下载文档原格式
实验五聚丙烯酰胺凝胶电泳分离过氧化物同工酶一、目的同工酶是指能催化同一种化学反应，但其酶蛋白本身的分子结构组成却有所不同的一组酶。
研究表明，植物在发育过程中，所含同工酶的种类和比例都不相同，它们与植物的遗传、生长发育、代谢调节及抗性等都有一定关系，因此作为基因表达的产物，测定同工酶谱是认识基因存在和表达的一种工具，在植物的种群、发育及杂交遗传的研究中有重要的意义。
过氧化物酶是植物体内普遍存在的、活性较高的一种酶。
它与呼吸作用、光合作用及生长素的氧化等都有关系。
在植物生长发育过程中它的活性不断发生变化，测定这种酶的活性或其同工酶，可以反映某一时期植物体内代谢的变化。
利用聚丙烯酰胺凝胶电泳测定同工酶，方法简便，灵敏度高，重现性强，测定结果便于观察、记录和保存。
本实验采用聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳技术，分离小麦幼苗过氧化物酶同工酶，根据酶的生物化学反应，通过染色方法显示出酶的不同区带，以鉴定小麦幼苗过氧化物酶同工酶。
通过本实验要掌握电泳技术的原理、方法、装置、凝胶配制等知识，熟悉主要的操作过程，同时对同工酶有一个感性的认识。
二、原理1．电泳带电粒子在电场中向与其自身带相反电荷的电极移动，这种现象称为电泳。
近几十年来，电泳作为一项有效的分析、分离和制备技术发展很快，在生产、科研和医疗工作中得到了广泛应用。
用电泳技术分离、分析蛋白质、酶、核酸等生物大分子，有较高的分辨率，目前已成为生物科学研究中必不可少的手段之一。
2．影响电泳的主要因素若将带净电荷q的粒子放入电场，则该粒子所受到的引力F引可用数学式表示如下：F引＝E·q（1）式中E为电场强度，单位为“v/cm”，表示电场中单位距离上的电位差。
如果这种情况发生在真空中，则带电粒子会朝着电极加速前进并且最后与电极相撞。
但在溶液中，由于电场的牵引力F引与加速运动的粒子和溶液之间产生的阻力（即摩擦力）F阻相对抗。
故上述现象不会发生。
根据Stokes公式，阻力的大小取决于粒子的大小和形状以及所在介质的粘度：F阻＝6πrηv (2)式中F阻是球形粒子所受的阻力，r是球形粒子的半径，η是溶液的粘度，v是粒子移动的速度。
华南农业大学实验报告专业班次 11农学一班组别201130010110题目植物过氧化物酶同工酶组丙烯酰胺凝胶圆盆电泳姓名梁志雄日期【实验原理】过氧化物酶是植物体内常见的氧化酶，植物体内许多的生理代谢涡阳与过氧化物酶及其同工酶的种类有关，本实验用加有蔗糖的缓冲溶液作为缓冲剂，提取甘蔗叶片中的过氧化物酶同工酶，锁甲的蔗糖是为了增加样品液的相对密度，使点样时能让样品平铺于凝胶表面，有防止其扩散的作用，利用过氧化物酶能催化过氧化氢把联苯胺氧化为蓝色或棕色产物的原理，将经过电泳后的凝胶置于有过氧化氢及联苯胺的溶液中染色，有色部位即为过氧化物酶在凝胶中存在的位置，从而得到过氧化物酶同工酶酶。
【实验仪器和用品】1、实验仪器圆盆电泳槽、直流稳压电泳仪、离心机、恒温水浴锅、脱色摇床、研钵、电子天平2、实验用品烧杯、吸管、试管、试管架、玻璃棒、滴管、微量注射器、长针头注射器、培养皿、洗耳球、蒸馏水瓶、移液枪、大漏斗、滤纸、试剂瓶、烧杯、量筒、离心管、标签纸、PH试纸。
【实验材料和实验试剂】1、实验材料甘蔗叶片2、实验试剂样品提取缓冲液、0.5%（m/V）溴酚蓝、凝胶储备液A、凝胶储备液B、凝胶储备液C、电极缓冲液、POD 同工酶染色储存液。
【实验步骤】1 .凝胶柱的制备将凝胶贮备液 A 、 B 及水按 1 ： 2 ： 1 的比例混合于烧杯中，另量取 4 份的 C 液于另一烧杯中、即A液3ml、B液6ml、C液12ml，。
当准备好带有玻珠乳胶管封底的玻璃管后，可把两烧杯中的溶液混合，轻搅均匀，用长滴管沿玻管壁小心加到玻管中。
胶液应灌到离管口约 3mm 处。
用手指轻弹管壁，将管中胶液可能混有的气泡赶出，然后用滴管在胶液面上小心注入一层 3mm 蒸馏水，以防胶凝结时表面形成弯月面并隔绝空气。
当见到水层与胶液交界处有一清晰界面时，表明胶已聚合。
2 .样品的制备称取 0.5g 甘蔗叶片，加入 2 ~5毫升提取缓冲液，于研钵中研磨成浆状。
同工酶检测方法
同工酶检测方法是一种用于确定酶活性和酶的存在性的常用实验技术。
同工酶是指具有相似化学结构但在酶活性和功能上有差异的酶。
通过检测同工酶的存在和活性，我们可以了解酶的功能差异和其在生物体内的重要作用。
同工酶检测方法主要包括以下几种：
1. 凝胶电泳法：这是最常用的同工酶检测方法之一。
通过将样品中的酶进行凝胶电泳分离，然后在凝胶上加入适当的底物和染色剂，可以观察到酶的活性带和相应的颜色变化。
根据活性带的位置和颜色变化，可以确定酶的存在和活性差异。
2. 免疫学方法：同工酶也可以通过免疫学方法进行检测。
这种方法利用特异性抗体与酶结合，形成免疫复合物，然后通过染色或荧光标记的抗体检测酶的存在和活性。
这种方法具有高灵敏度和高特异性，适用于复杂样品的检测。
3. 分子生物学方法：随着分子生物学技术的发展，同工酶的检测也可以通过PCR、测序和基因表达等方法进行。
这些方法可以直接检测目标酶基因的序列差异或转录水平的变化，从而确定不同同工酶的存在和表达差异。
除了以上常用的方法外，还有一些新兴的技术被应用于同工酶的检测，例如质谱分析、表面等离子共振和生物传感器等。
这些方法具有高灵敏度和高通量的特点，可以快速、准确地检测同工酶的存在和活性。
总之，同工酶检测方法在生物学研究和临床诊断中起着重要的作用。
不同的方法可以根据研究目的和样品类型选择使用，从而更好地了解同工酶的功能和生物学意义。
用凝胶电泳法研究小麦叶片衰老期间的内肽酶同工酶芮琪,徐朗莱3(南京农业大学理学院,江苏南京210095)摘要:采用S DS 聚丙烯酰胺凝胶电泳(S DS PAGE )和梯度凝胶电泳方法,研究了小麦旗叶暗诱导衰老过程中内肽酶同工酶的变化。
发现用S DS PAGE 法几乎检测不到新的内肽酶同工酶;用梯度凝胶电泳法则能检测到6种新的同工酶,而且在第一叶自然衰老过程中也能检测到。
表明在这两种衰老过程中内肽酶酶谱变化基本相似。
关键词:内肽酶;小麦叶片;暗诱导衰老;自然衰老;梯度凝胶电泳中图分类号:Q556+19 文献标识码:A 文章编号:10002030(2002)03008504The endopeptidase isozymes in wheat leaf duringsenescence by electrophoresisRUI Qi ,X U Lang 2lai 3(C ollege of Science ,Nanjing Agric Univ ,Nanjing 210095,China )Abstract :The changes of endopeptidase (EP )in wheat (Triticum aestivum L.cv.Y angmai 158)leaves were studied during dark 2in 2duced senescence by electrophoresis.S ix emerging EP is ozymes were detected by gradient 2PAGE ,which were als o detected during natural senescence.And the patterns of EP is ozymes were similar in these tw o kinds of senescence.But no emerging EP was detected by S DS ΟPAGE.K ey w ords :endopeptidase ;wheat leaf ;dark 2induced senescence ;natural senescence ;gradient gel electrophoresis衰老是叶片的一个重要发育阶段,蛋白质的丧失是叶片衰老的主要特征之一[1]。
香菇同工酶电泳流程一、准备工作。
咱要做香菇同工酶电泳呀，那准备工作可不能马虎呢。
就像出门要带齐东西一样，这里需要好多材料和仪器呢。
首先得有香菇的样本，这是主角。
然后就是电泳设备，像电泳仪、电泳槽这些，它们就像是舞台，让咱们的同工酶在上面表演呢。
还有凝胶的相关材料，什么琼脂糖或者聚丙烯酰胺呀，这是用来给同工酶打造跑道的。
再有就是一些缓冲液，就像是给这个小世界调节酸碱度的魔法药水。
另外，别忘了微量移液器这些小工具，它们可是精确的小助手，帮助我们取合适量的样本和试剂呢。
二、样本处理。
有了材料，就该对香菇样本下手啦。
把香菇取来，咱不能整个就丢进去呀。
要把它弄成合适的小碎块或者提取出细胞里的东西来。
这就好比是从一个大包裹里把我们想要的宝贝挑出来一样。
可以用一些特殊的方法，像是研磨或者用特殊的溶液浸泡，让里面的同工酶乖乖地出来。
这个过程得小心点儿，要是太粗暴了，可能会把同工酶给弄伤了，那就不好玩了。
处理好的样本呢，要放在合适的容器里保存好，就像把小宝贝放在小盒子里一样，等着下一步的操作。
三、凝胶制备。
接下来就是做凝胶啦。
如果是琼脂糖凝胶呢，就把琼脂糖粉末取出来，按照一定的比例和缓冲液混合。
这个比例可不能乱调，就像做菜放盐一样，多了少了都不行。
然后把它们放在微波炉或者热水浴里加热，让琼脂糖完全溶解，这时候就像做糖稀一样，看着它慢慢变成透明的液体，还挺好玩的呢。
要是聚丙烯酰胺凝胶呢，过程就稍微复杂点儿，要把各种成分按照顺序和比例混合好，而且这个东西还有点小脾气，混合的时候要快，不然它可能就开始凝固了，那就前功尽弃啦。
做好的凝胶液呢，要小心地倒入电泳槽里，等它凝固，这就像是给同工酶建好了跑道，就等着它们上场啦。
四、加样。
凝胶好了，就该把我们处理好的香菇样本加进去啦。
用微量移液器吸取合适量的样本，这个量真的要很精确哦，就像给小朋友喂药一样，多一点少一点都可能影响结果呢。
把样本加到凝胶的小孔里，就像把小种子种到小坑里一样。
班级：植物142 姓名：刘国强学号：1401080229实验六：聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析过氧化物酶同工一、研究背景及目的同工酶是指能催化同一种化学反应，但其酶蛋白本身的分子结构组成却有所不同的一组酶。
它们是DNA 编码的遗传信息表达的结果。
研究表明，同工酶与生物的遗传、生长发、代谢调节及抗性等都有一定的关系。
因此，测定同工酶在理论上和实践上都有重要的意义。
用聚丙烯酰胺凝胶电泳测定同工酶，方法简便、灵敏度高，重现性强，测定结果便于观察、记录和保存。
过氧化物酶是植物体内普遍存在的、活性较高的一种酶。
它与呼吸作用、光合作用及生长素的氧化等都有关系。
在植物生长发育过程中它的活性不断发生变化。
因此，测定这种酶的活性或其同工酶的变化情况，可以反映某一时期植物体内代谢的变化。
本实验采用聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳技术，分离小麦幼叶叶片和根部的过氧化物酶同工酶，通过染色方法显示出酶的不同区带，以鉴定小麦幼苗过氧化物酶同工酶。
通过本实验，主要要掌握电泳技术的原理、方法、设计、装置、凝胶配制等问题，熟悉所有的操作过程二、实验原理本实验采用不连续聚丙烯酰胺凝胶系统，分离小麦幼叶叶片和根部的过氧化物酶同工酶。
利用过氧化物酶在分解过氧化氢的过程中产生自由氧基，从而将联大茴香胺连接到过氧化物酶分子上，使之呈现棕褐色，将电泳后的凝胶置于含有过氧化氢的联大茴香胺染色液中浸泡，有过氧化酶同工酶蛋白的部位便可以观察到褐色的谱带。
通过这些谱带的数量、位置等获得相关信息。
三、仪器试剂1．实验材料小麦幼苗2．仪器:垂直板电泳槽(型号：DYY-III28A型电泳槽厂家：北京市六一仪器厂) 电泳仪（型号：DYY-III2稳压稳流电泳仪厂家：北京市六一仪器厂）主要器具：移液器、微量进样器、培养皿一套（直径15cm）、小烧杯3.试剂（1）分离胶缓冲液(pH8.9 Tris-HCl缓冲液)：称取48 mL 1mol/L HCl，Tris36.8g，用无离子水溶解后定容至100 mL。
第1篇一、实验目的1. 理解同工酶的概念及其在生物体中的生物学意义；2. 掌握同工酶电泳技术的基本原理和方法；3. 通过同工酶电泳实验，观察和分析同工酶在样品中的分布情况。
二、实验原理同工酶是指具有相同催化功能，但氨基酸序列和分子结构不同的酶。
同工酶电泳技术是一种分离和鉴定同工酶的方法，其原理是利用同工酶在电场中的迁移速率差异，将其分离。
三、实验材料1. 实验样品：植物叶片、动物组织等；2. 电泳试剂：琼脂糖、溴酚蓝、丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺等；3. 电泳仪器：电泳槽、电泳仪、凝胶成像系统等；4. 其他：移液器、吸管、剪刀、镊子等。
四、实验方法1. 样品制备：将实验样品研磨，加入适量提取液（如Tris-HCl缓冲液），在冰浴中匀浆，离心取上清液；2. 电泳凝胶制备：按照电泳试剂的配方，制备琼脂糖凝胶；3. 电泳样品制备：将提取液加入适量的丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺，混合均匀后，加入适量的样品，制成样品胶；4. 电泳：将制备好的样品胶放入电泳槽中，加入电泳缓冲液，接通电源，进行电泳；5. 成像与分析：电泳结束后，取出凝胶，用凝胶成像系统拍照，分析同工酶的分布情况。
五、实验结果1. 通过电泳实验，观察到样品中存在多种同工酶；2. 不同样品的同工酶分布情况存在差异，说明同工酶在生物体中具有特异性；3. 同工酶的迁移速率与酶的分子量有关，分子量较小的酶迁移速率较快。
六、实验结论1. 同工酶在生物体中具有重要作用，其生物学意义包括催化、调控、信号传递等；2. 同工酶电泳技术是一种有效的分离和鉴定同工酶的方法；3. 本实验成功分离和鉴定了样品中的同工酶，为后续研究提供了基础。
七、实验讨论1. 实验过程中，样品制备和电泳操作应注意无菌操作，以避免污染；2. 电泳条件的选择对同工酶的分离效果有较大影响，应根据实验目的和样品特点进行优化；3. 同工酶的研究有助于揭示生物体的遗传、变异和进化规律。
八、实验总结本实验通过同工酶电泳技术，成功分离和鉴定了样品中的同工酶，验证了同工酶在生物体中的生物学意义。
高级植物生理实验报告2014 年12 月28 日
植物同工酶凝胶电泳实验
一、实验目的和意义
同功酶专指受遗传体系决定的酶的不同分子形式。
从作用上看，分子形式不同的酶能做一样的工作，即催化同样的生化反应，所以把同功酶改称为同工酶。
由于蛋白质分子的结构归根结底是由基因的DNA分子结构决定的，因此，同工酶就成为鉴定生物基因型是否有差别的可靠指标，在遗传育种，生长发育，物种起源，生理卫生等领域的研究中成为一种重要的工具；此外，同工酶还与植物抗性有一定联系，可用来鉴定抗性的强弱。
本实验的实验目的主要是让学生掌握聚丙烯酰胺凝胶电泳分析植物同工酶的原理及方法、步骤。
提高学生的实际操作及动手能力。
培养学生对实验结果的分析能力。
二、实验原理
带电粒子在电场中向带有相反电荷的电极移动，叫做电泳。
在一定的pH条件下，每一种分子都具有一定的电荷、大小与形状，在相同的电场经一定时间的电泳，便会集中到特定的位置上而形成紧密的泳动带。
不同组分的蛋白质（包括同工酶）分子组成、结构、大小、形状均有所不同，在溶液中所带的电荷多寡不同，在电场中的运动速度也不同。
因此经过电泳便会分成不同的区带。
然后用适当的染料着色，这样就可以在凝胶上展现出蛋白质或同工酶的谱带。
聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）是以聚丙烯酰胺凝胶作支持介质的一种电泳方法。
它是由丙烯酰胺单体（Acr）和交联剂甲叉双丙烯酰胺（Bis）在催化剂的作用下，聚合交联而成的三维网状结构凝胶。
当Acr和Bis遇到自由基时，便能聚合。
Acr和Bis的浓度、交联度可以决定凝胶的密度、粘度、弹性、机械强度以及孔径大小。
三、材料
不同品种的燕麦
四、实验器材与试剂
1.器材：电泳仪一套（稳压电源，垂直电泳槽和凹槽玻璃）；台式高速离心机；烧杯；微量进样器；注射器；皮头滴管；刻度吸；培养皿（染色用）。
2.试剂：丙烯酰胺（Arc）；甲叉丙烯酰胺（Bis）；四甲基乙二胺（TEMED）；过硫酸铵（AP）；三羟甲基氨基甲烷（Tris）；甘氨酸（Gly）；琼脂粉；溴酚蓝；甘油；联苯胺；醋酸；α-醋酸萘酯；β-醋酸萘酯；牢蓝RR盐；冰醋酸。
3.试剂的配制：见表1
五、实验步骤
1．样品的提取
称取1g不同处理的材料，加入少量提样缓冲液，置冰浴研磨成匀浆后定容至5ml，8000rpm离心6min，取上清液贮于冰箱备用。
2．凝胶制备：
（1）取电泳玻板，用去污剂洗净，蒸馏水冲洗，直立干燥。
洗净的玻板内面要避免手指触摸以防沾污。
将玻板安装到电泳槽上。
用电极缓冲液配制1.5%琼脂胶，沸水浴加热至琼脂完全溶化后，用皮头滴管沿板上部灌入两侧的封胶空隙，注意不要产生气泡。
20分钟后凝固。
（2）按照表1中的A液：B液：水：C液=1：2：1：4的比例配置凝胶，混匀后用一细玻棒引流，缓缓注入胶室中，注胶过程防止气泡产生。
胶液加到与凹槽相平时停止，插入预先选择好的样品梳，注意不要带入气泡。
（本实验为A液：B液：水：C液=2.5：5：2.5：10）3.点样及电泳：
（1）向上下槽注入电极缓冲液，取下样品梳（不要拉断样槽隔墙）。
将少许提取液与溴酚蓝指示剂混合。
用微量进样器针头插入样槽下部慢慢进样。
每槽点样30μl。
（2）上槽接负极，下槽接正级，接通电源，电流调至15~20mA，电压为200V，电泳至溴酚蓝标志到达凝胶前沿1 cm处，将电流、电压调至零后断电。
（3）电泳结束后，取下玻板，将两块玻板置自来水龙头下，借助水流，用解剖刀柄轻轻从板侧缝间撬开玻板（注意切忌从凹槽处撬），将胶放入染色液中。
4.染色：
（1）过氧化物酶染色联苯胺贮存液16ml（2g联苯胺溶于18ml文火加热的冰醋酸中，再加水72ml），0.6%过氧化氢16ml，水48ml。
将胶板浸入此液中，待出现兰色条带后，弃去
染色液用水洗涤保存。
（2）酯酶同工酶显色称取30mg α-醋酸萘酯，30mgβ-醋酸萘酯，50mg坚牢蓝RR（或坚牢蓝B），先用约4ml丙酮溶解，再用0.1mol/L pH6.5的磷酸缓冲液稀释到60ml，将胶板浸入此液中，室温下显色约20min，可看到桃红色的磷酸酯酶同工酶区带。
弃去染色液，用蒸馏水漂洗，再用7%HAC固定。
5.结果保存：
将脱过色的凝胶按照颜色深浅绘成的谱带图作为实验报告的凭证。
表1 试剂配方
２染色液的配制
A液：称取0.4g联苯胺，加入３ml冰醋酸，溶解后加入１７ml蒸馏水随用随配
B液：4% NH4Cl
C液：5% EDTA(PH6.0)
D液：0.3% H2O2
按A：B：C：D＝1：1：1：８比例配制
实验结果与分析：
从图2中可以清晰的看到经过染色后分为明显的A、B两区，A区有四条带，B区有三条带，带与溴酚蓝指示剂呈现的蓝色条带的距离为9cm，算出A区的迁移率分别为0.11,0.056，0.078,0.056.B区的迁移率分别为0.033,0.044,0.056.大燕1号与白燕7号品种间有明显的差异，大燕1号出现3条带，白燕7号有2条带。
图1
图2。
