与番茄抗叶霉病基因Cf
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番茄抗叶霉病的生理指标分析作者:刘冠赵婷婷薛东齐杨欢欢姜景彬李景富许向阳来源:《江苏农业科学》2016年第09期摘要:为明确番茄叶霉病过敏性坏死反应中的活性氧代谢、细胞保护酶和激素含量的变化,通过对番茄叶霉病抗病材料HN19(含Cf-19)、HN42(含Cf-11)、Ontrio7516(含Cf-5)和感病材料 Money Maker(含Cf-0)分别接种叶霉菌生理小种1.2.3.4。
结果表明:在接种72 h后,不亲和互作体系(抗病材料)出现坏死斑,番茄叶片活性氧的积累在接种后3、15 d 出现2个峰值,而亲和互作体系(感病材料)只在接种后5 d产生1个峰值。
不亲和互作体系中,第1次活性氧含量的高峰伴随着过敏性坏死反应(HR),表明高浓度的活性氧会导致细胞死亡。
通过对亲和互作及非亲和互作体系中的细胞保护酶系(超氧化物歧化酶、过氧化物酶、过氧化氢酶)活性及激素(乙烯、水杨酸、脱落酸)含量分析发现,含有不同Cf基因的番茄品种在活性氧的积累、细胞保护酶活性及激素含量上存在相对统一的变化规律。
关键词:番茄叶霉病;过敏性坏死;ROS;保护酶系;激素中图分类号: S436.412.1+9 文献标志码: A文章编号:1002-1302(2016)09-0133-05番茄(Solanum lycopersicum)是世界范围内分布的主要蔬菜作物,据联合国粮农组织统计,2012年全球番茄产量1.62亿t,创造了550亿美元的净利润[1]。
番茄叶霉病(Cladosporium fulvum)是番茄保护地生产中的主要病害,被侵染后既降低番茄的产量,又影响果实的品质,有时甚至使植株死亡[2]。
番茄Cf抗病基因介导对叶霉菌的抗性遵循基因对基因假说,抗病基因Cf与无毒基因Avr的相互作用使得抗病品种对生理小种产生特异性识别。
有研究表明,Avr9/Cf-9和Avr4/Cf-4介导番茄产生的过敏坏死在产生速度、强度和组织特异性等方面均存在显著差异[3]。
与番茄抗叶霉病基因Cf—16连锁的分子标记筛选及种质资源鉴定摘要:以携带抗叶霉病基因Cf-16的番茄(Lycopersicon esculentum)材料Ontario 7816为母本,感病材料07880为父本配置杂交,以亲本及其F2代分离群体为研究材料,采用SSR和AFLP技术筛选与抗叶霉病基因Cf-16连锁的分子标记。
结果表明,鉴定到与Cf-16基因连锁的SSR标记1个、AFLP标记5个,并将AFLP 标记E-ACA/M-TCG219转化为AFLP-SCAR标记并应用于种质资源筛选,筛选出3份携带Cf-16基因的番茄材料,为抗叶霉病育种提供了基础。
关键词:番茄(Lycopersicon esculentum);叶霉病;Cf-16基因;SSR标记;AFLP-SCAR标记叶霉病是由褐孢霉属(Fulvia)褐孢霉[Fulvia fulva (Cooke)Cif.]引起的番茄(Lycopersicon esculentum)主要病害之一,既影响番茄产量又影响果实品质,从而造成经济损失[1]。
选育和推广抗病品种是解决番茄叶霉病最为经济、有效和环保的途径之一。
但是防治番茄叶霉病是十分困难的,主要是由于番茄叶霉病病原菌的生理小种分化十分迅速,育成含有新的Cf抗病基因的栽培品种不久后,就会分化出侵染该基因的新致病生理小种。
目前,国内番茄抗叶霉病育种中普遍应用的Cf-4抗病基因已被侵染,侵染Cf-9抗病基因的生理小种在华北地区也被检测出来[2]。
已报道至少有24个抗叶霉病基因被发现,它们能够克服不同的叶霉病生理小种[3],因而利用新的、具有较高抗性的Cf抗病基因将是我国叶霉病抗病育种的重要目标之一。
番茄与叶霉病病原菌的互作遵循“gene-for-gene”学说[4],开展番茄抗叶霉病育种工作要根据当地叶霉病病原菌生理小种的分化情况,利用抗病基因对不同生理小种的抗病性进行鉴定。
传统的人工接种抗病性鉴定不仅需要较长的时间和花费较多的人力物力,直接影响多抗性新材料及新品种的选育进程,而且还易受环境条件、接种技术等影响,从而导致鉴定结果不稳定。
与番茄抗叶霉病基因Cf—16连锁的分子标记筛选及种质资源鉴定摘要:以携带抗叶霉病基因Cf-16的番茄(Lycopersicon esculentum)材料Ontario 7816为母本,感病材料07880为父本配置杂交,以亲本及其F2代分离群体为研究材料,采用SSR和AFLP技术筛选与抗叶霉病基因Cf-16连锁的分子标记。
结果表明,鉴定到与Cf-16基因连锁的SSR标记1个、AFLP标记5个,并将AFLP 标记E-ACA/M-TCG219转化为AFLP-SCAR标记并应用于种质资源筛选,筛选出3份携带Cf-16基因的番茄材料,为抗叶霉病育种提供了基础。
关键词:番茄(Lycopersicon esculentum);叶霉病;Cf-16基因;SSR标记;AFLP-SCAR标记叶霉病是由褐孢霉属(Fulvia)褐孢霉[Fulvia fulva (Cooke)Cif.]引起的番茄(Lycopersicon esculentum)主要病害之一,既影响番茄产量又影响果实品质,从而造成经济损失[1]。
选育和推广抗病品种是解决番茄叶霉病最为经济、有效和环保的途径之一。
但是防治番茄叶霉病是十分困难的,主要是由于番茄叶霉病病原菌的生理小种分化十分迅速,育成含有新的Cf抗病基因的栽培品种不久后,就会分化出侵染该基因的新致病生理小种。
目前,国内番茄抗叶霉病育种中普遍应用的Cf-4抗病基因已被侵染,侵染Cf-9抗病基因的生理小种在华北地区也被检测出来[2]。
已报道至少有24个抗叶霉病基因被发现,它们能够克服不同的叶霉病生理小种[3],因而利用新的、具有较高抗性的Cf抗病基因将是我国叶霉病抗病育种的重要目标之一。
番茄与叶霉病病原菌的互作遵循“gene-for-gene”学说[4],开展番茄抗叶霉病育种工作要根据当地叶霉病病原菌生理小种的分化情况,利用抗病基因对不同生理小种的抗病性进行鉴定。
传统的人工接种抗病性鉴定不仅需要较长的时间和花费较多的人力物力,直接影响多抗性新材料及新品种的选育进程,而且还易受环境条件、接种技术等影响,从而导致鉴定结果不稳定。
番茄抗病基因育种研究进展
樊佩知;王志敏
【期刊名称】《中国农业文摘(农业工程)》
【年(卷),期】2024(36)2
【摘要】【目的】本文旨在研究番茄抗病基因的最新进展,探讨番茄抗病基因的分子育种应用,为番茄抗病育种提供有效策略。
【方法】采用文献研究法,选取番茄叶霉病、晚疫病、枯萎病、黄化曲叶病毒病这4种常见病害,通过梳理和分析国内外有关文献,提出了我国番茄抗病基因的分子育种建议。
【结果】研究发现,番茄抗病基因的分子育种应用可有效提高番茄的抗病能力,减少化学药剂的使用,保护生态环境;番茄抗病育种是当前番茄种业发展的重要课题,虽然我国已经取得了一定的进展,但仍面临许多挑战。
【结论】番茄抗病基因在番茄抗病育种中具有广阔的应用前景,未来应继续关注番茄抗病基因的育种研究。
【总页数】7页(P3-9)
【作者】樊佩知;王志敏
【作者单位】西南大学园艺园林学院
【正文语种】中文
【中图分类】S64
【相关文献】
1.番茄抗病基因工程育种研究进展
2.番茄抗病基因工程育种研究进展
3.大豆抗胞囊线虫的抗病育种及抗病基因的研究进展
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安徽农学通报2023年09期病原菌·有害生物·动植物防护作者简介牛义岭(1993—),女,硕士,农艺师,从事作物栽培技术推广工作。
收稿日期2022-11-25番茄抗叶霉病分子机制研究进展牛义岭商丽敏(安达市农业技术推广中心,黑龙江安达151400)摘要叶霉病是番茄常见病害之一,发病后不仅会阻碍植株生长,果实品质和产量也显著下降。
抗病育种依然是防治该病害最有效的方法。
在与叶霉病的长期互作过程中,番茄已经进化出一系列抗性机制以抵抗病原菌入侵。
在分子水平上关于番茄对叶霉病抗性机制的研究已有很多,主要集中在Cf 抗性基因的克隆及抗病机制分析等。
本文主要综述了番茄叶霉病的生理小种、抗病基因结构和功能等分子抗性机制的研究进展,以期为番茄抗病育种提供一定的参考。
关键词番茄;叶霉病;分子抗性机制中图分类号S436.412文献标识码A文章编号1007-7731(2023)09-0137-03叶霉病又称黑毛病,病原菌是半知菌亚门真菌,其定名为黄枝孢菌。
当植株被侵染后,发病快、蔓延快,若防控不到位,很可能造成绝产。
该病害虽然可以侵染植株的整株器官,但主要危害叶片,当环境适宜或病情严重时也会危害茎、花和果。
植株被病菌侵染后,光合能力减弱,养分汲取和积累下降。
叶片最先出现病症,主要表现为叶表面出现椭圆形或不规则的淡黄色病斑,叶背面长出白色霉层,为病原菌的菌丝体,随着病情加重,白色霉层褐变直至变为黑褐色绒毛状,即为病原菌的分生孢子、分生孢子梗。
在高温高湿环境下,发病叶片正面也会长出黑霉。
1番茄叶霉病菌的侵染机制番茄叶霉病菌的侵染能否成功取决于与寄主植株的亲和性。
番茄叶霉病菌的侵染机制包括2种,①与抗病番茄品种的非亲和互作类型。
在适宜的温湿度条件下,病原菌分生孢子落在叶片上,萌发形成芽管,而后生长形成菌丝,菌丝通过叶片气孔向维管组织生长、吸收营养。
在这一过程中会激发寄主对病原菌的防御反应,防御反应启动后一方面部分菌丝则不能穿过气孔或穿过气孔后会生长停止,另一方面菌丝肿胀弯曲,无法在叶片内生长蔓延,因此病菌菌丝只存在于侵染部位附近区域内,形成坏死病斑,这一过程也被称为过敏反应[1]。
番茄资源对叶霉病的抗性鉴定和SSR标记遗传变异分析
许向阳;孟凡娟;李景富
【期刊名称】《植物病理学报》
【年(卷),期】2007(37)5
【摘要】对62份番茄种质资源进行了抗番茄叶霉病鉴定,共筛选出抗病材料17份,其中对全部生理小种(1.2.3、1.2、2.3、1.2.3.4、1.2.4)均表现抗病或免疫的材料9份;抗3个生理小种的材料4份;抗2个生理小种的材料2份;抗4个生理小种的材料2份。
并应用SSR标记技术对62份种质资源进行了遗传多样性分析,50对SSR引物中筛选出11对多态性明显、条带清晰、反应稳定的引物,共扩增出94条谱带,平均每个引物扩增出8.55条带,多态性条带比例达63.94%,遗传相似系数在0-1之间,表现出丰富的遗传多态性,可将番茄野生种和栽培种分开,反映了种间的遗传差异。
【总页数】8页(P520-527)
【关键词】番茄;叶霉病;抗病性;SSR
【作者】许向阳;孟凡娟;李景富
【作者单位】东北农业大学园艺学院;东北林业大学生命科学学院
【正文语种】中文
【中图分类】S436.412.19
【相关文献】
1.番茄抗叶霉病基因Cf-10和Cf-16的遗传分析及SSR标记 [J], 李宁;许向阳;姜景彬;李景富
2.番茄叶霉病抗性鉴定与遗传分析 [J], 王晓艳;汪炳良;郑积荣
3.与番茄抗叶霉病基因Cf-16连锁的分子标记筛选及种质资源鉴定 [J], 李宁;姚明华;王飞;许向阳;李景富
4.加工番茄叶霉病的防治药剂筛选及其品种抗性鉴定 [J], 司天桃;张国强;薛琳;杨德松
5.番茄叶霉病抗性基因Cf-5的CAPS标记建立 [J], 于拴仓;柴敏;郑晓鹰;姜立纲因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
与番茄抗叶霉病基因Cf摘要:以携带抗叶霉病基因cf-16的番茄(lycopersicon esculentum)材料ontario 7816为母本,感病材料07880为父本配置杂交,以亲本及其f2代分离群体为研究材料,采用ssr和aflp 技术筛选与抗叶霉病基因cf-16连锁的分子标记。
结果表明,鉴定到与cf-16基因连锁的ssr标记1个、aflp标记5个,并将aflp 标记e-aca/m-tcg219转化为aflp-scar标记并应用于种质资源筛选,筛选出3份携带cf-16基因的番茄材料,为抗叶霉病育种提供了基础。
关键词:番茄(lycopersicon esculentum);叶霉病;cf-16基因;ssr标记;aflp-scar标记中图分类号:s641.2 文献标识码:a 文章编号:0439-8114(2013)09-2066-04叶霉病是由褐孢霉属(fulvia)褐孢霉[fulvia fulva (cooke)cif.]引起的番茄(lycopersicon esculentum)主要病害之一,既影响番茄产量又影响果实品质,从而造成经济损失[1]。
选育和推广抗病品种是解决番茄叶霉病最为经济、有效和环保的途径之一。
但是防治番茄叶霉病是十分困难的,主要是由于番茄叶霉病病原菌的生理小种分化十分迅速,育成含有新的cf抗病基因的栽培品种不久后,就会分化出侵染该基因的新致病生理小种。
目前,国内番茄抗叶霉病育种中普遍应用的cf-4抗病基因已被侵染,侵染cf-9抗病基因的生理小种在华北地区也被检测出来[2]。
已报道至少有24个抗叶霉病基因被发现,它们能够克服不同的叶霉病生理小种[3],因而利用新的、具有较高抗性的cf抗病基因将是我国叶霉病抗病育种的重要目标之一。
番茄与叶霉病病原菌的互作遵循“gene-for-gene”学说[4],开展番茄抗叶霉病育种工作要根据当地叶霉病病原菌生理小种的分化情况,利用抗病基因对不同生理小种的抗病性进行鉴定。
传统的人工接种抗病性鉴定不仅需要较长的时间和花费较多的人力物力,直接影响多抗性新材料及新品种的选育进程,而且还易受环境条件、接种技术等影响,从而导致鉴定结果不稳定。
抗病育种是一个长期策略,合理利用抗病种质资源保持持久抗性十分重要。
分子标记技术为快速筛选鉴定抗病基因提供了有力手段,利用分子标记技术对番茄叶霉病抗病基因的研究方面已取得较大进展,cf-4和cf-9基因紧密连锁位于1号染色体短臂的milky way位点;cf-2和cf-5基因紧密连锁位于6号染色体短臂,cf-6基因同样位于6号染色体短臂;cf-11、cf-12和cf-19基因也分别被定位于染色体上[5-10]。
本研究应用ssr和aflp标记方法对cf-16基因进行分子标记研究,并将获得的与cf-16基因连锁的aflp标记转化为scar标记,从而为开展cf-16基因的相关分子标记辅助育种和基因克隆奠定基础。
1 材料与方法1.1 材料番茄抗叶霉病材料ontario 7816(含cf-16基因,不含其他抗叶霉病基因)由北京市农林科学院蔬菜研究中心提供;番茄感病亲本材料07880(不含任何抗叶霉病基因),亲本杂交(ontario 7816为母本,07880为父本)的f1代,f1代自交获得的f2代分离群体,番茄感叶霉病通用对照品种money maker(含cf-0基因),番茄叶霉病优势生理小种1.2.3.4[11]以及64份番茄自交系种质均由东北农业大学番茄研究所收集、分离和鉴定。
1.2 方法1.2.1 接种方法及病情分级标准接种采用喷雾接种法[10]。
接种苗龄为4片真叶期,浓度为107个孢子/ml。
接种后3 d内保持相对湿度100%,温度22~25 ℃,使叶霉菌进行繁殖,3 d后相对湿度降至80%保持11 d,接种14 d后调查发病情况。
单株分级标准:0级——无症状;1级——接种叶有直径1 mm的白斑或坏死斑;3级——接种叶有直径2~3 mm的黄化斑,叶背面有少量白色霉状物;5级——接种叶有直径5~8 mm的黄化斑,叶背面有许多白色霉状物;7级——接种叶有直径5~8 mm的黄化斑,叶背面有黑色霉状物,同时上部叶片也有黑色霉状物;9级——接种叶病斑上有大量孢子,上部叶片也有孢子形成。
1.2.2 叶片基因组dna的提取及抗、感池的建立叶片基因组dna 的提取采用ctab法[12],以1.0%琼脂糖凝胶电泳检测dna的完整性,分光光度计测定dna的浓度,调整各样品dna浓度为50 ng/μl。
从f2代分离群体中随机选取10株抗病植株和感病植株,参照michelmore等[13]的混合分组分析法,建立抗病池和感病池,各取等量的dna混合,对在双亲间表现多态性的引物进行进一步的筛选。
1.2.5 aflp-scar标记的转化用灭菌的手术刀片切割目标差异条带,溶解于30 μl ddh2o中,37 ℃过夜,12 000 r/min离心10 s,以上清液为模板进行pcr扩增,扩增体系同选择性扩增体系。
对扩增产物的目标片段进行回收,克隆于peasy-t1载体,转化后测序。
根据测序结果及ecorⅰ和mseⅰ核心引物序列设计scar引物,并对两亲本、混合基因池及f2代单株进行pcr扩增。
2 结果与分析2.1 人工接种抗性鉴定及遗传分析2.2 ssr分析2.3 aflp分析2.4 aflp-scar标记的转化2.5 种质资源鉴定对64份番茄自交系种质进行人工接种鉴定,共筛选出16份抗叶霉病材料,应用获得的aflp-scar引物进行分子鉴定(表1),共鉴定出3份含有cf-16基因的抗叶霉病番茄材料分子标记检测和人工接种鉴定的结果完全吻合,说明获得的分子标记是可靠的,不仅在分子水平上验证了分子标记的实用性与准确性,而且完全可以在番茄抗叶霉病育种中应用。
3 小结与讨论20世纪30年代以来,加拿大和美国就开始番茄叶霉病抗病育种研究,并从栽培番茄及野生番茄中筛选出多个抗源应用于番茄抗病育种。
目前,国内育成的抗叶霉病番茄品种应用的是cf-4和cf-9基因。
从国内各地区关于番茄叶霉病病原菌生理小种分化的监测结果来看,能够侵染cf-4基因的生理小种1.2.3.4是我国大部分地区的优势生理小种,cf-4基因已经丧失抗性,并发现侵染cf-9基因的生理小种1.2.3.4.9[2]。
利用具有较高抗性的基因是我国叶霉病抗病育种的重要目标。
抗病育种是一个长期工作,因而提前对较高抗性、且尚未应用的叶霉病抗病基因cf-16进行研究,建立分子标记辅助选择体系,在时间上获得主动权,为应对新分化的致病性更强的番茄叶霉病生理小种做好准备是十分重要的工作。
分子标记技术的应用使我们能够快速地进行染色体定位和分子标记辅助选择。
应用ssr标记方法,根据与cf-16基因连锁的ssr 标记tom144-145,将cf-16基因定位于11号染色体,与kanwar等[17]通过经典遗传定位的结果相同。
aflp标记技术同样广泛应用于植物的遗传多样性分析、分子标记辅助选择等。
本研究中共获得5个与cf-16基因连锁的标记,其中标记e-aca/m-tcg219与目标基因的遗传距离为4.7 cm,小于5.0 cm,能够应用于分子标记辅助选择。
但是,aflp标记方法的操作比较复杂,并且需要经过酶切、连接等步骤,操作昂贵,不适于大规模及大群体的选择使用,因此,本研究试图将aflp标记转化为以pcr为基础的scar标记。
根据测序后获得的序列信息,将e-aca/m-tcg219标记转化为scar标记,经f2分离群体人工接种鉴定验证,吻合率为90%以上,表明筛选出的aflp-scar标记能够应用于分子标记辅助选择育种。
参考文献:[1] higgins v j, hollands j. prevalent races of cladosporium fulvum in southern ontario and their benomyl sensitivity[j]. canadian journal of plant pathology,1987,9(1):32-35.[2] 柴敏,于拴仓,丁云花,等.北京地区番茄叶霉病菌致病性分化新动态[j].华北农学报,2005,20(2):97-100.[3] kerr e a, bailey d l. resistance to cladosporium fulvum cke obtained from wild species of tomato[j]. canadian journal botany,1964,42(11):1541-1554.[4] joosten m, de w p. the tomato-cladosporium fulvum interaction: a versatile experimental system to study plant-pathogen interactions[j]. annual review of phytopathology,1999,37(1):335-367.[5] dickinson m j, jones d a, jones j d. close linkage between the cf-2/cf-5 and mi resistance loci in tomato[j]. molecular plant microbe interact,1993,6(3):341-347. [6] grushetskaya z e,lemesh v a, poliksenova v d,et al. mapping of the cf-6 tomato leaf mould resistance locus using ssr markers[j]. russian journal of genetics,2007(82):7-11.[7] haanstra j p w, laug?魪 r, meijer-dekens f,et al.the cf-ecp2 gene is linked to, but not part of, the cf-4/cf-9 cluster on the short arm of chromosome 1 in tomato[j]. molecular and general genetics,1999,262(4):839-845. [8] 赵婷婷,宋宁宁,姜景彬,等.番茄抗叶霉病基因cf12的分子标记筛选及种质资源鉴定[j]. 园艺学报,2012,39(5):985-991.[9] 许向阳.番茄叶霉病抗病基因cf-11、cf-19的分子标记研究[d].哈尔滨:东北农业大学,2007.[10] wang a, meng f, xu x, et al. development of molecular markers linked to cladosporium fulvum resistant gene cf-6 in tomato by rapd and ssr methods[j]. hortscience,2007, 42(1):11-15.[11] 李春霞,许向阳,康立功.2006-2007年东北三省番茄叶霉病菌生理小种变异的监测[j]. 中国蔬菜,2009(2):42-45. [12] murray m g, thompson f w. rapid isolation of high molecular weight plant dna[j]. nucleic acids research,1980,8(19):4321-4326.[13] michelmore r w, paran i, kesseli r v. identification of markers linked to disease-resistance genes by bulked segregant analysis: a rapid method to detect markers in specific genomic regions by using segregating populations[j]. proceedings of the national academy of sciences,1991,88(21):9828-9832.[14] vos p,hogers r,bleeker m,et al. aflp: a new technique for dna fingerprinting[j]. nucleic acids research,1995,23(21):4407-4414.[15] lincoln s, daly m, lander e. constructing genetic maps with mapmaker/exp 3.0[m]. 3rd ed. massachusetts:whitehead institute technical report,1992.[16] suliman-pollatschek s, kashkush k, shats h, et al. generation and mapping of aflp, ssrs and snps in lycopersicon esculentum[j]. cellular & molecular biology letters,2002,7(2a):583-598.[17] kanwar j s, kerr e a, hamey p m. linkage of cf-12 to cf-24 genes for resistance to tomato leaf mold,cladosporium fulvum cke[j]. tomato genetics cooperative report,1980(30):22-23.。