阳光紫外辐射对2种微藻的短期影响

紫外辐射对两种海洋微藻生长及培养体系碳流的影响廖健祖;郭亚娟;袁翔城;周伟华;黄晖【期刊名称】《生态科学》【年(卷),期】2018(37)1【摘要】以硅藻威氏海链藻(Thalassiosira weissflogii)和甲藻锥状斯氏藻(Scrippsiella trochoidea)为实验材料,通过室内模拟华南地区秋季晴天紫外辐照强度,研究两种不同波段的紫外辐射(Ultraviolet radiation,UVR)对两种微藻生长以及培养体系碳流的影响.结果表明:UV-A对两种微藻的生长有显著的促进作用,而UV-B则表现为抑制作用.锥状斯氏藻对UV-B的耐受性更强.在UV-A的作用下,培养体系中溶解无机碳(Dissolved inorganic carbon,DIC)的净消耗量低于对照组,但释放出更多的溶解有机碳(Dissolved organic carbon,DOC).对照组的有色溶解有机物(Chromophoric dissolved organic matter,CDOM)含量显著升高,表明浮游植物生长过程是CDOM的来源之一.然而,在UV-A的作用下,两种微藻培养体系的CDOM浓度变化呈现相反趋势,说明不同藻种的CDOM产物受光漂白和光腐殖化的影响不同.在UV-B的作用下,微藻碎屑的分解使水体DIC和DOC浓度轻微升高.总体上,锥状斯氏藻比威氏海链藻净释放出更多的DOC和CDOM.【总页数】9页(P1-9)【作者】廖健祖;郭亚娟;袁翔城;周伟华;黄晖【作者单位】中国科学院南海海洋研究所,中国科学院热带海洋生物资源与生态重点实验室,广州510301;中国科学院南海海洋研究所,中国科学院热带海洋环境国家重点实验室,广州510301;中国科学院海南热带海洋生物实验站,三亚572000;中国科学院大学,北京100049;中国科学院南海海洋研究所,中国科学院热带海洋生物资源与生态重点实验室,广州510301;中国科学院海南热带海洋生物实验站,三亚572000;中国科学院大学,北京100049;中国科学院南海海洋研究所,中国科学院热带海洋生物资源与生态重点实验室,广州510301;中国科学院海南热带海洋生物实验站,三亚572000;中国科学院南海海洋研究所,中国科学院热带海洋生物资源与生态重点实验室,广州510301;中国科学院海南热带海洋生物实验站,三亚572000;中国科学院南海海洋研究所,中国科学院热带海洋生物资源与生态重点实验室,广州510301;中国科学院海南热带海洋生物实验站,三亚572000【正文语种】中文【中图分类】Q178.1+1【相关文献】1.UV-B辐射对2种海洋微藻生长和生理生化特征的影响 [J], 俞泓伶;陈彬彬;谢志浩2.紫外线B辐射对海洋微藻的生长效应 [J], 于娟;唐学玺;李永祺3.两种海洋微藻的浓度和配比对太平洋纺锤水蚤生长的影响 [J], 付聪;吴荔生;郭东晖;王桂忠;4.UV-B辐射对两种海洋微藻生长的影响 [J], 刘泳;王悠;唐学玺;李永祺;刘文举5.水杨酸对两种海洋微藻生长及油脂积累的影响 [J], 张诚鹏;朱尧;张仁璇;姜思;佟少明因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

紫外线对紫球藻的生物学效应紫外线（UV）是一种非常活跃的电磁辐射，其对物种的影响不容忽视。

紫外线对于一些生物种类具有显著的能量，紫外线尤其是紫外线A（UVA）可以有效地损害DNA，蛋白质和其他生物物质。

紫外线表现出对紫球藻的生物效应非常明显，因此了解其对紫球藻的作用有助于开发控制紫球藻的策略。

紫球藻是一种最常见的海洋藻类，是一类细菌，它们倾向于缩小温度的变化。

一般来说，紫球藻的生长受温度的影响很大，但UVA的存在会抑制紫球藻的生长。

一项研究表明，紫外线在胞外抑制了紫球藻的生物学生长，使紫球藻诱导出抗生素，这可以阻碍其他微生物的生长，抑制对紫球藻的竞争，导致紫球藻的种群减少。

此外，紫外线还可以促进紫球藻的光合作用，有助于它们的生长。

紫外线也会影响紫球藻的遗传特性。

例如，紫外线可以引起DNA 的突变，改变紫球藻的基因组，或者影响紫球藻的发育过程等。

紫外线还会影响紫球藻的代谢过程，例如脂肪酸代谢，蛋白质合成等。

研究表明，紫外线可以影响紫球藻生物学上的多种过程，因此控制紫球藻的策略应当考虑到紫外线的影响。

紫外线暴露可以影响紫球藻的生物学行为，如光合作用，繁殖，运动等。

紫外线的影响表明，紫球藻的生物学行为出尔反尔，这意味着，短时间内的紫外线暴露可能有利于紫球藻的生长，但长时间的暴露可能会抑制紫球藻的生长，减少紫球藻的种群。

此外，紫外线也可以影响紫球藻的表型。

紫外线会直接影响紫球藻的外观，例如色彩，大小等。

研究表明，短波长的紫外线可以使紫球藻变得更大，而长波长的紫外线则可以使紫球藻变得更小。

综上所述，紫外线可以显著影响紫球藻的生物学行为，其危害不容忽视。

紫外线可以抑制紫球藻的生长，影响紫球藻的遗传，影响紫球藻的表型等，因此应当采取一些措施，减少紫外线对紫球藻的影响。

例如，在恶劣的气候条件下，应当增加水质检测频率，以及在高紫外线暴露的地方增加植物遮阳。

总之，要控制紫球藻的增殖，必须全面考虑紫外线的影响，并采取切实有效的措施来降低其危害。

UV-B辐射对2种海洋微藻膜脂过氧化和脱酯化伤害
UV-B辐射对2种海洋微藻膜脂过氧化和脱酯化伤害
研究海洋生态系统在调节全球变化中的作用,采用生态毒理学的方法研究了UV-B辐射增强对2种海洋微藻膜的损伤及其差异性.结果表明,随着UV-B辐射剂量的增加,叉鞭金藻(Dicrateria sp.)和三角褐指藻(Phaeodactylum tricornutum)的光合速率降低.同时,膜相对透性增大,细胞内H2O2含量上升,微粒体膜中磷脂减少,游离脂肪酸增加.表明UV-B辐射增强使2种微藻的膜受到了严重伤害,而且膜伤害的加剧与活性氧的积累和由此引发的膜脂脱酯化有关.2种微藻细胞匀浆中丙二醛(MDA)含量无显著变化,而微粒体膜的MDA含量随着UV-B辐射剂量的加大显著提高.这表明UV-B辐射增强对2种海洋微藻膜的损伤可能是由膜脂过氧化和脱酯化作用共同引起的.
作者：王军肖慧冯蕾蔡恒江唐学玺WANG Jun XIAO Hui FENG Lei CAI Heng-Jiang TANG Xue-Xi 作者单位：王军,肖慧,蔡恒江,唐学玺,WANG Jun,XIAO Hui,CAI Heng-Jiang,TANG Xue-Xi(中国海洋大学海洋生态实验室,山东,青岛,266003)
冯蕾,FENG Lei(中国海洋大学海洋生态实验室,山东,青岛,266003;东营职业学院,山东,东营,257091)
刊名：中国海洋大学学报（自然科学版） ISTIC PKU英文刊名：PERIODICAL OF OCEAN UNIVERSITY OF CHINA 年，卷(期)：2006 36(5) 分类号：Q936 Q949.2 关键词：UV-B辐射增强膜脂过氧化脱酯化海洋微藻。

紫外线对藻类抑制效果的研究摘要：以赤潮及压载水常见的7种藻为受试藻种，研究了紫外线照射对不同藻类的抑制效果以压载水常见的3种藻为受试藻种，将经紫外线照射的藻液分别放在黑暗条件下进行培养，研究了试验藻的光复活特性。

结果表明1）紫外线照射对各种藻类的生长均有一定的抑制作用,不同藻在相同的紫外线剂量下灭活率不同。

在照射剂量为60mJ/cm2时，梅尼小环藻的灭活率为82%，而镰形纤维藻的灭活率仅为47%。

在光照培养条件下铜绿微囊藻最不易灭活，照射剂量为800mJ/cm2时，灭活率仅达73%。

2）紫外线灭藻的效果还与藻细胞的形态有关系。

尺寸较小的小球衣藻较易灭活，在照射剂量为20mJ/cm2时，小球衣藻的灭活率为50%，尺寸较大的镰形纤维藻的灭活率仅为30%。

3）经过紫外线照射的藻细胞具有自我修复的能力，这种修复能力随着照射剂量的提高而降低，但在照射后暗培养的条件下藻细胞几乎不能修复。

4）镰形纤维藻、小球衣藻和盐生杜氏藻照射后暗培养，紫外线剂量为50mJ/cm2、100mJ/cm2、150mJ/cm2时，灭活率均在照射后的3天之内出现最大值。

关键词：压载水藻类紫外线灭活剂量船舶压载水所导致的外来生物入侵问题已经并且正在威胁着海洋环境、公共财产和人类健康，所以对压载水进行消毒是十分必要的。

由于海洋生物对于化学残余物比较敏感，所以化学性消毒均存在一定的风险。

国际海事组织（IMO）对压载水提出五项标准即安全、实用、经济、有效且环境容许。

IMO公约规定压载水的排放标准为：小于50μm但大于等于10μm的可生存生物的浓度不大于10个/mL。

一般认为介于这一粒径范围的可生存生物为各种藻类。

因此为满足这一标准就需要研究藻类灭活技术。

由于海洋生物对于化学残余物比较敏感，所以化学性消毒均存在一定的风险。

紫外线消毒由于占地面积小、运行成本低、不产生消毒副产物及管理方便的优点，在水处理行业中逐渐受到人们的青睐。

目前已经有不少关于紫外线灭藻的研究，均集中于湖泊富营养化中的常见藻类如铜绿微囊藻等，而对于赤潮及压载水带来的海洋生物入侵中常见的硅藻、绿藻等研究较少，尤其还未见“暗培养条件下紫外线照射对多种藻类灭活效果”的研究报道。

UV-B辐射对两种海洋微藻生长的影响刘泳;王悠;唐学玺;李永祺;刘文举【期刊名称】《渔业科学进展》【年(卷),期】2000(021)002【摘要】研究了两种微藻--小新月菱形藻与青岛大扁藻在各自的抑制剂量范围内(小新月菱形藻0～3.00J/m2;青岛大扁藻0～11.25J/m2)UV-B辐射对其相对增长率(K)、蛋白质含量、类胡萝卜素含量以及超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase, SOD)活性的影响.结果表明,(1)随着辐射剂量的升高,两种微藻的相对增长率(K)逐渐下降,其各自的半数有效抑制浓度48h·EC50分别为:小新月菱形藻1.79J/m2;青岛大扁藻7.80J/m2.(2)蛋白质与光合色素含量的变化趋势基本类似于相对增长率的变化.相对增长率是灵敏指示微藻生长变化的优选指标.(3)超氧化物歧化酶(SOD)的活性也受到影响,在其各自的最大实验剂量下小新月菱形藻SOD活性下降21%;青岛大扁藻SOD活性下降17%.【总页数】5页(P22-26)【作者】刘泳;王悠;唐学玺;李永祺;刘文举【作者单位】青岛市海泊河污水处理厂,青岛,266021;青岛海洋大学生命学院,266003;青岛海洋大学生命学院,266003;青岛海洋大学生命学院,266003;青岛海洋大学生命学院,266003【正文语种】中文【中图分类】S9【相关文献】1.UV-B辐射增强对两种不同类型番茄幼苗生长和叶绿素荧光猝灭的影响 [J], 胡志峰;郁继华;马彦霞;张昌达;汪志伟;杨芳芳2.UV-B辐射对2种海洋微藻生长和生理生化特征的影响 [J], 俞泓伶;陈彬彬;谢志浩3.UV-B辐射对3种海洋微藻的种间竞争性平衡的影响 [J], 于娟;唐学玺;田继远;张培玉;蔡恒江4.紫外辐射对两种海洋微藻生长及培养体系碳流的影响 [J], 廖健祖;郭亚娟;袁翔城;周伟华;黄晖5.稀土对UV-B辐射伤害植物的影响(Ⅰ)--Ce对UV-B辐射胁迫下油菜幼苗生长的影响 [J], 梁婵娟;曾庆玲;沈东兴;黄晓华;周青因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

UV-B辐射对2种海洋微藻生长和生理生化特征的影响俞泓伶;陈彬彬;谢志浩【摘要】通过实验生态学和生物化学的方法,研究了UV-B辐射对杜氏盐藻、小角毛藻的生长、叶绿素含量、可溶性蛋白含量、超氧化物歧化酶活力的影响.结果表明:(1) UV-B辐射对小角毛藻的生长起促进作用,高剂量UV-B辐射对盐藻的生长具有一定抑制作用.(2)2种微藻叶绿素含量均低于对照组,UV-B辐射使盐藻叶绿素含量先下降后升高,而小角毛藻则随辐射剂量的增加呈现下降趋势.(3)2种微藻可溶性蛋白含量均低于对照组,且随辐射剂量的增加而下降；2种微藻超氧化物歧化酶活力较对照组呈现出升高的趋势.【期刊名称】《宁波大学学报（理工版）》【年(卷),期】2011(024)003【总页数】5页(P15-19)【关键词】UV-B辐射;杜氏盐藻;小角毛藻;生长;生理生化特征【作者】俞泓伶;陈彬彬;谢志浩【作者单位】宁波大学教育部应用海洋生物技术重点实验室,浙江宁波315211;宁波大学教育部应用海洋生物技术重点实验室,浙江宁波315211;宁波大学教育部应用海洋生物技术重点实验室,浙江宁波315211【正文语种】中文【中图分类】Q949.2臭氧层的衰减导致到达地球表面的紫外辐射强度增强, 紫外线 B (UV-B)虽然仅占到达地球表面电磁光谱的很少一部分, 但是有研究表明北海海水表面紫外线辐射率的10%能够穿透到 6m深的水层, 而在北冰洋的清澈水域, 10%的表面辐射率可到达30m的水层. 海洋生物受UV-B辐射的潜在危害性在不断增加, 而在整个海洋食物网中, 海洋微藻是海洋生态系统的主要初级生产者, 是海洋食物链的基础, 在海洋生态系统的物质循环和能量流动中起着极其重要的作用, 也是UV-B辐射增强最直接的响应者. UV-B辐射对海洋微藻的影响已有不少报道[1-2], 有研究认为 UV-B辐射能够破坏微藻的光合系统, 抑制藻细胞的生长, 最终导致海洋初级产生力减少[3], 而不同种类的微藻对辐射的敏感性存在较大差异[4], 长期暴露于辐射中能够使耐受力强的藻种大量繁殖, 敏感藻种减少, 使海洋微藻的种群结构和数量发生变化, 从而影响其他海洋生物及整个海洋生态系统.海洋微藻生长速度快、繁殖周期短、取材方便、种类繁多、易于培养和操作, 目前有关饵料单胞藻对 UV-B辐射的敏感性研究的报道较少. 杜氏盐藻(Dunaliella salina)是广泛分布于海洋、盐湖等盐度较高区域的常见绿藻, 富含不饱和脂肪酸、多糖以及蛋白质等, 具有重要的经济价值; 小角毛藻(Chaetoceros minutissimus)是我国海域重要的海洋浮游硅藻代表种类之一. 笔者以杜氏盐藻、小角毛藻为实验对象, 探讨了其对UV-B辐射的敏感性差异, 为建立UV-B辐射增强的海洋生物监测技术提供依据.实验藻种杜氏盐藻和小角毛藻由中国海洋大学微藻培养中心提供. 培养液采用f/2营养盐配方,光照强度为3000lx, 光暗周期12h:12h, 培养温度(20±1)℃, 培养至指数生长期待用.采用的紫外线B灯管用乙酸纤维素薄膜(上海生化试剂公司生产, 厚度为0.12mm)包被, 以除去低于 280nm的短波辐射. 整个体系在正式实验前需连续照射72h, 以减小薄膜过滤作用的不稳定性.所用薄膜每隔 1周更换 1次, 以防止薄膜的老化.实验时, 将藻液倒入直径为15cm培养皿中进行紫外照射, 辐射强度为1.25µW·cm-2, 通过调节辐射时间来改变辐射剂量. 为了防止光修复作用, UV-B处理后, 藻液需先在黑暗中恢复12h, 然后再光照12h. 在预实验的基础上, 设定30s(U1)、60s(U2)、90s (U3) 3个辐射处理组, 对照组为无UV-B辐射组, 每组各设3个平行样.每天摇动3～5次, 以防止藻类在培养期间沉积.血球计数板计数.取 30mL 的藻液, 6000r·min-1离心 10min, 弃上清液, 加入95%的乙醇至8mL,再将其放置在4℃的冰箱中冷藏 14～24h后取出, 离心取上清液,分别在波长为665nm、649nm处测定叶绿素a、叶绿素b的吸光值. 叶绿素a和叶绿素b浓度的计算方法如下:式中: Ca为叶绿素a浓度(mg·L-1), Cb为叶绿素b浓度(mg·L-1), Ca+b为叶绿素浓度(mg·L-1), P 为叶绿素的含量(mg·L-1), L为提取液体积(mL).取 30mL 藻液, 6000r·min-1离心 10min, 弃上清液, 取藻泥于研钵中, 加入生理盐水和石英砂冰浴研磨, 再离心 10～15min, 取上清液装入管中测定其生化指标. 每3d制备一次样品. 可溶性蛋白含量的测定按照Bradford方法[6]进行, 超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase, SOD)活力的测定采用氮蓝四唑(NBT)光化学反应法[7].数据用Origin 11.0 软件进行统计分析和计算.不同剂量处理组间进行单因素方差分析(One-way ANOVA).UV-B辐射对2种微藻的生长存在一定的影响(图1). 从图1可以看出, 高剂量处理组(U2、U3)对盐藻生长有一定的抑制作用, 其细胞密度均低于对照组; 而低剂量处理组(U1)藻细胞密度均略高于对照组. 小角毛藻第 13d后辐射处理组藻细胞密度均高于对照组.UV-B辐射对2种微藻叶绿素含量的影响见图2. 辐射处理组盐藻叶绿素含量均呈现出先升高后下降的趋势, 以第 6d相对较高, 叶绿素含量均低于对照组, 但差异并不显著(P＞0.05). 辐射处理组小角毛藻叶绿素含量均低于对照组, 与对照组显著差异(P＜0.05), 且随辐射剂量的增加总体呈下降趋势.UV-B 辐射对 2种微藻可溶性蛋白含量的影响见图3. 第3d辐射处理组可溶性蛋白含量最高,第6d和第9d逐渐下降, 且辐射剂量越大, 可溶性蛋白含量越低, 呈现出一定的剂量效应. 各时间段辐射处理组可溶性蛋白含量均低于对照组, 但差异不显著(P＞0.05).UV-B辐射对2种微藻超氧化物歧化酶活力的影响见图4. 盐藻辐射处理组SOD活力显著高于对照组(P＜0.05), 但其随时间和剂量的变化规律并不明显. 除第3d时U1处理组较对照组低外, 小角毛藻辐射处理组 SOD活力均高于对照组, 且呈现出先升高后下降的变化, 各辐射剂量对 SOD活力的影响并不显著.UV-B辐射对海洋微藻生长的影响已有相关报道[8-9]. 本实验结果表明, 低剂量UV-B辐射对盐藻的生长起促进作用, UV-B辐射对小角毛藻的生长表现为先抑制后促进, 类似的现象也有报道[10-13],Stebbing[14]和高尚德等[15]在研究有机锡对海洋微藻的毒性效应时发现了有机锡对海洋微藻生长的促进作用; 唐学玺等[10-11]的研究表明多种有机磷农药在较低浓度时都可引起海洋微藻生长的加快;这说明胁迫因子在低浓度或低剂量下对海洋微藻生长的促进作用具有一定的普遍性. 毒物在低浓度下出现的促生长现象是其在无毒情况下的刺激反应, Stebbing把这一现象称作“毒物的兴奋(刺激)效应”[14]. 另外, 有研究表明, 较高剂量的 UV-B辐射会降低编码蛋白质尤其是叶绿体中参与光合作用的关键蛋白质的 mRNA含量, 从而影响植物生长. 后期, 由于藻细胞对 UV-B辐射逐渐适应,辐射反而能刺激藻细胞的生长.叶绿素是藻类细胞中最基本的光合色素, 是植物形态建成和产量形成的基础. 在实验中我们发现, 辐射处理组叶绿素含量呈现出先升高后下降特征, 这可能是因为在胁迫情况下, 藻细胞表现出一定的抗逆性, 促进了叶绿素a和叶绿素b的合成; 而随着UV-B辐射时间的延长和辐射剂量的增加, 最终破坏了叶绿体质膜和叶绿体分子, 抑制RUBP羧化酶活性, 从而抑制Hill反应, 破坏PSⅡ,使叶绿素含量下降[16].蛋白质的最大吸收波长正好处在 UV-B 辐射波长范围内, 因此蛋白质会受到 UV-B 辐射的影响[17]. UV-B辐射会抑制蛋白质的合成, 使植物蛋白含量减少[9]. 但也有研究表明, UV-B辐射促进蛋白质合成, 引起植物蛋白质含量的增加[18]. 蛋白质代谢研究结果的不一致主要原因有2种: (1) UV-B辐射对蛋白质含量的影响与物种性质有关[19]; (2)在UV-B辐射下蛋白质含量的变化与植物生长发育阶段有关[17]. UV-B辐射还会降低编码蛋白质尤其是叶绿体中参与光合作用的关键蛋白质的mRNA含量, 从而影响植物体内蛋白质的合成和光合作用的进行[20], 这也可能导致实验中辐射处理组可溶性蛋白含量的降低.藻类细胞中存在消除活性氧自由基(Reactive Oxygen Species, ROS)的抗氧化系统—–抗氧化酶类和抗氧化剂, 它们在增强植物的抗逆性中具有不同的作用. SOD 对机体的氧化与抗氧化平衡起着至关重要的作用, 它可以清除ROS, 保护细胞免受伤害. 辐射处理组盐藻及小角毛藻的 SOD活力均出现了明显的升高, 说明藻类抗氧化系统受到UVB辐射刺激时, SOD等抗氧化酶类的活性会明显上升, 以清除产生的过量ROS, 减轻藻体所受到的伤害.近年来有研究提出[14], 某些UV-B吸收化合物如MAAs (Mycosporine Amino Acid), 黄酮醇及多胺类化合物在保护水生生物免受 UV-B辐射伤害方面起着重要作用. 也有一些研究发现生物体内抗氧化系统, 如抗氧化酶系统成分 SOD、POD、Gpx和非酶系统成分如抗坏血酸、β胡萝卜素、GSH等在保护细胞免受 UV-B辐射方面具有重要意义.有关 UV-B辐射对微藻具体的作用机制目前还不清楚, 究竟哪种途径最终导致微藻对UV-B辐射的敏感性差异还需进一步研究. 同时, 由于实验室试验的局限性和海洋生态系统的复杂性, 准确估算UV-B辐射对海洋生态系统的影响还需要做大量的工作.【相关文献】[1]Hader D P, Worrest R C, Kumar H D, et al. Effects of increased solar ultraviolet radiation on aquatic ecosystems[J].Ambio, 1995, 24:174-180.[2]Keller A A, Hargraver P, Jeon H, et al. Effects of ultraviolet-B enhancement on marine trophic levels in a stratified coastal system EJ3[J]. Marine Biology, 1997,130(2):277-287. [3]Lesser M P. Elevated temperature and ultraviolet radiation cause oxidative stress and inhibit photosynthesis symbiotic dinoflagellates[J]. Limnology and Oceanography, 1996, 41(2):271-283.[4]Karentz D, Cleaver J E, et al. Cell survival characteristics and molecular responses of Antarctic phytoplankton to ultraviolet-b radiation[J]. Phycol, 1991, 27:326-334.[5]朱颖, 王丽丽, 柴芸彬, 等. 茉莉酸甲酯对杜氏盐藻β-胡萝卜素含量的影响[J]. 宁波大学学报: 理工版, 2010,23 (1):13-17.[6]Bradford M M. A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding[J]. Anal Biochem,1976, 72:248-254.[7]Beauchamp C, Fridovich I. Superoxide dismutase:Improved assays and an assay applicable to acrylamide gels[J]. Anal Biochem, 1971, 44:276-287.[8]刘泳, 王悠, 唐学玺, 等. UV-B辐射对两种海洋微藻生长的影响[J]. 海洋水产研究, 2000,21(2):22-26.[9]王悠, 杨震, 唐学玺, 等. 7种海洋微藻对UV-B辐射的敏感性差异分析[J]. 环境科学学报, 2002, 22(2):225-230.[10]唐学玺, 李永祺. 久效磷对叉鞭金藻和三角褐指藻光合色素的影响[J]. 海洋通报, 1997, 16:31-35.[11]唐学玺, 徐家英, 李永祺. 久效磷对四种海洋微藻的毒性效应[J]. 海洋环境科学, 1998, 17:1-5.[12]蔡恒江, 唐学玺, 张培玉, 等. 3种赤潮微藻对UV-B辐射处理的敏感性[J]. 海洋科学, 2005,29(3):30-32.[13]徐达, 唐学玺, 张培玉. UV-B辐射对2种海洋微藻的生理效应[J]. 青岛海洋大学学报, 2003,33(2):240-244.[14]Stebbing A R D. Homesis the stimulation of growth by low levels of inhibitors[J]. Sci To l Environ, 1982, 22:213-234.[15]高尚德, 吴以平, 赵心玉. 有机锡对海洋微藻的生理效应[J]. 海洋与湖沼, 1994, 25:259-265.[16]蔡恒江, 唐学玺, 张培玉, 等. UV-B辐射对青岛大扁藻生长及其某些生理特性的影响[J]. 海洋科学进展, 2005,23(4):460-465.[17]冯国宁, 安黎哲, 冯虎元, 等. 增强 UV-B辐射对菜豆蛋白质代谢的影响[J]. 植物学报, 1999,41(8):833-836.[18]Nedunchezhian N. Induction of heat short-like proteins in Vigna sinensis seeding growing under UV-B enhanced radiation[J]. Physiol Plant, 1992, 85:503-506.[19]Vu C V, Allen L H, Garrard L A. 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