细胞株稳定性研究方法
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稳定细胞株构建方法我折腾了好久稳定细胞株构建方法,总算找到点门道。
说实话,稳定细胞株构建这事,我一开始也是瞎摸索。
我先讲讲我最开始犯的错啊。
我就想着只要把目的基因转染进细胞不就成了嘛。
我就用了脂质体转染法,转染的时候,我就按照说明书大概弄了一下那个比例,结果转染效率超级低。
就像你想给一群人送信,结果只找到几个人能帮忙送,大部分信都送不出去一样,失败得很彻底。
后来我就研究转染效率低的原因。
发现那个脂质体和DNA的比例很关键。
我就开始一点一点试着调整比例,每次调整完就做一次转染,看看效果。
这就像做饭,盐放多放少得试出个合适的量。
经过好多次尝试,转染效率终于提高了一些。
转染成功只是第一步。
接下来要用抗生素筛选。
我一开始用的抗生素浓度不太对。
浓度低了吧,好多没转染成功的细胞也能存活,这样建出的细胞株就不纯。
浓度高了呢,连转染成功的细胞都被杀死了。
这就是我又一个失败的经历。
然后我就查各种资料,询问身边的同行,大概确定了不同细胞类型适合的抗生素浓度范围,再在这个范围内进行多次测试,才找到了合适的浓度。
我还试过病毒感染的方法构建稳定细胞株。
这个方法呢,病毒包装就很关键。
我自己包病毒的时候,一不小心就容易污染,前面的努力就白费了。
就像盖房子,基础都被破坏掉了。
我总结的经验就是,在包病毒的时候,所有的操作都要超级小心,从试剂的准备开始,每一步都要保证是无菌的,手消毒,台面消毒,试剂瓶消毒一个都不能少。
还有一点,无论是哪种转染或者感染的方法,细胞状态很重要。
我有一次没注意细胞的状态,拿了状态不太好的细胞做实验,转染后细胞死了一大片。
所以呢,养成提前查看细胞状态的习惯特别好。
一定要找那些看起来很健康的细胞来进行构建操作。
总的来说,稳定细胞株构建真的是个需要耐心,不断尝试并且细心对待每一个环节的工作啊。
细胞株构建cld介绍细胞株构建是生物学研究中常用的实验手段,用于研究特定基因或蛋白的功能和调控机制。
cld(Cell Line Development)是指通过连续培养和筛选,从原始细胞中选择和构建出稳定的细胞株,用于后续的实验和应用。
本文将详细介绍细胞株构建cld的步骤和技术,以及在生物学研究和生物制药领域中的应用。
细胞株构建cld的步骤原始细胞的选择和培养1.选择适合的原始细胞:原始细胞应具有稳定的生长特性和较高的细胞增殖能力。
常用的原始细胞包括HEK293、CHO和Hela等细胞系。
2.原始细胞的培养:原始细胞应在适宜的培养条件下进行培养,包括适当的培养基、培养温度和CO2浓度等。
细胞的培养密度和培养时间应根据细胞类型和实验要求进行优化。
细胞株的构建1.细胞的稀释:将原始细胞进行稀释,使得每个细胞单元之间有足够的空间进行生长和分裂。
常用的方法包括限稀稀释法和限界稀释法。
2.单细胞的分离:将稀释后的细胞悬浮液进行单细胞分离,使得每个细胞单元在培养皿中独立生长。
常用的方法包括有限稀释法和限界稀释法。
3.细胞的培养和扩增:将分离的单个细胞进行培养和扩增,使得细胞形成细胞集落或克隆。
培养过程中需要对细胞进行定期观察和细胞数目的统计,以评估细胞生长的情况。
4.细胞的筛选和鉴定:通过对细胞集落或克隆进行筛选和鉴定,选择具有所需表型和功能的细胞株。
常用的筛选方法包括药物抗性筛选、表型筛选和功能鉴定等。
5.细胞株的稳定性评估:对选出的细胞株进行稳定性评估,包括生长特性、表型稳定性和基因表达稳定性等。
稳定性评估需要长期培养和观察。
细胞株的保存和传代1.细胞株的保存:选出的稳定细胞株应进行冻存或液氮保存,以备后续使用。
保存条件和方法应根据细胞类型和实验要求进行优化。
2.细胞株的传代:细胞株的传代是指将细胞株从一代传递到下一代。
传代过程中需要控制细胞的密度和培养时间,以保证细胞的正常生长和稳定性。
细胞株构建cld的应用生物学研究中的应用1.基因功能研究:通过构建特定基因敲除或过表达的细胞株,研究基因在细胞生物学过程中的功能和调控机制。
生物药物研发中的细胞培养技术使用方法细胞培养技术在生物药物研发中扮演着至关重要的角色。
随着科技的不断进步和对生物药物市场需求的提高,研究人员对细胞培养技术的使用方法进行了深入研究和不断优化。
本文将详细介绍生物药物研发中常用的细胞培养技术使用方法。
一、细胞培养技术概述细胞培养技术是指将活体细胞放入细胞培养基中,经过一定的条件培养和维持来繁殖和生长。
它为药物研发提供了可控的环境,并能模拟体内生理条件,是制备大量生物药物的关键步骤之一。
二、细胞培养技术的基本步骤1.细胞株的选择:根据研究的需求和目标,选择适合的细胞株进行培养。
常见的细胞株有动物细胞、细菌细胞和真菌细胞等。
细胞株的选择应考虑其生长速度、稳定性和产物表达能力。
2.培养基的配制:根据细胞株的要求,配制适合其生长的培养基。
培养基通常由营养物质、生长因子、血清和抗生素等组成,以提供细胞繁殖和生长所需的营养和环境。
3.细胞的传代:细胞在培养基中生长到一定程度后,需要进行传代以保持其活力和生长状态。
传代的方法可以通过培养皿法、悬浮培养法等进行。
4.细胞培养条件的控制:合理的细胞培养条件对细胞生长和产物表达至关重要。
包括温度、湿度、pH值和气体成分等。
不同细胞株和表达系统对这些条件的要求有所不同,需要根据实际情况进行优化调整。
5.细胞培养过程监测与控制:细胞培养过程中的监测和控制是保证培养的稳定性和一致性的重要步骤。
监测常用的指标包括细胞密度、生长速率、细胞新陈代谢产物和细胞器官结构等。
根据实时数据,可以对培养条件进行调整以提高产物表达和培养效果。
三、常用的细胞培养技术1.传统细胞培养技术:传统的细胞培养技术主要应用于初步筛选和鉴定活体细胞株。
其操作简单,但培养周期长,细胞的生长速度较慢。
2.悬浮细胞培养技术:悬浮细胞培养技术广泛应用于生物制药领域。
悬浮细胞培养技术中,细胞以单个或成团状存在于培养基中,培养中的悬浮细胞可以快速繁殖并产生大量的生物药物。
稳定细胞株筛选流程稳定细胞株筛选的流程主要包括以下几个步骤:1.构建表达载体:首先,需要构建表达目的基因的质粒载体。
该载体通常含有启动子、目的基因和选择标记基因等元件。
启动子可以控制基因的转录水平,目的基因可以是感兴趣的基因或报告基因,选择标记基因则用于筛选稳定细胞株。
2.细胞转染:将构建好的表达载体导入目标细胞中。
转染可以采用多种方法,如化学法、电穿孔法和病毒转染法等。
转染后,目标细胞中的外源基因片段将被导入细胞质。
3.选择压力:为了筛选稳定细胞株,需要加入选择压力。
选择压力可以是抗生素、毒素或药物等,只有在压力下能够存活的细胞才能继续生长和繁殖。
4.单克隆细胞筛选:经过选择压力后,细胞群体中可能存在不同的细胞克隆。
为了获得单克隆稳定细胞株,需要进行单克隆细胞筛选。
常用的方法有稀释分选法、限稀稀释法和流式细胞术等。
5.鉴定稳定细胞株:筛选出的单克隆细胞株需要进行进一步的鉴定。
可以通过PCR、Western blot、荧光显微镜观察等方法验证目的基因的稳定表达。
总结起来,稳定细胞株筛选的流程包括构建表达载体、细胞转染、选择压力、单克隆细胞筛选和鉴定稳定细胞株等步骤。
这个流程能够筛选出稳定地表达目的基因的细胞株,为基因功能研究和药物开发提供可靠的实验模型。
在实际操作中,稳定细胞株筛选的流程可能会因实验目的和细胞类型的不同而有所调整。
但总体而言,以上步骤是筛选稳定细胞株的基本流程。
通过稳定细胞株的筛选,可以获得稳定表达目的基因的细胞株,从而开展进一步的实验和研究。
稳定细胞株的筛选是基因功能研究和药物开发中必不可少的一步。
通过稳定细胞株的筛选,可以实现对目的基因的稳定表达,为研究基因功能和开发新药物提供有力支持。
因此,掌握稳定细胞株筛选的流程和方法对于科研人员和药物开发人员具有重要意义。
细胞株概念细胞株是指通过培养、分离、纯化等手段得到的一代单一类型的细胞群体。
细胞株可以作为重要的研究工具,用于细胞生物学、分子生物学、生物化学、制药学等多个领域。
细胞株的获得细胞株的获得一般包括以下几个步骤:1.细胞选择:选择适合繁殖的优良细胞,并进行分离、纯化。
例如,可以通过细胞外形、细胞生存能力等方式选择优异的细胞。
2.细胞培养:将所选细胞培养在适合其生长的培养基中,控制其营养、温度、湿度等条件,以便使细胞正常生长,快速繁殖。
3.细胞维持:对于获得的细胞株,要进行细胞培养、传代、维持,以保持其稳定性,避免不必要的突变、变异等。
细胞株分类细胞株可以根据以下不同方式进行分类:1.来源:细胞株可以来自于哺乳动物、鸟类、爬行动物、两栖动物、鱼类;也可以来自于微生物、植物等。
2.形态和功能:根据细胞形态和功能的不同,可以将细胞株分为不同类型,包括正常细胞株、恶性细胞株、转染细胞株、免疫细胞株等。
3.特性差异:细胞株也可以根据其特性的不同进行分类,包括分泌细胞株、胚胎干细胞株等。
细胞株应用细胞株可以广泛应用于以下领域:1.细胞生物学:细胞株是细胞生物学研究的基本工具,可以利用细胞株进行细胞分裂、分化、凋亡等现象的研究。
2.分子生物学:细胞株可以用于获得可大量生产特定蛋白质的细胞,同时也可以通过转染等技术研究基因表达、调控等方面的问题。
3.药物筛选:细胞株可以作为药物筛选的工具,在探索新的药物疗效、药物毒性等方面有着重要的应用。
4.生产:细胞株在生产生物制品、疫苗、抗体等方面起着不可或缺的作用。
总的来说,细胞株的研究和应用正成为生命科学领域中的热点问题,它为我们研究生命现象、开发新药、生产生物制品等带来了广阔的前景。
稳定转染细胞株(系)详细构建流程细胞的稳定转染稳定转染的是将外源基因整合到细胞自身的基因组上,使外源基因成为细胞基因组的一部分而得以复制。
对细胞进行稳定转染最终可筛选得到稳定细胞株,稳定细胞株在重组蛋白/抗体生产、基因编辑、功能研究等方面起着重要的作用。
本文主要介绍了细胞稳定转染的原理、如何进行稳转株筛选得到高表达的细胞株,同时还介绍了细胞稳转的影响因素及稳定转染的应用。
稳定转染实验流程从实验流程的角度看,稳定转染是建立在瞬时转染的基础上的:先对哺乳动物细胞进行转染,再对得到的细胞池进行筛选最终得到稳定细胞系。
在建立稳定转染细胞系时,我们需要使用选择标记来区分瞬时转染和稳定转染,通常质粒中带有选择标记,选择标记会与目的基因共表达,由此可以筛选出阳性克隆(外源基因已稳定整合至细胞的基因组上),同时剔除未稳定整合的细胞。
最终通过有限稀释得到稳定转染的单克隆细胞株。
细胞复苏细胞复苏是将保存在液氮冰箱中的细胞株解冻并重新培养的过程,将哺乳动物细胞进行复苏用于后续的细胞转染。
细胞复苏的关键是快融,防止在解冻过程中,产生的水珠形成冰晶损伤细胞。
载体构建及细胞转染将目的基因构建至载体(载体需带有抗性),随后将构建好的质粒线性化。
接着进行细胞转染,用于转染细胞的方式有多种,包括病毒转染、脂质体转染、电转、基因枪法等,在瞬时转染与稳定转染实验流程一文中介绍了脂质体转染细胞的详细实验操作流程。
细胞池筛选转染结束后即可得到细胞池,想要得到稳定转染的单克隆细胞株需要对细胞池进行筛选:先利用抗性标记筛选稳定转染的阳性克隆,再用有限稀释法挑取单克隆株。
另外如果想要得到高表达的稳定细胞株,需要对细胞池进行压力筛选(GS筛选系统或DHFR筛选系统),最终得到表达能力高的稳转细胞株。
稳定转染实验影响因素外源基因整合几率:外源基因整合几率决定了稳转株筛选的简易程度;拷贝数:一般情况下低拷贝或者单拷贝可以降低人为因素的干扰;结合位点:不同的整合位点决定了外源片段在染色体中的稳定性,有些区域易发生重组或者丢失,从而使稳转株筛选后出现丢失的现象;整合位点转录活跃度:整合位点转录活跃度决定了稳转株中外源基因片段的表达质量;稳定转染的应用待解决的问题解决方案外源基因要整合到细胞染色体上基因敲除以及基因插入突变筛选等修饰基因组的研究细胞之间存在个体差异,同一类型细胞,不同个体细胞基因组存在差异,会对实验结果造成干扰单克隆稳转株筛选外源基因未整合到细胞会导致注射入动物体内后,外源基因片段很快丢失需要在动物体体内注射已经表达外源基因的细胞一些蛋白稳定性很强,瞬时RNA干扰作用周期短,无法去除已经表达的目的蛋白需要通过稳转株筛选,实现更好的基因干扰效果稳转株筛选很大程度上降低频繁转染或者病毒包装的成本,也很大程度上方便实验研究在某些细胞中长期研究基因的功能通过稳转株筛选,能使那些病毒载体也无法达到高转导效率的细胞高效表达外源片段获得外源片段的高效表达避免引入人为因素影响实验结果的精确性,稳转株筛选有助于筛选出拷贝数适量的细胞得到过表达的目的基因或干扰拷贝数应用场景瞬时转染表达和稳定转染表达最显著的区别就是在时间上。
稳定株构建 FAQ转自微博思路迪慢病毒包装1,什么是瞬时转染和稳定转染?答:瞬时转染:顾名思义,外源片段的表达时间短暂。
这主要是因为外源导入的裸露的载体整合入基因组的几率非常低,所以以染色体外(episomal)形式存在,不能随细胞分裂而一同复制导致最后拷贝数被稀释导致的。
而且考虑到细胞分裂会稀释质粒的量,所以起初转染的质粒拷贝数极高。
这就导致瞬时转染呈现一个高拷贝到低拷贝迅速降低的过程,且无法在这个系统上实现可诱导表达。
稳定转染:是相对瞬时转染而言,进入细胞的质粒整合入细胞基因组中,并能随细胞分裂稳定传递下去。
在这个系统中,质粒表达稳定,拷贝数低,且能实现诱导表达。
稳定转染并不是一种与瞬时转染不同的方法,只是对瞬时转染的细胞进行筛选,得到稳定整合的细胞株。
稳定整合的几率因基因传递的方法而异,跨度可以从10-8到10-1。
因此,对于有的转染方法,比如化学试剂介导的转染,其整合几乎可以忽略不计。
质粒载体整合的位点并不是完全随机分布,依据不同的基因传递方法,呈现不同的靶向倾向性,所以是一种半随机整合。
不同基因传递方法对质粒稳定表达的影响见表XXXX。
2,设计稳定株构建实验需要考虑的因素有哪些?∙答:稳定整合试验中需要考虑的几个关键因素有:∙1),外源插入片段的拷贝数。
多数情况下,低拷贝甚至是单拷贝可以减少人为实验因素的干扰。
∙2),整合的几率,这不仅决定了稳定株筛选的难易程度,而且还可以帮助人们更容易得到混合稳定株。
∙3),整合位点的转录活跃度,决定了稳定株中外源片段的表达质量。
最理想的状况是单拷贝,但转录活性比较高。
∙4),整合后的稳定性。
不同的整合位点决定了外源片段在染色体中的稳定性,有些区域易发生重组或者丢失,从而导致稳定株再次丢失的情况。
∙5),最好使用混合稳定株或者获得多个不同单克隆稳定株。
因为稳定整合往往伴随这插入失活宿主内源基因,所以实验时通过使用混合稳定株,或者对多个单克隆稳定株进行比较,可以帮助研究人员获得更精确的实验数据。
ich指导原则细胞株解读“ich指导原则细胞株解读”细胞株是通过细胞分裂和培养技术,从原始细胞中选择出的一系列同源的细胞群体。
为了保证细胞株的质量和稳定性,国际药品监管机构(ICH)发布了一系列指导原则。
本文将以“ich指导原则细胞株解读”为主题,一步一步回答有关细胞株的问题,并深入探讨ICH指导原则对细胞株质量控制的重要性。
首先,要理解细胞株的概念和作用。
细胞株是指在一定的条件下,从同一起始细胞培养而来的细胞族群。
每一种细胞株都有其特定的形态、生理和遗传特性,因此在药物研发、疾病研究和生物制药生产中具有重要的应用价值。
通过建立和维护质量可靠的细胞株,可以确保药物的一致性和有效性。
然而,细胞株的建立和维护并非一项简单的工作。
在细胞株的过程中,许多外界因素可能会对细胞的生长和稳定性产生影响。
为了规范细胞株的制备和管理,ICH制定了一系列指导原则。
这些指导原则包括基本要求、详细指南和技术报告,旨在提升细胞株的质量控制水平。
ICH指导原则主要涵盖以下几个方面:1. 起始细胞的选择和鉴定:ICH指导原则要求在建立细胞株之前,必须对起始细胞进行充分的鉴定和检测。
鉴定的方法包括形态学观察、生长曲线分析、细胞表型鉴定和遗传分析等。
通过这些步骤,可以确保起始细胞的纯度和一致性,从而减少后续细胞株的变异性。
2. 细胞株的培养和传代:ICH指导原则要求在细胞株的培养和传代过程中,应该采取规范的操作程序。
这包括培养基的配制、细胞密度的控制、传代比例的确定等。
此外,细胞株的培养条件也需要严格控制,例如温度、湿度、CO2浓度和培养时间等因素都会影响细胞的生长和稳定性。
3. 细胞株的质量控制和稳定性评估:ICH指导原则强调了细胞株的质量控制和稳定性评估的重要性。
这包括细胞株的纯度分析、细胞生长曲线的监测、细胞遗传稳定性的检测等。
通过这些评估,可以追踪和监控细胞株的变异性,确保细胞株的一致性和稳定性。
最后,ICH指导原则对细胞株质量控制的重要性不言而喻。
稳定细胞株的构建流程以稳定细胞株的构建流程为标题,写一篇文章细胞株是一种在实验室中长期培养的细胞群体,可以用于研究细胞功能和生物学过程。
在科学研究中,稳定细胞株的构建是一项重要的技术,可以用于表达感兴趣的基因或蛋白质,并进行相关功能研究。
本文将介绍稳定细胞株的构建流程,帮助读者了解该技术的基本原理和操作步骤。
1. 选择合适的细胞株稳定细胞株的构建首先需要选择一个合适的细胞株作为基础。
常用的细胞株有HEK293、CHO、HeLa等。
选择细胞株时需要考虑其易于培养、易于转染以及适合研究目的的特点。
2. 构建表达载体表达载体是构建稳定细胞株的关键,它可以帮助将感兴趣的基因或蛋白质引入到细胞中。
常用的表达载体有质粒、病毒、RNA干扰等。
根据实验需要选择合适的表达载体,并将感兴趣的基因或蛋白质插入到载体中。
3. 转染细胞将构建好的表达载体转染到目标细胞中。
转染方法有多种,包括化学法、电穿孔法、病毒介导转染等。
选择合适的转染方法,将表达载体引入到细胞中。
4. 选择稳定细胞转染后的细胞群体中,只有少数细胞成功地表达了目标基因或蛋白质。
为了筛选出这些稳定细胞,可以加入适当的筛选物质。
例如,如果表达载体中带有抗生素抗性基因,可以在培养基中加入相应的抗生素,只有表达了该基因的细胞才能存活下来。
5. 单克隆分离从筛选后的细胞中挑选出单个细胞,进行单克隆分离。
这可以通过限稀稀释法或流式细胞分选法来实现。
将单个细胞分离培养,得到单克隆细胞株。
6. 鉴定稳定细胞株对得到的单克隆细胞株进行鉴定,确认其是否稳定地表达目标基因或蛋白质。
常用的鉴定方法有Western blot、荧光定量PCR等。
7. 扩大培养经过鉴定的稳定细胞株可以进一步扩大培养,得到足够数量的细胞供后续实验使用。
在扩大培养过程中,需要注意细胞的培养条件、培养基的配方等。
8. 长期保存为了保证稳定细胞株的长期保存,可以采取冻存的方法。
将稳定细胞株冻存于液氮中,以备将来使用。
细胞株的名词解释细胞生物学特征细胞株是细胞生物学研究中经常用到的一个概念。
细胞株是指从某种细胞中分离出来的一群具有相同遗传特征和生物学行为的细胞群体。
这些细胞经过无数代的传代培养,可以保持一定的稳定性,成为进行细胞生物学研究的有力工具。
本文将从细胞株的命名和分类入手,探讨细胞株的特征和其在细胞生物学研究中的重要性。
一、细胞株的命名和分类细胞株的命名通常遵循一定的规则,如源于细胞的来源、研究者或研究机构的名称等。
细胞株的名字越简短越好,最好能够体现出其来源和特征。
例如,HeLa细胞株就是源自Henrietta Lacks的细胞,是世界上最早的人类细胞株之一。
而NIH/3T3则是由美国国立卫生研究院(National Institutes of Health)的研究者分离培养的小鼠成纤维细胞。
细胞株的分类主要考虑到细胞的来源和特征。
细胞的来源可以是动物、植物或人类等,而细胞的特征则包括其形态、生长速度、生长特性、遗传特性等。
同一种细胞株在不同实验室或研究者之间可能会出现一定程度的差异,但通常都会保持一定的稳定性,这使得细胞株成为细胞生物学研究的有力工具。
二、细胞株的特征细胞株具有许多细胞生物学特征,这些特征使得细胞株能够广泛应用于细胞生物学研究。
以下是细胞株的几个重要特征:1. 细胞株的形态:不同细胞株在形态上可以表现出差异,包括细胞的大小、形状、色素染色等。
这些形态特征可以通过显微镜观察和记录,为研究者提供了重要的信息。
2. 细胞株的生长速度:细胞株的生长速度通常与细胞类型和培养条件有关。
某些细胞株可以快速增殖,而另一些细胞株则生长缓慢。
研究人员可以通过对细胞株的生长速度进行分析,探讨细胞生长和增殖的机制。
3. 细胞株的分化能力:一些细胞株可以在适当的培养条件下分化成特定的细胞类型,如神经元、肌细胞等。
通过研究细胞株的分化能力,科学家们能够深入了解细胞分化的调控机制。
4. 细胞株的遗传特性:不同的细胞株可能具有不同的遗传特性,包括染色体结构、基因型、表达型等。
细胞株稳定性研究方法
1.从细胞复苏(2×108个细胞)到生产(20m3)细胞至少需要分裂16次;
2.稳定性试验至少测试细胞分裂40次;
3.用于疫苗生产用的正常的二倍体细胞通常在一定的分裂次数内保持稳定;
4.连续培养的细胞系的核型不断变化。
体外培养的细胞发生基因突变和表观遗传学改变的几率很高。
这有可能是受培养条件的影响。
比如,一些类型的干细胞在细胞密度、氧气浓度和生长因子浓度等条件发生改变时会发生分化。
用于疫苗生产的细胞多数是二倍体,在既定的培养条件下相对稳定。
在生产上能接受的倍增次数范围内,这类细胞不会出现可见的表型或染色体上的变化,因此生物生产工艺上对这类细胞的稳定性关注较少。
细胞株稳定性涉及:
1.生产能力随时间下降;
2.产品质量随时间变化;
3.核型随时间改变;
4.染色体畸形;
5.后面两项对蛋白类生物制品可能影响不大,但是细胞治疗中需要考虑的。
相反,通过转染、扩增、筛选获得的生产重组蛋白的高产细胞株可能更不稳定。
首先用于高产细胞株构建的非整倍体宿主细胞本身的稳定性就低于二倍体细胞。
非整倍体宿主细胞除了染色体数目异常外,还存在染色体结构畸形。
这就导致了即使同一宿主细胞来源的不同细胞株具有不同的核型。
核型差异和染色体畸形是高产细胞株的遗传特性。
即使生产用细胞株在稳定性上可能不及二倍体细胞,但是他们必须具备在一定的倍增次数内保持其生产特性、生长状况、蛋白质量的相对稳定。
假设进行10,000批10,000L规模,最终细胞密度为10E10 cells/L
的生产,选定的细胞株需要进行接近80次的倍增。
次数远远超过从一个受精卵发育成一只仓鼠、老鼠甚至是成人所需要的倍增次数。
在如此长的周期内,某些细胞内基因突变、表观遗传学改变或者染色体重排不可避免,而这是目前无法解决的。
为测试细胞的稳定性,需要对细胞40-60次倍增范围内进行生产能力以及基因拷贝数的检测。
从液氮罐中10e10个细胞复苏到生产规模反应器生产,细胞需要进行15次倍增,所以40次倍增稳定测试就足以提供充分的数据。
(如果起始细胞为10e7开始复苏,到10,000L 反应器需要多少次倍增呢?)
产品质量稳定性更难评估,基因突变,比如糖基转移酶突变,可能会会影响产品质量。
一个或多个拷贝中碱基突变会影响到蛋白氨基酸序列。
由于基因组中外源基因不同拷贝的转录和翻译效率不同,不同的突变引起的对产品质量的影响不尽相同。
通过高通量基因测序技术,可以检查出细胞群体中甚至很小水平的突变。