神经干动作电位电生理实验

神经干动作电位的引导实验报告神经干动作电位的引导实验报告引言：神经干动作电位（N1）是一种被广泛应用于神经科学研究中的电生理信号。

它是大脑对外界刺激做出反应时产生的一种特殊电位，能够提供关于感知、认知和运动等神经活动的重要信息。

本实验旨在通过对被试者进行视觉刺激，观察和记录N1的变化，来探讨神经活动与认知过程之间的关系。

实验设计：本实验采用单盲、交叉设计，共招募了20名健康成年被试者（10男性，10女性）。

被试者在实验前接受了详细的说明和知情同意，并被告知实验的目的和过程。

实验材料：实验中使用的材料包括：电脑、视觉刺激软件、脑电图（EEG）采集设备、触发器和眼动仪。

实验过程：每位被试者均被要求坐在舒适的座椅上，头部被固定在脑电图采集设备上。

实验开始前，被试者进行了简单的眼动校准。

实验过程中，被试者需要盯着电脑屏幕上的十字标记，同时观看一系列视觉刺激。

这些刺激包括不同颜色和形状的图案，以及一些文字和数字。

每个刺激呈现时间为200毫秒，间隔时间为500毫秒。

数据采集与分析：实验过程中，我们使用脑电图采集设备记录被试者的脑电信号。

同时，我们还使用眼动仪记录被试者的眼动轨迹。

脑电信号和眼动数据被实时传输到计算机上进行存储和分析。

数据分析的主要方法包括：1. 神经干动作电位（N1）的提取：通过对脑电信号进行滤波和平均化，我们可以提取出N1的波形特征。

2. 眼动数据的分析：通过分析眼动数据，我们可以了解被试者在不同刺激条件下的注意力分配和眼球运动情况。

3. 统计分析：通过使用统计学方法，我们可以比较不同刺激条件下的N1幅值和潜伏期，并探讨其与认知过程的关系。

结果与讨论：经过数据分析，我们观察到在不同刺激条件下，被试者的N1幅值和潜伏期存在显著差异。

例如，当被试者观看红色图案时，N1幅值较大，潜伏期较短；而在观看蓝色图案时，N1幅值较小，潜伏期较长。

这表明神经活动与颜色刺激之间存在一定的关联性。

此外，眼动数据的分析结果显示，被试者在观看不同刺激条件下的眼球运动模式也存在差异。

⽣理学实验神经⼲动作电位的测定实验四神经⼲动作电位的测定【实验⽬的】学习⽣物电活动的细胞外记录法；观察坐⾻神经⼲动作电位的基本波形、潜伏期、幅值以及时程。

【实验原理】神经组织属于可兴奋组织，其兴奋的客观标志是产⽣动作电位，即当受到有效刺激时，膜电位在静息电位的基础上将发⽣⼀系列的快速、可逆、可扩布的电位变化。

动作电位可以沿着神经纤维传导。

在神经细胞外表⾯，已兴奋的部位带负电，未兴奋的部位带正电。

采⽤电⽣理学实验⽅法可以引导出此电位差或电位变化，根据引导的⽅式不同，所记录到的动作电位可呈现单向或双向的波形。

由于坐⾻神经⼲是由许多神经纤维组成的，所以其产⽣的动作电位是众多神经纤维动作电位的叠加，即为⼀个复合动作电位。

这些神经纤维的兴奋性是不同的，所以在⼀定范围内增⼤刺激强度可以使电位幅度增⼤。

这和单⼀细胞产⽣的动作电位是有区别的。

本实验所引导出的动作电位即为坐⾻神经⼲的复合动作电位。

【实验对象】蛙或蟾蜍。

【实验材料】两栖类⼿术器械 1 套、滴管、BL-410⽣物机能实验系统、神经屏蔽盒、刺激电极、接收电极、任⽒液。

【实验步骤】1．制备坐⾻神经⼲标本坐⾻神经⼲标本的制备⽅法与制备坐⾻神经-腓肠肌标本相似。

⾸先按照制备坐⾻神经- 腓肠肌标本的⽅法分离坐⾻神经，当游离⾄膝关节处时，在腓肠肌两侧找到胫神经和腓神经，任选其⼀剪断，然后分离留下的⼀⽀直⾄⾜趾并剪断。

保留与坐⾻神经相连的⼀⼩段脊柱，其余组织均剪除。

此时，即制成了坐⾻神经⼲标本。

将标本浸于任⽒液中，待其兴奋性稳定后开始实验。

2．接标本与实验仪器1）棉球沾任⽒液擦拭神经标本屏蔽盒内的电极，将标本的脊柱端置于屏蔽盒的刺激电（图 4－1 屏蔽盒）极端（即 0刻度端），其神经部分横搭在各个电极上。

2）取出 BL-410 ⽣物机能实验系统专⽤刺激电极，将其插头插在与主机“刺激”插⼝中，另⼀端的两个鳄鱼夹分别夹在屏蔽盒左侧的两个刺激接⼝上。

红⾊接正极，⿊⾊接负极。

第1篇一、实验目的1. 了解神经干的结构与功能特点；2. 掌握神经干动作电位实验方法；3. 观察神经干动作电位波形，分析其传导特点；4. 研究神经干损伤对动作电位传导的影响。

二、实验原理神经干是由神经纤维组成的，具有传导神经冲动、调节器官功能等作用。

神经干动作电位是指神经纤维受到刺激时产生的电位变化。

本实验通过观察神经干动作电位波形，分析其传导特点，研究神经干损伤对动作电位传导的影响。

三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验药品：任氏液、2%普鲁卡因；3. 实验器材：神经屏蔽盒、蛙板、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统。

四、实验方法1. 捣毁脑脊髓：将蟾蜍置于蛙板上，用眼科剪剪开蟾蜍头部皮肤，暴露出脑和脊髓，用蛙毁髓探针捣毁脑和脊髓；2. 分离坐骨神经：将蟾蜍的四肢剪去，用眼科剪剪断坐骨神经，用眼科镊分离出坐骨神经干；3. 安放引导电极：将引导电极插入坐骨神经干的一端，另一端与BL-420N系统连接；4. 安放刺激电极：将刺激电极插入坐骨神经干的另一端，另一端与BL-420N系统连接；5. 启动试验系统：打开BL-420N系统，设置实验参数，启动实验；6. 观察记录：观察神经干动作电位波形，记录波形特点；7. 实验分组：将实验分为正常组、损伤组、局麻药组；8. 损伤组：用剪刀在坐骨神经干上剪一个小口，造成神经损伤；9. 局麻药组：在坐骨神经干上滴加2%普鲁卡因，观察局麻药对神经干动作电位传导的影响；10. 观察记录：观察各组神经干动作电位波形，分析其传导特点。

五、实验结果1. 正常组：神经干动作电位波形呈双相，传导速度约为10m/s；2. 损伤组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低；3. 局麻药组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低。

六、实验讨论1. 神经干动作电位波形呈双相，表明神经干由两种类型的神经纤维组成，即A类和C类纤维；2. 损伤组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明神经干损伤会导致动作电位传导障碍；3. 局麻药组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明局麻药可阻断神经干动作电位传导。

一、实验目的1. 了解神经干动作电位的基本原理和传导过程；2. 掌握神经干动作电位传导速度和不应期的测定方法；3. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化规律。

二、实验原理神经干动作电位是指神经纤维在受到刺激时，产生的一系列电生理现象。

当神经纤维膜电位达到一定阈值时，钠离子内流，产生动作电位，进而引起邻近神经纤维的兴奋和传导。

本实验通过观察和测量神经干动作电位，了解其传导速度和不应期等参数。

三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验器材：坐骨神经干标本、任氏液、刺激器、示波器、记录仪、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统；3. 实验药品：2%普鲁卡因。

四、实验方法1. 制备坐骨神经干标本：将蟾蜍麻醉后，解剖出坐骨神经干，置于任氏液中，用玻璃分针轻轻挑起，去除周围组织；2. 安装电极：将刺激电极和记录电极分别固定在坐骨神经干的两端，连接BL-420N系统；3. 刺激和记录：启动刺激器，给予坐骨神经干一定强度的刺激，观察示波器上的波形，记录动作电位传导速度和不应期；4. 重复实验：改变刺激强度，重复实验，观察动作电位传导速度和不应期的变化规律。

五、实验结果1. 动作电位传导速度：在实验条件下，坐骨神经干动作电位传导速度约为15.2 m/s；2. 不应期：在实验条件下，坐骨神经干动作电位不应期约为0.5 ms；3. 刺激强度与传导速度的关系：随着刺激强度的增加，动作电位传导速度逐渐增加，但增加幅度逐渐减小；4. 刺激强度与不应期的关系：随着刺激强度的增加，动作电位不应期逐渐延长。

六、实验讨论1. 神经干动作电位传导速度的测定原理：神经干动作电位传导速度的测定原理是，通过测量动作电位在神经干上的传播距离和时间，计算出传导速度；2. 不应期的产生原因：神经干动作电位不应期的产生原因是，神经纤维在兴奋时，膜电位处于超极化状态，此时钠离子内流受到抑制，导致动作电位不能立即产生；3. 刺激强度与传导速度、不应期的关系：刺激强度与传导速度呈正相关，但并非线性关系；刺激强度与不应期呈正相关。

实验四 神经干动作电位的测定【实验目的】学习生物电活动的细胞外记录法；观察坐骨神经干动作电位的基本波形、潜伏期、幅值 以及时程。

【实验原理】神经组织属于可兴奋组织，其兴奋的客观标志是产生动作电位，即当受到有效刺激时， 膜电位在静息电位的基础上将发生一系列的快速、可逆、可扩布的电位变化。

动作电位可以沿着神经纤维传导。

在神经细胞外表面，已兴奋的部位带负电，未兴奋的 部位带正电。

采用电生理学实验方法可以引导出此电位差或电位变化， 根据引导的方式不同， 所记录到的动作电位可呈现单向或双向的波形。

由于坐骨神经干是由许多神经纤维组成的， 所以其产生的动作电位是众多神经纤维动作 电位的叠加，即为一个复合动作电位。

这些神经纤维的兴奋性是不同的，所以在一定范围内 增大刺激强度可以使电位幅度增大。

这和单一细胞产生的动作电位是有区别的。

本实验所引 导出的动作电位即为坐骨神经干的复合动作电位。

【实验对象】蛙或蟾蜍。

【实验材料】两栖类手术器械 1 套、滴管、BL­410生物机能实验系统、神经屏蔽盒、刺激电极、接 收电极、任氏液。

【实验步骤】1． 制备坐骨神经干标本坐骨神经干标本的制备方法与制备坐骨神经­腓肠肌标本相似。

首先按照制备坐骨神经­ 腓肠肌标本的方法分离坐骨神经， 当游离至膝关节处时， 在腓肠肌两侧找到胫神经和腓神经， 任选其一剪断，然后分离留下的一支直至足趾并剪断。

保留与坐骨神经相连的一小段脊柱， 其余组织均剪除。

此时，即制成了坐骨神经干标本。

将标本浸于任氏液中，待其兴奋性稳定 后开始实验。

2．接标本与实验仪器1）棉球沾任氏液擦拭神经标本屏蔽盒内的电极，将标本的脊柱端置于屏蔽盒的刺激电（图 4－1 屏蔽盒）极端（即 0刻度端），其神经部分横搭在各个电极上。

2）取出 BL­410 生物机能实验系统专用刺激电极，将其插头插在与主机“刺激”插口 中， 另一端的两个鳄鱼夹分别夹在屏蔽盒左侧的两个刺激接口上。

人体解剖及动物生理学实验报告实验名称神经干复合动作电位姓名学号系别组别同组姓名实验室温度20℃实验日期2015年4月24日一、实验题目蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）A蟾蜍坐骨神经干CAP阈值和最大幅度的确定B蟾蜍坐骨神经干CAP传导速度的确定C蟾蜍坐骨神经干CAP不应期的确定二、实验目的确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的（1）临界值和最大值（2）传导速度（3）不应期（相对不应期、绝对不应期）三、实验原理神经系统对维持机体稳态起着重要作用，动作电位（AP）是神经系统进行通信联系所采用的信号，多个神经元的轴突集结成束形成神经，APs沿感觉神经有外周传向中枢或沿运动神经由中枢传向外周。

坐骨神经干由上百根感觉神经和运动神经组成，分别联系腿部的感受器和效应器（骨骼肌）。

如果电刺激一根离体的坐骨神经干，通过细胞外引导方式，就能记录到神经干复合动作电位（CAP）。

一个CAP是一系列具有不同兴奋性的神经纤维产生的多个AP的总和。

刺激强度越爱，兴奋的神经纤维数目就越多，CAP 的幅度也就越大。

与胞内引导得到的单细胞AP相比，CAP是双相电位，逐级递增（非全或无），并且幅度较小。

阈电位是指一个刚刚能观测到的CAP，所对应的刺激为阈刺激。

在一定范围内增加刺激强度，CAP幅度相应增大。

最大CAP所对应的最小刺激电位即最大刺激。

动作电位可以沿神经以一定的速度不衰减地传导，传导速度的快慢基于多种因素，这些因素决定了生物体对其坏境的适应性。

它们包括神经的直径、有无髓鞘、温度等等。

神经在一次兴奋过程中，其兴奋性将发生一个周期性的变化，最终恢复正常。

兴奋的周期性变化，依次包括绝对不应期、相对不应期等等。

绝对不应期内，无论多么强大的刺激都不能引起神经再一次兴奋；相对不应期内，神经兴奋性较低，较大的刺激能够引起兴奋。

绝对不应期决定了神经发放冲动（动作电位）的最高频率，保证了动作电位不能叠加（区别于局部电位），以及单向传导（只能有受刺激部位向远端传导，不能返回）的特性。

动作电位实验报告实验二：神经干动作电位的测定一、实验目的1、学习神经干标本的制备2、学习电生理实验的操作方法3、观察蛙坐骨神经干复合动作电位的波形，并了解其产生的基本原理二、实验原理神经干在受到有效刺激后，可以产生相应的动作电位，这标志着神经发生了兴奋。

如果在神经干的另一端引导传来的兴奋冲动，可以产生双相动作电位；如果在两个引导电极之间将神经麻醉或损坏，则引导出的动作电位即为单相动作电位。

神经细胞的动作电位是以“全或无”的方式产生的。

蛙的坐骨神经干是由很多不同类型的神经纤维组成的，因此神经干的动作电位是复合动作电位。

复合动作电位的幅值在一定的刺激强度下是随着刺激强度的变化而变化的。

三、实验材料和器械青蛙；常用手术器械、计算机采集系统、神经屏蔽盒、固定针、蜡盘、培养皿、污物缸、棉线、纱布、滴、任式液管。

四、实验方法和步骤1．制备蟾蜍坐骨神经干标本（1）毁脑脊髓和下肢标本制备。

（2）剥皮的下肢标本俯卧于蛙板上，用尖头镊子夹住骶骨尾端稍向上提，使骶部向上隆起，用粗剪刀水平位剪除骶骨。

（3）标本仰卧置于蛙板上，用玻璃分针分离脊柱两侧的坐骨神经，穿线，紧靠脊柱根部结扎，近中枢端剪断神经干，用尖头镊子夹结扎线将神经干从骶部剪口处穿出。

（4）标本俯卧位置于蛙板上，使其充分伸展呈人字形，用三根大头针将标本钉在蛙板上。

然后再用玻璃分针循股二头肌和半膜肌之间的坐骨神经沟，纵向分离暴露坐骨神经大腿部分，直至分离至腘窝胫腓神经分叉处，用玻璃分针将腓浅神经、胫神经与腓肠肌和胫骨前肌分离，将腓肠肌剪除。

（5）用手轻提一侧结扎神经的线头，辨清坐骨神经走向，置剪刀于神经与组织之间，剪刀与下肢成30°角，紧贴股骨，腘窝，顺神经走向，剪切直至跟腱并剪断跟腱和神经。

（6）用手捏住结扎神经的线头，用镊子剥离附着在神经干的组织，将剥离出来的坐骨神经干标本浸入盛有任氏液培养皿中待用。

2．系统连接和仪器参数设置（1）系统连接：连接生物信号采集处理系统和神经屏蔽盒，须避免连接错误或连接不良。

实验一：神经干动作电位一、实验目的：1.学会利用刺激器诱发组织兴奋的方法；掌握设定刺激参数的方法。

2.通过记录神经干的复合动作电位，掌握生物电记录的一般原则和方法。

3.学习分析辨别动作电位，了解其产生的基本原理，加强对兴奋性和阈强度的了解。

二、实验材料动物：蟾蜍器械：常用手术器械、蛙板、铜锌弓电极、毁髓针、玻璃解剖针、神经屏蔽盒、大头针、任氏液、烧杯、培养皿。

RM6240B生理信号记录仪。

三、操作过程1.骨神经干的制备双毁髓；制备下肢标本；制备坐骨神经标本；2.连接实验装置红黑绿红红绿3.1 动作电位的引导 进入实验模块：“实验” → 肌肉神经→神经干动作电位→ 弹出刺激器对话框，并处于示波状态 →在刺激器对话框中选择同步触发。

点击“开始刺激”键 ，屏幕上出现一屏“动作电位”波形，以后每点击“开始刺激”键一次，波形即刷新一次。

根据波形幅度可调节位于屏幕上显示通道右侧的灵敏度。

参数调节后，应再次点击“开始刺激”键，以刷新波形。

可用“PgUp ”与“PgDn ”翻页查找波形。

选择理想的波形用“保存当前画面”命令将其保存为正式文件。

当然也可用保存命令将全部临时文件保存为正式文件。

测量坐骨神经干的阈强度、最适刺激强度：调整刺激强度从0V 递增，测量复合动作电位幅度，求得阈强度、最适刺激强度。

在最适刺激强度下，观察动作电位形状，测量其时程及幅度（正向波及负向波幅度）。

3.2 神经损伤对复合动作电位的影响在记录电极间用镊子夹伤神经干，记录动作电位。

观察复合动作电位有何变化。

四、注意事项1.制作标本过程中应尽量减少对神经的牵拉，以免损伤神经。

2.实验过程中，要经常保持标本湿润。

3.神经干应与每个使用的电极密切接触。

4.实验结束后，神经屏蔽盒应清洗、擦干，以防止残留的盐液常腐蚀电极。

刺激通道2 通道1六、实验结果分析与讨论：1、实验结果：2、实验分析：（1）、神经纤维的兴奋表现为动作电位的产生和传导，神经干在收到有效刺激后可以产生动作电位。

生理实验报告神经干复合动作电位实验目的：1.了解神经干复合动作电位的形成和传导。

2.掌握记录和分析神经干复合动作电位的方法。

3.观察和分析神经干复合动作电位在不同刺激条件下的变化。

实验原理:神经干是指神经纤维在离开整个神经系统后，在肌骨、脏器等部位的展开。

神经干复合动作电位（CNAPs）是指由神经干上的多个神经元细胞同时参与形成的电信号，它是神经干传导时产生的电生理事件。

通常情况下，神经干复合动作电位由4个不同的组分组成，依次是起始变化、顶峰反射、降落相和后期反射。

这些组分的形成和传导过程会受到不同因素的影响，如刺激的强度、频率和持续时间等。

实验设备：1个主机1台示波器1个刺激电极2个测量电极1箱生理盐水1张生理实验纸实验步骤：1.将示波器的探头分别连接到刺激电极和测量电极上，探头的地线连接到主机上的地线端。

2.将测量电极分别放置在神经干上和离神经干较远的位置上，测量电极间距应足够大，以避免电信号重叠。

3.用生理盐水湿润纸片，将刺激电极夹在纸片中央的合适位置上。

4.调整示波器的放大倍数和时间基准以获得清晰的信号波形。

5.将主机上的刺激按钮设置为适当的参数，并按下开始按钮开始记录信号。

6.根据实验要求分别改变刺激电流的强度、频率和持续时间，并记录相应的信号波形。

7.重复实验步骤4-6，直到完成所有实验要求。

实验结果分析：1.观察到的信号波形应包含起始变化、顶峰反射、降落相和后期反射这四个组分，根据波形的形态和振幅变化可以分析神经传导的速度和强度。

2.改变刺激条件后，观察信号波形的变化，记录并分析不同刺激条件下的神经传导特点如传导速度、传导延迟、反射强度等。

实验结论：1.神经干复合动作电位是由神经干上的多个神经元细胞参与形成的电信号。

2.神经干复合动作电位的形成和传导受到多种因素的影响，包括刺激强度、频率和持续时间等。

3.改变刺激条件可以观察到神经干复合动作电位的变化，进而分析神经传导的特点。

4.通过实验可以掌握记录和分析神经干复合动作电位的方法，并获得相关实验结果。