Western blot实验操作流程
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1.组织中总蛋白的提取;①将少量组织块置于1~2 ml 匀浆器中球状部位,用干净的剪刀将组织块尽量剪碎。
②加400微升去污剂裂解液裂(含PMSF)于匀浆器中,进行匀浆。
然后置于冰上。
③几分钟后再碾一会儿再置于冰上,要重复碾几次使组织尽量碾碎。
④裂解30 min后,即可用移液器将裂解液移至1.5 ml 离心管中,然后在4℃下12000 rpm离心5 min 取上清分装于0.5 ml 离心管中并置于-20℃保存。
2.蛋白含量的测定3.SDS-PAGE电泳(1)清洗玻璃板:一只手扣紧玻璃板,另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。
两面都擦洗过后用自来水冲,再用蒸馏水冲洗干净后立在筐里晾干。
(2)灌胶与上样①玻璃板对齐后放入夹中卡紧。
然后垂直卡在架子上准备灌胶。
(操作时要使两玻璃对齐,以免漏胶。
)②按前面方法配10%分离胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。
灌胶时,可用10 ml 枪吸取5 ml 胶沿玻璃放出,待胶面升到绿带中间线高度时即可。
然后胶上加一层水,液封后的胶凝的更快。
(灌胶时开始可快一些,胶面快到所需高度时要放慢速度。
操作时胶一定要沿玻璃板流下,这样胶中才不会有气泡。
加水液封时要很慢,否则胶会被冲变型。
)③当水和胶之间有一条折射线时,说明胶已凝了。
再等3 min 使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。
④按前面方法配4%的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。
将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。
灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。
插梳子时要使梳子保持水平。
由于胶凝固时体积会收缩减小,从而使加样孔的上样体积减小,所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。
待到浓缩胶凝固后,两手分别捏住梳子的两边竖直向上轻轻将其拔出。
⑤用水冲洗一下浓缩胶,将其放入电泳槽中。
(小玻璃板面向内,大玻璃板面向外。
若只跑一块胶,那槽另一边要垫一块塑料板且有字的一面面向外。
)⑥测完蛋白含量后,计算含50 μg蛋白的溶液体积即为上样量。
WesternBlot操作流程Western Blot操作流程本⼈将⾃⼰做WB实验时的具体操作流程,做了详细的记录并整理。
因为每个实验室的条件不⼀样,所以本流程仅供参考,具体适合⾃⼰的实验操作需要⼤家摸索。
由于知识量有限,有些描述⽤词并不专业,请⼤家谅解。
⼀、流程图制胶→→电泳跑胶(1.5-2.5h)→→转膜(3h)→→(可使⽤⽴春红检测是否蛋⽩是否成功转移)TBST清洗(10min)→→封闭(2h)→→TBST清洗(10min)→→附Ⅰ抗(内参:⼩⿏抗β-Actin,先摇床轻摇30min,再放冰箱4度过夜)→→TBST 清洗三次(10min/次)→→附Ⅱ抗(内参:⼭⽺抗⼩⿏,轻摇1.5h)→→TBST清洗三次(10min/次)→→显影⼆、物料及配制1、电泳液:⼀包电泳粉+1000ml双蒸⽔(可回收使⽤)2、10%过硫酸铵:1g过硫酸铵+10ml双蒸⽔3、转膜液:⼀包转膜粉+800ml双蒸⽔+200ml甲醇(可回收使⽤)4、TBST溶液:50ml 20*TBS+950ml双蒸⽔+1ml吐温20。
(⽆需回收)5、封闭液:购买6、Ⅰ抗(内参):将⼩⿏抗β-Actin:Ⅰ稀释液按1:500稀释待⽤,4度保存。
Ⅰ抗(⽬的蛋⽩58kDa):将smad2:Ⅰ稀释液按1:1000稀释待⽤,4度保存。
7、Ⅱ抗(内参):将⼭⽺抗⼩⿏:Ⅱ抗稀释液按1:5000稀释代⽤,4度保存。
Ⅱ抗(⽬的蛋⽩58kDa):将⼭⽺抗兔:Ⅱ抗稀释液按1:5000稀释待⽤,4度保存。
7、显影液:按说明书配制,避光可长期回收使⽤8、定影液:按说明书配制,可长期回收使⽤9、发光液:超敏发光液A液:B液=1:1三、步骤(⼀)制胶1、Tris-⽢氨酸SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝胶电泳分离胶溶液的配制2、Tris-⽢氨酸SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝胶电泳5%积层胶所⽤溶液3、1)将规格1.0mm或其它规格的玻璃板固定好。
2)依次将所需试剂加⼊烧杯中,加⼊TEMED之后,混匀,⽤1000ml的移液枪沿玻璃板缝左右两边的⾓交替加⼊分离胶溶液,也可从左到右连续加⼊(⽬的:两种⽅法都可以使液⾯快速达到⽔平状态)。
Western 操作流程1.SDS-PAGE电泳,事先调整好蛋白质样品的浓度,保持一致。
2.转膜(电泳结束前20分钟开始准备,而垫片和滤纸至少1小时前浸泡于含SDS的转移缓冲液中)。
(1). 剪适当大小的PVDF膜,正常大小:5.5cm*8cm。
?(2). 甲醇10mL浸泡膜5min,然后按1:4体积比向浸泡膜的容器中加水40mL至甲醇终浓度为20%(慢加快摇) 计时2 MIN。
(3). 将膜转入无SDS转移缓冲液中(至少浸泡15分钟),慢摇。
(4). 同时将电泳好的胶转移至无SDS的转移缓冲液中,慢摇10min。
(5). 按湿转芯,黑面-垫片-滤纸-胶-膜-滤纸-垫片-白面的顺序放好,并且每层都要用玻璃棒赶走气泡,装槽时要黑对黑,白对白,加入含SDS转移缓冲液。
(7). 湿转100V 1h-1.5h,转移槽中放入冰盒,冰水混合物上进行或者磁力搅拌器搅拌4度层析柜进行。
3. 封闭。
转膜结束后,将膜与胶接触的面为正面朝上, TTBS 缓冲液中浸泡片刻或者直接转移至封闭液中(5%脱脂牛奶),封闭1-2h1.5H。
4.一抗孵育。
封闭结束后,将膜在TTBS缓冲液中洗2次,每次2分钟,将膜转移至一抗孵育盒(5% 牛奶+ 一抗)中,4°C过夜孵育或者室温孵育3h。
注意:4°C过夜孵育的一抗可收集起来放于4°C,一周之内应该没问题,但是在重复使用这些一抗时,还得再加入比原来比例低的一抗,例如,原来按1:5000加的一抗,那么这次可在回收的一抗中按1:10000加。
5. 膜在TTBS缓冲液洗3次,每次6min1.二抗孵育。
将膜转移至二抗孵育盒中(5%牛奶+二抗),1-2h1.5H。
7. TTBS洗膜三次,每次6min.8.ECL Plus检测液检测:(Western Blot 超敏发光液A和B按1:1比例混匀)注意:Western Blot 超敏发光液 4°C避光保存。
使用前需恢复至室温,所以要提前从冰箱中取出。
Westernblot实验操作详细步骤1.样本制备:a.收集细胞或组织样本并加入提取缓冲液,破碎细胞或组织以释放蛋白质。
b.用超声波破碎机或搅拌器处理样本,使其彻底破碎。
c.避免加入蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂以防止蛋白质的降解。
2.蛋白质分离:a.将样本加入离心管中,并用高速离心分离细胞碎片和细胞核。
b.收集上清液,其中包含溶解的蛋白质。
3.蛋白质浓度测定:a. 使用BCA或Bradford等方法测定提取的蛋白质浓度。
b.根据需要调整蛋白质浓度,以确保每个样本使用相同的蛋白质量。
4.准备SDS-凝胶:a.准备解聚凝胶和浓缩凝胶以进行垂直电泳。
b.根据需要选择合适的胶百分比和凝胶组装器。
c.制备足够的凝胶和凝胶缓冲液。
5.蛋白质电泳:a.将蛋白质样本加入加载缓冲液,并在煮沸过程中使其变性。
b.将蛋白质样本加载至凝胶槽中。
c.根据需要在凝胶中加入预定分子量标记物,以便于蛋白质分子量的确定。
d.以恒定电流进行电泳,直到预定分子量标记物到达所需位置。
6.蛋白质转膜:a.选择合适的膜材料(例如聚偏氟乙烯或硝酸纤维素)。
b.用蛋白质转膜装置将凝胶上的蛋白质转移到膜上。
c.确保膜与凝胶完全贴合,并尽量避免气泡的产生。
7.阻塞和抗体孵育:a.将膜放入含有5%非脂奶粉或1%牛血清蛋白的TBST缓冲液中进行阻塞。
b.在蛋白质靶向抗体中稀释贮存液,并使用适当的稀释倍数进行孵育。
c.将膜和抗体一起放入摇床或孵育箱中,在适当的温度下进行孵育。
8.洗涤:a.用TBST缓冲液洗涤膜以去除未结合的抗体。
b.进行3至5次洗涤,每次洗涤持续5到10分钟。
9.二次抗体孵育:a.将膜放入稀释过的二抗溶液中进行孵育。
b.孵育时间和温度根据抗体种类和需求进行调整。
10.再洗涤:a.用TBST缓冲液进行大约3至5次洗涤。
b.确保彻底洗涤以去除未结合的二抗。
11.信号检测:a.使用化学发光或荧光探针对膜上的蛋白质进行检测。
b.按照探针供应商的说明进行操作。