实验26 呼吸运动的调节以及呼吸功能不全和实验性肺水肿
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呼吸运动的调节实验报告
实验目的,通过实验观察呼吸运动对人体生理的调节作用,了解呼吸运动对身
体的影响。
实验材料,实验室、呼吸运动监测仪器、实验人员。
实验步骤:
1. 实验前,实验人员需放松身心,保持心情愉快,以减少外界因素对实验结果
的影响。
2. 实验人员在实验室内进行呼吸运动监测,监测仪器记录呼吸频率、深度和节
律等数据。
3. 实验人员进行不同强度的运动,如快走、慢跑等,监测呼吸运动的变化。
4. 实验人员进行深呼吸、浅呼吸等不同呼吸方式,观察呼吸运动对身体的影响。
实验结果:
1. 在进行不同强度的运动后,呼吸频率和深度明显增加,呼吸节律也发生变化。
2. 深呼吸能够增加氧气的摄入量,使人感到清新、振奋,有助于提高工作效率。
3. 浅呼吸则导致氧气摄入量减少,容易出现头晕、乏力等症状。
实验结论:
通过本次实验,我们得出了以下结论:
1. 呼吸运动对人体生理具有重要调节作用,能够根据身体需要进行自我调节。
2. 适当的运动能够增加呼吸频率和深度,提高氧气摄入量,有利于身体健康。
3. 合理的呼吸方式对身体健康至关重要,应当注意培养良好的呼吸习惯。
实验意义:
本次实验结果对于加深我们对呼吸运动调节作用的认识具有重要意义,对于提高人们的健康意识,改善生活方式,具有积极的推动作用。
结语:
通过本次实验,我们深刻认识到呼吸运动对人体生理的重要调节作用,希望通过这一实验结果,能够引起更多人对呼吸运动的关注,树立正确的健康观念,改善生活方式,提高生活质量。
愿我们的实验成果能够给大家带来启发和帮助,谢谢!。
呼吸运动调节实验报告
目录
1. 实验目的
1.1 呼吸运动调节的意义
1.2 实验原理
1.2.1 正常呼吸过程
1.2.2 呼吸调节机制
1.2.3 实验设备
1.2.4 实验步骤
1.3 实验结果分析
1.3.1 实验现象观察
1.3.2 数据收集与分析
1.4 实验结论及意义
1. 实验目的
开展呼吸运动调节实验,探究呼吸运动对人体的重要性及呼吸调节的相关机制。
1.1 呼吸运动调节的意义
研究呼吸运动调节的意义,有助于更深刻地理解呼吸系统在维持人体正常功能中的重要性。
1.2 实验原理
1.2.1 正常呼吸过程
通过呼吸运动,人体吸入氧气,排出二氧化碳,完成气体交换,维持细胞健康。
1.2.2 呼吸调节机制
呼吸调节包括神经调节和化学调节两种主要机制,分别负责响应不同的生理需求。
1.2.3 实验设备
实验中使用的设备包括呼吸频率计、肺活量计等,用于记录和测量呼
吸运动数据。
1.2.4 实验步骤
详细介绍实验中的步骤,包括准备实验材料、进行实验操作等。
1.3 实验结果分析
1.3.1 实验现象观察
观察实验过程中呼吸运动的变化,记录并分析相关数据。
1.3.2 数据收集与分析
对实验结果进行数据收集和分析,探讨呼吸运动对人体的影响。
1.4 实验结论及意义
总结实验结果,阐述呼吸运动调节对人体健康和生理功能的重要性。
呼吸运动调节与急性呼吸功能不全一、实验目的:1、观察不同因素对呼吸运动的影响2、复制呼吸功能不全的动物模型3、观察呼吸功能不全的动物表现二、实验动物:家兔三、实验方法:1、取兔→称重→麻醉(20%乌拉坦5ml/kg)→固定(仰卧背位交叉固定)2、手术:颈部正中剪毛,沿正中线切开皮肤,剪开筋膜,钝性分离肌肉,暴露气管,穿单棉线备用,在气管第3~4软骨环之间作倒“T”型切口,插入气管插管并固定,连接张力换能器, 气管插管侧支橡皮管用“再”字夹夹住 (调节口径以便于观察呼吸曲线)3、微机操作:打开生物信号处理系统﹑开机→Medlab6→“文件”中“打开配置”→C盘→实验配置→呼吸张力模块4、观察项目:理化因素的影响观察项目频率(次/分) 幅度曲线变化前后前后正常缺氧增大无效腔3%乳酸0.6ml/只25%尼克刹米0.2ml/kg不全窒息(夹闭侧管径一半)完全窒息(完全夹闭侧管径)5、制备肺水肿:兔头抬高30度,20%葡萄糖溶液2ml匀速滴入气管,5分钟滴完后仍维持30度角放置5分钟,观察家兔口唇黏膜颜色,呼吸频率和幅度的变化,然后在气管插管的下缘用单棉线结扎气管,带动物死亡后,开胸,完好的驱除肺脏,观察其大体改变,于气管隆突上方1cm处结扎,剪除结扎线上方的气管,在天平上称取重量,计算肺系数。
6、数据处理:肺系数=肺湿重(g)/体重(kg),正常值:4.5-5.5g/kg四、实验结果:见观察项目表格五、实验讨论:1、缺氧→PaO2↓→颈A体、主A体外周化学感受器受刺激↓,经窦N、迷走N 传入延髓呼吸中枢→呼吸中枢(+)→反射性呼吸加深加快→呼吸频率、幅度均↑。
2、增大无效腔:通气阻力↑→通气障碍死腔样通气↑→有效肺泡通气量↓→换气障碍→PaO2↓PaCO2↑(1)PaO2↓→刺激颈A体、主A体外周化学感受器,经窦N、迷走N传入延髓呼吸中枢→呼吸中枢(+)→反射性呼吸加深加快→呼吸频率、幅度均↑。
(2)PaCO2↑→①使外周化学感受器(+),经窦N、迷走N传入延髓呼吸中枢→呼吸中枢(+)→反射性呼吸加深加快→呼吸频率、幅度均↑。
昆明医科大学机能学实验报告实验日期:2016年10月12日带教教师: 韩毅老师小组成员:专业班级:2014级全科五大班呼吸调节、呼吸功能不全及治疗一、实验目的1.观察豚鼠的正常呼吸频率、幅度、膈肌放电、动脉血氧分压及呼吸运动的调节。
2.复制豚鼠哮喘模型,观察呼吸衰竭时动物呼吸频率、幅度、动脉血氧分压及膈肌放电的变化;探讨呼吸衰竭的发生机制。
3.观察不同药物的治疗效果并分析作用机制。
二、实验原理复制豚鼠哮喘模式,观察其呼吸变化并观察使用不同药物后的治疗效果。
三、实验仪器设备BL-420F生物机能实验系统,血气分析仪,豚鼠手术台,手术器械一套,呼吸换能器,动静脉留置针(22~24G),小动物气管插管,超声雾化器一套。
试剂及药品:肝素注射液,25%乌拉坦,组胺,尼可刹米注射液,地塞米松、氨茶碱注射液,沙丁胺醇气雾剂四、实验方法与步骤1.称重、麻醉、固定动物称重,腹腔麻醉(25%乌拉坦0.5~0.6mL/100g),固定于手术台。
2.颈总动脉穿刺及气管插管分离颈总动脉放置留置针以备取血,颈部气管插管接呼吸换能器。
3.记录膈肌放电将两颗银针插入豚鼠任意一侧(右侧优先)肋间肌中,针柄与传导电极两红色支连接,黑色支夹于皮肤。
4.记录正常各项生理指标打开BL-420F生物机能实验系统,记录正常呼吸频率、深度及膈肌放电等情况,取血测定血气指标(PaO2、PaCO2)。
5.观察呼吸调节分别吸入纯氮气和5%~10%CO2后观察呼吸运动的改变。
6.复制急性哮喘性呼吸衰竭病理模型吸入雾化组胺制作急性哮喘性呼吸衰竭病理模型,待豚鼠呼吸出现频率明显减慢、幅度降低、膈肌放电异常时,记录上述各项指标的变化,取血作血气分析。
记录结果。
7.治疗分组经豚鼠头静脉注射给药进行治疗:A组(空白对照组):注射生理盐水10min后取血作血气分析。
B组(沙丁胺醇组):雾化吸入治疗10后取血作血气分析。
C组(地塞米松组):静脉推注后10后取血作血气分析。
呼吸运动调节与实验性急性肺水肿的抢救实验报告实验目的:1.探究呼吸运动调节对于实验性急性肺水肿的抢救效果。
2.分析呼吸运动调节对于实验性急性肺水肿的生理影响。
实验原理:呼吸运动调节是维持人体呼吸功能的重要机制,其能调节呼吸节律、呼吸深度和呼吸频率等。
实验性急性肺水肿是指由于肺血管通透性增加、肺内液体滞留,导致肺泡腔内液体积聚和肺泡内压力增高引起的肺水肿。
本实验旨在研究呼吸运动调节对于实验性急性肺水肿的抢救效果,以提供对该疾病的治疗参考。
实验材料与方法:1.实验动物:选取10只健康的大鼠作为研究对象。
2.实验仪器:呼吸频率监测仪、动脉压力监测仪、肺活量测定仪等。
3.实施步骤:a.实验前,对实验动物进行体检,确保身体健康。
b.将实验动物随机分为两组,每组5只。
一组为实验组,另一组为对照组。
c.实验组:给予实验动物呼吸运动调节治疗,包括控制呼吸深度和呼吸频率。
在动物出现实验性急性肺水肿症状时,立即进行调节治疗。
d.对照组:不进行呼吸运动调节治疗。
e.记录实验动物的呼吸频率、动脉压力等指标,并比较两组的差异。
f.对实验动物进行肺活量测定,评估呼吸功能恢复情况。
g.对两组实验动物进行统计学分析,评估呼吸运动调节治疗的效果。
实验结果:经过实验观察和数据统计分析,得出以下结果:1.实验组的呼吸频率在调节治疗后显著下降,与对照组相比差异显著。
2.实验组的动脉压力在调节治疗后明显降低,与对照组相比差异显著。
3.实验组进行呼吸运动调节治疗后,肺活量恢复较快,呼吸功能明显改善。
讨论与结论:通过本实验的研究,呼吸运动调节对于实验性急性肺水肿的抢救效果得到验证。
呼吸运动调节治疗能够有效降低动脉压力,减少肺水肿形成的影响,进而改善呼吸功能。
实验还发现,呼吸频率和呼吸深度的调节是呼吸运动调节治疗的重要手段。
需要指出的是,本实验的结果仅基于实验动物的数据,还需要进一步通过临床试验来验证呼吸运动调节治疗对于人类急性肺水肿的效果。
一、实验目的1. 掌握呼吸运动的基本原理和调节机制。
2. 观察血液中化学因素(PCO2、PO2、[H])对呼吸运动的影响。
3. 研究迷走神经在呼吸运动调节中的作用。
4. 熟悉气管插管术和神经血管分离术。
二、实验原理呼吸运动是指在中枢神经系统的控制下,通过呼吸肌的节律性运动使胸廓节律性地扩大或缩小。
呼吸运动除了由中枢神经系统控制外,一些理化因素(包括代谢产物、药物和肺的放大与缩小等)还可通过化学敏感呼吸反射、肺牵引反射直接或间接地作用于中枢神经系统而调节呼吸运动,表现为呼吸运动及间隔肌放电的频率和宽度等变化。
肺牵引反射是指肺扩张时引起吸气抑制的反射,其输入神经为迷走神经。
当肺扩张时,肺牵张感受器兴奋,通过迷走神经传入呼吸中枢,抑制吸气中枢,使吸气动作减弱或停止,从而促使吸气及时转为呼气,调节呼吸的频率和深度。
三、实验材料与仪器1. 实验动物:家兔2. 实验器材:哺乳动物手术器械(手术刀、镊子、剪刀、缝针、线等)、气管插管、神经血管分离器、生理盐水、CO2、N2、呼吸记录仪、分析天平、秒表等。
四、实验步骤1. 家兔麻醉后,固定于手术台上。
2. 气管插管,连接呼吸记录仪,记录呼吸频率、节律和幅度。
3. 分别进行以下实验:(1)CO2吸入实验:向家兔呼吸系统中吸入一定浓度的CO2,观察呼吸运动的变化。
(2)N2吸入实验:向家兔呼吸系统中吸入一定浓度的N2,观察呼吸运动的变化。
(3)增加无效腔实验:在气管插管处增加一段管道,模拟增加无效腔,观察呼吸运动的变化。
(4)迷走神经切断实验:切断家兔双侧迷走神经,观察呼吸运动的变化。
五、实验结果与分析1. CO2吸入实验:吸入CO2后,家兔呼吸频率明显加快,幅度加深,说明CO2是调节呼吸运动的重要化学因素。
2. N2吸入实验:吸入N2后,家兔呼吸频率和幅度变化不明显,说明N2对呼吸运动的调节作用较弱。
3. 增加无效腔实验:增加无效腔后,家兔呼吸频率和幅度明显增加,说明无效腔的增加可以增强呼吸运动的强度。
课程名称生理学实验名称呼吸运动的调节一、实验目的熟悉:某些因素对呼吸运动的影响,麻醉的方法掌握:呼吸运动的测定方法二、实验原理及要求呼吸运动能够经常有节律地进行,能适应机体代谢的需要,是由于体内呼吸中枢调节的缘故。
体内、外各种刺激可以作用于中枢或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。
本实验的目的是观察某些因素对呼吸运动的影响三、实验仪器设备家兔;生物信号采集处理系统、张力换能器、哺乳类动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、注射器(20ml,5ml各一)、50cm长的橡皮管一条、纱布、线、球囊两个;生理盐水、20%氨基甲酸乙酯、3%乳酸、CO2四、实验步骤1.手术用20%氨基甲酸乙酯(5ml/Kg体重)由耳缘静脉注入,待动物麻醉后仰卧固定手术台上。
延颈部正中切开皮肤,分离气管,并插入气管插管。
分离出颈部双侧迷走神经、穿线备用。
剑突部位剪毛,切开皮肤,暴露剑突。
切开胸骨下端剑突部位的皮肤,并沿腹白线再切开长约2cm的切口。
细心分离剑突表面的组织,并暴露剑突软骨与骨柄。
提起剑突,可见剑突随膈肌的收缩而自由运动将系有剑突的金属钩钩于剑突中间部位,线的另一端系于张力传感器的应变梁上2.记录呼吸运动开启计算机采集系统,接通张力传感器的输入通道,调节记录系统,使呼吸曲线清楚地显示在显示器(1)描记正常呼吸曲线以作对照,认清曲线与呼吸运动的关系(2)增加吸入气中CO2浓度将装有CO2的球囊管口对准侧口,将管上的夹子逐渐松开,使CO2气流不宜过急地随吸气进入气管。
此时观察高浓度CO2对呼吸运动的影响。
夹闭CO2球囊,观察呼吸恢复正常的过程(3)缺O2将气管插管的侧管与盛有钠石灰的广口瓶相连,以达逐渐缺氧的目的,待其恢复正常再进行下项观察课程名称生理学实验名称呼吸运动的调节(4)增大无效腔把50cm长的橡皮管用小玻璃管连接在侧管上,家兔通过这根长管进行呼吸,观察经一段时间后呼吸运动有何变化,呼吸发生明显变化后去掉橡皮管,使其恢复正常(5)学忠酸性物质增多时的效应用5ml注射器,由耳缘静脉较快地注入3%的乳酸2ml,观察此时呼吸运动的变化过程(6)迷走神经在呼吸运动中的作用描记一段对照呼吸曲线,先切断一侧迷走神经,观察呼吸运动有何变化。
呼吸运动调节实验实训报告(1)呼吸是人类生命活动中最基本的功能之一,而呼吸运动调节则是人体呼吸机制中的重要一环。
为了更好地理解和掌握呼吸运动的调节过程,我们进行了一次呼吸运动调节实验实训。
以下是报告内容。
一、实验目的通过呼吸运动调节实验实训,掌握人体呼吸调节机制,理解呼吸运动的原理和基础。
并通过实验数据的采集和分析,加深我们对呼吸运动调节的认识。
二、实验过程1.实验仪器呼吸运动调节实验仪、电脑、软件以及感应器、电极等辅助器材。
2.实验原理实验中采用了负荷通气法,即在呼吸前揣测一个负荷,让被试在呼出气后马上闭气,使肺内的压力提高,再让被试尽量快地吸气,在吸气的同时开启一个突然呈阶梯状升高的氧气质量流量,使肺部的氧气容量瞬间提高,呼吸频率和潮气量也随之发生改变。
3.实验步骤①被试在安静状态下,测量其正常呼吸频率和潮气量,并设置好呼吸负荷。
②测量肺活量。
③被试在负荷下呼出气,闭气持续约5秒钟,然后尽量快地吸气,在吸气同时开启突然呈阶梯状升高的氧气流质量,记录呼吸频率和潮气量的变化。
④分析数据,得出结果。
三、数据分析通过实验,我们得到了收集到的呼吸运动调节的数据。
实验中,被试在负荷下呼出气,闭气持续5秒钟,然后尽量快地吸气,在吸气同时开启突然呈阶梯状升高的氧气流质量,经过一段时间之后,记录下呼吸频率和潮气量的变化。
数据显示,被试在呼吸后吸入高浓度的氧气后,呼吸频率和潮气量都得到了改变。
具体而言,呼吸频率明显降低,平均降低了10次/分钟左右,而潮气量明显升高,平均升高了300ml左右。
这显示出,呼吸运动调节机制对高浓度氧气有反应,而且呼吸频率和潮气量都会随之产生一定的变化。
四、实验结论通过呼吸运动调节实验实训,我们获得了很多较为重要的结论和启示。
具体而言,呼吸运动调节机制可以对高浓度氧气产生反应,呼吸频率和潮气量都会随之产生变化。
这表明,人体呼吸机制中存在一定的调节机制,可以在不同的呼吸情况下做出相应的反应。
实验26 呼吸运动的调节以及呼吸功能不全
和实验性肺水肿
一、实验目的
1.观察体内外有关因素的改变对呼吸运动的影响。
复制不同病因引起的呼吸功能不全模型,分析其发生机制。
复制实验性肺水肿模型,观察急性肺水肿的表现并探讨其发生机制和治疗方案。
二、实验原理
机体内外的各种刺激,包括神经因素或理化因素通过直接作用于呼吸中枢和(或)外周感受器,反射性影响呼吸运动,肺牵张反射以及血液中的O2使分压、CO2分压、H+浓度改变,均可以通过不同途径是呼吸运动产生反射性调节。
从而保证血液中气体分压的相对稳定。
呼吸功能不全的失代偿期也称呼吸衰竭,是由于肺通气或换气功能严重受损,致使动脉血氧分压低于60mmHg,同时伴有或不伴有PaCO2大于50mmHg的临床综合征。
根据血气分析分别称为Ⅰ型呼衰和Ⅱ型呼衰。
三、实验材料
1.实验动物家兔(体重2kg以上)。
四、实验步骤
五、实验结果
六、讨论
七、思考题。