自噬双标腺病毒(mrfpgfplc3)使用指南1404知识讲解

mcherry-gfp-lc3原理
Mcherry-GFP-LC3是一种荧光标记蛋白，用于研究细胞自噬。

原理如下：
1. Mcherry是一种红色荧光蛋白，GFP是一种绿色荧光蛋白，它们都可以通过荧光显微镜观察。

2. LC3是一种微管相关蛋白3（Microtubule-associated protein 1A/1B-light chain 3），参与调控和介导细胞自噬过程。

LC3有LC3-I和LC3-II两种形式，LC3-I是胞浆中的非结合形式，LC3-II是结合在自噬小体（autophagosome）膜上的形式。

3. Mcherry-GFP-LC3是将Mcherry和GFP两种荧光蛋白与
LC3一起融合而成。

在正常条件下，细胞中的自噬活性较低，Mcherry-GFP-LC3主要存在于胞浆中。

4. 当细胞启动自噬过程时，LC3-I会转化为LC3-II，并结合在自噬小体膜上。

由于GFP对酸性条件敏感，在自噬小体酸性环境中会逐渐失去荧光，而Mcherry对酸性环境不敏感，能够保持红色荧光。

5. 通过观察Mcherry-GFP-LC3的荧光表达，可以判断细胞是否在进行自噬。

当细胞开始自噬时，会出现红色和黄色（红色与绿色复合）荧光，而在胞浆中继续存在的Mcherry-GFP-LC3会呈现黄色荧光，表明自噬的早期过程。

当自噬小体与溶酶体融合后，酸性环境导致GFP的荧光丧失，只保留红色荧光，表明自噬已经发生。

综上所述，通过观察Mcherry-GFP-LC3的荧光表达变化，可以定量分析细胞中自噬的活性和过程。

mrfp-gfp-lc3自噬评判标准摘要：1.自噬概述2.mrfp-gfp-lc3 自噬评判标准的含义3.自噬在生物体中的功能4.mrfp-gfp-lc3 自噬评判标准的应用领域5.我国在mrfp-gfp-lc3 自噬评判标准研究方面的进展6.未来发展趋势与挑战正文：1.自噬概述自噬是细胞内一种重要的降解机制，通过吞噬并降解细胞内有害蛋白质、细胞器以及其他有害物质，维持细胞内稳态。

自噬过程分为四个阶段：招募、吞噬、融合和降解。

近年来，自噬在生物学和医学研究中受到广泛关注，与许多疾病的发生和发展密切相关。

2.mrfp-gfp-lc3 自噬评判标准的含义mrfp-gfp-lc3 是一种用于检测自噬过程的荧光报告系统，由mRFP-GFP 融合蛋白和LC3 蛋白组成。

mRFP-GFP 融合蛋白能够反映自噬泡的融合过程，LC3 蛋白则可以作为自噬体的标志物。

mrfp-gfp-lc3 自噬评判标准是基于这一荧光报告系统，通过对细胞内mRFP 和GFP 信号的动态变化以及LC3 puncta 的形成来评估自噬的活性和效率。

3.自噬在生物体中的功能自噬在生物体中具有多种功能，包括维持细胞内稳态、降解有害蛋白质、细胞器的更新与维护、抵抗外部压力以及调控细胞生长和死亡等。

自噬异常与许多疾病的发生和发展密切相关，如神经退行性疾病、肿瘤、免疫疾病等。

4.mrfp-gfp-lc3 自噬评判标准的应用领域mrfp-gfp-lc3 自噬评判标准广泛应用于生物学和医学研究中，包括自噬调控机制的研究、药物筛选、疾病模型的建立以及治疗策略的开发等。

通过这一评判标准，研究人员可以快速、准确地评估自噬活性和效率，为进一步研究自噬在生物体中的作用提供便利。

5.我国在mrfp-gfp-lc3 自噬评判标准研究方面的进展近年来，我国在mrfp-gfp-lc3 自噬评判标准研究方面取得了显著进展，不仅在实验技术上不断优化，而且在自噬调控机制、疾病模型以及治疗策略等方面取得了突破。

lc3双荧光自噬流原理LC3双荧光自噬流原理是指通过标记LC3蛋白的N端和C端分别与绿色荧光蛋白（GFP）和红色荧光蛋白（RFP）结合，来研究细胞中的自噬过程。

自噬是一种细胞内垃圾清除机制，可以通过分解细胞内受损或老化的蛋白质、细胞器和长链脂肪酸等细胞成分，提供新的营养物质和能量。

理解自噬的调控机制和功能对于许多疾病的研究具有重要意义。

LC3（Microtubule-associated protein light chain 3）蛋白是自噬过程中的一个关键分子，它可以作为自噬小体的特异性标记物。

在自噬过程中，LC3蛋白从非修饰形式（LC3-I）转化为修饰形式（LC3-II），并参与自噬小体的形成和界定。

LC3双荧光自噬流技术就是通过标记LC3蛋白的N端和C端分别与GFP和RFP结合来追踪自噬小体的形成和变化。

LC3蛋白有两个酶解位点，分别是Glycine120和Glycine121。

在绝大多数正常生理条件下，LC3蛋白主要以非修饰形式存在于细胞质中，称为LC3-I。

LC3-I分子上的Glycine120位点和Glycine121位点上含有一个负电荷的C-末端甘氨酸。

当自噬通路被激活时，LC3-I分子的C-末端甘氨酸被肌酸激酶ATG4剪切，形成一个临时的中间体LC3-I-PE （LC3-半胱氨酸乙酰乙酸胺酰酶）。

LC3-I-PE分子会进一步和自噬小体膜结合，形成LC3-II分子。

LC3-II通过与自噬小体膜相互作用，将自噬小体界定在特定的细胞区域，并参与自噬小体的形成和降解进程。

LC3-II分子富集在自噬小体内，是自噬小体的特异性标记。

因此，观察LC3-II的表达水平和荧光变化，可以反映自噬小体的形成和变化。

LC3双荧光自噬流技术就是通过将LC3-GFP和LC3-RFP融合蛋白导入细胞中，使它们定位在细胞质，并随后转变为LC3-II形式进入自噬小体。

在正常情况下，LC3-GFP和LC3-RFP会同时发放绿色和红色荧光。

自噬研究指南第四版第四版自噬研究指南自噬是一种细胞内的重要代谢过程，它可以清除垃圾蛋白质、细胞器以及损坏DNA等，以维持细胞的功能和稳态。

近年来，对自噬的研究取得了很大的进展，为深入理解该过程的机制和功能提供了重要的指导。

1. 自噬的检测方法自噬的监测是研究中的重要一环，常用的方法包括显微镜下观察自噬体形成、检测自噬相关蛋白的表达水平、蛋白质水解活性等。

此外，近年来流行的指示性信号分子GFP-LC3和mCherry-GFP-LC3转染技术，也为自噬的实时监测提供了便利。

2. 自噬的调控自噬的调控涉及一系列的信号通路，包括mTOR通路、AMPK通路等。

研究表明，mTOR是一个关键的负调控分子，mTOR被抑制时，可以激活自噬的启动，并调控自噬的不同阶段。

此外，AMPK的激活也可以促进自噬的发生。

此外，一些细胞因子、热休克蛋白和ATP等也可以参与自噬的调控。

3. 自噬与相关疾病自噬与许多疾病的发生和发展密切相关，如神经变性疾病、肿瘤、心血管疾病等。

了解自噬的异常调控在疾病中的作用有助于发展新的治疗策略。

例如，通过调节自噬的发生和抑制特定信号通路，可以为神经退行性疾病的治疗提供新的思路。

4. 自噬的药物研发自噬在疾病治疗中的潜力已引起广泛关注，因此，开发针对自噬过程的药物成为了一个热门的研究领域。

目前已有许多潜在的抑制剂和激活剂被发现，这些药物可用于疾病的治疗。

然而，目前对自噬的药物研发仍处于初级阶段，还需要进一步的研究来优化药物的特性和疗效。

综上所述，随着对自噬研究的深入，我们对于自噬机制和调控方式的理解不断增加。

继续推动自噬研究，对于揭示细胞的代谢调控、疾病的发生和治疗，以及药物研发等方面都具有重要意义。

希望本指南能为研究者提供有关自噬的最新进展和研究方法的参考，并助力推动自噬的深入研究与应用。

自噬双标腺病毒（mRFP-GFP-LC3）使用指南背景：自噬是细胞内的一种“自食（Self-eating）”的现象，凋亡是“自杀（Self-killing）”的现象，二者共用相同的刺激因素和调节蛋白，但是诱发阈值和门槛不同，如何转换和协调目前还不清楚. 自噬是指膜（目前来源还有争议，大部分表现为双层膜，有时多层或单层）包裹部分胞质和细胞内需降解的细胞器、蛋白质等形成自噬体，最后与溶酶体融合形成自噬溶酶体，降解其所包裹的内容物，以实现细胞稳态和细胞器的更新。

目前文献对自噬过程进行观察和检测常用的策略和手段有：通过western blot检测LC3的剪切；通过电镜观测自噬体的形成；在荧光显微镜下采用GFP（-RFP）-LC3等融合蛋白来示踪自噬体形成以及降解。

近几年对自噬流的研究日趋增多，针对于此我们汉恒生物科技（上海）有限公司自主研发了用于实时监测自噬(流)的mRFP-GFP-LC3腺病毒，mRFP 用于标记及追踪LC3，GFP的减弱可指示溶酶体与自噬小体的融合形成自噬溶酶体，即由于GFP荧光蛋白对酸性敏感，当自噬体与溶酶体融合后GFP 荧光发生淬灭,此时只能检测到红色荧光。

这种串联的荧光蛋白表达载体系统直观清晰的指示了细胞自噬流的水平，是我们自噬研究尤其是自噬流研究不可或缺的利器。

mRFP-GFP-LC3腺病毒的操作收到病毒后的处理（一）、腺病毒的储存1、腺病毒采用冰袋运输。

（1）、收到病毒液后如未融化请置于-80℃冰箱，下次使用时再进行分装；（2）、如客户收到时腺病毒已融化，请直接分装后置于-80℃冰箱保存；若短期内用于实验，可分装部分于4℃保存（尽量一周内用完）。

2、尽量避免反复冻融，否则会降低病毒滴度（每次冻融会降低病毒滴度10%）。

建议不要在-20℃下长期保存。

如果病毒储存时间超过6个月，应该重新测定病毒滴度。

3、建议收到病毒产品后根据实验需求自行分装或购买经过分装的小包装病毒产品（购买时请提出）。

自噬双标腺病毒( mRFP-GFP-LC3 )使用指南背景：自噬是细胞内的一种“自食(Self-eating )”的现象，凋亡是“自杀( Self-killing )”的现象，二者共用相同的刺激因素和调节蛋白，但是诱发阈值和门槛不同，如何转换和协调目前还不清楚. 自噬是指膜(目前来源还有争议，大部分表现为双层膜，有时多层或单层)包裹部分胞质和细胞内需降解的细胞器、蛋白质等形成自噬体，最后与溶酶体融合形成自噬溶酶体，降解其所包裹的内容物，以实现细胞稳态和细胞器的更新。

目前文献对自噬过程进行观察和检测常用的策略和手段有：通过western blot检测LC3勺剪切；通过电镜观测自噬体的形成；在荧光显微镜下采用GFP(-RFP) -LC3等融合蛋白来示踪自噬体形成以及降解。

近几年对自噬流的研究日趋增多，针对于此我们汉恒生物科技(上海)有限公司自主研发了用于实时监测自噬( 流)的mRFP-GFP-LC腺病毒，mRFP用于标记及追踪LC3, GF啲减弱可指示溶酶体与自噬小体的融合形成自噬溶酶体，即由于GF荧光蛋白对酸性敏感，当自噬体与溶酶体融合后GFP 荧光发生淬灭, 此时只能检测到红色荧光。

这种串联的荧光蛋白表达载体系统直观清晰的指示了细胞自噬流的水平，是我们自噬研究尤其是自噬流研究不可或缺的利器。

mRFP-GFP-LC3 腺病毒的操作收到病毒后的处理（一）、腺病毒的储存1、腺病毒采用冰袋运输。

（1）、收到病毒液后如未融化请置于-80 C冰箱，下次使用时再进行分装；（2）、如客户收到时腺病毒已融化，请直接分装后置于-80 C冰箱保存；若短期内用于实验，可分装部分于4C保存（尽量一周内用完）。

2、尽量避免反复冻融，否则会降低病毒滴度（每次冻融会降低病毒滴度10%）。

建议不要在-20 C下长期保存。

如果病毒储存时间超过6个月，应该重新测定病毒滴度。

3、建议收到病毒产品后根据实验需求自行分装或购买经过分装的小包装病毒产品（购买时请提出）。

mRFP-EGFP-LC3稳转细胞株构建服务质粒来源：Addgene # 21074 ( 载体pEGFP-C1+mRFP；插入基因Rat LC3B，GenBank ID: U05784 )背景：自噬为机体在亚细胞水平的“自我吞噬”，可以帮助细胞维持自身稳态及适应应激环境。

近年来，自噬已成为生物学领域中的一个研究热点。

迄今研究发现，自噬可以参与多种疾病的发生发展，例如肿瘤，心血管疾病，神经退行性疾病等。

因而，自噬在各类相关疾病研究中作为药物筛选靶点越来越受关注和讨论。

自噬研究的基础是有效地观察，定量细胞中自噬的发生。

而目前应用较为广泛的自噬检测方法为观察GFP-LC3荧光斑，细胞正常生理环境LC3呈弥散状分布，自噬激活时LC3会转移至自噬囊泡上，因此，GFP荧光的弥散或斑点状聚集可以比较准确的反应细胞状态。

由于分子生物学的发展，现在已经诞生了mRFP-GFP-LC3 双荧光自噬指示体系，用于标记及追踪LC3以及自噬流的变化。

其中GFP是酸敏感型GFP蛋白，而mRFP是稳定的荧光表达基团，不受外界影响。

由于自噬小体进入第二阶段后，与溶酶体进行融合，形成自噬溶酶体。

自噬溶酶体由于溶酶体内部的酸性环境，可以导致PH下降，GFP淬灭，因此，GFP的减弱可指示自噬溶酶体形成的顺利程度，GFP越少，则从自噬小体到自噬溶酶体阶段流通得越顺畅。

反之，自噬小体和溶酶体融合被抑制，自噬溶酶体进程受阻。

mRFP是一直稳定表达的，因而可以通过GFP与mRFP的亮点比例来评价自噬流进程。

优点：mRFP-EGFP-LC3稳转细胞株可以稳定持续的表达mRFP-EGFP-LC3，能够有效地解决瞬转实验的效率低、周期长、操作繁琐、不稳定等问题，有利于保证实验结果稳定性与可重复性。

mRFP-GFP-LC3 双荧光自噬指示体系的出现，把自噬研究带入了一个新的阶段，自噬不再只是指标，而是一种机制，自噬流的顺畅与否，对于细胞生理功能的稳定非常关键。

lc3双荧光自噬流原理自噬是一种细胞内的重要降解机制，可以降解并回收细胞内的蛋白质、有损的细胞器和细胞内的垃圾。

自噬流原理指的是自噬在细胞内的连续过程，其中LC3蛋白家族扮演着关键角色。

本文将介绍LC3双荧光自噬流原理以及其在细胞生物学研究中的应用。

一、自噬的基本原理自噬是维持细胞内环境稳定的重要机制。

在细胞发生饥饿、感染、细胞应激等情况下，自噬通过形成自噬器官瓶颈体，将细胞内的有害分子进行包裹并送入溶酶体进行降解。

这一过程可以提供细胞能量并维持细胞功能。

自噬的启动主要通过一系列信号通路和蛋白质相互作用来实现。

二、LC3蛋白家族的功能和结构LC3蛋白家族是自噬过程中关键的蛋白质家族。

它们的命名来源于"microtubule-associated protein light chain 3"。

在自噬过程中，LC3负责新生自噬泡的形成、膜的扩张以及涉及自噬的其他关键步骤。

LC3蛋白家族包括LC3A、LC3B和LC3C等。

它们具有高度保守的结构和功能。

LC3蛋白家族存在两种形式，即LC3-I和LC3-II。

LC3-I主要存在于胞质中，是被涂抹在自噬泡内部膜的蛋白质。

在自噬启动后，LC3-I 转化为LC3-II，并在自噬泡膜上延伸形成LC3膜扩张体。

因此，LC3-II是自噬流程中的重要标志。

LC3-II还与自噬相关蛋白如Atg5、Atg7等蛋白质的相互作用协同推动自噬的进行。

三、LC3双荧光自噬流原理为了研究自噬的动态过程，科学家发展出了LC3双荧光自噬流技术。

这一技术基于LC3蛋白家族在自噬过程中的表达和转变特点，通过转染细胞并观察LC3蛋白家族的荧光标记来实现。

LC3双荧光自噬流技术包括LC3-GFP（Green Fluorescent Protein）和LC3-mCherry（Red Fluorescent Protein）的表达。

通过显微镜观察细胞中的荧光分布情况，可以判断自噬过程的不同阶段。

自噬的热点研究方法及步骤自噬作为时下的研究热点，有非常深远的研究意义。

一、自噬病毒工具1）GFP-LC3单荧光自噬指示病毒系统GFP-LC3病毒系统可高效感染目的细胞，表达GFP-LC3，感染感染后细胞可在荧光显微镜下实时观察自噬的整体水平；由于电镜耗时长，不利于监测（Monitoring）自噬形成。

我们利用LC3在自噬形成过程中发生聚集的现象开发出了GFP-LC3指示技术：无自噬时，GFP-LC3融合蛋白弥散在胞浆中；自噬形成时，GFP-LC3融合蛋白转位至自噬体膜，在荧光显微镜下形成多个明亮的绿色荧光斑点，一个斑点相当于一个自噬体，可以通过计数来评价自噬活性的高低。

汉恒生物已开发出高效的评价用GFP-LC3病毒载体，通过瞬时高效感染细胞，配合活细胞工作站成功评价自噬流。

2）mRFP-GFP-LC3双荧光自噬指示病毒系统表达mRFP-GFP-LC3 融合蛋白的病毒产品。

mRFP 用于标记及追踪LC3，GFP 的减弱可指示溶酶体与自噬小体的融合形成自噬溶酶体，即由于GFP 荧光蛋白对酸性敏感，当自噬体与溶酶体融合后GFP 荧光发生淬灭,此时只能检测到红色荧光。

已多种双荧光病毒系统提供，具体如下：a）mRFP-GFP-LC3腺病毒系统——可高效感染目的细胞，表达mRFP-GFP-LC3，感染后细胞可在荧光显微镜下实时观察自噬发生过程；b）mRFP-GFP-LC3慢病毒系统——可以稳定表达持续检测细胞的自噬流检测；c）mRFP-GFP-LC3腺相关病毒（AAV）系统——最有效的在体自噬流检测工具；二、自噬检测以及整体服务1）自噬检测服务常规自噬检测服务包括western blot检测细胞自噬的水平，优惠提供自噬常规抗体LC3、p62以及beclin1等，我们的研究团队长期为客户提供自噬技术服务，有丰富的自噬研究经验，我们的优势是周期短，质量高；a）利用Western Blot检测LC3-II/I比值的变化以评价自噬形成。

自噬标志物—lc3检测要点自噬是一种细胞自我降解的过程，它在维持细胞内环境稳定、清除垃圾蛋白质和对抗压力等方面起着重要作用。

要检测自噬的活性，常常使用LC3 (Microtubule-associated protein 1 light chain 3)作为标志物。

下面将介绍LC3检测的要点。

1. LC3 I和LC3 II：LC3是一种在自噬过程中参与的蛋白质。

它存在两种形式：LC3 I和LC3 II。

LC3 I是未修饰的形式，而LC3 II是经过磷酸化和脂化修饰的形式。

LC3 II在自噬过程中会转移到自噬体膜上，因此LC3 II的水平可以反映自噬的活性。

2. 免疫印迹法：常用的检测LC3的方法是免疫印迹法。

首先，需要制备细胞提取物，并使用蛋白质浓度检测方法确定提取物的蛋白质浓度。

然后，将相同量的蛋白质加载到SDS-PAGE凝胶中，进行电泳分离。

接下来，将蛋白质转移到聚丙烯酰胺膜上，并使用抗LC3的抗体进行免疫检测。

最后，使用化学发光法或显色法观察和定量LC3的水平。

3. LC3转化：在自噬过程中，LC3 I会被ATG4蛋白酶切割，形成LC3 II。

因此，LC3 II的水平可以反映自噬的活性。

LC3转化可以通过观察LC3 I和LC3 II的比例来评估。

当自噬活性增加时，LC3 II的水平会增加，而LC3 I的水平会减少。

4. 自噬诱导剂和抑制剂：为了评估细胞自噬的活性，可以使用自噬诱导剂或抑制剂。

自噬诱导剂如雷帕霉素（rapamycin）可以增加自噬的活性，而自噬抑制剂如氯喹（chloroquine）可以抑制自噬的活性。

通过与这些药物的处理，可以进一步验证LC3的水平是否与自噬活性相关。

LC3是检测自噬活性的重要标志物。

通过免疫印迹法检测LC3 I和LC3 II的水平，可以评估细胞自噬的活性。

此外，自噬诱导剂和抑制剂的使用也可以帮助验证LC3水平与自噬活性的相关性。

通过这些要点的了解和应用，我们可以更好地研究和理解细胞自噬的机制和功能。

WB常见指标——⾃噬标志物LC3摘要LC3特点实验要点LC3A/B/C有细胞/组织类型分布特点查询细胞/组织中各亚型的表达谱，选择合适靶标的抗体LC3-I可转变为LC3-II检测LC3-I和LC3-II使⽤LC3A，LC3B或者LC3A/B的抗体均可。

脂化、膜相关蛋⽩超声确保充分裂解⼩分⼦量蛋⽩~15%分离胶，0.22um印记膜转膜LC3-II可被溶酶体降解加⼊⼯具药（如氯喹等），阻断降解LC3-I/II的形成和降解是⼀个动态过程瞬时LC3-II表达不能反映⾃噬程度，需配合使⽤⼯具药（如氯喹）分析⾃噬变化正⽂在进⾏⾃噬研究时，WB检测LC3-I和LC3-II⼏乎是必做的实验，那么，进⾏LC3检测时，需要注意哪些要点呢？请看下⽂LC3: 从何处来？往何处去？LC3/Atg8 被具有蛋⽩内切酶活性的Atg4在羧基端剪切，⽣成胞质 LC3-I。

LC3-I通过Atg7 和Atg3（分别对应 E1 和 E2 样酶）参与的泛素样反应，使磷脂酰⼄醇胺 (PtdEth，PE) 偶联，⽣成脂质化形式的 LC3，也称作 LC3-II，它可以附着到⾃噬体(autophagosome)的膜上，是⾃噬体的结构蛋⽩。

在降解过程中，位于⾃噬溶酶体外膜的LC3-II被半胱氨酸蛋⽩酶Atg4B移除后回收，位于内膜的LC3-II则与包裹的内容物⼀起，被溶酶体降解。

图1：⾃噬信号通路的调控，点击下载源⽂件LC3A/B/C有种属细胞/组织分布特点LC3/Atg8 被具有蛋⽩内切酶活性的Atg4在羧基端剪切，⽣成胞质 LC3-I。

LC3-I通过Atg7 和Atg3（分别对应 E1 和 E2 样酶）参与的泛素样反应，使磷脂酰⼄醇胺 (PtdEth，PE) 偶联，⽣成脂质化形式的 LC3，也称作 LC3-II，它可以附着到⾃噬体(autophagosome)的膜上，是⾃噬体的结构蛋⽩。

在降解过程中，位于⾃噬溶酶体外膜的LC3-II被半胱氨酸蛋⽩酶Atg4B移除后回收，位于内膜的LC3-II则与包裹的内容物⼀起，被溶酶体降解。

自噬双标腺病毒（mRFP-GFP-LC3）使用指南背景：自噬是细胞内的一种“自食（Self-eating）”的现象，凋亡是“自杀（Self-killing）”的现象，二者共用相同的刺激因素和调节蛋白，但是诱发阈值和门槛不同，如何转换和协调目前还不清楚. 自噬是指膜（目前来源还有争议，大部分表现为双层膜，有时多层或单层）包裹部分胞质和细胞内需降解的细胞器、蛋白质等形成自噬体，最后与溶酶体融合形成自噬溶酶体，降解其所包裹的内容物，以实现细胞稳态和细胞器的更新。

目前文献对自噬过程进行观察和检测常用的策略和手段有：通过western blot检测LC3的剪切；通过电镜观测自噬体的形成；在荧光显微镜下采用GFP（-RFP）-LC3等融合蛋白来示踪自噬体形成以及降解。

近几年对自噬流的研究日趋增多，针对于此我们汉恒生物科技（上海）有限公司自主研发了用于实时监测自噬(流)的mRFP-GFP-LC3腺病毒，mRFP 用于标记及追踪LC3，GFP的减弱可指示溶酶体与自噬小体的融合形成自噬溶酶体，即由于GFP荧光蛋白对酸性敏感，当自噬体与溶酶体融合后GFP 荧光发生淬灭,此时只能检测到红色荧光。

这种串联的荧光蛋白表达载体系统直观清晰的指示了细胞自噬流的水平，是我们自噬研究尤其是自噬流研究不可或缺的利器。

mRFP-GFP-LC3腺病毒的操作收到病毒后的处理（一）、腺病毒的储存1、腺病毒采用冰袋运输。

（1）、收到病毒液后如未融化请置于-80℃冰箱，下次使用时再进行分装；（2）、如客户收到时腺病毒已融化，请直接分装后置于-80℃冰箱保存；若短期内用于实验，可分装部分于4℃保存（尽量一周内用完）。

2、尽量避免反复冻融，否则会降低病毒滴度（每次冻融会降低病毒滴度10%）。

建议不要在-20℃下长期保存。

如果病毒储存时间超过6个月，应该重新测定病毒滴度。

3、建议收到病毒产品后根据实验需求自行分装或购买经过分装的小包装病毒产品（购买时请提出）。

gfp-lc3单荧光实验方法GFP-LC3（绿色荧光蛋白-LC3）单荧光实验方法用于研究细胞自噬过程，以下是一种常用的实验方法：材料：1. GFP-LC3表达质粒2. 哺乳动物细胞系（如HEK293细胞）3. PBS缓冲液4. HEPES缓冲液5. 离心管6. 细胞培养培养基7. 离心机8. 荧光显微镜步骤：1. 将GFP-LC3表达质粒转染至哺乳动物细胞系中。

使用合适的转染试剂将GFP-LC3表达质粒引入细胞内，使细胞内表达GFP-LC3蛋白。

2. 培养转染后的细胞系。

将转染后的细胞系在培养基中按照常规方法进行培养，使其细胞生长并表达GFP-LC3。

3. 处理细胞。

根据实验需要，可以加入或处理细胞以诱导自噬过程。

常用的方法包括处理细胞，如饥饿、药物处理或其他刺激。

4. 收集细胞。

在处理后的适当时间点，使用PBS缓冲液冲洗细胞，然后使用离心机将细胞以适当的转速离心收集。

5. 固定细胞。

使用10%甲醛或4%乙醛在HEPES缓冲液中固定细胞，固定时间一般为10-20分钟。

6. 荧光显微观察。

使用荧光显微镜观察固定的细胞。

GFP-LC3表达的细胞会显示绿色荧光信号，代表自噬小体的形成和存在。

7. 分析结果。

根据观察结果，分析细胞中GFP-LC3的荧光信号的分布和数量，来评估细胞自噬的活性。

注意事项：- 在实验过程中，要注意细胞培养的条件和实验处理的时间点，以保证实验结果的准确性。

- 选择合适的显微镜和荧光滤光片，以获取清晰的荧光图像。

- 可以使用其他细胞标记物，如细胞器标记蛋白来研究自噬的位置和关系。

- 根据实验需要，可以结合其他技术或方法，如Western blotting等，来进行进一步的分析和验证。

细胞⾃噬检测的具体步骤及⽅法细胞⾃噬检测的具体步骤及⽅法⼀、⾃噬体介绍⾃噬（Autophagy），或称⾃体吞噬，是⼀个涉及到细胞⾃⾝结构通过溶酶体机制⽽被分解的过程，该过程是⼀个受到紧密调控的步骤，帮助细胞产物在合成、降解以及接下来的循环中保持⼀个平衡状态。

细胞接受⾃噬诱导信号后，在胞浆的某处形成⼀个扁平的类似“脂质体”样的膜结构，称为Phagophore。

随着Phagophore不断延伸，将胞浆中的细胞器等成分，全部包裹住成为密闭的结构，称为“⾃噬体（autophagosome）”。

⾃噬体形成后，可与溶酶体融合，⾃噬体中的内容物随即被降解，产物（氨基酸、脂肪酸等）被输送到胞浆中，供细胞重新利⽤，⽽残渣或被排出细胞外或滞留在胞浆中。

⾃噬信号通路：⼆、⾃噬研究策略和⽅法正常细胞基础⽔平⾃噬活性⽐较低，对⾃噬研究通常需要进⾏⼈⼯调节和⼲预，常⽤药物有：1、⾃噬诱导剂a) Bredeldin A / Thapsigargin / Tunicamycin ：模拟内质⽹应激；b) Carbamazepine/ L-690，330/ Lithium Chloride（氯化锂）：IMPase 抑制剂（即Inositol monophosphatase，肌醇单磷酸酶）；c) Earle's平衡盐溶液：制造饥饿；d) N-Acetyl-D-sphingosine（C2-ceramide）：Class I PI3K Pathway抑制剂；e) Rapamycin：mTOR抑制剂；f) Xestospongin B/C：IP3R阻滞剂。

2、⾃噬抑制剂a) ⾃噬抑制剂3-Methyladenine（3-MA）：(Class III PI3K) hVps34 抑制剂；b) Bafilomycin A1：质⼦泵抑制剂；c) 溶酶体抑制剂Hydroxychloroquine（羟氯喹）。

3、⾃噬检测1) 透射电镜；电镜作为⾃噬检测的⾦指标。

mrfp-gfp-lc3自噬评判标准
MRFp-GFP-LC3是一种用于评判细胞自噬活性的标识物。

LC3（Microtubule-associated protein 1A/1B-light chain 3）是自噬过程中的一个关键蛋白，其选择性地在自噬过程中结合于自噬囊泡膜上。

MRFp-GFP-LC3是一种融合蛋白，将MRFp和GFP 与LC3融合在一起，可以通过观察细胞内自噬囊泡膜上的MRFp-GFP-LC3信号来定量细胞的自噬活性。

评判标准：
1. 自噬囊泡膜的形成：正常情况下，细胞内的MRFp-GFP-LC3表达时呈现为一个均匀分布的绿色荧光信号。

当自噬过程发生时，MRFp-GFP-LC3会在囊泡膜上形成点状或环状的荧光信号。

观察细胞中是否出现这些点状或环状的信号，可以评判自噬囊泡膜的形成。

2. 自噬囊泡膜的积累：正常情况下，自噬囊泡会在细胞内迅速融合并降解其内的物质。

当自噬的降解过程受到抑制时，自噬囊泡膜会在细胞内积累。

通过观察细胞内的MRFp-GFP-LC3信号，如果发现大量的点状或环状信号积累在细胞内，可以判断自噬囊泡膜的积累。

3. 自噬囊泡膜的降解：除了观察自噬囊泡的形成和积累，还可以评判自噬囊泡膜的降解。

在自噬降解过程中，MRFp-GFP-LC3会被酸性的自噬溶酶体降解，荧光信号会减弱甚至消失。

通过观察细胞内的MRFp-GFP-LC3信号的强度变化，可以评判自噬囊泡膜的降解情况。

综合以上几个方面的观察和判断，可以评判细胞的自噬活性。

需要注意的是，不同细胞类型和研究对象的自噬特征可能有所差异，因此在进行自噬评判时，还需结合其他相关实验和标记物的结果进行综合分析。

自噬过程中常用的策略和技术1）观察自噬体的形成由于自噬体属于亚细胞结构，普通光镜下看不到，因此，直接观察自噬体需在透射电镜下。

Phagophore的特征为：新月状或杯状，双层或多层膜，有包绕胞浆成分的趋势。

自噬体（AV1）的特征为：双层或多层膜的液泡状结构，内含胞浆成分，如线粒体、内质网、核糖体等。

自噬溶酶体（AV2）的特征为：单层膜，胞浆成分已降解。

（autophagic vacuole，AV）2）在荧光显微镜下采用GFP-LC3等融合蛋白来示踪自噬形成：(常用)GFP-LC3单荧光指示体系：由于电镜耗时长，不利于监测（Monitoring）自噬形成。

我们利用LC3在自噬形成过程中发生聚集的现象开发出了GFP-LC3指示技术：无自噬时，GFP-LC3融合蛋白弥散在胞浆中；自噬形成时，GFP-LC3融合蛋白转位至自噬体膜，在荧光显微镜下形成多个明亮的绿色荧光斑点，一个斑点相当于一个自噬体，可以通过计数来评价自噬活性的高低。

我们在显微镜成像后红绿荧光merge后通过merge后出现的黄色斑点即只是自噬体.红色的斑点指示自噬溶酶体,通过不同颜色斑点的计数可以清晰的看出自噬流的强弱。

如下图:细胞转染mRFP-GFP-LC3病毒后给予氨基酸剥夺处理2小时后出现明显增强的自噬以及自噬流。

3）利用Western Blot检测LC3-II/I比值的变化以评价自噬形成（LC3抗体购自sigma，L8918）。

自噬形成时，胞浆型LC3（即LC3-I）会酶解掉一小段多肽，转变为（自噬体）膜型（即LC3-II），因此，LC3-II/I比值的大小可估计自噬水平的高低。

（Note：LC3抗体对LC3-II有更高的亲和力，会造成假阳性。

方法2和3需结合使用，同时需考虑溶酶体活性的影响。

）4) 利用Western Blot检测p62蛋白来评价自噬以及自噬流的强弱:起初自噬所降解的底物被认为是随机的,但是后来的研究表明有些蛋白是seletively降解的,在这些蛋白之中研究的最为透彻的是蛋白p62, p62 is selectively incorporated into autophagosomes throu gh direct binding to LC3 and is efficiently degraded by autopha gy ; thus, the total cellular expression levels of p62 inversely corr elate with autophagic activity. (p62蛋白水平的多少与自噬流的强弱有着反比例关系)。

lc3荧光质粒说明书1️⃣ LC3荧光质粒概述LC3（Microtubuleassociated protein 1 light chain 3）作为自噬体标记蛋白，在细胞自噬过程中发挥着关键作用。

LC3荧光质粒是一种将LC3基因与荧光蛋白（如GFP、RFP等）融合的重组质粒，通过转染细胞，可实时观察自噬体的形成、动态变化及数量，是研究细胞自噬机制的重要工具。

结构特点：LC3荧光质粒通常由启动子、LC3基因、荧光蛋白基因、终止子等元件构成，确保在目标细胞中高效、稳定地表达融合蛋白。

荧光标记：常用的荧光蛋白有绿色荧光蛋白（GFP）、红色荧光蛋白（RFP）等，不同荧光标记便于多色成像及与其他标记物的共定位分析。

2️⃣ 构建与应用构建步骤：1. 设计并合成包含LC3基因与荧光蛋白基因的DNA片段。

2. 将该片段克隆至适当的载体中，如pcDNA3.1、pEGFPN1等，构建成重组质粒。

3. 通过酶切、测序等方法验证重组质粒的正确性。

4. 使用脂质体转染、病毒介导等方法将重组质粒导入目标细胞。

应用领域：1. 细胞自噬研究：通过监测LC3荧光信号的变化，评估自噬活性、自噬体形成速率及自噬溶酶体融合过程。

2. 药物筛选：利用LC3荧光质粒评估药物对细胞自噬的影响，筛选具有调节自噬功能的候选药物。

3. 疾病模型：在神经退行性疾病、肿瘤等自噬相关疾病模型中，研究自噬的病理作用及潜在治疗靶点。

3️⃣ 实验指南与注意事项实验准备：1. 确保细胞状态良好，避免转染前细胞密度过高或过低。

2. 选择合适的转染试剂，根据细胞类型调整转染条件。

实验操作：1. 转染后，根据荧光蛋白的表达时间，选择合适的时间点进行成像。

2. 使用共聚焦显微镜或流式细胞仪检测LC3荧光信号，注意调整成像参数以获得最佳图像质量。

3. 结合其他细胞生物学技术（如Western Blotting、透射电镜等）进行综合分析。

注意事项：1. 避免长时间暴露于强光下，以免荧光淬灭。