花青苷(花色苷)种类、提取及检测

果汁中的花青苷化学分析方法花青苷是一类在自然界中广泛存在的天然色素，具有强大的抗氧化性能和保健作用。

果汁作为一种流行的饮品，其中含有丰富的花青苷。

因此，对果汁中花青苷的化学分析方法的研究，不仅有助于评估果汁的品质，还有助于揭示其保健功效的科学机制。

目前，对果汁中花青苷的化学分析方法主要包括色谱法、质谱法和光谱法等。

下面将分别对这些方法进行介绍。

色谱法是一种常用的分离分析方法，包括高效液相色谱（HPLC）和气相色谱（GC）。

其中，HPLC是目前分析果汁中花青苷最常用的方法之一、该方法通过将果汁中的花青苷化合物与色谱柱固定相进行相互作用，实现对花青苷的有效分离和测定。

HPLC色谱柱的选择，如C18柱、C8柱等，以及不同的流动相组成和温度条件都会影响花青苷的分离效果和检测灵敏度。

此外，还可以结合质谱检测器对花青苷进行鉴定和定量。

质谱法是一种分析样品化学组成和结构的强大工具，常用的质谱方法包括质谱仪（MS）和飞行时间质谱仪（TOF-MS）。

质谱法可以通过对花青苷分子的分子量、碎片离子和碎片离子比例进行分析，来鉴定和定量花青苷。

此外，质谱法还可以结合色谱法进行联用，实现对花青苷的完整分析。

光谱法是通过测量化合物在特定波长下的吸光度来定量分析的方法。

对于花青苷的分析，最常使用的光谱法是紫外-可见分光光度法（UV-Vis）。

通过设置特定波长下的吸光度峰，可以对花青苷进行定量分析。

此外，近红外光谱（NIR）和荧光光谱等光谱技术也可以用于花青苷的鉴定和定量。

总的来说，这些化学分析方法在果汁中花青苷的检测和定量方面具有各自的优势和适用范围。

选择合适的方法需要考虑样品复杂性、分析要求和设备条件等因素。

未来，可以通过方法的改进和优化，进一步提高对果汁中花青苷的分析灵敏度和准确性，以满足不同需求的科学研究和工业应用。

花青苷显色玉米测试方法全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：花青苷是一种具有抗氧化作用的植物色素，常见于紫色和蓝色的水果和蔬菜中，具有显色的作用。

在玉米中也含有一定量的花青苷，可以使玉米变得更加鲜艳和吸引人。

设计一种能够测试玉米中花青苷含量的方法非常重要。

下面我们就来探讨一种关于花青苷显色玉米测试方法的详细介绍。

一、概述：花青苷是一种存在于植物中的天然色素，具有抗氧化和抗炎作用。

在玉米中，花青苷的含量可以通过显色反应来测试。

显色是一种将特定化学物质与待测样品发生反应后产生可见颜色变化的方法，通过观察颜色的深浅可以间接反映出待测样品中特定成分的含量。

二、材料和仪器：1. 玉米样品2. 乙醇3. 酸性乙醇4. 碳酸氢钠5. 玻璃棒6. 离心管7. 紫外可见分光光度计三、实验步骤：1.样品制备：取少量玉米样品，研磨成粉末状。

2.提取花青苷：将玉米粉末加入乙醇中，用玻璃棒搅拌均匀，静置一段时间。

然后使用离心管离心，将上清液收集。

3.显色反应：将提取得到的上清液加入碳酸氢钠溶液中，观察是否产生颜色变化。

花青苷与碱性溶液反应后会呈现出紫色或蓝色。

4.测定光密度：将反应产物用紫外可见分光光度计检测吸光度，根据吸光度值可以计算出样品中花青苷的含量。

四、结果分析：通过以上实验步骤，我们可以得到玉米样品中花青苷的含量。

根据吸光度值的不同可以判断出不同样品中花青苷的含量，从而为玉米的质量控制和改良提供参考依据。

五、注意事项：1. 实验过程中要注意避免样品污染和交叉污染。

2. 操作过程中要注意个人安全，避免酒精泼溅和气味吸入。

3. 实验室仪器要保持干净整洁，避免干扰测试结果。

六、结论：通过以上测试方法，我们可以准确测试玉米中花青苷的含量，为玉米的优化种植和后期加工提供科学依据。

希望本文能够对相关领域的科研工作者和生产人员有所帮助。

【2000字】。

第二篇示例：花青苷是一种存在于许多植物中的紫色素，特别是在玉米中含量较高。

花青苷种类、提取及检测一.种类花色素均具有类黄酮的基本结构，由两个苯环和一个含氧杂环组成的(C6-C3-C6)C15化合物(如图)，根据B环羟基化和甲基化位置和数目的不同而将花色素主要分为六类:天竺葵色素((Pelargonidin)、矢车菊色素((cyanidin)、芍药色素(peonidin)(3＇-甲基矢车菊色素)、飞燕草色素(delphinidin)、矮牵牛色素(petunidin)(3＇,5＇-甲基飞燕草色素)和锦葵色素(malvidin)( 3＇,5＇-二甲基飞燕草色素)。

不同植物中花色素发生糖苷化的位点(C3、C5和C7位等)和数目的差异，及酞化程度的不同使植物中存在着不同的花色素普，其结构复杂，但都以这六种花色素为基本结构(Grotewold，2006)。

二.提取国内外学者对花青苷的提取做了大量研究，提取目的及目标花青苷不同，提取方法略有差异。

花青苷易溶于水、甲醇、乙醇等极性溶液，花青苷的稳定性受酶、温度、氧气、光、pH值、金属离子等理化性质的影响，在中性和碱性条件下不稳定。

提取过程常采用酸性溶液，酸能够破坏植物细胞膜并溶解水溶性色素，甲醇溶液提取效率高于乙醇及水溶液。

花青苷一般用于食品着色，考虑到甲醇的不安全因素，一般选用体积分数为1%的乙醇溶液。

采用盐酸酸化可保持提取液pH值较低，阻止无酰基花青苷的降解。

随着盐酸被浓缩，pH 值升高，导致花青苷的降解。

为获得更接近于天然状态的花青苷，采用弱有机酸或中性溶剂做初步提取，弱有机酸多用甲酸、乙酸、丙酸、柠檬酸和酒石酸，中性溶剂一般采用丙酮作提取剂。

粗提后的花青苷提取液浓度很低，浓缩时一般不超过40℃，时间也不宜太长。

1.2.花青苷含量的测定：用0.1%的盐酸甲醇浸提叶片2 h后,测657nm、530nm处的吸光度。

3.4.5.6.7.8.9.三.检测紫外—可见光谱是花青苷结构鉴定的经典方法，其鉴定方法为：①花青苷有2个最大吸收波长,500~540nm附近及27nm附近，据此可判定是否为花青苷色素；②若B环有邻位酚羟基，则向体积分数0.01%盐酸-甲醇溶液中滴加3~5 滴AlCl3，甲醇或乙醇溶液时会出现蓝移；③糖苷位置可据花青苷吸光度比值A440/A max判定；④在波长300~330nm间有吸收峰，表明存在酰基；⑤若在波长440n处有肩峰，则5号位羟基没被取代；⑥若在紫外光下有荧光，表明在5号位有取代基。

一、摘要⑴、葡萄皮色素来源较为丰富。

葡萄果皮花色苷不但含量高, 而且种类多,葡萄花色苷作为一种天然食用色素, 安全、无毒，且具有降低肝脏及血清中脂肪含量、抗氧化、抗肿瘤、延迟血小板凝集等多种生理和药用活性功能对葡萄皮花色苷的提取技术及稳定性的研究具有重要意义⑵、目前为止花色苷的定量分析方法主要有直接比色法、pH示差法、亚硫酸脱色法、色谱法，本次实训我们采用液相色谱法对花色苷进行提取。

⑶、用于液相色谱法提取葡萄酒中的花色苷前要进行样品的预处理，再测定其中的花色苷来判断葡萄酒或者葡萄皮中的花色苷，标定是否合格以及是否符合国家标准。

二、关键词⑴花色苷⑵液相色谱⑶分光光度计三、正文引言花色苷的提取方法有溶剂浸提法、微波辅助萃取法、酶解法超高压辅助提取法、本次我们是利用微波萃取，微波是一种频率300～300 000 MHz的电磁波。

在微波场中吸收微波能力的差异使得基体物质的某些区域或萃取体系中的某些组分被选择性加热，从而使得被萃取物质从基体或体系中分离，进入到介电常数较小、微波吸收能力相对较弱的萃取剂中。

由于传统提取过程中能量累积和渗透过程以无规则的方式发生，萃取的选择性较差，只能通过改变溶剂性质或延长溶剂萃取时间来获得，同时又受限于溶解能力和扩散系数，效果不够理想；微波因其能对萃取体系中不同组分进行选择加热，因而能使目标组分直接从基体分离萃取。

微波萃取受溶剂亲和力的限制较小，可供选择的溶剂较多。

另外，微波加热则利用分子极化或离子导电效应直接对物质进行加热，避免了传统加热过程因热传导、热辐射造成的热量损失，加热效率高、升温快速均匀，缩短了萃取时间。

具有设备简单、适用范围广、重现性好、萃取效率高、萃取时间短、能耗低、污染轻等特点。

用液相色谱法来检测葡萄酒及葡萄皮中的花色苷，用等度及梯度检测花色苷的存在来判断其营养成分。

⑴、材料及方法①仪器及试剂材料：葡萄皮仪器：超声波提取器、紫外-可见分光光度计、安捷伦-高效液相色谱仪试剂：甲醇、甲酸、水②实验方法葡萄皮花色苷提取液的制备干葡萄皮→粉碎→加入提取液→超声波辅助提取→花色苷提取液称取 1g 粉碎过的干葡萄皮，按 1:40（g/mL）的料液比加入酸性乙醇提取液，用超声波清洗器辅助提取。

葡萄皮花色苷的提取及稳定性研究（一）论文关键词：葡萄皮花色苷提取稳定性研究论文摘要：葡萄皮花色苷是一种天然色素，具有溶解性好、色彩鲜艳、易与食品结合上色等特点，是替代合成色素的一类重要食品添加剂。

本实验利用超声波辅助酸性乙醇溶剂法对葡萄皮花色苷的提取进行了研究，获得葡萄皮花色苷提取的最优工艺，并研究了花色苷对外界环境的稳定性。

实验结果表明，葡萄皮中花色苷的最适提取条件为：提取温度60℃，提取液的乙醇浓度80%，提取液 pH 0.5。

提取液的pH对花色苷提取率有显著性影响。

稳定性实验结果表明，低温条件下的花色苷较为稳定，随着温度的升高葡萄皮花色苷降解速度加快，稳定性逐渐下降；避光保存时花色苷稳定性最好，当葡萄皮花色苷溶液处于光照条件下，花色苷降解速率加快；蔗糖、防腐剂、亚硫酸钠对葡萄皮花色苷的稳定性无明显影响；H2O2对葡萄皮花色苷的稳定性有较大影响。

Keywords: grape skin; anthocyanins; extraction; stability test Abstract ：Anthocyanins are natural technicolored pigments and are bright-coloured， which can dissolve in water and combine with food easily. They are important food additives instead of artificial colour.The anthocyanins were extracted from grape skin by ultrasonic wave and the stability of anthocyanins from grape skins were studied. The results showed the optimal temperature for extraction was 60℃， the concentration of ethanol was 80% and the pH was 0.5. The pH ofextraction had significantly influence on the ratio of extraction. The stability test showed that anthocyanins from grape skins with low temperature were stable and the rate of degradation was rapid when temperature was high. Light affected the stability of anthocyanins from grape skins and it was stable when anthocyanins were out of light. Glucose， aseptic， Na2SO3 had little influence on the stability of anthocyanins from grape skins;while H2O2 had great influence on the stability of anthocyanins from grape skins.1 绪论1.1 花色苷的概述花色苷是自然界中最庞大的一类水溶性色素，日常生活中人们食用的被子植物和开花植物中，至少有27个科，73个属和很多个种的植物中含有花色苷类物质[1]。

实验四葡萄果实中花色苷提取与测定一、实验目的1、了解并掌握葡萄果皮中花色苷提取的原理和操作；2、掌握葡萄果皮重花色苷含量的测定方法和步骤。

二、实验原理花色苷是红色葡萄果实中一类非常重要的呈色物质，并且多数情况下主要存在于果皮当中，只有极少数染色品种的果肉中存在花色苷。

花色苷主要有花色素（包括花翠素、花青素、甲基花青素、甲基花翠素及二甲花翠素）经过羟基化后以单体糖苷的形式存在。

三、实验材料红色葡萄果实、吸水纸、研钵、研杵、液氮、分光光度计等四、主要项目和方法1、果皮花色苷提取把每个样本（20粒）的葡萄果皮取下，然后用蒸馏水冲洗果皮，除去果皮粘连的部分果肉与糖分等并用吸水纸吸干，进行称重（M），然后再液氮中将果皮研磨成粉末，准确称取3.0000g粉末放入50ml离心管中，加入30ml酸化甲醇溶液（1mol/L HCl/MOH/水，1/80/19，v/v/v），在100%功率条件下超声辅助提取30min，温度控制在25摄氏度，然后将其只置于低温离心机中离心（8000r/min）15min，收集上清液。

向残渣中继续加入30ml酸化甲醇溶液，在此按照上述步骤进行提取，重复4次，合并所有上清液（120ml）于细口瓶中，-20摄氏度避光保存。

2、花色苷含量测定和计算采用pH示差法，提取液分别用pH值为1.0盐酸-氯化钠缓冲液稀释20倍。

然后分别在510nm与700nm下测定两种稀释液的吸光度。

吸光度A为：A=(A510nm-A700nm)pH1.0 - (A510nm-A700nm)pH4.5花色苷含量用矢车菊素-3葡萄糖苷（R CGE , mg/g）表示，即R CGE=（A × MW × DF × Ve × 1000）/（ε× 1 × M）式中 MW-矢车菊素-3葡萄糖苷相对分子量，取449DF-稀释倍数Ve-提取液总体积M-葡萄皮质量ε–摩尔吸光系数，取29600五、实验结果A=0.9007-0.0087-(0.0813-0.0065)=0.8172nmR CGE=因此该葡萄果实中，花色苷含量为 mg/g。

PH示差法测定火棘果花青素含量原理：花青素是具有2-苯基苯并吡喃阳离子结构的衍生物，广泛存在于植物中的水溶性天然色素。

花青素在自然状态下常与各种单糖形成糖苷，称为花色苷。

溶液PH不同，花色苷的存在形式也不同。

对于一个给定的PH值，在花色苷的4种结构之间存在着平衡：蓝色的醌式（脱水）碱，红色的花烊正离子，无色的甲醇假碱和查尔酮。

花色苷在PH值很低时，其溶液呈现最强的红色。

随着PH值的增大，花色苷的颜色将褪至无色，最后在高PH值时变成紫色或蓝色。

PH示差法测定花色苷含量的依据是花色苷发色团的结构转换是PH的函数，起干扰作用的褐色降解物的特性不随PH变化。

因此在花青素最大吸收波长下确定两个对花青苷吸光度差别最大但是对花色苷稳定的PH值。

原料与仪器原料：火棘果花青素提取液，乙醇95%（AR），盐酸仪器：PHs-3B型酸度计，紫外分光光度计实验步骤：1，火棘果的定性分析取提取液稀释至一定的体积，用稀氢氧化钠和稀盐酸调节PH，观察提取液在不同PH下的颜色变化。

对提取液进行200~800nm全波长扫描，绘制光谱图2，测定波长的选择取火棘果花青素提取液用5%HCL-EtOH（15:85）溶液稀释至一定体积，进行光谱扫描，确定最大吸收波长。

紫外可见吸收光谱3，PH示差法中PH的选择在选定PH时应考虑以下因素：在此两个PH处测定的花青素的吸收值差异应是最显著的；单一PH的轻微变动，对花青素吸光值的影响是极小的；花青素在所处的两个PH下，应是相当稳定的。

由于花青素只有在酸性介质中是稳定的，因此只测定PH小于7条件下花青素吸光值的变化。

PH为1.0时，花青素以红色的2-苯基苯并吡喃的形式存在PH为4.5时，花青素以无色的甲醇假碱的形式存在。

因此选择PH为1.0和4.5。

4，平衡时间的确定因为花青素在溶液介质中存在4种结构形式，这4种结构形式在某一PH下处于动态平衡，当PH改变时，动态平衡发生转移，总的趋势是PH降低时，平衡向红色的2-苯基苯并吡喃阳离子移动；PH 升高时平衡向蓝色醌式移动。

一、实验目的1. 学习花青苷的提取方法。

2. 掌握花青苷的鉴定方法。

3. 了解花青苷在植物中的生理作用。

二、实验原理花青苷是一类广泛存在于植物中的水溶性色素，具有丰富的生物学活性。

在酸性条件下呈红色，碱性条件下呈蓝色。

花青苷的提取方法有酸提取法、碱提取法、有机溶剂提取法等。

本实验采用碱提取法提取花青苷，并利用紫外-可见分光光度法进行鉴定。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：紫甘蓝叶片、NaOH溶液、乙醇、盐酸、硫酸铜、无水乙醇、蒸馏水等。

2. 实验仪器：紫外-可见分光光度计、电子天平、研钵、烧杯、试管、移液器、滴定管等。

四、实验步骤1. 花青苷提取（1）称取紫甘蓝叶片2g，放入研钵中。

（2）加入10mL 1mol/L NaOH溶液，研磨至叶片成浆状。

（3）将研磨好的浆状物倒入烧杯中，加入10mL 95%乙醇，搅拌均匀。

（4）用滴定管加入10mL盐酸，使溶液pH值为1，静置过夜。

（5）用滤纸过滤，收集滤液。

2. 花青苷鉴定（1）取3支试管，分别加入1mL、2mL、3mL提取液。

（2）向3支试管中分别加入0.5mL 1%硫酸铜溶液，摇匀。

（3）观察溶液颜色变化，记录实验结果。

五、实验结果与分析1. 提取结果经过实验，从紫甘蓝叶片中成功提取出花青苷。

2. 鉴定结果在紫外-可见分光光度计下，观察溶液颜色变化。

结果显示，随着硫酸铜溶液的加入，溶液颜色由无色逐渐变为蓝色，证明提取液中含有花青苷。

3. 结果分析通过实验，成功提取并鉴定了紫甘蓝叶片中的花青苷。

花青苷在植物中具有多种生理作用，如调节植物生长发育、增强植物抗逆性、改善植物品质等。

本实验为花青苷的研究提供了实验依据。

六、实验结论1. 本实验采用碱提取法成功提取了紫甘蓝叶片中的花青苷。

2. 通过紫外-可见分光光度法鉴定，提取液中含有花青苷。

3. 花青苷在植物中具有多种生理作用，值得进一步研究。

七、实验讨论1. 本实验中，提取花青苷的方法较为简单，但提取效率可能不高。

花青苷种类、提取及检测一.种类花色素均具有类黄酮的基本结构，由两个苯环和一个含氧杂环组成的(C6-C3-C6)C15化合物(如图)，根据B环羟基化和甲基化位置和数目的不同而将花色素主要分为六类:天竺葵色素((Pelargonidin)、矢车菊色素((cyanidin)、芍药色素(peonidin)(3＇-甲基矢车菊色素)、飞燕草色素(delphinidin)、矮牵牛色素(petunidin)(3＇,5＇-甲基飞燕草色素)和锦葵色素(malvidin)( 3＇,5＇-二甲基飞燕草色素)。

不同植物中花色素发生糖苷化的位点(C3、C5和C7位等)和数目的差异，及酞化程度的不同使植物中存在着不同的花色素普，其结构复杂，但都以这六种花色素为基本结构(Grotewold，2006)。

二.提取国内外学者对花青苷的提取做了大量研究，提取目的及目标花青苷不同，提取方法略有差异。

花青苷易溶于水、甲醇、乙醇等极性溶液，花青苷的稳定性受酶、温度、氧气、光、pH值、金属离子等理化性质的影响，在中性和碱性条件下不稳定。

提取过程常采用酸性溶液，酸能够破坏植物细胞膜并溶解水溶性色素，甲醇溶液提取效率高于乙醇及水溶液。

花青苷一般用于食品着色，考虑到甲醇的不安全因素，一般选用体积分数为1%的乙醇溶液。

采用盐酸酸化可保持提取液pH值较低，阻止无酰基花青苷的降解。

随着盐酸被浓缩，pH 值升高，导致花青苷的降解。

为获得更接近于天然状态的花青苷，采用弱有机酸或中性溶剂做初步提取，弱有机酸多用甲酸、乙酸、丙酸、柠檬酸和酒石酸，中性溶剂一般采用丙酮作提取剂。

粗提后的花青苷提取液浓度很低，浓缩时一般不超过40℃，时间也不宜太长。

1.2.花青苷含量的测定：用0.1%的盐酸甲醇浸提叶片2 h后,测657nm、530nm处的吸光度。

3.4.5.6.7.8.9.三.检测紫外—可见光谱是花青苷结构鉴定的经典方法，其鉴定方法为：①花青苷有2个最大吸收波长,500~540nm附近及27nm附近，据此可判定是否为花青苷色素；②若B环有邻位酚羟基，则向体积分数0.01%盐酸-甲醇溶液中滴加3~5 滴AlCl3，甲醇或乙醇溶液时会出现蓝移；③糖苷位置可据花青苷吸光度比值A440/A max判定；④在波长300~330nm间有吸收峰，表明存在酰基；⑤若在波长440n处有肩峰，则5号位羟基没被取代；⑥若在紫外光下有荧光，表明在5号位有取代基。

花色苷含量计算吸附量
摘要：
1.引言
2.花色苷含量的测定方法
3.吸附量的计算方法
4.结论
正文：
【引言】
花色苷是一类广泛存在于植物果实和种子中的天然色素，其具有强大的抗氧化作用，对于人体健康具有诸多益处。

在食品工业中，花色苷被广泛应用于饮料、糖果等食品的添加剂，以增加其色彩和营养价值。

然而，花色苷的含量往往受到提取工艺和加工环境的影响，因此，对其含量的精确测定以及吸附量的计算至关重要。

【花色苷含量的测定方法】
花色苷含量的测定方法通常采用光谱分析法，如紫外- 可见光谱法和红外光谱法。

其中，紫外- 可见光谱法是最常用的方法，其原理是花色苷在紫外- 可见光区域有特定的吸收峰，通过测量其吸收峰的强度，可以推算出花色苷的含量。

【吸附量的计算方法】
吸附量是指单位质量的吸附剂能够吸附的花色苷的量，通常用mg/g 表示。

吸附量的计算方法通常采用比色法，即将吸附后的吸附剂与已知浓度的花
色苷溶液进行比色，通过测量比色后的吸光度，可以推算出吸附量。

【结论】
花色苷含量的测定和吸附量的计算是评估花色苷提取效率和产品质量的重要手段。