腹腔注射
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猪腹腔打针办法猪腹腔打针,是指把药液注入或输入猪腹腔内的治疗技巧.现就我们十几来的实践运用,介绍如下.一.腹腔打针的特色:实用药物广.疗效高.填补体液敏捷.药液容纳量大.特殊对于初生仔猪体质弱,消化机能不健全,御寒才能差,常产生腹泻.仔猪产生腹泻时,水盐代谢掉调,机体大量掉水,如不实时填补水盐,常导致仔猪脱水而逝世.是以在运用抗菌药物治疗的同时,还须做好补液工作.畜体腹腔有较强的接收力,腹膜概况积大,密布血管和淋巴管,接收才能特强,每小时可接收占动物体重3%—8.5%的液体,仅次于静脉打针,尤其当心脏虚弱,静脉打针艰苦时,经由过程腹腔打针进行补液甚好,并且经由过程补液尚可对食欲废绝和外科手术后的病危动物进行能量和养分物资的填补.腹腔补液时光短,速度快,大号针头2分钟即可输入1000m1药液,且不必放心心脏超负荷.安然实用,省时省力,只要不违背操纵规程,对病猪不会造成伤害.二临床运用顺应症:1 急性.群发性病,药效快.费时短,便于挽救.如中毒.仔猪腹泻脱水.2 病后期或病重呼吸衰竭.心力弱弱需补液又经不起长时光静注应激,如猪气喘病等.3 急性发烧脱水,需补液及体内物理降温,如中暑.4 体温下降,需补液及体内物理加温,如乳猪寒冻.5 阉割等原因引起腹膜炎及肠道发炎.6 肌肉打针部位因各类原因造成药物接收差.三补液处方:处方1, 心理盐水150ml,5%葡萄糖100ml,5%碳酸氢钠30ml,青霉素80万单位.天天1次,连用3天.处方2, 5%葡萄糖200ml, 5%碳酸氢钠30ml,四环素10万单位,维生素C10ml.天天1次,连用两天.四.腹腔打针的操纵办法:1 选用打针器械①金属打针器(10ml.20ml),针头(12~18号.长3~7cm),②输液器,分吊瓶输液用及打针器推注输液用2种,前者可取一次性人用输液器,将其末尾的输液针裁撤运用.推注输液用器,依上述除去输液针后,向前50~60cm处剪断导管.留用此下端导管,并于断口处套上前裁撤的塑料针头座,供运用.2 打针器直接打针法经常运用于乳猪.小猪.打针者右手持打针器,针头(12号,长3cm)取与腹壁垂直偏向刺入(刺入腹腔后顿感阻力骤减),后左手扶住针头及打针器末尾,右手回抽检讨是否有血液或内容液后,推进打针器内塞注入药液.3 运用输注用输液器经常运用于中猪.大猪.打针者左手按抵打针部位,右手持针头(12~18号,长4~7cm)抵住打针刺入点,乘机待猪安静时把针头垂直敏捷刺入,然后左手搀扶针头,右手接上输注用输液器,完整松开流量调节器,按通例吊瓶输入药液.运用推注用输液器,参照上法打针.4 保定原则是安然.敏捷.简略.实用.经常运用办法有:徒手保定.钳耳保定.一侧倒卧保定或用套绳保定和猪鼻捻棒保定等,前3种保定实用于中小猪,而套绳保定,经常运用于体大.性蛮猪.助手2人用约3m长.拇指粗绳索,一端打一个直径20~25cm的活扣环套,待环套套入猪的上颌犬齿后,推移环套活扣,把环套套紧固定在猪上颌,牵拉固定绳索另端而保定.猪鼻捻棒保定,助手1~2人运用一端穿孔并系有直径约15~20cm绳环的捻棒,左手持捻棒,右手把绳环套入猪的上颌犬齿之后,捻棒即时把绳环捻紧砸住猪上颌,助手持稳捻棒的另端向猪前方牵拉固定.5 打针部位乳猪.小猪于脐至耻骨前缘连线的中部,分开腹中线2~5cm左(右)旁侧.中大猪不轻易提起,多站立或倒卧保定,打针部位于两侧肷部,距髂外结节.腰锥横突及最后肋骨等距离的腹壁点.待其停滞挣扎,选择打针部位,一般在耻骨前方3—6cm腹白线(正中线)的侧方,局部剪毛消毒后,用右手持打针器,用通俗打针针头,针头与皮肤垂直刺入腹腔2—3cm,刺入针感有运动而无抵触,回抽活塞无气体和液体时即可迟缓注入药液,也可衔接在备用的吊瓶输液管上,吊瓶高挂,药液任其流入.每打针500m1只用2—3分钟,补液量依体重和病情而定.补液完毕,术部消毒,放回圈内.五留意事项:药液一般需接近体温,尤其在严寒季候,注入大量药液时,应将液体加热到38℃阁下.但也应依据治疗须要,灵巧控制.打针中需固定好针头.针头须稍压腹壁,使腹壁脏面紧贴腹膜,以免针孔扩展或针头移动于腹壁与腹膜之间,造成药液注聚夹层.如需多次打针,须避开原针头刺入点,每次打针前后,打针部位要用5%碘酊消毒.膀胱积尿者宜先导尿,尿毒症或腹腔积液慎用.保定办法得当与否是能不克不及顺遂实行补液的症结.必须在患猪机体接收机能优越的情形下进行,对腹膜炎轻微轮回障碍者,应谨严运用.补液浓度不成过高,禁用刺激性药物.进针深度控制精确,过深则易伤及肠管等脏器,引起腹膜沾染,依据刺入针感和药液流入快慢可以断定针刺腹腔是否精确,输液进程中留意不雅察患猪的反响,若挣扎过于激烈则标明可能扎伤肠管,立时拔针另刺,推注药液先慢后快.补液器具必须严厉消毒.。
仔猪的腹泻是养殖业中的常见病高发病,但由于仔猪腹泻后迅速脱水.一方面使血液循环发生障碍造成药物吸收减缓或无法吸收.药物的作用无法发挥:另一方面仔猪脱水后常造成各系统迅速的衰竭导致死亡腹泻造成断奶前死亡的占5O%以上.给养殖业造成极大的经济损失仔猪腹泻的病因复杂,除细菌、病毒外,外界环境及营养因素也常引起腹泻.所以在治疗本病的同时,改善环境,提高营养才会取得更好的效果。
常规的治疗方法如肌肉注射,口服给药,头皮剂等治疗方法,但都存在缺点,效果不佳。
肌肉注射由于脱水后循环障碍对药物的吸收减少是药效降低效果不好:t51服给药不仅吸收速度慢而且对于重度腹泻胃肠常失去吸收功能,使药物无法发挥作用;头皮剂作用缓慢,常常药物还没发生作甩就已经死亡了:静脉注射的方法常可以迅速补液纠正代谢紊乱,但仔猪个体小,静脉细小,既增加注射的难度同时注射效率低,无法大面积推广。
腹腔注射补液优点是腹膜面积大.密布血管和淋巴管,吸收能力特强,每小时可吸收占动物体重3%~8 %的液体.且腹腔补液时间短,速度快大号针头2分钟即可输入500毫升药液,还不考虑心脏超负荷。
对于个体小的仔猪安全适用、省时省力。
在注射的药液中可以加入如蒽诺沙星、环丙沙星、庆大霉素、卡那霉素等药品。
从而起到标本兼治的效果。
腹腔注射的方法:倒提法保定,待其停止挣扎后在耻骨前方3~6厘米腹白线f 正中线) 的侧方,局部消毒后用右手持注射器,使用普通12号注射针头与皮肤垂直刺人腹腔2~3厘米,刺人针感有活动而无抵触、回抽活塞无气体和液体时即可缓慢注入药液,每注射200毫升只用2~3分钟。
补液完毕,术部消毒.放回圈内。
腹腔注射的注意事项:1补液的位置要避开中线.特别是公猪,以免伤及阴茎。
2补液所用液体必须是等渗溶液如5%葡萄糖溶液及0.9%的氯化钠溶液,不可用高渗溶液,否则会加重脱水:刺激性药液,如氯化钙、磺胺等不能作腹腔注射,它们易引起腹膜炎和组织坏死。
3油乳剂、有沉淀的药物、半固体药剂不宜作腹腔注射,这些药物不易吸收。
怎么进行猪腹腔注射
1、腹腔注射的原因:
腹腔注射适用于仔猪。
腹腔能容纳大量药液并有较的吸收能力,故可一次注入多量药液。
但必须是无刺激性的药液,天气寒冷又注入药液量较多时,需将药液加温到38 ℃~39℃。
如果较大的猪,因病致耳部发绀,无法看清血管时,也可作腹腔注射。
2、保定:
仔猪可提起两后肢保定,较大的猪可使其仰卧,呈后高前低姿势。
注前先抖动猪后肢,使肠管向前部移。
然后剪毛消毒。
3、注射位置:
注射部位在倒数第二乳头外侧约1.5cm处。
针头**好选用细长针头,注射前先将皮向一侧移开点点,再与皮肤呈垂直刺入针头,这样皮肤上的针孔与腹肌。
腹膜上的针孔就不在一直线上,可防腹腔感染。
针头刺入腹腔后,回抽针心,看是否有肠内容物,若没有即可注入药液,速度不宜过快,注后拨出针头,消毒。
一、小鼠腹腔注射:腹腔注射是常见的给药方式,尤其是在麻醉时。
常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用2. 腹腔注射时右手持注射器,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部,使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部,防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔,防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠,腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离,最好是从腹部一侧进针,穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔,注射完药物后,缓缓拔出针头,并轻微旋转针头,防止漏液。
液体外漏的主要原因是抓取小鼠时,腹部过紧而致腹内压过高所致,应该紧抓颈部但使其腹部皮肤松软,此时进针注射,不会外漏。
4. 小鼠腹腔注射的给药容积一般为5~10ml/kg二、皮下注射给药将药液推入皮下结缔组织,经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环的过程。
作皮下注射常选项背或大腿内侧的皮肤。
操作时,常规消毒注射部位皮肤,然后将皮肤提起,注射针头取一钝角角度刺入皮下,把针头轻轻向左右摆动,易摆动则表示已刺入皮下,再轻轻抽吸,如无回血,可缓慢地将药物注入皮下。
拔针时左手拇、食指捏住进针部位片刻,以防止药物外漏。
注射量约为0.1~0.3ml/10g体重。
三、皮内注射给药将药液注入皮肤的表皮河真皮之间,观察皮肤血管的通透性变化或皮内反应,接种、过敏实验等一般作皮内注射。
先将注射部位的被毛剪掉,局部常规消毒,左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧,在两指之间,用结核菌素注射器连接4.5针头穿刺,针头进入皮肤浅层,再向上挑起并梢刺入,将药液注入皮内。
注射后皮肤出现一白色小皮丘,而皮肤上的毛孔极为明显。
注射量为0.1ml/次。
四、肌肉注射给药小鼠体积小,肌肉少,很少采用肌肉注射。
当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时,采用肌肉注射。
操作时1人固定小鼠,另一人用左手抓住小鼠的1条后肢,右手拿注射器。
腹腔注射与灌胃的原理是一、腹腔注射的原理腹腔注射是将药物注入动物体内腹腔的给药方式。
其原理是利用腹腔作为药物储存和吸收的部位,药物通过腹腔血管和淋巴系统吸收,并进入全身血液循环,从而达到全身用药的目的。
1. 腹腔结构腹腔位于腹壁和腹部脏器之间,内有丰富的血管和淋巴结构。
腹腔液可作为药物的良好载体。
2. 给药过程注射针头刺入腹壁肌肉间隙进入腹腔,缓慢推注药液。
药物contacts 腹腔内表面,通过缓慢吸收进入系统循环。
3. 药物吸收药物主要通过腹腔血管和淋巴管吸收。
小分子药物可直接进入系统血液循环;大分子通过淋巴进入血液。
4. 优势吸收快,全身使用;操作简便;减少肝脏效应。
二、灌胃的原理灌胃是通过胃管向患者胃内注入药物或营养液的给药方式。
其原理是利用胃肠道作为药物吸收部位,达到系统用药目的。
1. 胃肠结构胃肠道内可吸收面积大,血流量高,药物可充分接触吸收。
2. 给药过程通过口鼻插入胃管,使管端置于胃内,然后注入药物。
3. 药物吸收药物在胃肠黏膜上吸收进入门静脉,再进入肝脏过滤后进入体循环。
4. 优势操作简便;可给药大剂量;可重复给药。
三、两者比较1. 给药途径不同腹腔注射直接进入腹腔;灌胃通过胃肠道。
2. 药物吸收不同腹腔注射通过腹腔血管淋巴管;灌胃通过胃肠黏膜。
3. 肝脏效应不同腹腔注射可部分避开首过效应;灌胃药物必须经肝脏。
4. 给药速率不同腹腔注射吸收快;灌胃吸收相对缓慢。
5. 给药对象不同腹腔针对小动物;灌胃多用于大动物和人体。
综上所述,腹腔注射通过腹腔吸收,灌胃通过胃肠吸收,两者都能实现全身给药的目的。
但在给药途径、速率、对象等方面有一定差异。
根据给药目的选择合适的方式,能更好发挥药效。
感谢您的提问,祝您生活愉快!。
腹腔注射的原理
腹腔注射是一种将药物或液体注射到腹腔内的方法,常用于动物实验或临床治疗中。
其原理是通过将针头插入腹腔腔隙,将药物或液体注射到腹腔内,使药物迅速进入血液循环系统。
腹腔是位于腹部的一个空间,围绕着腹腔脏器,如胃、肝脏、肠道等。
在腹腔内注射药物可以利用腹腔膜的吸收功能,使药物经过腹腔壁被吸收到血液中。
同时,腹腔内注射可以避免肠道消化和药物吸收的不完全性,使药物直接进入血液循环系统,提高药物的生物利用度。
腹腔注射的方法相对简单,常用于小鼠、大鼠等小型动物实验中。
在进行腹腔注射时,需要注意选择合适的注射器和针头,保持注射器的稳定性,并选择合适的注射位置。
总之,腹腔注射是一种将药物或液体注射到腹腔内的方法,通过腹腔膜的吸收作用,使药物迅速到达血液循环系统,提高药物的吸收效率。
这种注射方法在实验和临床中具有广泛的应用价值。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法5篇第1篇示例:大鼠小鼠腹腔注射的操作方法一、引言腹腔注射是实验动物体内注射给药的一种常用方法,通常用于药物毒性和药效学研究。
在实验过程中正确的操作方法对于实验结果的准确性至关重要。
本文将介绍大鼠小鼠腹腔注射的操作方法,以供参考。
二、仪器与药品准备1. 注射针:选择适合体积的注射针,常见的有1ml、2ml、5ml 等多种规格,根据实验需要选择合适的规格。
2. 注射器:选择与注射针匹配的注射器,确保注射器的稳定性和操作性。
3. 消毒酒精:用于消毒注射针和注射器。
4. 实验动物:选择健康状况良好的大鼠或小鼠作为实验对象。
5. 麻醉剂:根据实验需要选择合适的麻醉剂,通常可以选择异氟醚或氯仿等。
三、操作步骤1. 准备工作a. 消毒操作台面和工具,保持实验环境清洁。
b. 准备好实验动物,并进行术前麻醉。
(注意:麻醉剂应根据实验动物的种类、体重和实验需要进行选择)c. 准备好需要注射的药品,并按照规定的剂量准备好。
2. 动物定位a. 将实验动物取出并放置于注射操作台上,保持动物处于仰卧位。
b. 用消毒酒精擦拭动物的腹部,保持清洁。
3. 注射操作a. 将注射器连接至注射针,并通过推杆将空气排出,确保注射器内无空气。
b. 用消毒酒精擦拭注射部位,定位后将注射针垂直刺入动物腹部。
c. 缓慢注射所需药品,确保药液完全注入。
4. 结束操作a. 缓慢拔出注射针,用干净的消毒纱布轻压注射部位,以防止药液溢出。
b. 将动物放置在温暖通风的环境中,观察动物的状态,并在必要时进行恢复护理。
四、注意事项1. 操作前需对动物进行术前麻醉,确保动物处于无痛苦状态。
2. 注射时需注意注射的速度和力度,以免伤害到动物内脏器官。
3. 在操作前后要做好手部消毒,并确保注射器和注射针的清洁和消毒。
4. 对于实验动物的选择需遵循伦理规范,确保其健康和人道对待。
五、结语以上就是关于大鼠小鼠腹腔注射的操作方法,正确地操作可以保证实验结果的准确性,同时也能够保护实验动物的健康。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法腹腔注射是一种常见的动物实验操作方法,用于给实验动物注射药物或其他实验物质。
本文将介绍大鼠小鼠腹腔注射的操作方法,以便于科研工作者正确、安全地进行相关实验操作。
一、准备工作1.1 实验室准备需要确保实验室的环境整洁、明亮,并且通风良好。
应保持实验室的温度和湿度处于适宜的范围,以确保动物在实验过程中能够处于良好的生理状态。
实验室内应配备必要的实验器材和药品,以便于进行实验操作。
在进行腹腔注射实验之前,需要对实验动物进行充分的准备工作。
应选择健康状态良好、体重适中的大鼠或小鼠作为实验动物,并将其放置在适宜的实验室环境中进行适当的驯化和饲养。
还需要对实验动物进行必要的体格检查,确保其身体状况良好,以保证实验结果的准确性。
二、操作步骤2.1 注射器和针头准备需要准备一支干净的注射器和一根适宜的注射针头。
通常情况下,对于大鼠,可选择1ml或2ml的注射器,并配备18号至22号的注射针头;对于小鼠,可选择0.5ml的注射器,并配备22号至26号的注射针头。
在使用前,应检查注射器和针头是否完好无损,并且进行必要的消毒处理,以确保实验的安全性和准确性。
2.2 动物准备在进行注射操作之前,需要将实验动物取出并置于操作台上,用纸巾或棉签轻轻擦拭其腹部,以保持注射部位的清洁。
还需要将实验动物固定在操作台上,以防止在注射过程中出现不必要的移动和颤动。
2.3 麻醉和消毒在进行腹腔注射之前,通常需要对实验动物进行适当的麻醉处理,以减轻其疼痛感和焦虑感。
一般情况下,可选择将实验动物放置在麻醉盒中进行麻醉处理,或者使用适当的麻醉药物进行注射处理。
在进行注射操作之前,还需要对注射部位进行必要的消毒处理,以防止感染和其他并发症的发生。
2.4 注射操作在完成麻醉和消毒处理之后,即可进行腹腔注射操作。
取出预先准备好的注射器和针头,将需要注射的药物吸入注射器中,并确保注射器中无气泡和溢出。
然后,选择注射针头插入实验动物的腹部,通常可选择在肚脐周围1-2厘米的处所。
腹腔注射的操作方法有
腹腔注射是一种将药物或液体直接注射到腹腔内的方法,用于治疗内脏疾病或给予营养支持。
以下是腹腔注射的一般操作方法:
1. 准备工作:准备所需的药物,确保注射器和针头是干净的,并且准备好适量的无菌生理盐水用于冲洗。
同时准备好无菌手套和其他所需的个人防护装备。
2. 术前准备:为动物或患者提供舒适的环境,并固定好。
3. 消毒:用无菌酒精擦拭注射部位,确保注射部位干燥和无杂质。
4. 选择注射点:常见的腹腔注射点有左下腹腔和右下腹腔。
注射点的选择取决于需要接触的内脏器官。
5. 注射操作:将无菌针头插入腹腔注射点,以30-45度角向内插入,直至达到所需深度。
然后,缓慢注射药物或液体,避免过快注射引起压力。
6. 冲洗:在注射完毕后,用适量的无菌生理盐水冲洗注射点,以保持清洁。
7. 拔除针头:将针头缓慢拔出,然后用消毒棉球轻轻按压注射点,以防止出血或渗漏。
8. 处理废弃物:将使用过的注射器和针头安全处理,以避免交叉感染。
以上是一般的腹腔注射操作方法,具体的步骤可能会因具体情况而有所不同。
在进行腹腔注射时,建议请专业医护人员的指导和监督。
腹腔注射是常见的给药方式,尤其是在麻醉时。
常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用1 ml的注射器,配合4号针头。
2. 腹腔注射时右手持注射器,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部,使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部,防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔,防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠,腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离,最好是从腹部一侧进针,穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔,注射进针时与小鼠整个身体呈15度角左右, 而注射给药时呈90度角. 注射完药物后,缓缓拔出针头,并轻微旋转针头,防止漏液。
4. 小鼠腹腔注射的给药容积一般为5-10 ml/kg。
仔猪腹腔补液操作方法及注意事项
当仔猪发生黄白痢,肠炎时,往往造成脱水,当脱水达到体重的30%时,若不及时补液,就会有生命危险。
但由于仔猪较小,或因天冷皮肤血管收缩,贫血消瘦等原因,造成耳静脉难以寻找,静脉补液困难,此时,临床上多采取腹腔给药的方式补充体液。
一.注射方法
倒提仔猪,将针头(9号以下消过毒的针头)于倒数第2个乳头外侧刺入,回抽针头无血液,无污物,即可快速推入药液。
二.药物选择
腹腔给药宜用等渗药液(如5%的葡萄糖溶液,0。
9%的氯化钠)适当配伍无刺激性的药物(如肌苷,VB1,VC,ATP,辅酶A)
三.注意事项
1.10%的氯化钠溶液,10%葡萄糖溶液,50%葡萄糖溶液不能做腹腔注射,否则会引起反渗透,使组织脱水和腹水加重。
2.有刺激性的药物不能腹腔注射,该类药物易引起腹腔炎和组织坏死。
3.油乳剂,有沉淀的药物,半固体药物不易做腹腔注射,因为这些药物不易被吸收。
4.腹腔注射时剂量不易过大,一般20KG体重的猪注射20~30ML,30KG体重的猪注射40ML,50KG体重的猪注射50ML。
5.腹腔注射次数不宜过多,一般隔天1次,连续2~3次就停止。
6.药液温度应与体温接近;尤其在寒冷季节,应将液体加热到38摄氏度左右,注射速度要快,针头不宜过长,过粗,切忌刺伤膀胱,肾脏或其它内脏器官,注意消毒,防止感染。
7.注射中需固定好针头,针头需稍压腹壁,使腹壁肌面紧贴腹膜,以免针头移动于腹壁与腹膜之间,造成药液注射于夹层。