机能学实验报告家-兔失血性休克

一、实验目的1. 熟悉家兔失血性休克的病理生理过程。

2. 掌握家兔失血性休克的实验操作方法。

3. 观察家兔失血性休克的治疗效果，分析不同治疗方法的优缺点。

二、实验原理休克是指机体在有效循环血量锐减的情况下，由于组织器官灌注不足而引起的一系列病理生理变化。

失血性休克是指由于失血导致血容量急剧减少，引起组织器官灌注不足，进而发生的一系列病理生理变化。

三、实验材料1. 实验动物：新西兰纯种白兔（体重2.0-2.5kg）3只。

2. 实验仪器：手术器械、注射器、动脉夹、血压计、生理盐水、肾上腺素、去甲肾上腺素、氯化钙、葡萄糖、乳酸林格氏液等。

3. 实验药品：20%乌拉坦、利多卡因注射液、0.9％氯化钠注射液、125U/ml肝素溶液、1％普鲁卡因，7.5％高渗盐水、5％葡萄糖、去氧肾上腺素注射液，异丙肾上腺素注射液，重酒石酸去甲肾上腺素注射液，盐酸肾上腺素注射液，佩尔（乌拉地尔），硝酸甘油注射液。

四、实验方法1. 实验分组：将3只家兔随机分为3组，每组1只。

2. 实验步骤：（1）麻醉：采用20%乌拉坦（5ml/kg体重）进行全身麻醉。

（2）手术：将家兔仰卧固定，常规消毒后，在颈部暴露颈动脉，用动脉夹阻断血流，然后切开皮肤，分离颈动脉，插入动脉导管，连接血压计。

（3）失血性休克诱导：采用快速失血法，即在2分钟内使家兔失血量达到总血量的30%。

（4）观察指标：观察家兔失血性休克发生后的临床表现，如心率、血压、呼吸、精神状态等。

（5）治疗：分别给予3组家兔不同的治疗方法：A组：给予生理盐水（5ml/kg体重）静脉滴注，作为对照组。

B组：给予肾上腺素（0.01mg/kg体重）静脉注射，作为治疗组。

C组：给予去甲肾上腺素（0.1mg/kg体重）静脉注射，作为治疗组。

（6）观察治疗效果：观察治疗前后家兔的临床表现，如心率、血压、呼吸、精神状态等。

五、实验结果1. 家兔失血性休克发生后的临床表现：家兔失血性休克发生时，表现为心率加快、血压下降、呼吸急促、精神萎靡等。

家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。

实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。

实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。

结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。

实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。

实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。

实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。

其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。

结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。

家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救实验报告实验题目：家兔失血性休克模型的制作及治疗实验目的：制作家兔失血性休克模型，观察家兔血压、心率、呼吸和微循环的变化，进一步理解休克发生的病理生理机制，并了解失血性休克的治疗措施实验对象：家兔，体重1.92kg实验器材与药品：1、器材：兔用手术器械一套、兔手术台、静脉输液装置、动脉和静脉插管各一、三通管、注射器（20,5,1ml）、显微镜、手术线、纱布2、药品：20%乌拉坦、1%肝素、去甲肾上腺素、生理盐水实验步骤：1、抓取家兔并称重，取20%乌拉坦9.6ml经耳缘静脉缓慢推注2、待家兔四肢张力降低，无抵抗，角膜反射消失后，在兔手术台进行牢靠固定并备皮，备皮部位：颈部与腹部3、做颈部正中切口5cm，分层剪开，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，小心游离血管3-4cm，在血管的两端穿线备用4、经耳缘静脉注入1%肝素2ml抗凝5、颈外静脉插管：先夹闭近心端，再结扎远心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm,NS维持，5-10滴/min6、颈总动脉插管：先结扎远心端，再夹闭近心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm7、腹部正中切口6-8cm，拉出一段肠系膜（不取盲肠肠系膜），固定于显微镜下观察微循环8稳定5min,记录此状态下BP、HR、R、微循环；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录9、颈总动脉放血10%（约13ml）,稳定约5min,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；继续放血至25%（约35ml），稳定约5min，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录10、NE0.25ml，用NS稀释至20ml，静脉滴注，并全血回输，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录实验结果:状态r、参数BP（mmHg）HR（次/min）R（次/min）微循环变化正常状态106190血流量及流速正常推注NE0.1ml11723254血管收缩，血流加速放血10%9222056血流量及流速变化不明显放血25%4617046血管收缩，血流量减少推注NE0.1ml56176血管进一步收缩，流速加快，流量减少全血回输6015844血管舒张，开始充盈分析讨论:正常状态下，推注NEO.Iml后，与心脏的（31受体结合，使心肌收缩力增强，心率加快，血压升高；与肠系膜血管a受体结合，使肠系膜血管收缩，血流速度加快。

家兔失血性休克实验报告
实验目的：探究家兔在不同程度失血后对身体机能的影响及失血性休克的发生。

实验方法：
1.实验前令家兔空腹24小时，保证实验数据更精确。

2.选取5只体重相近的家兔，用异丙酚进行麻醉。

3.将家兔置于手术台上，消毒操作后进行切腹手术，暴露血管并取血。

4.分别在实验一组、实验二组、实验三组、对照组分别取血量为7ml，10ml，13ml，无取血。

5.在实验过程中检查家兔的心率及呼吸率，并记录实验数据，如血压，心率等数据。

实验结果：
1.实验一组：取血量为7ml，失血后家兔发生心悸、呼吸急促、体温下降等症状，心率加快，下降到了96次/分钟。

4.对照组：没有进行任何失血处理，心率平稳，保持在120次/分钟左右。

1.家兔失血量较小时，如7ml左右，心率下降速度较慢，家兔出现的症状也较轻。

2.家兔失血量逐渐增大，呼吸急促、体温下降等症状逐渐显露，瞳孔扩大等症状也逐渐出现。

3.家兔失血量逐渐增大，心脏功能逐渐下降，最终可能导致失血性休克，甚至死亡。

4.对照组的数据表明，不进行失血处理的家兔的心率较稳定，生命体征不受任何影响。

通过本次实验，我们深刻认识到失血性休克对家兔身体的严重危害。

家兔失血量逐渐增大，症状逐渐加重，甚至会导致失血性休克、甚至死亡。

因此，在医学实践中，我们应当全面掌握失血性休克的处理方法，以保障患者生命安全。

家兔失血性休克【实验目的】1.复制失血性休克的动物模型。

2.观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变。

3.了解失血性休克的治疗。

【实验原理】休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。

失血导致血容量减少，是休克常见的病因。

休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。

根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC期）。

但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。

对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。

【材料与方法】一、实验动物家兔（体重2.0kg以上）二、器材与药品动物手术器械、动脉导管、静脉导管、三通管、体温计、注射器（1ml、10ml、50ml）、输液装置、丝线（7#、1#）、纱布、婴儿秤、兔固定台、微循环观察装置、MedLad生物信号采集处理系统。

20%氨基甲酸乙酯溶液，肝素生理盐水溶液，微循环灌流液、0.2%多巴胺、0.2%间羟胺。

三、手术步骤⒈麻醉和固定家兔称重后，20%氨基甲酸乙酯按5ml/kg体重耳缘静脉注射麻醉，动物仰卧固定，剪去手术部位被毛。

⒉颈部手术从甲状软骨向下作5cm长的颈正中切口，分离气管、左侧颈总动脉和右侧颈外静脉。

⒊启动MedLad生物信号采集处理系统。

点击MedLad“文件”菜单“打开配置”，选择“失血性休克”。

MedLad放大器和采样参数如表2-7-1所示。

表2-7-1MedLad通道设置和采样参数内容通道1 通道2 通道3 通道4处理名称中心静脉压血压心电呼吸换能器10kPa 40kPa 心电电极呼吸换能器显示方式记录仪记录仪记录仪记录仪DC/AC DC DC AC DC放大倍数100~500 100~500 500~1000 500~1000采样间隔1ms 1ms 1ms 5ms⒋插管左侧颈总动脉插入与40kPa换能器相连的颈动脉导管，推入少量的0.3%肝素抗凝，保持动脉通畅；从右侧颈外静脉插入与10kPa换能器相连的静脉导管，深约5cm，推入少量的0.1%肝素抗凝，保持静脉通畅；气管插管，连接呼吸换能器，描记呼吸曲线；分别将红、黄、黑针形心电电极放置于动物的右前肢、左前肢和右后肢皮下（或将红、黄、黑针形电极分别放置于下颌、心尖和右后肢皮下），描记心电波形。

昆明医科大学机能学实验报告实验日期: 2015年10月8日带教教师:小组成员:专业班级: 临床二大班失血性休克的实验治疗一、实验目的1、观察家兔失血性休克对机体的机能变化及微循环改变；2、探讨不同治疗方案对失血性休克的作用及其机制。

二、实验原理休克是多种原因引起的, 以机体急性微循环障碍为主要特征, 并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。

失血导致血容量减少, 是休克常见的病因。

休克的发生与否取决于失血量和失血速度, 当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时, 极易导致急性循环障碍, 组织有效血液灌流量不足, 即休克的发生。

根据休克过程中微循环的改变, 将休克分为三期: 休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC期）。

但依失血程度及快慢的不同, 各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。

对失血性休克的治疗, 首先强调的是止血和补充血容量, 以提高有效循环血量、心排血量, 改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物, 改善微循环状态。

三、实验仪器设备BL-420F生物信号采集处理系统, 微循环分析系统, 手术器械, 婴儿秤, 输血输液装置、呼吸血压描记装置, 测中心静脉压装置, 微循环观察装置, 气管插管, 动脉套管, 5ml、10ml、50ml注射器, 生理盐水, 肝素钠注射液溶液（5mg/ml）, 多巴胺（0.2mlkg）四、实验方法与步骤1.称重: 给麻醉好的家兔称重（2.6kg）2.气管插管：用粗剪刀减去颈部部分兔毛, 颈部正中切口, 剥离周围组织, 暴露气管, 于气管下穿线备用, 在甲状软骨下约l cm处剪一倒“T”型切口, 插入气管插管, 并用线扎紧, 再将余线绕气管插管的分又处再行结扎, 以防滑脱, 然后颈部气管插管接呼吸管能器。

3.颈总动脉插管 : 将上述切口边缘的皮肤及其下方的肌肉组织向外侧拉开, 即可见在气管两侧纵行的左、右颈总动脉鞘, 在鞘内, 颈总动脉与颈静脉、颈迷走神经、降压神经伴行在一起。

实验报告9 家兔失血性休克及其实验性治疗评分实验目的：家兔失血性休克模型的制备并观察其表现，了解高晶高胶液体对家兔失血性休克的疗效并探讨其机制。

实验原理：采用对家兔股动脉处放血的方法，10min内使MAP（平均动脉压）降至5.33kPa （40mmHg），并维持20 min，此时放血量已经达到20%以上，复制失血性休克的动物模型，利用解剖显微镜动态观察肠系膜微循环血流动力学的改变，再采用高晶高胶液进行扩容治疗，观察其对家兔失血性休克的治疗作用。

实验动物：家兔，2-3kg实验设备与试剂：动物秤，哺乳动物手术器械，储血瓶，烧杯，注射器(20ml，10ml，5ml)，血压换能器，呼吸换能器，生物信号采集系统，体温计，针头，血管插管，动脉夹，输液装置，棉线若干，纱布。

25%乌拉坦，肝素，生理盐水，微循环灌流液，7.5%氯化钠与6%低分子右旋糖酐混合液（即高晶高胶液）。

实验步骤：1、分组：生理盐水治疗组、高晶高胶液治疗组。

2、取正常家兔，称重后于耳缘静脉注射25%乌拉坦（4ml/kg体重），使家兔全身麻醉。

3、将实验兔固定于操作台，颈部备皮，手术暴露气管和颈总动脉，分别与呼吸描记装置和压力传感器连接，使用生物信号采集与分析系统记录MAP、Ps-d、HR。

4、在左侧股三角区域触及股动脉后，沿动脉行走方向做长约2cm的切口，插入长度约为40cm股动脉导管至下腔静脉入右心房处，插入深度约为20cm，导管外端连接三通管，一侧同输液瓶相连后，缓缓输入生理盐水（5-8d/min）以保持导管及静脉通畅，一侧经压力传感器与生物信号采集与分析系统连接，记录CVP。

5、在剑突下方1.5cm处向下沿正中线做长约5cm的腹正中切口，沿腹白线打开腹腔，找出一段游离度较大的小肠肠袢，轻轻拉出，置于微循环灌流盒内，用解剖显微镜观察肠系膜微循环情况。

6、将温度计插入直肠，测体温。

7、记录各项指标后，降低储血瓶，松动动脉夹，快速从左股动脉放血，10min内使MAP 降低至40mmHg，并维持20min，记录各项指标及储血瓶内血量。

家兔失血性休克及其实验性治疗——《医学机能实验学》实验报告作者：Aspirin实验日期：2013年12月18日院系：第一临床医学院专业：临床医学【实验题目】家兔失血性休克及其实验性治疗【实验目的】1.复制失血性休克的动物模型2.观察失血性休克时和抢救过程中动物的功能代谢变化及微循环改变3.了解失血性休克的抢救治疗方案【实验原理】休克是多种原因引起的，包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等，以机体微循环功能紊乱为主要特征，并可导致多器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。

失血导致血容量减少，是休克常见的病因。

休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减，如外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等，超过总血量的25%~30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。

根据失血性休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（休克代偿期或微循环缺血性缺氧期）、休克中期（可逆性失代偿期或微循环瘀血性缺氧期）、休克晚期（不可逆性失代偿期或微循环衰竭期）。

但依失血程度及速度的不同，各期持续时间、机体的功能代谢变化及临床表现均有所不同。

对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环，必要是可予抗炎等治疗。

【材料与方法】1.实验动物家兔（体重2.0kg以上）2.器材与药品器材：兔手术台、婴儿秤、兔用器械1套、动脉导管、三通管、气管插管、体温计、注射器（1ml、10 ml 、50 ml）、输液装置、丝线（7#、1#）、纱布、生物信号采集与处理系统药品：25%乌拉坦溶液、肝素生理盐水、1%普鲁卡因3.方法与步骤①麻醉固定家兔称重后，25%乌拉坦溶液按4ml/kg剂量经耳缘静脉注射麻醉，仰卧位固定于兔手术台上，减去手术部位被毛。

实验二十六家兔失血性休克一：实验目的复制失血性休克的家兔模型；观察失血性休克的发生发展过程中机体的变化，探讨其发生机制。

二：实验方法通过对比同一只家兔正常时和大量失血时的角膜反射、血压、心跳频率、呼吸频率、呼吸幅度以及红细胞压积来观察失血性休克时机体的变化。

三：实验步骤1.取健康家兔一只称重、固定，用1％普鲁卡因溶液皮下浸润麻醉颈部和股三角区动脉搏动明显部位，分离颈总动脉和股动脉，在两动脉下穿双线备用2.耳缘静脉注射1％肝素溶液1.5ml/Kg3.颈总动脉插管以及股动脉插管，股动脉近心端用动脉夹夹住，以备放血用4.观察正常时的各项指标，同时用比积管取一管血作为正常红细胞压积测定5.从股动脉大量放血，直至血压降至正常血压一半，观察各项指标的变化。

10min后再次从股动脉取血做红细胞压积测定，将两管置于离心机，4000r/min，离心5min，读数。

读数时注意取斜面最高点和最低点数值之和的一半。

单位为ml％，读数结果乘以二才为最终结果6.大量放血后15min时观察各项指标四：实验结果正常时：大量失血后即刻：大量失血十五分钟后：家兔失血性休克结果家兔失血性休克时，嘴唇发绀五：讨论1.为何大量放血后家兔血压会下降？之后血压又有所回升？在突然对家兔实施大量放血时，家兔血容量降低，回心血量急剧下降，导致心脏搏出量快速降低，血压也就急剧下降，虽然经过代偿作用后，心率、外周阻力以及循环血量等发生变化，但是主动脉和大动脉的弹性储器作用在大量出血时作用很小，因此代偿作用也弥补不了因血容量降低而引起的血压急剧降低。

血容量减少引起交感-肾上腺髓质系统强烈兴奋，儿茶酚胺大量释放入学，同时还有许多缩血管体液因子参与，共同起到缩血管作用，同时儿茶酚胺可作用于β受体，使微循环动-静脉短路开放，真毛细血管网血流量明显减少，同时伴随着“自身输血”和“自身输液”作用，使得血压得到一定程度的回升于，但并不能回复到正常水平。

2.为何在大量失血后家兔心率会加快？大量失血后家兔血容量降低，引起回心血量降低，导致心脏搏出量快速降低，动脉血压降低，从而引起交感-肾上腺髓质系统兴奋，释放大量去甲肾上腺素，作用心脏β1受体，产生兴奋作用，使心肌收缩力增强，心率增快3.为什么大量失血后家兔呼吸会加深加快？释放的去甲肾上腺素引起肺部小血管收缩，而微动脉、后微动脉、毛细血管前括约肌收缩更为明显，使肺部毛细血管处于“少灌多流”的状态，使得血液与肺泡氧交换不充分，血氧分压降低，二氧化塔潴留，刺激外周化学感受器，使呼吸加深加快。

家兔失血性休克实验报告引言失血性休克是指由于大量失血导致血容量急剧减少，无法维持正常体循环而引起的一种严重病理状态。

该病理条件在临床上较为常见，但其发病机制尚未完全明确。

本实验旨在通过实验动物家兔模型，研究失血性休克的发生过程以及相关生理指标的变化。

材料与方法实验动物本实验选用3只健康雄性家兔（品系：新西兰白兔），体重均在2.5-3.0kg之间。

实验分组将3只家兔随机分为以下两组：1.实验组（n=2）：给予家兔产生失血性休克的处理2.对照组（n=1）：不进行任何处理，作为对照实验过程1.家兔饭前禁食12小时，但可以自由饮水。

2.每只家兔在实验前进行术前准备，包括固定家兔以及检查基础生理指标。

3.实验组的家兔进行1.5 mL/kg的大量出血处理，同时监测动脉血压、心率、血液氧饱和度和血红蛋白浓度的变化。

4.对照组的家兔不进行任何处理，只进行基础指标的监测。

数据处理与统计分析分析实验组与对照组中动脉血压、心率、血液氧饱和度和血红蛋白浓度的变化，并进行统计分析。

使用SPSS软件进行t检验，p值小于0.05视为统计学意义。

结果实验组中，家兔在大量出血后，动脉血压和心率明显下降，血液氧饱和度和血红蛋白浓度显著降低。

对照组中，这些指标变化不明显或无明显变化。

具体数据如下表所示：指标实验组（n=2）对照组（n=1）动脉血压（mmHg）78.5 95.2心率（次/min）110 92血液氧饱和度（%）86 95血红蛋白浓度（g/dL）7.2 9.5经过统计分析，实验组与对照组之间的动脉血压、心率、血液氧饱和度和血红蛋白浓度的差异具有统计学意义（p<0.05）。

讨论本实验以家兔模型进行失血性休克的研究，结果表明在大量出血后，家兔的动脉血压和心率会明显下降，血液氧饱和度和血红蛋白浓度也会显著降低。

这些结果与临床上的失血性休克表现一致，说明该模型具有较好的可行性和可靠性。

然而，实验结果仅仅是初步验证了家兔模型在失血性休克研究中的适用性，还需要进一步进行更加详细的研究。