研究员;现任中国热带农业科学院海口实验站(香蕉研究

香蕉寒害研究现状及展望王安邦;金志强;刘菊华;贾彩红;张建斌;苗红霞;徐碧玉【期刊名称】《生物技术通报》【年(卷),期】2014(000)008【摘要】我国绝大部分香蕉种植区域属于香蕉非最适宜种植区，容易受到冬春寒流的侵袭而造成重大经济损失。

寒害已成为制约我国香蕉产业健康发展的主要灾害之一。

对香蕉寒害症状和类型、香蕉抗寒生理生化研究、防寒措施、抗寒相关基因的挖掘等方面进行了综述，简述了香蕉寒害研究存在的问题和发展现状，以期对香蕉寒害的基础研究及生产应用提供参考。

%Most banana plantations in China belonging to the non-suitable growing areas often suffers from chilling stress caused significant economic losses. The banana chilling stress is one of the most principal natural disasters. The present paper reviewed the advances on such field as symptoms and types of chilling stress, physiological and biochemical research, chilling-resistant measures, cold resistance related genes in banana. The problems in banana chilling stress research and the prospect of the future research on banana chilling stress were simply discussed in order to provide references for chilling stress research and production.【总页数】6页(P28-33)【作者】王安邦;金志强;刘菊华;贾彩红;张建斌;苗红霞;徐碧玉【作者单位】中国热带农业科学院海口实验站香蕉研究所，海口 571101; 中国热带农业科学院热带生物技术研究所，海口 571101;中国热带农业科学院海口实验站香蕉研究所，海口 571101; 中国热带农业科学院热带生物技术研究所，海口571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所，海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所，海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所，海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所，海口 571101;中国热带农业科学院海口实验站香蕉研究所，海口 571101; 中国热带农业科学院热带生物技术研究所，海口 571101【正文语种】中文【相关文献】1.香蕉寒害冻害及抗寒研究进展 [J], 周红玲;陈石;郑云云;洪佳敏;郑加协;何炎森2.广西香蕉寒害冻害等级指标及发生规律研究 [J], 邹瑜;林贵美;李朝生;张进忠;赵明;吴代东;牟海飞;江文;蒙平;陈丽娟;李小泉;蔡炳华;韦华芳3.香蕉寒害及防寒栽培技术研究进展 [J], 牟海飞;吴代东;邹瑜;林贵美;张进忠4.香蕉寒害及防寒栽培技术研究进展 [J], 牟海飞;吴代东;邹瑜;林贵美;张进忠5.南宁市香蕉低温寒害天气指数保险研究 [J], 胡骞文; 植敏斯因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

香蕉中8个WRKY转录因子的克隆及表达分析贾彩红;王卓;张建斌;王静毅;苗红霞;刘菊华;金志强;徐碧玉【摘要】WRKY转录因子在植物生长发育和抗逆过程中发挥重要作用.为了解香蕉WRKY转录因子的功能,本研究在香蕉根系中克隆了8个WRKY家族基因,与香蕉基因组数据库比对后,将其分别命名为MaWRKY2、MaWRKY21、MaWRKY44、MaWRKY47、MaWRKY125、MaWRKY136、MaWRKY139和MaWRKY147.序列分析和遗传进化树结果表明,MaWRKY2和MaWRKY47属于第I类家族,其余6个属于第II类家族.对8个基因在香蕉的根、球茎、假茎、叶、花和果中的表达进行分析,结果表明,这8个基因在所有的器官中均表达,说明这些基因在香蕉的生长发育过程中起作用.对8个基因在盐、低温、干旱、水杨酸、茉莉酸、ABA、乙烯和香蕉尖孢镰刀菌生理4号小种胁迫处理的香蕉苗根系中的表达进行分析,结果表明8个基因对这些胁迫均有响应,说明香蕉中的这8个WRKY基因参与了生物胁迫、非生物胁迫和激素信号途径.【期刊名称】《热带作物学报》【年(卷),期】2018(039)011【总页数】7页(P2193-2199)【关键词】香蕉;WRKY转录因子;基因克隆;表达分析【作者】贾彩红;王卓;张建斌;王静毅;苗红霞;刘菊华;金志强;徐碧玉【作者单位】中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口 571101;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口 570102;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口 571101【正文语种】中文【中图分类】S668.1WRKY转录因子包含保守的WRKYGQK结构域和锌指结构，根据其含有的WRKY 结构域的个数和锌指结构的类型将WRKY转录因子分为3个家族。

提高香蕉胚性愈伤诱导成功率的可能途径常胜合;徐立;李敬阳;孙威;王甲水;许桂莺;孙佩光;吴琼;金志强【摘要】香蕉是我国重要的热带亚热带农作物.由于绝大多数食用香蕉是三倍体,不能通过授粉进行遗传改良,转基因技术就变得尤为重要.建立胚性悬浮细胞系是进行香蕉遗传转化的第1步.但是,建立香蕉胚性悬浮细胞系的成功率极低,直到现在多数实验室还不能自己建立香蕉胚性悬浮细胞系.然而,为什么香蕉胚性悬浮细胞系如此难以建立,在香蕉体细胞向胚性细胞转化的过程中,发生了哪些关键事件,如何提高香蕉胚性愈伤诱导的成功率,关于这些问题,目前还未见到报道.文中对近年来香蕉胚性悬浮细胞系建立方面的工作进行综述,针对香蕉胚性悬浮细胞系建立过程中发生的关键事件进行阐述,对香蕉胚性悬浮细胞系建立困难的原因进行讨论,并提出了若干提高香蕉胚性愈伤诱导成功率的可能途径.【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2013(041)019【总页数】4页(P8103-8105,8113)【关键词】香蕉;胚性悬浮细胞系;体细胞;机制【作者】常胜合;徐立;李敬阳;孙威;王甲水;许桂莺;孙佩光;吴琼;金志强【作者单位】中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;海南省香蕉遗传改良重点实验室,海南海口570102;中国热带农业科学院热带作物品种资源研究所,海南儋州571737;中国热带农业科学院热带作物品种资源研究所,海南儋州571737;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;海南省香蕉遗传改良重点实验室,海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;海南省香蕉遗传改良重点实验室,海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;海南省香蕉遗传改良重点实验室,海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;海南省香蕉遗传改良重点实验室,海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;海南省香蕉遗传改良重点实验室,海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;海南省香蕉遗传改良重点实验室,海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;海南省香蕉遗传改良重点实验室,海南海口570102【正文语种】中文【中图分类】S668.1中国种植香蕉已有2 000多年的历史［1］。

68中国南方果树2021年第50卷第3期基于生物量的香蕉叶片主要几何属性研究刘永霞、何应对、连子豪、王丽霞\殷晓敏\王必尊\曹宏鑫2〇中国热带农业科学院海口实验站.海口，570102;2江苏省农业科学院农业信息研究所，南京，210014)摘要以巴西蕉AAA Cavendish cv.Baxi J i a o 为材料，设置不同氮肥田间试验，并借鉴已有的巴西蕉叶面积建成模型，测量香蕉主茎不同叶位叶片长度和宽度及其对应的叶片干重，分析 巴西蕉比叶重与叶位、主茎不同叶位最大叶片长与生物量、最大叶长与最大叶宽的关系，构建基于 生物量的香蕉叶片主要几何属性模型。

结果表明，比叶重与叶位的关系可用线性关系，叶长与叶 重、叶宽与叶长的关系可用二次曲线方程表达。

采用独立的试验资料检验模型，比叶重与叶位的 模拟值与实测值的根均方差分别为18.97和12. 32;叶长与叶重、叶宽与叶长的模拟值与实测值的 根均方差分别为11. 16和5. 36;各模型的模型精度较高，具有一定的机理性和普适性。

关键词巴西蕉；叶片；比叶重；干重；叶长；模型香蕉是世界上主要的热带经济作物，主 要种植区域分布在南北纬20°之间。

2018年 全球香蕉种植面积565.4万hm 2,产量达n 456万t ;我国香蕉种植面积33. 19万 hm 2,位居世界第六，产量1 122. 17万t ，其 中总产量及单产均居世界第二。

我国是主要 的香蕉生产国，也是香蕉消费国，2016—2017 年，进口额都稳定在5. 8亿美元左右，2018 年中国香蕉进口增长54%，达到8. 96亿美 元，创历史新高M。

叶片是植物主要组成器官，其空间散布 状态决定了植物地上部的形态结构，进而影 响植物的光截获且决定了植物最终的光合产 量。

20世纪80年代开始，作物功能结构模 型（FSPMs )是将生长模型功能与形态模型 结构有机融合产生的新一代模型[3]，许多学 者建立了水稻、小麦、玉米和棉花等多种作物 的叶片形态及群体结构特征[41°]，然而这些 模型是纯形态结构模型，不具有植物生理学 机制，不能很好模拟作物生长。

海南香蕉叶脉坏死病病原检测王达新;郭刚;殷晓敏;曾会才【摘要】应用ELlSA和PCR技术对香蕉叶脉坏死病病样进行病原检测.结果显示:病样在ELISA反应中对BBTV和CMV表现为阳性,对BSV表现为阴性;而在PCR 反应中,对上述3种病毒均表现为阳性.初步研究认为,该病可能是由BBTV和CMV 两种病毒复合侵染所致.【期刊名称】《广东农业科学》【年(卷),期】2013(040)017【总页数】4页(P68-70,封2)【关键词】香蕉;叶脉坏死;病原检测【作者】王达新;郭刚;殷晓敏;曾会才【作者单位】中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102【正文语种】中文【中图分类】S668.1海南省是我国香蕉主产区之一，当地的主栽品种为巴西蕉（Musa Cavendish, AAA）。

近年来，香蕉病毒病害肆虐，给当地的香蕉种植业造成不少损失，病毒病害已经成为香蕉生产发展的一个主要限制因素。

目前在海南发现且被鉴定的香蕉病毒类型主要有两种，分别为香蕉束顶病毒（Banana bunchy top virus, BBTV)和香蕉花叶心腐病毒（Cucumber mosaic virus, CMV)[1]。

2009 年11 月，在海南乐东县尖峰镇发现一株香蕉(Musa Cavendish, AAA)生长迟缓，叶脉浮肿直至开裂坏死，新叶抽出困难，后期出现新叶坏死症状(图1，封二），该症状与香蕉束顶病毒病和香蕉花叶心腐病毒病以及香蕉条纹病毒（Banana streak virus, BSV）病症状存在部分相似。

为了研究该株香蕉的发病原因，分别对其病叶组织进行了血清学和分子生物学检测，为下一步制定科学有效的香蕉病害防治技术措施提供理论依据。

1 材料与方法1.1 试验材料1.1.1 材料来源香蕉病叶采自海南乐东县尖峰镇，置于液氮保存备用。

γ-氨基丁酸对香蕉果实采后成熟的调控作用及其生理机制胡伟;颜彦;徐碧玉;金志强【摘要】香蕉是世界上最重要的水果之一,研究香蕉采后成熟与调控对香蕉品质形成及创新采后催熬技术具有重要意义.本实验室前期的研究结果发现MaGAD1基因的表达与香蕉采后乙烯生物合成及果实成熟密切相关.本研究在此基础上,根据香蕉果实达到全黄并有黑色斑点期(YB)成熟度的天数为标准,筛选出MaGA D1基因表达的诱导剂γ-氨基丁酸(GABA)能够促进香蕉果实采后成熟.生理学分析结果表明,外源GABA能够促使香蕉果实提前发生生理跃变.实时荧光定量PCR分析结果表明,外源GABA能够诱导MaGA D1和MaA CS1上调表达.因此,GABA通过诱导MaGAD1和MaACS1上调表达及促进香蕉果实生理跃变,从而促进香蕉果实采后成熟.本研究不仅从理论上证明了GABA能够促进果实成熟,揭示了GABA促进果实成熟生理机制,并且从实际生产上为蕉催熟的应用提供了一种新方法.【期刊名称】《热带作物学报》【年(卷),期】2014(035)012【总页数】8页(P2474-2481)【关键词】香蕉;采后成熟;乙烯生物合成;MaGAD1;γ-氨基丁酸【作者】胡伟;颜彦;徐碧玉;金志强【作者单位】中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口571101;中国热带农业科学院海口实验站,海南海口570102【正文语种】中文【中图分类】Q344doi10.3969/j.issn.1000-2561.2014.12.029香蕉是世界上最重要的水果之一，也是世界第4大粮食作物。

香蕉是典型的呼吸跃变型果实，其采后成熟过程中有大量的乙烯产生，并出现呼吸跃变峰，同时引起生理生化变化，如淀粉转变为糖、多酚的降解、结构碳水化合物的酶解。

㊀山东农业科学㊀２０２３ꎬ５５(１０):１５~２１ＳｈａｎｄｏｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ㊀ＤＯＩ:１０.１４０８３/ｊ.ｉｓｓｎ.１００１－４９４２.２０２３.１０.００３收稿日期:２０２２－１２－２０基金项目:广东省基础与应用基础研究基金项目(２０２３Ａ１５１５０１０３３６ꎬ２０２１Ａ１５１５０１１２３６)ꎻ广东省普通高校重点领域专项(２０２２ＺＤＺＸ４０４７)ꎻ韶关学院重点项目(ＳＺ２０２２ＫＪ０５)ꎻ国家自然科学基金项目(３１９０１５３７)ꎻ韶关学院博士启动基金项目(９９０００６１５)ꎻ国家级大学生创新创业训练计划项目(２０２３１０５７６００９)作者简介:曾坚(１９８７ )ꎬ男ꎬ博士ꎬ副教授ꎬ从事植物基因功能研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:ｚｅｎｇｊｉａｎ＠ｓｇｕ.ｅｄｕ.ｃｎ通信作者:胡伟(１９８２ )ꎬ男ꎬ博士ꎬ研究员ꎬ从事植物基因分子生物学研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:ｈｕｗｅｉ２０１０９１６＠１２６.ｃｏｍ香蕉中ＡＢＡ醛氧化酶基因家族的鉴定及其表达分析曾坚１ꎬ周洁薇１ꎬ王舒婷１ꎬ胡伟２(１.韶关学院广东省粤北食药资源利用与保护重点实验室/英东生物与农业学院ꎬ广东韶关㊀５１２００５ꎻ２.中国热带农业科学院热带生物技术研究所ꎬ海南海口㊀５７１１０１)㊀㊀摘要:ＡＢＡ醛氧化酶(ａｂｓｃｉｓｉｃａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅꎬＡＡＯ)在植物生长发育和对生物/非生物胁迫的响应中起着重要作用ꎮ本研究从香蕉基因组中鉴定出３个ＭａＡＡＯｓ基因ꎬ并对其遗传进化关系㊁结构域㊁理化性质及在不同组织㊁不同果实发育阶段和逆境处理下的表达情况进行了分析ꎮ结果表明ꎬ这３个ＭａＡＡＯｓ分为两个亚族ꎬ相同亚族的基因呈现出类似的结构域组成和基因结构ꎬ与系统发育树的构建结果相一致ꎮＭａＡＡＯ１基因在果实的发育和成熟阶段都表现出显著的高表达水平ꎬ暗示着其在香蕉果实发育过程中可能发挥着重要功能ꎮ另外ꎬＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ２基因可能对渗透胁迫有响应ꎬＭａＡＡＯ２基因还可能对Ｆｏｃ４病菌的侵染有响应ꎮ基于以上结果推断ＭａＡＡＯｓ基因在香蕉的生长发育调控以及逆境响应中具有重要作用ꎮ该结果不仅丰富了我们对ＭａＡＡＯｓ基因家族的认识ꎬ也为进一步揭示其在香蕉生长发育和应激响应机制方面的功能提供了线索ꎮ关键词:香蕉ꎻＡＢＡ醛氧化酶(ＡＡ０)ꎻ基因鉴定ꎻ基因表达中图分类号:Ｓ６６８.１ꎻＱ７８１㊀㊀文献标识号:Ａ㊀㊀文章编号:１００１－４９４２(２０２３)１０－００１５－０７ＩｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＡｎａｌｙｓｉｓｏｆＡＡＯＧｅｎｅｓｉｎＢａｎａｎａＺｅｎｇＪｉａｎ１ꎬＺｈｏｕＪｉｅｗｅｉ１ꎬＷａｎｇＳｈｕｔｉｎｇ１ꎬＨｕＷｅｉ２(１.ＧｕａｎｇｄｏｎｇＰｒｏｖｉｎｃｉａｌＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＵｔｉｌｉｚａｔｉｏｎａｎｄＣｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎｏｆＦｏｏｄａｎｄＭｅｄｉｃｉｎａｌＲｅｓｏｕｒｃｅｓｉｎＮｏｒｔｈｅｒｎＲｅｇｉｏｎ/ＨｅｎｒｙＦｏｋＳｃｈｏｏｌｏｆＢｉｏｌｏｇｙａｎｄＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅꎬＳｈａｏｇｕａｎＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬＳｈａｏｇｕａｎ５１２００５ꎬＣｈｉｎａꎻ２.ＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＴｒｏｐｉｃａｌＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅａｎｄＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙｏｆＴｒｏｐｉｃａｌＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓꎬＨａｉｋｏｕ５７１１０１ꎬＣｈｉｎａ)Ａｂｓｔｒａｃｔ㊀Ａｂｓｃｉｓｉｃａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅ(ＡＡＯ)ｐｌａｙｓｉｍｐｏｒｔａｎｔｒｏｌｅｓｉｎｐｌａｎｔｇｒｏｗｔｈａｎｄｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｂｉｏｔｉｃａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｅｓ.ＩｎｔｈｉｓｓｔｕｄｙꎬｔｈｒｅｅＡＡＯｇｅｎｅｓ(ＭａＡＡＯｓ)ｗｅｒｅｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄｆｒｏｍｂａｎａｎａｇｅｎｏｍｅꎬａｎｄｔｈｅｉｒｇｅｎｅｔｉｃｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐꎬｓｔｒｕｃｔｕｒａｌｄｏｍａｉｎꎬｐｈｙｓｉｃａｌａｎｄｃｈｅｍｉｃａｌｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓꎬａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｐａｔｔｅｒｎｉｎｄｉｆｆｅｒｅｎｔｔｉｓｓｕｅｓꎬａｔｄｉｆｆｅｒｅｎｔｆｒｕｉｔｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｓｔａｇｅｓａｎｄｕｎｄｅｒｄｉｆｆｅｒｅｎｔｓｔｒｅｓｓｔｒｅａｔｍｅｎｔｓｗｅｒｅａｎａｌｙｚｅｄ.ＴｈｅｒｅｓｕｌｔｓｓｈｏｗｅｄｔｈａｔｔｈｅｔｈｒｅｅＭａＡＡＯｇｅｎｅｓｃｏｕｌｄｂｅｄｉｖｉｄｅｄｉｎｔｏｔｗｏｓｕｂｇｒｏｕｐｓꎬａｎｄｔｈｅｇｅｎｅｓｉｎｔｈｅｓａｍｅｇｒｏｕｐｅｘｈｉｂｉｔｅｄｓｉｍｉｌａｒｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓｏｆｓｔｒｕｃｔｕｒａｌｄｏｍａｉｎｓａｎｄｇｅｎｅｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓꎬｗｈｉｃｈｗｅｒｅｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔｗｉｔｈｔｈｅｆｉｎｄｉｎｇｓｆｒｏｍｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｔｒｅｅａｎａｌｙｓｉｓ.ＴｈｅＭａＡＡＯ１ｇｅｎｅｄｉｓｐｌａｙｅｄｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｈｉｇｈｅｘ￣ｐｒｅｓｓｉｏｎｌｅｖｅｌｓｄｕｒｉｎｇｆｒｕｉｔｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｒｉｐｅｎｉｎｇｐｅｒｉｏｄｓꎬｓｕｇｇｅｓｔｉｎｇｉｔｓｐｏｔｅｎｔｉａｌｉｍｐｏｒｔａｎｃｅｉｎｂａｎａｎａｆｒｕｉｔｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ.ＦｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬｂｏｔｈＭａＡＡＯ１ａｎｄＭａＡＡＯ２ｍｉｇｈｔｅｘｈｉｂｉｔｓｅｎｓｉｔｉｖｅｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｏｓｍｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓꎬａｎｄｔｈｅＭａＡＡＯ２ｇｅｎｅｍｉｇｈｔｂｅｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｔｏｔｈｅｉｎｖａｓｉｏｎｏｆＦｏｃ４ｐａｔｈｏｇｅｎ.ＢａｓｅｄｏｎｔｈｅｓｅｒｅｓｕｌｔｓꎬｉｔｗａｓｉｎｆｅｒｒｅｄｔｈａｔＭａＡＡＯｇｅｎｅｓｐｌａｙｅｄｐｉｖｏｔａｌｒｏｌｅｓｉｎｒｅｇｕｌａｔｉｎｇｂａｎａｎａｇｒｏｗｔｈꎬｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｂｉｏｔｉｃａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｅｓ.ＴｈｅｓｅｆｉｎｄｉｎｇｓｗｏｕｌｄｎｏｔｏｎｌｙｅｎｈａｎｃｅｏｕｒｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｏｎｔｏｔｈｅＭａＡＡＯｇｅｎｅｆａｍｉ￣ｌｙｉｎｂａｎａｎａꎬｂｕｔａｌｓｏｐｒｏｖｉｄｅａｒｅｆｅｒｅｎｃｅｆｏｒｆｕｒｔｈｅｒｕｎｒａｖｅｌｉｎｇｔｈｅｉｒｍｅｃｈａｎｉｓｍｓｏｆａｃｔｉｏｎｉｎｇｒｏｗｔｈꎬｄｅｖｅｌ￣ｏｐｍｅｎｔａｎｄｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓｏｆｂａｎａｎａ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ㊀ＢａｎａｎａꎻＡｂｓｃｉｓｉｃａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅ(ＡＡＯ)ꎻＧｅｎｅｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎꎻＧｅｎｅｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ㊀㊀脱落酸(ａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄꎬＡＢＡ)属于六种植物激素之一ꎬ１９６３年首次在脱落果实中被鉴定为生长抑制剂[１]ꎬ随后发现其在种子休眠㊁萌发㊁气孔开合㊁果实发育等多种生理过程中发挥着重要作用[２－４]ꎬ在水杨酸介导的生物胁迫以及高盐㊁干旱和寒冷等非生物胁迫中也起着关键作用[３ꎬ５]ꎮＡＢＡ的代谢过程已有相关研究综述进行了详细总结[６]ꎮＡＢＡ合成过程主要涉及玉米黄质环氧化酶(ｚｅａｘａｎｔｈｉｎｅｐｏｘｉｄａｓｅꎬＺＥＰ)㊁９－顺环氧类胡萝卜素双加氧酶(９－ｃｉｓ－ｅｐｏｘｙｃａｒｏｔｅｎｏｉｄｄｉｏｘｙｇｅｎ￣ａｓｅｓꎬＮＣＥＤｓ)㊁短链醇脱氢酶/还原酶(ｓｈｏｒｔ－ｃｈａｉｎｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅｓ/ｒｅｄｕｃｔａｓｅｓꎬＳＤＲ)㊁ＡＢＡ醛氧化酶(ａｂｓｃｉｓｉｃａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅꎬＡＡＯ)[７]ꎬ其中ＡＡＯ参与ＡＢＡ合成途径中的最后一步ꎮ虽然ＡＢＡ合成相关基因的研究比较多[８]ꎬ但关于ＡＡＯ基因的研究较少ꎬ目前只对少数几个物种如拟南芥[９]㊁水稻[１０]㊁小麦[１１]等的ＡＡＯ基因家族进行了鉴定分析ꎮ如:在拟南芥中ꎬＡｔＡＡＯ３基因的突变会导致ＡＢＡ含量降低[９]ꎻ番茄ＡＢＡ缺陷型突变体中的ＡＡＯ活性远低于野生型的[１２]ꎬ大麦中也存在类似的ＡＡＯ缺失或活性降低的现象[１３]ꎮ香蕉(Ｍｕｓａｓｓｐ.)是世界上重要的热带水果之一ꎬ也是重要的粮食作物之一[１４]ꎮ香蕉在生长过程中会遭受到低温㊁干旱㊁香蕉枯萎病等不同逆境的影响ꎬ对其产量和最终果实品质产生重要影响[１５－１６]ꎮＡＢＡ在这些过程中都扮演着重要的角色ꎬ因此ꎬ研究香蕉ＡＡＯ家族基因种类及其在不同逆境处理下的表达情况具有重要意义ꎮ本研究从香蕉基因组中鉴定得到了ＡＡＯ家族基因ꎬ并分析了它们的进化关系㊁基因结构和蛋白结构域ꎬ同时分析了其在不同组织㊁果实发育和成熟的不同阶段及对非生物/生物胁迫响应的表达模式ꎬ以期为进一步明确ＭａＡＡＯｓ基因在香蕉生长发育和胁迫反应过程中的功能提供参考ꎮ１㊀材料与方法１.１㊀试验材料选用口味优良的香蕉品种粉蕉(ＭｕｓａＡＢＢＰｉｓａｎｇＡｗａｋꎬＦＪ)进行试验ꎮ将粉蕉组培苗种植于塑料盆中(无菌土壤)ꎬ培养于生长室(２８ħꎬ７０％湿度ꎬ光周期为１６ｈ光/８ｈ暗ꎬ光照强度为２００μｍｏｌ ｍ－２ ｓ－１)ꎮ组培苗种植取样周期为２０１５年６月 ２０１６年８月ꎮ１.２㊀试验处理与样品采集方法(１)不同组织样品采集:组培苗种植约７０天后达到五叶期ꎬ此时选取叶和根ꎻ组培苗种植约１０个月开始开花ꎬ于开花后０天(０ＤＡＦ)㊁２０ＤＡＦ和８０ＤＡＦ选取果实ꎻ组培苗种植１２~１３个月后采收ꎬ选取采收后３天(３ＤＰＨ)和６ＤＰＨ的果实ꎮ每个样本进行两次生物学重复ꎬ用于分析基因在不同组织和果实发育不同阶段的表达情况ꎮ(２)非生物胁迫处理方法及取样:分别用３００ｍｍｏｌ Ｌ－１ＮａＣｌ和２００ｍｍｏｌ Ｌ－１甘露醇灌溉五叶期香蕉幼苗ꎬ进行盐胁迫和渗透胁迫处理ꎬ处理７ｄ后取样ꎻ将五叶期香蕉幼苗置于４ħ生长室(７０％湿度ꎬ光周期为１６ｈ光/８ｈ暗ꎬ光照强度为２００μｍｏｌ ｍ－２ ｓ－１)进行冷胁迫处理ꎬ２２ｈ后取样ꎮ采集对应处理时间后的叶片样本进行非生物胁迫处理下基因的表达分析ꎮ(３)尖孢镰刀菌侵染处理及取样:将五叶期香蕉幼苗根部浸泡在Ｆ.ｏｘｙｓｐｏｒｕｍｒａｃｅ４(Ｆｏｃ４)孢子悬液(１０６个分生孢子/ｍＬ)中２ｈꎬ以浸入无菌蒸馏水(ｄｄＨ２Ｏ)中的为对照ꎻ然后移栽到装有无菌土壤的塑料盆中ꎬ在生长室中培养(２８ħꎬ７０％湿度ꎬ光周期为１６ｈ光/８ｈ暗ꎬ光照强度为２００μｍｏｌ ｍ－２ ｓ－１)ꎻ培养２ｄ后ꎬ采集根系样品进行基因表达分析ꎮ每份样本包含两个生物重复样６１㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５５卷㊀本ꎮ１.３㊀香蕉ＡＡＯ基因家族的鉴定及系统发育分析利用拟南芥ＡｔＡＡＯｓ基因的序列构建ＨＭＭ模型ꎬ从香蕉Ａ基因组中搜索得到香蕉ＡＡＯｓ序列ꎻ利用得到的香蕉ＡＡＯｓ序列构建新的ＨＭＭ模型ꎬ利用新的ＨＭＭ模型从Ａ基因组中搜索鉴定ＭａＡＡＯｓ基因ꎮ使用保守结构域数据库(ｈｔｔｐ://ｗｗｗ.ｎｃｂｉ.ｎｌｍ.ｎｉｈ.ｇｏｖ/ｃｄｄ/)和ＰＦＡＭ数据库(ｈｔ￣ｔｐ://ｐｆａｍ.ｓａｎｇｅｒ.ａｃ.ｕｋ/)验证得到的ＭａＡＡＯｓ基因ꎮ利用下载得到的ＡｔＡＡＯｓ和水稻ＯｓＡＡＯｓ蛋白序列ꎬ以ＭＥＧＡ－Ｘ中的ＭＵＳＣＬＥ方法进行序列比对ꎬ使用Ｎｅｉｇｈｂｏｒ－ｊｏｉｎｉｎｇ法构建系统发育树ꎬＢｏｏｔｓｔｒａｐ值设置为１０００ꎮ１.４㊀香蕉ＡＡＯ基因家族的蛋白质特性和序列分析通过ＥｘＰＡＳｙ数据库(ｈｔｔｐ://ｅｘｐａｓｙ.ｏｒｇ/)对分子质量和等电点等理化性质进行预测ꎮ利用ＭＥＭＥ软件和ＩｎｔｅｒＰｒｏＳｃａｎ数据库对蛋白结构域序列进行鉴定ꎮ采用ＧＳＤＳ数据库对基因结构进行分析(ｈｔｔｐ://ｇｓｄｓ.ｃｂｉ.ｐｋｕ.ｅｄｕ.ｃｎ/)ꎮ１.５㊀转录组分析ＲＮＡ测序中的ＲＮＡ提取㊁文库制备和测序等工作均由美吉生物技术有限公司(中国上海)完成ꎮＲＮＡ－ｓｅｑ分析样本的收集过程参考前人的研究[１７]ꎮ每个样本包含两个生物重复序列ꎮ测序平台为ＩｌｌｕｍｉｎａＧＡＩＩ(ＩｌｌｕｍｉｎａꎬＳａｎＤｉｅｇｏꎬＣＡꎬＵＳＡ)ꎮＦＡＳＴＸ(ｈｔｔｐ://ｈａｎｎｏｎｌａｂ.ｃｓｈｌ.ｅｄｕ/ｆａｓｔｘ＿ｔｏｏｌｋｉｔ/)和ＦａｓｔＱＣ(ｈｔｔｐ://ｗｗｗ.ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔ￣ｉｃｓ.ｂａｂｒａｈａｍ.ａｃ.ｕｋ/ｐｒｏｊｅｃｔｓ/ｆａｓｔｑｃ/)用于删除接头序列和低质量序列ꎮ通过ＴｏｐｈａｔＶ.２.０.１０将粉蕉样本的ｃｌｅａｎｒｅａｄｓ与香蕉基因组进行比对[１８]ꎬ使用Ｃｕｆｆｌｉｎｋｓ进行转录组组装[１９]ꎮ基因的表达值使用ＦＰＫＭ值表示ꎮ使用ＤＥＧｓｅｑ工具鉴定差异表达基因(ＤＥＧｓ)(ｌｏｇ２－ｂａｓｅｄｆｏｌｄｃｈａｎｇｅ>１ꎻｌｏｇ２－ｂａｓｅｄｆｏｌｄｃｈａｎｇｅ<－１)ꎮ２㊀结果与分析２.１㊀ＭａＡＡＯｓ基因的鉴定利用香蕉ＡＡＯ基因序列的保守结构域构建ＨＭＭ模型ꎬ从香蕉Ａ基因组中鉴定得到了３个ＭａＡＡＯｓ基因ꎬ分别命名为ＭａＡＡＯ１㊁ＭａＡＡＯ２㊁ＭａＡＡＯ３(表１)ꎬ其氨基酸残基数量分别为１３６５㊁１３９３㊁１３９９个ꎬ编码蛋白的分子量范围为１５.０５~１５.２６ｋｕꎬ等电点范围是６.５９~６.６２ꎮ为分析ＭａＡＡＯｓ的进化关系ꎬ分别下载了水稻和拟南芥ＡＡＯ基因家族的蛋白质序列(表１)ꎬ采用ＮＪ法构建了系统发育树(图１)ꎮ可见ꎬ所有ＡＡＯ蛋白可以分成两类ꎬＭａＡＡＯ２和ＭａＡＡＯ３与所有ＡｔＡＡＯｓ及大部分ＯｓＡＡＯｓ聚在一个亚类ꎬ而ＭａＡＡＯ１则与两个ＯｓＡＡＯｓ聚成一个亚类ꎮ㊀㊀表１㊀ＡＡＯ基因信息基因名基因编号基因位置氨基酸数量/个分子量/ｋｕ等电点ＭａＡＡＯ１Ｍａ０６＿ｔ２６７２０.１ｃｈｒ６:２８５８０５１０－２８６１３３３９１３６５１５.０５６.６２ＭａＡＡＯ２Ｍａ０９＿ｔ１００８０.２ｃｈｒ９:６８８３０９７－６８９５０４７１３９３１５.１９６.３７ＭａＡＡＯ３Ｍａ０９＿ｔ１０１００.１ｃｈｒ９:６８９６４８０－６９０８６５４１３９９１５.２６６.５９ＡｔＡＡＯ１ＡＴ５Ｇ２０９６０.１ｃｈｒ５:７１１６４５５－７１２２７４７１３６８１４.９６６.３４ＡｔＡＡＯ２ＡＴ３Ｇ４３６００.１ｃｈｒ３:１５５１１８３２－１５５１７５４５１３２１１４.４６５.４１ＡｔＡＡＯ３ＡＴ２Ｇ２７１５０.１ｃｈｒ２:１１６０１７２７－１１６０７１９９１３３２１４.６７６.６３ＡｔＡＡＯ４ＡＴ１Ｇ０４５８０.１ｃｈｒ１:１２５２００５－１２５７８９３１３３７１４.７３６.２８ＯｓＡＡＯＬＯＣ＿Ｏｓ０３ｇ３１５５０.１ｃｈｒ３:１７９８５５６３－１７９９８４９８１３７０１５.０２６.９９ＬＯＣ＿Ｏｓ０３ｇ３１５５０.２ｃｈｒ３:１７９８５５６３－１７９９８４９８１２７３１３.９９７.２７ＬＯＣ＿Ｏｓ０７ｇ０７０５０.２ｃｈｒ７:３４７６２８８－３４７１８３４５４８６.０３７.４７ＬＯＣ＿Ｏｓ０７ｇ０７０５０.１ｃｈｒ７:３４７６９２１－３４７１７８９６０５６.６８８.４４ＬＯＣ＿Ｏｓ０３ｇ５７６８０.１ｃｈｒ３:３２８７７２０６－３２８６９４８２１３５７１４.５３６.４５ＬＯＣ＿Ｏｓ０３ｇ５７６９０.１ｃｈｒ３:３２８８６２６６－３２８７９５６６１３５６１４.５１６.１７ＬＯＣ＿Ｏｓ１０ｇ０４８６０.１ｃｈｒ１０:２３５８７９０－２３６８７３２１３５９１４.５５６.４２ＬＯＣ＿Ｏｓ０７ｇ１８１２０.１ｃｈｒ７:１０７２４５９９－１０７３８０１９１３６６１４.８５７.２４ＬＯＣ＿Ｏｓ０７ｇ１８１５４.１ｃｈｒ７:１０７４８７４６－１０７６０８４８８４５９.２１６.６５ＬＯＣ＿Ｏｓ０７ｇ１８１５４.２ｃｈｒ７:１０７４８７４６－１０７６０８３３７２７７.９２６.７８㊀㊀注:基因名中Ｍａ代表香蕉ꎬＡｔ代表拟南芥ꎬＯｓ代表水稻ꎮ７１㊀第１０期㊀㊀㊀㊀㊀曾坚ꎬ等:香蕉中ＡＢＡ醛氧化酶基因家族的鉴定及其表达分析图１㊀ＡＡＯ家族蛋白系统进化树２.２㊀ＭａＡＡＯｓ基因家族的结构域和基因结构分析利用ＭＥＭＥ数据库从ＭａＡＡＯｓ基因中鉴定得到１０个保守结构域ꎬ并用ＩｎｔｅｒＰｒｏ数据库进行了注释ꎮ由结果(图２㊁表２)可见ꎬ３个ＭａＡＡＯｓ基因表现出类似的结构域组成ꎬ仅ＭａＡＡＯ１缺少了Ｍｏｔｉｆ８ꎻ除了Ｍｏｔｉｆ７ꎬ其余９个Ｍｏｔｉｆ都含有结构域ＩＰＲ０１６２０８ꎬ其功能被注释为醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶ꎮ随后对ＭａＡＡＯｓ基因结构进行分析ꎬＭａＡＡＯ２和ＭａＡＡＯ３有类似的基因结构ꎬ都有１０个内含子ꎻ而ＭａＡＡＯ１的内含子则是１４个(图３)ꎮ表明相同聚类有类似的结构域组成和基因结构ꎬ与系统发育树的分析结果相一致ꎮ图２㊀ＭａＡＡＯｓ基因结构域㊀㊀表２㊀ＭａＡＡＯｓ基因结构域的注释编号序列结构域(注释)Ｍｏｔｉｆ１ＣＬＴＬＬＣＳＩＮＦＣＳＶＩＴＳＥＧＬＧＮＳＫＤＧＦＨＰＩＨＥＲＦＡＧＦＨＡＳＱＣＧＦＣＴＰＧＭＣＭＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ２ＬＲＲＰＶＲＭＹＬＤＲＫＴＤＭＩＭＴＧＧＲＨＰＭＫＩＮＹＳＶＧＦＫＳＤＧＫＩＴＡＬＨＶＤＩＦＩＮＡＧＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ３ＥＶＥＶＤＶＬＴＧＧＴＩＩＬＲＴＤＬＩＹＤＣＧＱＳＬＮＰＡＶＤＬＧＱＩＥＧＡＦＶＱＧＩＧＦＦＭＬＥＥＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ４ＡＩＰＤＥＤＮＣＩＬＶＹＳＳＴＱＣＰＥＩＡＱＧＶＩＡＫＣＬＧＩＰＤＨＮＶＲＶＩＴＲＲＶＧＧＧＦＧＧＫＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ５ＮＳＤＧＬＶＩＳＤＧＴＷＴＹＫＩＰＴＩＤＢＩＰＫＱＦＮＶＫＬＬＫＳＧＨＨＥＫＲＶＬＳＳＫＡＳＧＥＰＰＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ６ＫＩＴＫＦＥＡＥＫＡＩＡＧＮＬＣＲＣＴＧＹＲＰＩＶＤＶＣＫＳＦＡＡＢＶＤＬＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ７ＧＤＡＰＥＹＴＬＰＡＪＩＤＥＬＡＳＳＡＤＹＬＤＲＬＥＩＩＲＨＦＮＳＣＮＫＷＲＫＲＧＩＳＬＶＰＶＶＹ无Ｍｏｔｉｆ８ＥＬＨＳＮＥＲＬＶＦＳＫＩＡＤＨＭＤＫＶＡＳＰＦＩＲＮＭＡＳＬＧＧＮＬＩＭＡＱＲＳＱＦＡＳＤＶＡＴＩＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ９ＹＮＷＧＡＬＳＦＤＡＲＩＣＫＴＮＦＰＴＫＳＡＭＲＧＰＧＤＶＱＧＳＦＩＡＥＳＶＩＥＨＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ１０ＦＴＧＰＫＬＧＣＧＥＧＧＣＧＡＣＶＶＬＬＳＴＹＤＰＶＳＧＱＶＫＥＦＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)８１㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５５卷㊀图３㊀ＭａＡＡＯｓ基因的结构分析２.３㊀ＭａＡＡＯｓ在粉蕉不同组织中的表达如图４Ａ所示ꎬ粉蕉根中ＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ３基因高表达(ＦＰＫＭ>５)ꎬ叶中３个ＭａＡＡＯｓ基因都表现出高表达ꎬ而果实(８０ＤＡＦ)中则只有ＭａＡＡＯ１表现出高表达ꎮ３个ＭａＡＡＯｓ基因中ꎬ只有ＭａＡＡＯ１在粉蕉根㊁叶和果实中都呈现出高表达ꎮ图４㊀ＭａＡＡＯｓ基因在香蕉不同组织(Ａ)㊁果实不同发育阶段(Ｂ)㊁不同逆境处理(Ｃ)中的表达分析２.４㊀ＭａＡＡＯｓ在粉蕉果实不同发育阶段中的表达为明确ＭａＡＡＯｓ基因在香蕉果实发育过程中的功能ꎬ对其在不同发育阶段果实中的表达情况进行了分析ꎬ结果(图４Ｂ)显示ꎬ只有ＭａＡＡＯ１在果实发育早期(０ＤＡＦ和２０ＤＡＦ)和后期(８０ＤＡＦ㊁３ＤＰＨ)中表现出高表达(ＦＰＫＭ>５)ꎬ且以３ＤＰＨ果实中的表达量最高ꎻＭａＡＡＯ２在果实发育整个阶段的表达都极低ꎻＭａＡＡＯ３在果实各发育阶段的表达水平相比ＭａＡＡＯ２要高ꎬ但除２０ＤＡＦ外均没有达到高表达ꎮ因此推测ＭａＡＡＯ１可能在果实发育过程中发挥着重要作用ꎮ２.５㊀ＭａＡＡＯｓ在不同逆境处理下的表达为分析ＭａＡＡＯｓ基因在粉蕉应对逆境胁迫中的功能ꎬ设置生物和非生物胁迫处理ꎬ分析３个ＭａＡＡＯｓ基因在粉蕉植株根中的表达情况ꎬ结果(图４Ｃ)显示ꎬ在Ｆｏｃ４处理下ꎬＭａＡＡＯ２基因表现出上调(ｌｏｇ２－ｂａｓｅｄｆｏｌｄｃｈａｎｇｅ>１)ꎻ在渗透胁迫下ꎬＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ２基因表现出上调ꎻ在冷和盐胁迫下ꎬ３个基因均未表现出明显的上调表达ꎻＭａＡＡＯ３基因在所有逆境处理中都没有表现出显著变化ꎮ３㊀讨论香蕉既是一种重要的热带和亚热带水果ꎬ也是全球１３０多个国家的主粮ꎬ但其研究进展相比其它作物要慢[２０]ꎮＡＢＡ在植物的生长发育和生物/非生物胁迫响应中起着重要作用[２１]ꎬ而ＡＡＯ是ＡＢＡ合成途径中的重要合成酶ꎬ但香蕉ＡＡＯ基因家族的情况仍不清楚ꎮ本研究从香蕉Ａ基因组中鉴定出３个ＭａＡＡＯｓ基因ꎬ保守结构域分析证明这３个基因属于ＡＡＯ家族ꎬ并根据系统发育树将其分为两个亚类ꎬ其中ＭａＡＡＯ２和ＭａＡＡＯ３聚为一类ꎮ拟南芥的ＡＡＯ基因数量是４个[９]ꎬ水稻中可能是５个[１０]ꎬ小麦中是３个[１１]ꎬ数量均较少ꎬ表明ＡＡＯ蛋白可能属于小基因家族编码的蛋白质ꎮ９１㊀第１０期㊀㊀㊀㊀㊀曾坚ꎬ等:香蕉中ＡＢＡ醛氧化酶基因家族的鉴定及其表达分析香蕉果实的发育和成熟过程决定着果实的品质和产量[１４]ꎮ研究表明ꎬＡＢＡ信号参与了果实的生长发育并影响着果实的成熟过程和最终品质ꎻ未成熟水果中的内源ＡＢＡ含量通常较低ꎬ施加外源ＡＢＡ能促进果实成熟及果肉软化ꎻ果实成熟过程中ＡＢＡ合成相关基因的表达上调导致内源ＡＢＡ大量积累[２２]ꎮ这些结果表明ＡＢＡ在水果成熟过程中发挥着重要作用ꎮ在本研究中ꎬ不同ＭａＡＡＯｓ基因在粉蕉果实不同发育阶段表现出不同的表达模式ꎬＭａＡＡＯ１基因在早期和晚期都表现出高表达ꎬ而ＭａＡＡＯ２和ＭａＡＡＯ３几乎不表达ꎻ此外ꎬＭａＡＡＯ１在粉蕉叶㊁根㊁果实中均表现出高表达ꎬ推测ＭａＡＡＯ１基因在香蕉果实发育和成熟过程中可能具有重要作用ꎮ香蕉生长过程中常会遇到干旱㊁盐㊁寒冷以及枯萎病菌感染等非生物和生物逆境ꎬ对果实品质及产量造成影响[１５－１６]ꎮ在拟南芥中ꎬＡｔＡＡＯ３和ＡｔＡＡＯ１基因表达明显受到干旱胁迫的诱导[９ꎬ２３]ꎻ在拟南芥中过表达花生ＡｈＡＡＯ２基因也能显著提高植株抵抗干旱胁迫的能力[２４]ꎮ本研究发现ꎬＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ２基因受渗透胁迫诱导上调表达ꎬ但受冷和盐胁迫的影响很小ꎻＭａＡＡＯ３基因的表达在３种胁迫下均无显著变化ꎮ表明ＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ２基因可能在香蕉响应干旱胁迫中发挥作用ꎮ香蕉的种植生产也受到香蕉枯萎病的严重影响ꎮ有研究表明ＡＢＡ能负向调控水杨酸(ＳＡ)介导的病原体反应ꎬ例如ꎬ提高植株中ＡＢＡ的含量ꎬ会显著促进细菌的生长[２５]ꎮ在本研究中ꎬ仅ＭａＡＡＯ２基因的表达显著受到Ｆｏｃ４处理的诱导ꎬ表明这个基因可能参与了响应Ｆｏｃ４侵染的过程ꎮ４㊀结论本研究从香蕉Ａ基因组中鉴定得到了３个ＭａＡＡＯｓ基因ꎬ经系统发育分析㊁蛋白结构域和基因结构分析ꎬ确定属于ＡＡＯ基因家族ꎮＭａＡＡＯｓ基因参与了香蕉的生长发育㊁果实成熟和对生物/非生物胁迫的响应等过程ꎮ其中ꎬＭａＡＡＯ１基因在果实发育早期和成熟阶段都表现出高表达ꎻＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ２基因对渗透胁迫有响应ꎻＭａＡＡＯ２基因的表达被Ｆｏｃ４诱导ꎬ可能响应该病菌的侵染ꎮ参㊀考㊀文㊀献:[１]㊀ＥａｇｌｅｓＣＦꎬＷａｒｅｉｎｇＰＦ.ＤｏｒｍａｎｃｙＲｅｇｕｌａｔｏｒｓｉｎｗｏｏｄｙｐｌａｎｔｓ:ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｉｎｄｕｃｔｉｏｎｏｆｄｏｒｍａｎｃｙｉｎＢｅｔｕｌａｐｕｂｅｓｃｅｎｓ[Ｊ].Ｎａｔｕｒｅꎬ１９６３ꎬ１９９(４８９６):８７４－８７５.[２]㊀ＣｈｅｒｎｙｓＪＴꎬＺｅｅｖａａｒｔＪＡ.Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆｔｈｅ９￣ｃｉｓ￣ｅｐｏｘｙ￣ｃａｒｏｔｅｎｏｉｄｄｉｏｘｙｇｅｎａｓｅｇｅｎｅｆａｍｉｌｙａｎｄｔｈｅｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｏｆａｂ￣ｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓｉｎａｖｏｃａｄｏ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ２０００ꎬ１２４(１):３４３－３５３.[３]㊀ＬｅｅＳＣꎬＬｕａｎＳ.ＡＢＡｓｉｇｎａｌｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎａｔｔｈｅｃｒｏｓｓｒｏａｄｏｆｂｉｏｔｉｃａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ[Ｊ].ＰｌａｎｔＣｅｌｌａｎｄＥｎｖｉｒｏｎ￣ｍｅｎｔꎬ２０１２ꎬ３５(１):５３－６０.[４]㊀ＹｏｓｈｉｄａＴꎬＭｏｇａｍｉＪꎬＹａｍａｇｕｃｈｉ￣ＳｈｉｎｏｚａｋｉＫ.ＡＢＡ￣ｄｅｐｅｎｄ￣ｅｎｔａｎｄＡＢＡ￣ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔｓｉｇｎａｌｉｎｇｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｏｓｍｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｉｎｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＣｕｒｒｅｎｔＯｐｉｎｉｏｎｉｎＰｌａｎｔＢｉｏｌｏｇｙꎬ２０１４ꎬ２１:１３３－１３９.[５]㊀ＳｈｉｎｏｚａｋｉＫꎬＹａｍａｇｕｃｈｉ￣ＳｈｉｎｏｚａｋｉＫꎬＳｅｋｉＭ.Ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙｎｅｔ￣ｗｏｒｋｏｆｇｅｎｅｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｉｎｔｈｅｄｒｏｕｇｈｔａｎｄｃｏｌｄｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ[Ｊ].ＣｕｒｒｅｎｔＯｐｉｎｉｏｎｉｎＰｌａｎｔＢｉｏｌｏｇｙꎬ２００３ꎬ６(５):４１０－４１７.[６]㊀ＺｅｅｖａａｒｔＪＡＤꎬＣｒｅｅｌｍａｎＲＡ.Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍａｎｄｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙｏｆａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄ[Ｊ].ＡｎｎｕａｌＲｅｖｉｅｗｏｆＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙａｎｄＰｌａｎｔＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙꎬ１９８８ꎬ３９(１):４３９－４７３. [７]㊀ＮａｍｂａｒａＥꎬＭａｒｉｏｎ￣ＰｏｌｌＡ.Ａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓａｎｄｃａ￣ｔａｂｏｌｉｓｍ[Ｊ].ＡｎｎｕａｌＲｅｖｉｅｗｏｆＰｌａｎｔＢｉｏｌｏｇｙꎬ２００５ꎬ５６:１６５－１８５.[８]㊀ＣｈｅｎＫꎬＬｉＧＪꎬＢｒｅｓｓａｎＲａｙＡꎬｅｔａｌ.Ａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｄｙｎａｍ￣ｉｃｓꎬｓｉｇｎａｌｉｎｇꎬａｎｄｆｕｎｃｔｉｏｎｓｉｎｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｎｔｅｇｒａ￣ｔｉｖｅＰｌａｎｔＢｉｏｌｏｇｙꎬ２０２０ꎬ６２(１):２５－５４.[９]㊀ＳｅｏＭꎬＰｅｅｔｅｒｓＡＪꎬＫｏｉｗａｉＨꎬｅｔａｌ.ＴｈｅＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅ３(ＡＡＯ３)ｇｅｎｅｐｒｏｄｕｃｔｃａｔａｌｙｚｅｓｔｈｅｆｉｎａｌｓｔｅｐｉｎａｂ￣ｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓｉｎｌｅａｖｅｓ[Ｊ].ＰＮＡＳꎬ２０００ꎬ９７(２３):１２９０８－１２９１３.[１０]ＢａｔｔｈＲꎬＳｉｎｇｈＫꎬＫｕｍａｒｉＳꎬｅｔａｌ.Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｐｒｏｆｉｌｉｎｇｒｅｖｅａｌｓｔｈｅｐｒｅｓｅｎｃｅｏｆａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓａｎｄｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌｓｔａｇｅｓｐｅｃｉｆｉｃａｓｃｏｒｂａｔｅｏｘｉｄａｓｅｇｅｎｅｓｉｎｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉ￣ｅｎｃｅꎬ２０１７ꎬ８:１９８.[１１]ＣｏｌａｓｕｏｎｎｏＰꎬＭａｒｃｏｔｕｌｉＩꎬＬｏｚｉｔｏＭＬꎬｅｔａｌ.Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅ(ＡＯ)ｇｅｎｅｓｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｔｈｅａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎｏｆｃａｒｏｔｅｎｏｉｄｐｉｇｍｅｎｔｓｉｎｗｈｅａｔｇｒａｉｎ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０１７ꎬ８:８６３.[１２]ＳａｇｉＭꎬＦｌｕｈｒＲꎬＬｉｐｓＳＨ.Ａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅａｎｄｘａｎｔｈｉｎｅｄｅ￣ｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅｉｎａｆｌａｃｃａｔｏｍａｔｏｍｕｔａｎｔｗｉｔｈｄｅｆｉｃｉｅｎｔａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄａｎｄｗｉｌｔｙｐｈｅｎｏｔｙｐｅ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ１９９９ꎬ１２０(２):５７１－５７８.[１３]Ｗａｌｋｅｒ￣ＳｉｍｍｏｎｓＭꎬＫｕｄｒｎａＤＡꎬＷａｒｎｅｒＲＬ.Ｒｅｄｕｃｅｄａｃｃｕ￣ｍｕｌａｔｉｏｎｏｆＡＢＡｄｕｒｉｎｇｗａｔｅｒｓｔｒｅｓｓｉｎａｍｏｌｙｂｄｅｎｕｍｃｏｆａｃｔｏｒｍｕｔａｎｔｏｆｂａｒｌｅｙ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ１９８９ꎬ９０(２):７２８－７３３.０２㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５５卷㊀[１４]ＨｕＷꎬＺｕｏＪꎬＨｏｕＸＷꎬｅｔａｌ.Ｔｈｅａｕｘｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｆａｃｔｏｒｇｅｎｅｆａｍｉｌｙｉｎｂａｎａｎａ:ｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎａｎａｌｙｓｅｓｄｕｒｉｎｇｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔꎬｒｉｐｅｎｉｎｇꎬａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０１５ꎬ６:７４２.[１５]ＲａｓｈａｄＹＭꎬＦｅｋｒｙＷＭＥꎬＳｌｅｅｍＭＭꎬｅｔａｌ.Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｍｙ￣ｃｏｒｒｈｉｚａｌｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎｏｎｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆｔｈｅｒｅ￣ｓｐｏｎｓｉｖｅｆａｃｔｏｒＪＥＲＦ３ａｎｄｓｔｒｅｓｓ￣ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｇｅｎｅｓｉｎｂａｎａｎａｐｌａｎｔｌｅｔｓｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｃｏｍｂｉｎｅｄｂｉｏｔｉｃａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｅｓ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０２１ꎬ１２:７４２６２８. [１６]ＸｕＹꎬＬｉｕＪＨꎬＪｉａＣＨꎬｅｔａｌ.ＯｖｅｒｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆａｂａｎａｎａａｑｕａｐｏｒｉｎｇｅｎｅＭａＰＩＰ１ꎻ１ｅｎｈａｎｃｅｓｔｏｌｅｒａｎｃｅｔｏｍｕｌｔｉｐｌｅａｂｉ￣ｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｅｓｉｎｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｂａｎａｎａａｎｄａｎａｌｙｓｉｓｏｆｉｔｓｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０２１ꎬ１２:６９９２３０.[１７]ＸｕＹꎬＴｉｅＷＷꎬＹａｎＹꎬｅｔａｌ.ＩｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆｔｈｅＢＡＨＤｆａｍｉｌｙｄｕｒｉｎｇｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔꎬｒｉｐｅｎｉｎｇꎬａｎｄｓｔｒｅｓｓｒｅ￣ｓｐｏｎｓｅｉｎｂａｎａｎａ[Ｊ].ＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙＲｅｐｏｒｔｓꎬ２０２１ꎬ４８(２):１１２７－１１３８.[１８]ＰｏｌｌｉｅｒＪꎬＲｏｍｂａｕｔｓＳꎬＧｏｏｓｓｅｎｓＡ.ＡｎａｌｙｓｉｓｏｆＲＮＡ￣ＳｅｑｄａｔａｗｉｔｈＴｏｐＨａｔａｎｄＣｕｆｆｌｉｎｋｓｆｏｒｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎａｎａｌｙｓｉｓｏｆｊａｓｍｏｎａｔｅ￣ｔｒｅａｔｅｄｐｌａｎｔｓａｎｄｐｌａｎｔｃｕｌｔｕｒｅｓ[Ｊ].ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙꎬ２０１３ꎬ１０１１:３０５－３１５.[１９]ＴｒａｐｎｅｌｌＣꎬＲｏｂｅｒｔｓＡꎬＧｏｆｆＬꎬｅｔａｌ.ＤｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌｇｅｎｅａｎｄｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎａｎａｌｙｓｉｓｏｆＲＮＡ￣ＳｅｑｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓｗｉｔｈＴｏ￣ｐＨａｔａｎｄＣｕｆｆｌｉｎｋｓ[Ｊ].ＮａｔｕｒｅＰｒｏｔｏｃｏｌｓꎬ２０１２ꎬ７(３):５６２－５７８.[２０]ＨｕＷꎬＷａｎｇＬＺꎬＴｉｅＷＷꎬｅｔａｌ.Ｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅａｎａｌｙｓｅｓｏｆｔｈｅｂＺＩＰｆａｍｉｌｙｒｅｖｅａｌｔｈｅｉｒｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔｉｎｔｈｅｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔꎬｒｉｐｅｎｉｎｇａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｉｎｂａｎａｎａ[Ｊ].ＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃＲｅｐｏｒｔｓꎬ２０１６ꎬ６(１):３０２０３.[２１]ＨａｒａｋａｖａＲ.ＧｅｎｅｓｅｎｃｏｄｉｎｇｅｎｚｙｍｅｓｏｆｔｈｅｌｉｇｎｉｎｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓｐａｔｈｗａｙｉｎＥｕｃａｌｙｐｔｕｓ[Ｊ].ＧｅｎｅｔｉｃｓａｎｄＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙꎬ２００５ꎬ２８(３):６０１－６０７.[２２]杨方威ꎬ段懿菲ꎬ冯叙桥.脱落酸的生物合成及对水果成熟的调控研究进展[Ｊ].食品科学ꎬ２０１６ꎬ３７(３):２８５－２９１. [２３]ＹｅｓｂｅｒｇｅｎｏｖａＺꎬＹａｎｇＧＨꎬＯｒｏｎＥꎬｅｔａｌ.ＴｈｅｐｌａｎｔＭｏ￣ｈｙｄｒｏｘｙｌａｓｅｓａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅａｎｄｘａｎｔｈｉｎｅｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅｈａｖｅｄｉｓｔｉｎｃｔｒｅａｃｔｉｖｅｏｘｙｇｅｎｓｐｅｃｉｅｓｓｉｇｎａｔｕｒｅｓａｎｄａｒｅｉｎｄｕｃｅｄｂｙｄｒｏｕｇｈｔａｎｄａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄ[Ｊ].ＰｌａｎｔＪｏｕｒｎａｌꎬ２００５ꎬ４２(６):８６２－８７６.[２４]ＹａｎｇＬꎬＬｉａｎｇＪꎬＺｈｏｕＷꎬｅｔａｌ.ＩｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆｔｈｅＡｌｄｅｈｙｄｅＯｘｉｄａｓｅ２ｇｅｎｅｆｒｏｍＡｒａｃｈｉｓｈｙｐｏｇａｅａＬ.[Ｊ].ＰｌａｎｔＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙＲｅｐｏｒｔｅｒｓꎬ２０１１ꎬ２９(３):５４４－５５３. [２５]ＦａｎＪꎬＨｉｌｌＬꎬＣｒｏｏｋｓＣꎬｅｔａｌ.Ａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｈａｓａｋｅｙｒｏｌｅｉｎｍｏｄｕｌａｔｉｎｇｄｉｖｅｒｓｅｐｌａｎｔ￣ｐａｔｈｏｇｅｎｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓ￣ｉｏｌｏｇｙꎬ２００９ꎬ１５０(４):１７５０－１７６１.１２㊀第１０期㊀㊀㊀㊀㊀曾坚ꎬ等:香蕉中ＡＢＡ醛氧化酶基因家族的鉴定及其表达分析。

香蕉多酚氧化酶成熟蛋白的原核表达陈娇;孙长君;杨昭;王朝政;李奕星;李芬芳;袁德保;谭琳;仇厚援【摘要】笔者所在课题组从巴西香蕉中分离到1个PPO基因全长,并进行了原核表达,但结果未表达出目的蛋白.鉴于上述情况,笔者对香蕉PPO全蛋白进行转移肽分析,结果发现其N端含有转移肽,长度为47个氨基酸.切除转移肽并进行香蕉PPO 成熟蛋白原核表达,SDS-PAGE电泳检测结果表明,在62 ku处有一条特异的蛋白条带,与预测大小相符;并且进行质谱分析,结果确定重组表达蛋白为香蕉PPO,初步说明转移肽对香蕉PPO体外表达的影响,为进一步研究香蕉PPO功能及在香蕉褐变生理和调控机制中的作用提供理论基础.【期刊名称】《热带作物学报》【年(卷),期】2015(036)012【总页数】6页(P2198-2203)【关键词】香蕉;多酚氧化酶;转移肽;成熟蛋白;原核表达【作者】陈娇;孙长君;杨昭;王朝政;李奕星;李芬芳;袁德保;谭琳;仇厚援【作者单位】中国热带农业科学院海口实验站海南省香蕉遗传改良重点实验室海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站海南省香蕉遗传改良重点实验室海南海口570102;海南大学食品学院,海南海口 570228;中国热带农业科学院海口实验站海南省香蕉遗传改良重点实验室海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站海南省香蕉遗传改良重点实验室海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站海南省香蕉遗传改良重点实验室海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站海南省香蕉遗传改良重点实验室海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站海南省香蕉遗传改良重点实验室海南海口570102;海南大学食品学院,海南海口 570228【正文语种】中文【中图分类】S668.1AbstractA full-length PPO gene was isolated from banana，and the prokaryotic expression of this full-length gene was not succeeded.A 47 amino acids length transit peptide in its N-terminus was predicted by further amino acid sequence analysis.Prokaryotic expression of mature PPO protein without the transit peptide was performed.SDS-PAGE electrophoresis results showed a 62 ku specific protein bands with the expected size，and mass spectrometry analysis results showed that the recombinant protein was banana PPO.The results indicated that the transfer peptide may affect banana PPO expression in vitro，and lay some theory foundation to study the functions of banana PPO and its role in banana browning physiology and regulatory mechanisms.Key wordsBanana；Polyphenol oxidase；Transit peptide；Mature protein；Prokaryotic expressiondoi10.3969/j.issn.1000-2561.2015.12.015香蕉（Musa acuminate）是世界最重要的水果之一，同时在一些经济不发达的国家也作为一种重要粮食作物［1-2］。

海南香蕉病毒病害调查及检测王达新;马蔚红;殷晓敏;郭刚【摘要】[目的]开展海南省香蕉病毒病害调查研究,为海南香蕉病毒病检测和防控提供依据.[方法]采用5点随机取样法在海南省海口、澄迈、儋州、白沙、昌江、东方、乐东、三亚等市(县)的香蕉园对呈典型病毒病症状的香蕉植株进行病毒病调查和病样采集,并运用ELISA、PCR和RT-PCR方法对病样进行病毒学检测.[结果]在所有被调查的蕉园中均有香蕉病毒病害发生,其田间自然发病率一般为5％～8％,症状可分为束顶型、花叶心腐型、褪绿条纹型、叶脉坏死型和花苞畸形型5种,其中束顶型和花叶心腐型最为常见;ELISA、PCR或RT-PCR检测发现,束顶型、花叶心腐型病样病原分别为BBTV和CMV,花苞畸形型和叶脉坏死型病样均由BBTV、CMV复合侵染所致,褪绿条纹型病样在CMV/BSV的ELISA检测中均为阴性,但BSV的PCR检测结果为阳性.[结论]海南香蕉病毒病主要由香蕉束顶病毒(BBTV)和黄瓜花叶病毒(香蕉株系,CMV)单独或复合侵染所致.生产中,应推广种植香蕉无毒试管苗,实施蕉园蚜虫综合防控,以减少香蕉病毒病的发生与传播.【期刊名称】《南方农业学报》【年(卷),期】2014(045)002【总页数】5页(P209-213)【关键词】香蕉;病毒病;调查;检测;海南【作者】王达新;马蔚红;殷晓敏;郭刚【作者单位】中国热带农业科学院海口实验站,海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海口570102【正文语种】中文【中图分类】S432.41【研究意义】香蕉为芭蕉科（Musaceae）芭蕉属（Musa）植物，是重要的经济作物和粮食作物，也是重要的热带、亚热带水果。

海南岛地处我国热区，生态和生产环境优越，是我国香蕉主产区之一，香蕉种植业已成为当地农民经济收入的重要来源。