双荧光素酶报告基因

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双荧光素酶报告基因

启动子活性分析(双荧光素酶报告基因实验)

一、实验目的:分析启动子活性

二、实验原理:荧光素酶报告基因的活性用Dual-Luciferase?Reporter Assay

System(Promega)试剂盒来检测。利用单通道多标记荧光检测仪测定荧

光素酶活性。在双荧光素酶系统中,除了用于检测启动子活性的萤火虫

荧光素酶外,另外一种组成型表达的Renilla荧光素酶质粒PRL-TK也被

同时转染入细胞内作为内参。

三、实验材料:Dual-Luciferase?Reporter Assay System(Promega)试剂盒,

PBS,细胞裂解液,96孔,

四、实验设备:单通道多标记荧光检测仪

五、实验方法及步骤:

1)启动子萤光素酶报告载体与共转染质粒按照质量等比例、总量0.8μg的原则转染细胞,36h后收获细胞;

2)96孔板吸弃细胞培养基,PBS冲洗细胞一次,加入1×PLB细胞裂解液20μl,置于室温震荡裂解20min;

3)轻轻吹打细胞,取10μl细胞裂解液加入50μl Luciferase

Assay Reagent,轻轻震荡混匀,立刻置于单通道多标记荧光检测仪中测定Firefly Luciferase活性;

4)读数后立即加入50μl Stop & Glo?Reagent轻轻震荡混匀,读取Renilla Luciferase活性;

5)所得的结果为各个实验样品的Firefly Luciferase活性与Renilla荧光素酶活性的比值。每个实验组重复3-4孔,整个实验独立重复3次。实验结 果均为3次独立的实验结果的平均值。所有的结果均以平均值±标准差

(mean±S.D.)表示。

六、注意事项

1.做好对照。

2.多做几个复孔,求平均值。

七、补充知识点

双荧光素酶报告基因实验

1.试剂盒:Dual-Glo TM Luciferase Aassy System(promega

E2920)组成如下:? Dual-Glo?萤光素酶缓冲液

Dual-Glo?萤光素酶底物(冻干粉)

Dual-Glo?Stop-Glo?缓冲液

Dual-Glo?Stop-Glo?底物

2.报告基因的作用

细胞信号转导途径

启动子/增强子

受体结合

病毒/细胞相互作用

转录因子

药物诱导作用或“效果”

3.原理

–制备含有luc/ R luc的DNA

–转染

–提供刺激

–测量荧光

–用海肾萤光素酶作对照归一实验变化

归一反应=实验的(萤火虫萤光素酶)/ 对照的(海肾萤光素酶)

4.载体- 萤火虫萤光素酶载体

pGL3 家族

pGL3-Basic pGL3-Control

pGL3-Enhancer

pGL3-Promoter

海肾萤光素酶报告基因载体

pRL-TK

5.试剂制备

–将Dual-Glo? 萤光素酶缓冲液倒入Dual-Glo? 萤光素酶底物中,

Dual-Glo? 萤光素酶试剂,分装后-70℃保存,避免反复冻融

–用Dual-Glo? S top &Glo? 缓冲液按1:100 稀释Dual-Glo? Stop

&Glo? 底物(现用现配)

–所有的缓冲液存于室温, 所有的底物存于–20°C

两步加入试剂:加,读,加,读

6.检测步骤:

实验前,将Dual-Glo? 萤光素酶试剂平衡到室温

1.确认使用的细胞板可以用于荧光检测

2.测萤火虫荧光素酶活性:向待测细胞板每孔中加入与培养基等体积的

Dual-Glo? 萤光素酶试剂,混匀。例如96孔板,一般会加入75ul与孔中培养基等体积的试剂。

3.孵育至少10分钟,测萤火虫荧光值。荧光值在加入Dual-Glo?

萤光素酶试

剂后2小时之内较稳定。

4.测海肾荧光素酶活性:向待测细胞板每孔中加入与开始的培养基等体积的

Dual-Glo? Stop &Glo?试剂,混匀。与第二步类似,若用的是96孔板,则加入75ul试剂。

注意:Dual-Glo? Stop &Glo?试剂要在加入Dual-Glo? 萤光素酶试剂后4小时之内加入。

5.孵育至少10分钟,测海肾的荧光值。荧光值在加入Dual-Glo?

Stop &Glo? 试剂后2小时之内较稳定。

6.计算结果=实验的(萤火虫萤光素酶)/ 对照的(海肾萤光素酶)