微生物 实验六
- 格式:doc
- 大小:62.50 KB
- 文档页数:5
实验六微生物的生理生化反应一、实验目的掌握细菌鉴定中主要生理生化反应的常规实验法。
二、实验原理由于各种微生物具有不同的酶系统,所以他们能利用的底物不同,或虽利用相同的底物但产生的代谢产物却不同,因此可以利用各种生理生化反应来鉴别不同的细菌,尤其是在肠杆菌科细菌的鉴定中,生理生化试验占有重要的地位。
具体个原理如下:1、淀粉水解试验:在淀粉固体培养基上接种两种细菌(1—枯草杆菌,5—大肠杆菌),培养两天以后,再往培养基中加碘液染色,若该细菌能分泌胞外淀粉酶,则能利用其周围的淀粉,淡然在染色后,其菌落周围不呈蓝色,而是无色透明圈。
2、明胶水解试验:穿刺接种于明胶培养基中的细菌,若能产生明胶酶利用明胶,则该培养基在4摄氏度条件下会处于液体状态,从而区别于正常条件下4摄氏度时固态的明胶培养基。
3、糖发酵试验:不同的细菌分解糖的能力不同,有些细菌能利用糖发酵产酸和产气,有些则不能。
酸在加入溴甲酚指示剂后会使溶液呈黄色,且德汉氏小管中会收集到一部分气体。
若细菌不能使糖产酸产气,则最后溶液为指示剂的紫色,且德汉氏小管中无气体。
4、IMVC实验包括四个试验,主要用于快速鉴别大肠杆菌和产气肠杆菌,多用于水环境的细胞血检查。
①吲哚试验:在蛋白胨培养基中,若细菌能产生色氨酸酶,则可将蛋白胨中的色氨酸分解为丙酮酸和吲哚,吲哚与对二甲基苯甲醛反应生成玫瑰色的玫瑰吲哚。
本次不做该试验。
②甲基红试验(MR):某些细菌在糖代谢过程中分解葡萄糖生成丙酮酸,后者进而被分解产生甲酸,乙算和乳酸等多种有机酸,是培养液PH值降至4.2以下,加入甲基红后溶液呈红色。
③柠檬酸盐利用试验:有些细菌能利用柠檬酸盐作为唯一的碳源,而有些细菌则不能利用。
由于细菌不断地利用柠檬酸盐并生成碳酸盐,使培养基PH由中性变为碱性,培养基中的指示剂有浅绿色变为蓝色。
④伏-普试验(乙酰甲基甲醇试验 VP):某些细菌在代谢过程中,能分解葡萄糖产生丙酮酸,丙酮酸在羧化酶的催化下脱羧后形成活性乙醛,后者与丙酮酸缩合,脱羧形成乙酰甲基甲醇,或者乙醛化合生成乙酰甲基甲醇。
实验六微生物计数和大小的测定一、实验目的1、了解目测微尺和物测微尺的结构和使用;2、了解血球记数板的结构;3、掌握血球记数板的使用和计算方法。
二、实验仪器和材料显微镜,目测微尺,物测微尺、血球记数板擦镜纸,香柏油,二甲苯,载玻片,盖玻片。
酵母悬液(或其他种微生物的悬液)。
三、实验方法和步骤1、目测微尺和物测微尺目测微尺外形与目镜相似,在中央刻有10毫米长的、等分100格的标尺,每格的长度随使用目镜和物镜的放大倍数而定。
使用前用物测微尺标定,使用时放在目镜内。
物测微尺是一厚玻片,中央有一圆形盖玻片,中央刻有1毫米长的标尺,等分为100格,每格为10微米,用以标定目测微尺在不同放大倍数下每格的实际长度。
2、用目测微尺和物测微尺测量酵母菌的大小①目测微尺的标定将目测微尺装入目镜筒后,把物测微尺放在载物台上使刻度朝上,用低倍镜找到物测微尺的刻度,移动物测微尺和目测微尺使两者的第一条线重合,顺着刻度找出另一条重合线。
再分别求出高倍镜和油镜下目测微尺每格的长度。
实验记录表格1目镜放大倍数____________。
②菌体大小的测量将物测微尺取下,换上标本片,选择适当的物镜测量目的物的大小,分别求出菌体的长和宽,再按目测微尺一格的长度算出菌体的长度和宽度。
(1)目测微尺的标定:(2)在高倍镜下测量酵母菌大小:3、血球记数板血球记数板是一块比普通载玻片厚的特制玻璃制成。
玻片中央刻有四条纵向槽,中央两条槽之间的平面比其他平面略低,中间有一横槽,槽的上下各有9个大方格,中间的一个方格为计数室,它的长和宽各为1毫米,深度为0.1毫米,其体积为0.1立方毫米。
每个大格分成16个中格,每个中格分成25个小格,共400个小格。
计算方法如下:细胞数/毫升=1个小格内的细胞数×400×10×1000×稀释倍数。
实验记录表格24、微生物记数(1)稀释菌液:为了便于记数,将样品适当稀释,使每格约有5~10个细胞。
实验六微生物细胞大小的测定一、目的要求1.学会测微尺的使用和计算方法。
2.掌握酵母菌细胞大小测定的方法。
二、基本原理微生物细胞大小, 是微生物的形态特征之一,也是分类鉴定的依据之一。
由于菌体很小, 只能在显微镜下测量。
用来测量微生物细胞大小的工具有目镜测微尺和镜台测微尺。
镜台测微尺是中央部分刻有精确等分线的载玻片。
一般将1mm等分为100格(或2mm等分为200格),每格长度等于0.01mm(即106μm)。
是专用于校正目镜测微尺每格长度的。
目镜测微尺是一块可放在接目镜内的隔板上的圆形小玻片, 其中央刻有精确的刻度, 有等分50小格或100小格两种, 每5小格间有一长线相隔。
由于所用接目镜放大倍数和接物镜放大倍数的不同, 目镜测微尺每小格所代表的实际长度也就不同, 因此,目镜测微尺不能直接用来测量微生物的大小, 在使用前必须用镜台测微尺进行校正, 以求得在一定放大倍数的接目镜和接物镜下该目镜测微尺每小格的相对值, 然后才可用来测量微生物的大小。
三、器材枯草芽孢杆菌染色玻片标本, 目镜测微尺, 镜台测微尺, 显微镜, 擦镜纸, 香柏油等。
四、操作步骤1. 目镜测微尺的标定(1)放置目镜测微尺取出接目镜, 旋开接目镜透镜, 将目镜测微尺的刻度朝下放在接目镜筒内的隔板上(图Ⅳ-4, B), 然后旋上接目透镜, 最后将此接目镜插入镜筒内(图Ⅳ-4, C)。
(2)放置镜台测微尺将镜台测微尺置于显微镜的载物台上, 使刻度面朝上。
(3)校正目镜测微尺先用低倍镜观察, 对准焦距, 当看清镜台测微尺后, 转动接目镜, 使目镜测微尺的刻度与镜台测微尺的刻度平行, 移动推动器, 使目镜测微尺和镜台测微尺的某一区间的两对刻度线完全重合, 然后计数出两对重合线之间各自所占的格数(图Ⅳ-6)。
根据计数得到的目镜测微尺和镜台测微尺重合线之间各自所占的格数, 通过如下公式换算出目镜测微尺每小格所代表的实际长度。
目镜测微尺每小格长度(μm)=同法校正在高倍镜和油镜下目镜测微尺每小格所代表的长度。
实验六微生物的生理生化反应一、实验目的掌握i 微生物(细菌)鉴定中主要生化反应的常规实验法二、实验原理(一)大分子物质(如淀粉、明胶)在常规条件下不被降解成小分子物质,但某些微生物细胞能分泌胞外酶,使大分子物质降解。
大分子物质在微生物分泌的胞外酶的作用下分解成小分子物质。
1. 淀粉水解实验根据淀粉遇碘变蓝的原理,向含有淀粉培养基中加入碘产生淀粉酶无色透明圈微生物细胞无淀粉酶蓝色2. 明胶水解实验产生明胶酶的,明胶培养基在4 度时成液体状微生物细胞无明胶酶时,在明胶培养基在4 度成固体状(二)糖发酵实验不同的细菌分解糖,醇的能力不同,有些细菌分解某些糖产酸并产气,有的分解糖仅产酸而不产气,因此,可根据其分解利用糖的差异作为鉴定菌种的依据之一。
在糖发酵实验中,用溴甲酚紫作为指示剂,PH6.8时为紫色,当PH< 5.2时变为黄色,若细菌分解糖产酸,则培养液由紫色变为黄色,有无气体产生,可以从德汗氏小管中观察。
(三)IMVC 实验IMVC 实验主要包括吲哚(indol test)试验、甲基红(methyl red test)试验、柠檬酸盐(citrate test)试验、伏-普(Voges-Prokauer test)试验,这四个试验主要是用来快速鉴别大肠杆菌和产气肠杆菌,多用于水环境的细菌学检查甲基红试验(M.R.试验)某些细菌在糖代谢过程中,分解培养基中的糖产生丙酮酸,丙酮酸再被分解为甲酸,乙酸等,使培养基的PH 值降至4.5 以下。
酸的产生可由甲基红的变色来指示。
甲基红的变色范围是PH4.2-6.3,PH4.2 时为红色,PH6.3 时为黄色。
若细菌分解葡萄糖产酸量少时,则培养基PH 值在6.3以上,故加入甲基红指示剂呈黄色,为阴性。
伏普试验有些细菌可以分解葡萄糖产生丙酮酸,丙酮酸通过缩合和脱羧产生乙酰甲基甲醇。
在碱性条件下,乙酰甲基甲醇被氧化成二乙酰,二乙酰可以与培养基中的蛋白胨中的精氨酸的胍基产生红色化合物。
实验六微生物对含碳化合物的分解利用★不同细菌对不同含碳化合物分解利用能力、代谢途径、代谢产物不完全相同。
例如有的细菌发醇葡萄糖产生有机酸;而另一些细菌则发酵葡萄糖产生中性的乙酰甲基甲醇等等。
此外微生物对含碳化合物的分解利用的生化反应也是菌种鉴定的重要依据。
现分别介绍糖或醇发酵试验、M.R.(甲基红)试验、V.P.(乙酰甲基甲醇)试验、柠檬酸盐利用试验以及过氧化氢酶试验的简单原理。
★(一) 糖或醇发酵试验细菌在分解糖或醇(如葡萄糖、乳糖、蔗糖、甘露醇、甘油)的能力有很大的差异。
有些细菌发酵某种糖后产生各种有机酸(如乳酸、醋酸、甲酸、琥珀酸)及各种气体(如H2、CO2、CH4)。
有的细菌只产酸不产气。
酸的产生可利用指示剂来指示。
在配制培养基时可预先加入溴甲酚紫[pH5(黄)-pH 7(紫)]。
当细菌发酵糖产酸时,可使培养基由紫色变为黄色。
气体的产生可由糖发酵管中倒置的杜氏小管中有无气泡来证明。
糖醇类发酵实验1、培养前的情况;培养后小管中出现的气体★(二)甲基红(M.R.)试验某些细菌在糖代谢过程中,吸收培养基中的糖,然后分解为丙酮酸,丙酮酸再被分解为甲酸、乙酸、乳酸等。
酸的产生可由加入甲基红指示剂的变色而指示。
甲基红的变色范围pH 4.2(红色)-pH 6.3(黄色)。
细菌分解葡萄糖产酸,则培养液由原来的桔黄色变为红色,此为M.R.的阳性反应。
★(三)乙酰甲基甲醇(V.P.)试验某些细菌在糖代谢过程中,分解葡萄糖产生丙酮酸,丙酮酸通过缩合和脱羧生成乙酰甲基甲醇、然后被还原成2,3—丁二醇。
乙酰甲基甲醇在碱性条件下,被氧化生成二乙酰,二乙酰可与培养基中的蛋白胨中的精氨酸的胍基作用,生成红色化合物。
此为V.P.试验的阳性反应。
★(四)柠檬酸盐利用试验不同细菌利用柠檬酸盐能力不同,有的细菌可利用柠檬酸盐作为碳源,有的则不能。
某些细菌将柠檬酸分解为二氧化碳,培养基中由于有游离钠离子存在而形成碳酸钠,使培养基碱性增加。
实验六微生物的生理生化反应1、实验目的探究菌株在碳源同化、氮源利用、乙醇发酵和抗生素效价分析等方面不同的生长特性,观察并简要分析不同微生物的生理生化特征及其形成机理。
2、实验过程简述2.1 培养基与试剂准备2.1.1碳源同化培养基准备碳源为葡萄糖、半乳糖、蔗糖、麦芽糖、乳糖、棉籽糖、蜜二糖、纤维二糖、海藻糖、松三糖、可溶性淀粉、α-甲基葡萄糖苷的YNB 培养基,放入一根杜氏管。
2.1.2氮源同化培养基准备氮源为硫酸铵,尿素,蛋白胨,硝酸钾,无氮源YNB 的固体、液体培养基。
2.1.3 乙醇发酵用种子培养基:YPD 培养基2.1.4乙醇发酵用发酵培养基葡萄糖,酵母粉,蛋白胨,尿素,磷酸二氢钾,硫酸镁,氯化钙。
2.1.5抗生素效价测定用培养基:LB 培养基2.1.6青霉素:用pH 6.0 磷酸缓冲液配制,浓度为100 mg/ml,0.22μm 孔径过滤灭菌。
2.2 微生物的碳源同化和发酵1、从菌体斜面接一环菌于1 ml 无菌水中,室温静置2 h。
2、取200 μl 菌悬液,分别转接于含杜氏管的小试管中,静置培养48 h。
3、每24 h 观察记录生长和产气情况。
4、根据实验结果判断不同菌株对不同碳源的同化或发酵。
2.3 微生物的氮源利用1、从菌体斜面接一环菌于1 ml 无菌水中,室温静置2 h。
2、取200μl 菌悬液,分别转接于上述培养基小试管中,30℃或37℃静置培养48 h。
3、各取20μl 菌悬液,分别划线于不同氮源的固体平板上,待菌液被吸收后,培养皿倒置,静置培养48 h。
4、每24 h 观察记录生长情况,48 h 测定液体培养物的OD 600。
5、根据实验结果判断不同菌株对不同氮源的利用能力或偏好性。
2.4 酵母菌的乙醇发酵1、种子液培养:将酿酒酵母从菌种斜面上接一接种环至YPD 种子培养基中,30℃,200rpm,培养18 h。
2、乙醇发酵:按照10%(v/v)的比例将培养好的种子液接入100 ml 发酵培养基中,用无菌塑料布将封口密封,30℃,静置培养,每24 h 手摇1 次,发酵3-4 d。
实验六微生物的简单染色及革兰氏染色利用显微镜对微生物细胞形态、结构、大小和排列进行观察前,首先要将微生物样品置于载玻片上、染色,为观察到真实、完整的生物形态结构,根据不同微生物的特点采取不同的制片及染色方法。
微生物细胞个体微小且较透明,在光学显微镜下难以将其与背景区分开而看清。
所以,在利用光学显微镜对微生物进行观察前,需要利用染料对微生物进行染色,使着色细胞或结构与背景形成鲜明对比,以便更清晰地观察微生物细胞形态及结构特征。
微生物的另一个特点是种类繁多,不同微生物细胞结构各异,对各类细胞染料的结合能力不同,研究者必须根据所要观察的微生物特点及观察目标,选用适宜的染色技术。
(一)细菌、放线菌、酵母菌和霉菌的制片和简单染色一、目的要求1.学习并掌握微生物制片及简单染色的基本技术。
2.初步了解细菌、放线菌、酵母菌及霉菌的形态特征和相互区别。
3.巩固显微镜操作技术及无菌操作技术。
二、基本原理对个体较小的细菌进行制片时采取涂片法,通过涂抹细胞个体在载玻片上均匀分布,避免菌体堆积而无法观察个体形态,通过加热固定使细胞质凝固,使细胞固定在载玻片上,这种加热处理还可以杀死大多数细菌而且不破坏细胞形态。
利用单一染料对菌体进行染色的方法称为简单染色。
用于染色的染料是一类苯环上带有发色基团和助色基团的有机化合物。
发色基团赋予染料颜色特征,而助色基团使染料能够形成盐。
不含有助色基团而仅具有发色基团的苯化合物(色原)即使具有颜色也不能用作染料,因为它不能电离,不能与酸或碱性成盐,难以与微生物细胞结合使其着色。
常用的微生物细胞颜料都是盐,分碱性染料和酸性染料,前者包括美蓝(亚甲蓝)、结晶紫、碱性复红、沙黄(番红)及孔雀绿等,后者包括碱性复红、伊红及刚果红等。
通常采用碱性染料进行染色,原因在于微生物细胞在碱性、中性及弱酸性溶液中常带负电荷,而染料电力红染色部分带正电荷,很容与细胞结合使其着色;当细胞处于弱酸条件下(如细菌分解糖类产酸)所带正电荷增加时,可采用酸性染料染色。
实验六
紫外线对枯草芽孢杆菌产淀粉酶的诱变效应及裂解性噬菌体效
价测定(12学时)
一、实验目的与要求:
•1、学习并掌握物理诱变——紫外射线诱变育种的方法。
•2、学习并掌握计算诱变后存活率及致死率的计算。
•3、学习透明圈和菌落直径大小及HC比值计算。
•4、学会裂解性噬菌体效价测定方法。
•5、学会抗生素效价测定方法及利用检定菌检测微生物代谢产物的抗菌性。
二、实验原理——诱变育种
1.诱变育种
以微生物的自然变异作为基础的生产选种的机率并不很高,一个基因的自然突变频率仅10-6-10-10左右。
诱变育种:以诱发突变为基础的育种,是迄今为止国内外提高菌种产量、性能的主要手段。
诱变:物理、化学或生物诱变方法
紫外线的诱变育种:
紫外线诱变一般采用15W紫外线杀菌灯,波长为2537A.灯与处理物的距离为15~30cm,照射时间依菌种而异,一般为几秒至几十分钟。
一般我们常以细胞的死亡率表示,希望照射的剂量死亡率控制在70~80%为宜。
被照射的菌悬液细胞数,细菌为106个/ml左右,霉菌孢子和酵母细胞为106~107个/ml。
由于紫外线穿透力不强,要求照射液不要太深,约0.5~1.0cm厚,同时要用电磁搅拌器或手工进行搅拌,使照射均匀。
由于紫外线照射后有光复活效应,所以照射时和照射后的处理应在红灯下进行。
本次实验具体内容:紫外线对枯草芽孢杆菌产淀粉酶的诱变效应
筛选模型应用原理:枯草芽孢杆菌生长过程中产生胞外淀粉酶,将培养基中淀粉分解,根据产酶量的大小将其周围淀粉分解能力各不相同。
在菌长出后向平板人加碘液,在菌落周围将出现透明圈。
根据透明圈的直径可知道该菌落产生淀粉酶的能力。
操作步骤
1.将细菌培养液以3000r/min离心5min,倾去上清液,将菌体打散加入无菌生理盐水再离心洗涤。
2.将菌悬液放入一已灭菌的,装有玻璃珠的三角瓶内用手摇动,以打散菌体。
将菌液倒入
有定性滤纸的漏斗内过滤,单细胞滤液装入试管内,一般处于浑浊态的细胞液含细胞数可达108个/ml左右,作为待处理菌悬液。
老师已经准备菌悬液
3.取2~4m1制备的菌液加到直径9cm培养皿内,放入一无菌磁力搅拌子,然后置磁力搅拌器上、15W紫外线下30cm处。
在正式照射前,应先开紫外线10min,让紫外灯预热,然后开启皿盖正式在搅拌下照射1min、2min、3min。
操作均应在红灯下进行,或用黑纸包住,避免白炽光。
4.取未照射的制备菌液和照射菌液各0.5ml进行稀释分离,计数活菌细胞数。
5.取照射菌液2ml于液体培养基中(300ml三角瓶内装30ml培养液),120r/min振荡培养4~6h。
6.取中间培养液稀释分离、培养。
7.挑取菌落进行筛选。
实验准备器皿和溶液:
(1)带有转子的培养皿(6cm)包扎灭菌;
(2)菌需取照射前稀释至10-8,照射1min取稀释至10-8,照射2min取稀释至10-7,照射3min
取稀释至10-6,因此需准备稀释管(4.5ml)共:8+8+7+6=29支试管。
(3)稀释液为生理盐水:0.85%氯化钠溶液,共需量为:29×4.5=130.5ml,因此,最少配制
150ml。
(4)培养基:淀粉培养基(书p277),准备的量:4个时间,每个时间取3个稀释度,每个稀
释度1个平行,共需准备12个平皿,每个平皿中加入15ml培养基,因此至少需配制培养基180ml,每组按200ml进行配制,按书上配方进行称量并调pH。
移液管包扎:稀释用(至少4支)、加平板用(至少4支)
二、实验原理——抗菌素滤纸片法测定生物效价
将某些蘸有抗菌素的滤纸片贴到已涂布检定菌的培养基表面上,抗菌素将抑制周围微生物的生长,抑制的效果与抗菌素的效价成正比,因此,当检定菌生长成菌苔后,即可观察到抑制菌体生长的情况。
操作方法:
1、检测用平板的制备
将琼脂培养基灭菌融化,倒平板凝固后,用无菌吸管吸取1ml培养好的试验菌液0.2ml,采用涂布法均匀涂于平皿表面。
2、青霉素的抑菌效价测定
将直径5mm的圆形滤纸片,分别蘸取1、10、100 u/ml的青霉素溶液。
在管壁贴至无液体流出时,放置在上述培养的表面上,轻压固定,然后将培养皿放入37℃的培养箱中,培养16-18小时,测定抑菌圈的直径。
注:以上操作均在无菌条件下进行。
需准备器皿与溶液:
(1)稀释管:青霉素10万单位/克,按10倍稀释法称取0.01克于100ml生理盐水中,为1000U/ml,再用3个稀释管即可。
(2)稀释液为生理盐水:共需量为:100+3×4.5=112.5ml。
(3)培养基:牛肉膏蛋白胨培养基(书p275),准备的量:取3个稀释度,每个稀释度1个平行,共需准备3个平皿,每个平皿中加入15ml培养基,因此至少需配制培养基45ml,每组按100ml进行配制,按书上配方进行称量并调pH。
(4)移液管包扎:稀释用(至少1支)、加平板用(至少1支)
(5)无菌滤纸片:用打孔器打出直径5mm的滤纸片,至少准备12片。
用纸包扎后灭菌。
实验——噬菌体效价的测定
一、目的要求:
1.学会噬菌体的检查及其效价测定方法
2.学会观察识别噬菌斑
二、基本原理:
噬菌体是专性寄生微生物细胞的病毒。
按其感染细菌的过程,可分成烈性噬菌体和温和噬菌体。
烈性噬菌体侵染细菌后迅速引起敏感菌裂解,温和噬菌体侵染细菌后一般不引起细菌裂解,使宿主成为溶源性细菌,在双层琼脂平板上出现透明噬菌斑中心的菌落。
噬菌体的效价就是1 mL培养液中所含活噬菌体的数量。
效价测定的方法,一般应用双层琼脂平板法。
由于在含有特异宿主细菌的琼脂平板上,噬菌体长生肉眼可见的噬菌斑。
因此,能进行噬菌体的计数。
但因噬菌斑计数方法其实效率难以接近100%(一般偏低,因为有少数活噬菌体可能未引起感染),所以为了准确地表达病毒菌悬液的浓度(效价)一般不用病毒粒子的绝对数量而是用噬菌斑形成单位(plague-forming units,简写成pfu)。
测定过程:
1).取0.5ml噬菌体浓缩液,加到4.5ml/管的1%蛋白胨水进行10倍系列稀释,依次稀释至10-9稀释度。
2).分别吸取最后三个稀释度的噬菌体稀释液0.1ml,加入到已含有0.2ml敏感菌菌液的试管中。
3).每制备底层平板:平皿中先倒入肉膏蛋白胨固体培养基。
4).将含有敏感菌和噬菌体混合液的试管与45-50℃保温的5ml上层半固体培养基混合均匀,倒入底层平板上,使上层培养基均匀地铺满整个底层平板。
噬菌体的效价
双层法:(每组做3个稀释度,每个稀释度做2皿;另加对照1皿,共7皿)
注意事项:
噬菌体对温度极其敏感,一般噬菌体60℃下5分钟绝大部分失活.因此加入上层培养基的温度要严格保持50℃以下,为防止琼脂凝固,此步操作要快,均匀铺满,不能出气泡。
为保证获得单一,彼此分离的噬菌斑,培养皿盖上和培养基表面不得有凝结水滴。
正置培养,不能倒置。
每皿噬菌体数量不能太多,维持100-300个为宜,否则噬菌斑不能分开而连成一片。
同组同学分工合作协调好,一位稀释噬菌体同时移噬菌体液以及移指示菌液;一位倒制底层平板同时拿上层试管接好移液。
准备器皿与溶液:
(1)1%蛋白胨水:P278(8)调pH。
准备量:4.5ml×9管=40.5ml。
至少准备50ml,并分装在9个试管中,包扎并灭菌。
(2)噬菌体增殖培养基:P276(二)调pH。
半固定培养基11管,每管5ml,至少55ml,按100ml配制。
固体培养基共11个平皿,每皿15ml,至少准备165ml,按200ml准备。
(3)移液管:稀释噬菌体并加入试管2支,吸敏感菌1支,至少3支。
本次实验准备器皿与溶液:
(1)配制生理盐水250ml,准备100ml装入三角瓶中,包扎并灭菌;准备4.5ml生理盐水管共
32支,包扎并灭菌。
(2)1%蛋白胨水:P278(8)调pH。
50ml,并分装在9个试管中,包扎并灭菌。
(3)移液管包扎:12支
(4)淀粉培养基(书p277),准备的量:每组按200ml进行配制,按书上配方进行称量并调
pH后,直接将2%琼脂加入到三角瓶中,不需融化,即可包扎灭菌。
(5)牛肉膏蛋白胨培养基(书p275),每组按400ml进行配制,按书上配方进行称量并调pH,
分装至250ml三角瓶,每瓶150ml,各加3克琼脂(2%);剩余100ml加入0.8克琼脂(0.8%)于1个三角瓶中,不需融化琼脂,即可包扎灭菌。
(6)带有转子的培养皿(6cm)包扎灭菌;
(7)无菌滤纸片:用打孔器打出直径5mm的滤纸片,至少准备12片。
用纸包扎后灭菌。
实验报告内容:
1.记录每组配制准备的器皿与溶液的量并分析其计算过程。
2.斜面菌种保藏方法及记录你所获得的菌种斜面特征。
五、实验报告
1、记录双层平板上的噬菌斑数目,计算噬菌体效价:
(注:噬菌体校价=pfu数×稀释倍数×10)
2、思考题:
(1)测定噬菌体的效价,操作时要注意些什么才能测定准确?
(2)计算噬菌体效价时,选择30-300个pfu的平板计数较好,为什么?(3)如果在你的测定平板上,偶尔出现其他细菌的菌落,是否影响你的噬菌体效价测定?。