导剂溶液喷洒到植株的叶片上，使其通过气孔进入植物体内，引发多倍化。
2. 温度诱导：某些植物的花粉直接暴露在高温中，能够诱发染色体变异，进而产生同源多倍体。
诱导温度通常为35-36℃，持续时间为数小时。
3. 辐射诱导：辐射可以直接或间接地引发染色体变异，造成多倍化。
常用的辐射源包括 X 射线、γ 射线、紫外线等。
4. 细胞学处理：通过细胞培养技术，可以利用化学物质、温度或辐射等对植物细胞进行处理，再通过诱导分化和植株再生获得多倍化植株。
二、鉴定同源多倍体的方法1. 核型分析：利用生物学核型技术，可以观察染色体数目和结构是否有变化。
常用的核型分析方法有染色体计数法和比较基因组杂交法。
2. 组织学观察：通过石蜡切片技术，观察植物组织的细胞形态和染色体数目。
不同倍化水平的同源多倍体在细胞外观和染色体数目上会有明显差异。
3. 分子标记分析：利用分子标记技术，如RAPD、SSR等，可以对同源多倍体的基因组进行分析，寻找遗传多样性和差异。
4. 表型观察：观察同源多倍体在形态、生理和生殖方面的变化，通过与野生型或同源单倍体进行比较，寻找差异。
结论：通过化学诱导、温度诱导、辐射诱导和细胞学处理等方法可以实现同源多倍体的诱发，而通过核型分析、组织学观察、分子标记分析和表型观察等方法可以对诱发的同源多倍体进行鉴定。
这些方法的综合应用可以帮助我们更好地理解同源多倍体的形成机制和遗传特征，为植物进化和育种工作提供理论和实践上的指导。
参考文献：1. 黄凤林, 柯华军, 林一明. 植物同源多倍体的诱导及鉴定[J].热带农业科学, 2007, 27(3): 202-207.2. 吴访苏, 韦佳伟, 郭少婵, 等. 植物染色体工程方法优化及染色体在植物生产中的应用[J]. 生物技术通讯, 2020, 31(6): 716-721.3. Li H, Li W, Hu G, et al. Advances on Induction and Identification of Autotetraploid Plants[J]. Molecular Plant Breeding, 2021, 19(4): 1929-1937.4. Jiang J, Gill B S. Different Species-Specific Chromosome Translocations in Triticum timopheevii and Triticum turgidumSupport the D-RNA Model for Nonhomologous Chromosome Synapsis[J]. Genetics, 1994, 15(1): 215-227.。
不同植物同源多倍体的诱发与鉴定实验设计要诱发和鉴定不同植物的同源多倍体，可以采用以下实验设计：1. 选择合适的植物材料：选择目标植物的种子、嫩芽或离体培养的组织为实验材料。
确保材料的品种和来源可靠。
2. 细胞处理：将植物材料经过适当的处理来诱导多倍体形成。
常用的处理方法包括化学处理、物理处理和生物处理等。
- 化学处理：使用合适的化学物质，如染色剂（如染色体特异性染料）或化学诱导剂（如某些植物生长调节剂），浸泡、喷洒或处理材料，以促进细胞的多倍化。
- 物理处理：利用离子辐射（如X射线或γ射线）或化学物理处理（如温度、压力）等方法，对植物材料进行处理，诱发细胞的多倍化。
- 生物处理：利用植物病原微生物（如农杆菌）或共生微生物（如植物内生菌）等与植物进行交互作用，诱导细胞多倍化。
3. 培养条件的优化：根据目标植物的生长习性和需要，对培养基的成分、光照条件、温度和湿度等进行优化调整，以促进多倍体形成和生长。
4. 细胞倍化检测：使用适当的细胞学方法来检测和鉴定多倍体细胞。
常用的方法包括：- 核型分析：通过染色体制备和染色，观察细胞的染色体数目和结构，来确定是否形成了多倍体。
- 流式细胞术：利用流式细胞仪分析细胞的DNA含量，多倍体细胞的DNA含量会相应增加。
- 核型鉴定：利用核型学方法，如比较基因组杂交或分子标记技术，检测植物材料的基因组组成和倍性。
5. 多倍体植株的筛选与培养：鉴定出多倍体细胞后，将其分离培养，筛选并培养出稳定的多倍体植株。
在进行实验设计时，应注意对照组的设置，以确保结果的可靠性和准确性。
同时，要充分记录实验过程和结果，以便进行数据分析和后续研究。
此外，还应考虑实验的重复性和统计学分析，以提高实验结果的可信度。
植物多倍体的诱发与鉴定一、实验目的1、掌握人工诱导多倍体的原理，及其在遗传育种中的意义。
2、掌握用秋水仙素诱发多倍体的方法。
二、实验原理自然界各种生物的染色体数目是相对恒定的，这是物种的重要特征。
遗传学上把一个配子的染色体数，称为染色体组(或称基因组)，用n表示。
一个染色体组内每个染色体的形态和功能各不相同，但又互相协调，共同控制生物的生长和发育、遗传和变异。
由于各种生物的来源不同，细胞核内可能具有一个或一个以上的染色体组，凡是细胞核中含有一套完整染色体组的就叫做单倍体，也用n表示。
具有两套染色体组的生物体称为二倍体，以2n表示。
细胞内多于两套染色体组的生物体称为多倍体，这类生物细胞内染色体数目的变化是以染色体组为单位进行增减的，所以称作整倍体。
多倍体普遍存在于植物界，目前已知道被子植物中约有l／3或更多的物种是多倍体，除了自然发生的多倍体物种之外，还可采用高温、低温、X射线照射、嫁接和切断等物理方法人工诱发多倍体植物。
在诱发多倍体方法中以应用化学药剂更为有效。
如秋水仙素、异生长素，富民农等，都可以诱发多倍体，其中以秋水仙素溶液效果最好，使用最为广泛。
秋水仙素溶液的主要作用是抑制细胞分裂时纺锤体的形成，使染色体向两极的移动被阻止，而停留在分裂中期的分布，这样细胞不能继续分裂，从而产生染色体数目加倍的核。
若染色体加倍的细胞继续分裂，就形成多倍性的组织．由多倍性组织分化产生的性细胞，可通过有性繁殖方法把多倍体繁殖下去。
如果将种子用秋水仙素浸渍，也可诱导多倍体植株产生。
多倍体已成功地应用于植物育种。
用人工方法诱导的多倍体，可以得到一般二倍体所没有的优良经济性状，如粒大、穗长、抗病性强等。
三倍体西瓜、三倍体甜菜、八倍体小黑麦已在生产上得到广泛的应用。
染色体加倍后必须进行鉴别，同源多倍体主要是根据形态特性来判断，如叶色、叶形及气孔和花粉粒的大小。
最为可靠的方法，是待收获大粒种子后，再将这些大粒种子萌发，制备根尖压片，然后检查细胞内的染色体数目，只有染色体数目加倍了，才能证明植株已诱变成为多倍体。
不同植物同源多倍体的诱发与鉴定实验设计实验设计：诱发和鉴定不同植物同源多倍体的实验设计主要包括以下几个步骤：准备材料、诱发多倍体、鉴定多倍体。
一、准备材料1. 植物种子或试管苗：选择需要研究的植物种子或试管苗作为实验材料。
2. 培养基：根据植物的需求配制适宜的培养基，通常包括基本培养基、诱导培养基等。
3. 生长室：提供适宜的光照、温度和湿度条件以促进植物生长。
二、诱发多倍体多倍体的诱导通常通过植物组织培养技术实现。
1. 无菌处理：将植物种子或试管苗表面进行消毒处理，以去除外源菌。
2. 初代培养：将消毒后的种子或试管苗分别接种到适宜的基本培养基上，培养至生长健壮的愈伤组织形成。
3. 诱导多倍体：将愈伤组织转移到适宜的诱导培养基上，添加适当的植物生长调节剂（如激素和抗生素），促使植物细胞发生有丝分裂异常或无丝分裂，从而诱导多倍体形成。
4. 多倍体分化：将诱导成功的多倍体组织进行分化培养，使其分化为正常形态的植株。
三、鉴定多倍体鉴定多倍体可以通过形态学观察、流式细胞术和染色体分析等方法进行。
1. 形态学观察：对诱导得到的植株进行形态学特征的观察，如株高、叶片大小和形状等与对照（二倍体）进行比较，多倍体往往具有较大的特征。
2. 流式细胞术：通过流式细胞仪对植物细胞进行染色体数量的测定，多倍体的染色体数量通常是对照的两倍或多倍。
3. 染色体分析：通过染色体制备和染色，使用显微镜观察染色体数量和形状，根据染色体的形态、大小和数量来判定多倍体。
四、数据统计与分析根据实验结果进行数据统计和分析，可以计算出多倍体的诱导率和鉴定率，并与对照进行比较分析，以评估实验的效果和可靠性。
总结：诱发和鉴定不同植物同源多倍体的实验设计主要包括准备材料、诱发多倍体和鉴定多倍体三个步骤。
在进行实验前，需要准备好实验所需材料和环境条件，包括植物种子、培养基和生长室等。
实验过程中，通过植物组织培养技术诱导多倍体的形成，并使用形态学观察、流式细胞术和染色体分析等方法对多倍体进行鉴定。
不同植物同源多倍体的诱发与鉴定实验设计同源多倍体是指某一物种通过自交或杂交产生的有多个完全一致的染色体组成的个体。
不同植物同源多倍体的诱发与鉴定是植物育种研究中非常重要的一项工作，它可以为植物改良提供可靠的基础。
实验设计1. 诱导同源多倍体的方法诱导同源多倍体的方法主要有化学处理、温度处理、激素处理、辐射处理等。
根据不同的诱导方法，设计出相应的实验方案。
以花生为例，可以使用化学物质染色体剂科铵处理，放置8-10小时后，用水冲洗去除药剂。
待植株生长至4-5个叶子时，对其进行基因组扫描，筛选出同源四倍体。
2. 鉴定同源多倍体的方法鉴定同源多倍体的方法主要有染色体计数、ISSR-PCR、流式细胞仪、比琼酸染色等。
根据不同的鉴定方法，设计出相应的实验方案。
以玉米为例，可以采用比琼酸染色方法。
将玉米新生芽切片并染色，放置显微镜下观察其染色体的数量与形态，区分出同源多倍体。
实验步骤1. 对植株进行处理按照设计的实验方案，对植株进行处理。
根据不同的诱导方法，处理时间也会有所不同。
2. 植株育种待植株生长至一定大小时，将其进行育种。
根据要求可选用不同的交配方式，如自交或杂交。
3. 植株基因组扫描按照设计的实验方案，对育出的幼苗进行基因组扫描，筛选出同源多倍体。
4. 植株染色体计数或其他鉴定方法对于同源多倍体的鉴定,可采用染色体计数或其他方法。
根据所选方法对植株进行染色、观察、计数等操作。
总结不同植物同源多倍体的诱发与鉴定是植物育种研究中非常重要的一项工作。
它可以为植物改良提供可靠的基础。
实验方案中的方法和步骤可以根据不同的研究需求进行调整和修改。
重要的是要严格执行实验方案，避免不必要的误差出现。
诱发多倍体的方法以及原理诱发多倍体是指通过特定的方法使植物细胞的染色体数目增加，从而形成多倍体。
多倍体植物具有较高的生物量和抗逆性，对于农业生产和园艺改良具有重要意义。
以下是常用的诱发多倍体的方法和原理。
1. 植物体培养法植物体培养法是通过培养细胞组织或器官在适宜的培养基上进行多倍体诱导。
常用的植物体培养方法包括愈伤组织培养和胚培养。
愈伤组织培养是将植物切割成小块并放入含有植物生长激素的培养基中培养，使其产生愈伤组织。
胚培养是将植物的胚或胚乳放入培养基中培养。
通过植物体培养可以诱导出多倍体植株，其中同理原理还有母体芽培养和离体的花粉培养等。
2. 化学诱导法化学诱导法是利用特定的化学药剂诱导细胞染色体数目的增加。
常用的化学诱导剂包括化学物质染色剂、细胞分裂抑制剂和DNA合成抑制剂。
染色剂可以干扰细胞分裂过程中染色体的正常分离，导致染色体数目的增加。
分裂抑制剂和DNA 合成抑制剂可以阻止细胞分裂和染色体复制，使得细胞内的染色体倍数增加。
化学诱导法的优点是方法简单、成本低廉，但是对细胞的毒性较大，可能会导致细胞的死亡。
3. 物理诱导法物理诱导法是利用特定的物理因素诱导细胞染色体数目的增加。
常用的物理诱导因素包括高温处理、低温处理、辐射处理和电脉冲处理等。
高温处理可以使细胞内的亚微孔流动加快，导致染色体数目的增加。
低温处理则可以影响染色体的分离和分裂过程，诱发多倍体的产生。
辐射处理可以引起细胞染色体的结构变化和损伤，使染色体组数增加。
电脉冲处理可以引起细胞膜的破裂和微孔的形成，使外部的染色体进入细胞内，从而产生多倍体。
以上是常用的诱发多倍体的方法和原理。
不同的方法适用于不同的植物种类和细胞类型，选择合适的方法可以提高多倍体的诱导效率。
诱发多倍体的目的是通过增加细胞染色体数目来改变植物的基因组，从而提高植物的生长性状和抗逆性，对于农业生产和园艺改良具有重要意义。
多倍体诱发及细胞学鉴定实验报告
多倍体诱发是一种常用的细胞诱发技术，它的原理是利用染色质聚集的程序来诱发染色体复制，从而在细胞可分裂的过程中，产生多半数多倍体细胞。
多倍体诱发实验一般可以根据实验室不同需求来实施，其原理是通过建立多倍体的染色体数，为研究细胞的生物学和遗传学研究提供学习模型。
本实验中，我们采用405nm（紫外）的扫描激光束，在雪莉2-8（CHO）细胞株中进行多倍体诱发实验。
首先，在细胞培养皿中贴满CHO细胞，随后用紫外光照射4秒，以聚集染色质的形式诱导染色体复制。
随后，用培养基成功培养多倍体细胞，并经过延续文献内容，其染色体数处于巴氏体期。
之后，我们用下列材料进行了细胞学鉴定，建立了染色体数的真实状况。
首先，我们通过原子力显微镜（AFM）观察细胞的外形特征，并观察细胞的表面晶粒; 然后，以可见光成像和三维恒定焦距倒相聚焦显微镜（TIFM），进一步探讨了细胞形态和染色质结构;最后，我们采用GenePaintFISH试剂盒，对样品进行染色体染色，以求知多倍体细胞的染色体数。
经过多倍体诱发实验及细胞学鉴定，我们发现雪莉2-8细胞株有49个染色体，其中染色体I~45有2N（2倍体）、染色体46~48有3N（3倍体）和染色体49有4N（4倍体）的染色体，其中4N染色体的比例和染色体数均与AFM、TIFM和GenePaintFISH鉴定结果相符，推断考察的细胞为含有巴氏体的多倍体细胞。
结论部分，本实验通过多倍体诱发以及细胞学鉴定，鉴定出雪莉2-8 细胞株染色体数为49个，其中有2N、3N和4N三种染色体，细胞为含有巴氏体的多倍体细胞，因此本实验获得了成功的结果。
实验七人工诱发多倍体植物一、实验目的与要求了解人工诱发植物多倍体的原理、方法及其在植物育种上的作用；，观察植物多倍体的特点，鉴别植物染色体数目的变化及引起植物其他器官的变异情况。
二、实验类型本实验为验证型实验。
三、实验原理及说明多倍体的诱发作用是由于药物抑制了纺缍丝的形成，使每个染色体纵裂为二以后，不能向二极分开，同时细胞也不能分裂成二个细胞，这样每个细胞染色体增加了一倍，便形成多倍体细胞。
人工诱导多倍体通常采用化学方式。
常用的化学诱变剂是秋水仙素，其作用机制是破坏纺锤丝，使细胞停留在分裂中期，阻碍了复制的染色体向两极移动，从而产生倍性增加的细胞。
秋水仙素是在百合科植物秋种红番红——秋水仙的（Colchicum autumnale）的种子及器官中提炼出来的一种生物碱。
化学分子式是C22H25O6N,具有麻醉作用，对植物种子、幼芽、花蕾、花粉、嫩枝可产生诱变作用。
秋水仙素为白色粉末，易溶于冷水、乙醇、甲醛中，有剧毒，使用时要特别注意，切勿使药物进入眼中或口中。
它的主要作用是抑制细胞分裂释纺锤丝的形成，使染色体不能向两极移动，细胞分裂被阻止在分裂中期，这样的细胞不能继续分裂，就形成多倍性组织，由多倍性组织分化产生性细胞，所产生的配子是多倍性的，因而也可通过有性繁殖方法把多倍体繁殖下去。
多倍体已成功的应用于植物育种，用人工方法诱导多倍体，可以得到一般二倍体所没有的优良经济性状，如粒大、穗长、抗病性强等。
三倍体西瓜、三倍体甜菜、八倍体小黑麦已在生产上应有。
四、实验仪器五、实验内容和步骤1.材料准备元葱（2n=16）, 黑小麦（2n=14）, 蚕豆（2n=12）。
显微镜，载玻片，盖片，镊子，解剖针，恒温水浴（60℃），刀片，滴管，吸水纸，小试管，黑纸等。
试剂：Schiff试剂，漂洗液，蒸馏水，1NHCL，0.02%或0.05%的秋水仙素，45%醋酸。
Schiff试剂是Feulgan反应的染色剂，配方如下：溶解0.5g碱性品红洁净于100ml蒸馏水中，搅动使其溶解，冷却至58℃，过滤一棕色试剂瓶中，待滤液冷却至26℃加10ml1NHCL 和0.5g偏重亚硫酸（氢）钾（钠）。
植物多倍体的诱发与鉴定张延杰山东大学生命科学学院09级四班200900140178摘要通过对大蒜根尖的秋水仙素处理，将根尖进行多倍体诱导，了解人工诱发多倍体植物的原理、方法及其在植物育种上的意义。
初步掌握用秋水仙素诱发多倍体的实验技术和多倍体的鉴定方法。
引言多倍体广泛地存在于植物界，目前已知被子植物中有三分之一以上的物种是多倍体，如普通小麦是异源六倍体，棉花是四倍体，此外还有烟草等，这些部是自然界存在的多倍体。
多倍体产生的途径除自然发生外。
也可以采用高温、低温、嫁接、切断和射线处理等物理方法和化学药剂处理方法，在这些方法中以化学药剂处理最为有效，如秋水仙素，萘嵌戊烷、异生长素、植物激素、富民隆等，都可诱发多倍体，其中应用最广泛、效果最好的是秋水仙素。
秋水仙素是由百合科秋水仙属的秋种番红花一一秋水仙素(Colchicum autumnale)的种子和器官中提炼出来的一种生物碱。
化学分子式为。
它具有麻醉作用，对植物的种子、幼芽、花蕾、花粉、嫩枝等可产生诱变作用，它的作用机理是抑制细胞分裂时纺缍体的形成，使复制后的染色体不能拉向两极，细胞不能继续分裂形成两个子细胞，从而导致染色体加倍，形成多倍体细胞，在此基础上进一步发育成多倍体植物，多倍体植物可以通过有性繁殖进行繁殖下去。
用人工方法诱导的多倍体，可以得到一般二倍体没有的优良性状，如大粒、大穗、内含物量增加、抗病性强等。
人工培育的三倍体西瓜、三倍体甜菜、八倍体小黑麦已在生严上厂泛应用。
对多倍体的鉴定，除了检查染色体数目变化外，形态特征的变异也是一个重要方面。
多倍体植物的气孔、花器、花粉粒、种子、果实等部分明显变大，气孔数目减少而密度变稀，同源多倍体育性有一定的降低，所以同源多倍体中有部分畸形的不育花粉粒。
实验材料：1、活体材料大蒜。
2、实验器具显微镜、剪刀、培养皿、载玻片、盖玻片、吸水纸、培养箱、镊子、解剖镜、镊子、解剖针、培养皿等。
3、药品改良苯酚品红染液、固定液、1mol／L HCl、冰醋酸、无水乙醇、医用乙醇（75%）等。
