下载文档原格式
实验八家兔主动脉神经放电一、实验目的1、学习颈部脉神经及血管分离术2、学习在体主动脉神经冲动的引导方法3、观察主动脉神经放电特点及药物对神经冲动发放的影响二、实验原理1、主动脉神经(又称减压神经)是主动脉弓压力感受器的传入神经。
神经传入冲动的频率，在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相对稳定，即减压反射。
2、心电图导联心脏除极，复极过程中产生的心电向量，通过容积导电传至身体各部，并产生电位差，将两电极置于人体的任何两点与心电图机连接，就可描记出心电图，这种放置电极并与心电图机连接的线路，称为心电图导联（lead）。
常用的导联如下：（一）标准导联亦称双极肢体导联，反映两个肢体之间的电位差。
⏹Ⅰ导联将左上肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左上肢（L）与右上肢（r ）的电位差。
当l 的电位高于r 时，便描记出一个向上的波形；当r 的电位高于l 时，则描记出一个向下的波形。
⏹Ⅱ导联将左下肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左下肢（F）与右上肢（r ）的电位差。
当f 的电位高于r 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。
Ⅲ导联：将左下肢与心电图机的正极端相连，左上肢电极与负极端相联，反映左下肢（F）与左上肢（l ）的电位差，当f 的电位高于l 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。
3、心电图①、P波：心房除极化②、QRS：心室去极化③、T波：心室复极化T > 1/10R④、P-R间期：< 0.20s （60-90次/分）兴奋通过房室交界和房室束传导所需的时间⑤、S-T段：< 0.05 ~ 0.1 mV 心室肌细胞均处于复极化缓慢进行阶段，各部分之间没有电位差。
⑥、u波：T后0.02 ~ 0.04s，与T波方向一致，蒲肯野细胞复极化。
三、材料与方法（一）动物与器材⏹家兔⏹兔体手术台、RM6240计算机采集系统、音箱、常用手术器械、引导电极、止血钳、注射器、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、肾上腺素（1∶5000）、乙酰胆碱（1∶10000）、石蜡油、棉花。
家兔颈总动脉插管实验报告家兔颈部神经颈总动脉的分离以及动脉的插管手术家兔颈部神经颈总动脉的分离以及动脉的插管手术篇二:家兔动脉血压的神经体液调节实验报告[目的与要求]1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法2观察神经,体液因素对心血管活动的影响[基本原理]在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来[动物与器材]家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000)【方法与步骤】1、实验仪器的准备打开计算机采集系统，接通压力传感器。
从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。
2、连通液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。
上侧管供制压时排除管内空气使用。
先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。
然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有气泡)。
继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。
一、实验目的1. 掌握家兔颈动脉插管操作技术。
2. 观察并记录家兔颈动脉血液动力学指标的变化。
3. 分析颈动脉插管对家兔生理功能的影响。
二、实验原理颈动脉插管是一种常用的实验操作技术，通过将导管插入家兔颈动脉，可以直接采集血液样本，测定动脉血压、血氧饱和度等指标。
本实验旨在通过颈动脉插管，观察并记录家兔颈动脉血液动力学指标的变化，分析颈动脉插管对家兔生理功能的影响。
三、实验材料1. 实验动物：健康家兔一只（体重2.5-3.0kg）。
2. 实验器材：手术器械一套、颈动脉插管、动脉夹、生理盐水、肝素生理盐水、注射器、血压计、心电监护仪等。
3. 实验试剂：1%普鲁卡因、生理盐水、肝素钠等。
四、实验步骤1. 家兔麻醉：将家兔放入麻醉箱中，吸入1%异氟醚麻醉，待家兔意识丧失后，将其固定在手术台上。
2. 颈部皮肤消毒：用碘伏对家兔颈部皮肤进行消毒。
3. 颈部切开：在颈部正中做一长约3cm的切口，钝性分离皮下组织，暴露气管。
4. 颈动脉分离：用镊子钝性分离颈动脉，并用动脉夹夹住近心端，防止血液流出。
5. 颈动脉插管：将颈动脉插管插入颈动脉，插入深度约2cm，用动脉夹固定插管。
6. 生理盐水冲洗：用肝素生理盐水冲洗插管，确保插管通畅。
7. 血液采集：抽取动脉血液，测定动脉血压、血氧饱和度等指标。
8. 实验结束：将家兔颈动脉插管拔除，缝合颈部切口，观察家兔恢复情况。
五、实验结果1. 家兔颈动脉插管操作顺利，插管成功。
2. 家兔颈动脉血液动力学指标如下：- 动脉血压：插管前后血压无明显变化。
- 血氧饱和度：插管前后血氧饱和度无明显变化。
3. 家兔恢复情况良好，无明显并发症。
六、实验讨论1. 家兔颈动脉插管是一种常用的实验操作技术，可广泛应用于生理学、药理学等研究领域。
2. 本实验结果表明，家兔颈动脉插管操作简便，插管成功率高，对家兔生理功能影响较小。
3. 颈动脉插管有助于直接采集血液样本，测定动脉血压、血氧饱和度等指标，为实验研究提供准确的数据支持。
