CCK8实验
- 格式：doc
- 大小：201.23 KB
- 文档页数：20
CCK8实验
具体操作步骤：
1.将昨日铺的96孔板拿出，在操作台上用直吸管将铺有细胞的60个孔里面的上清液全部吸掉，再加PBS200ul洗一次，最后将96孔板里面所有的液体全部吸掉。
2.96孔板加药：
先加药-----再加无血清培养基-----最后再加PBS
1PBS 2PBS 3PBS 4PBS 5PBS 6PBS 7PBS 8PBS 9PBS 10PBS 11PBS 12PBS
2PBS 加无血清培养基200ul 0.5μg
／mL
组：加入20ul顺铂+180ul加无血清培养基 1μg
／mL
组：加入20ul顺铂+180ul加无血清培养基： 2μg
／mL
组：加入20ul顺铂+180ul加无血清培养基 3μg
／mL
组：加入20ul顺铂+180ul加无血清培养基 4μg
／mL
组：加入20ul顺铂+180ul加无血清培养基 5μg
／mL
组：加入20ul顺铂+180ul加无血清培养基 加无血清培养基200ul 2PBS
3PBS 同上 同上 同上 同上 同上 同上 3PBS
4PBS 同上 同上 同上 同上 同上 同上 4PBS
5PBS 同上 同上 同上 同上 同上 同上 5PBS
6PBS 同上 同上 同上 同上 同上 同上 6PBS
7PBS 同上 同上 同上 同上 同上 同上 7PBS
8PBS 2PBS 3PBS 4PBS 5PBS 6PBS 7PBS 8PBS 9PBS 10PBS 11PBS 12PBS
3.全部加完后，放于混匀振荡器上振荡3分钟。
4.最后放入培养箱中继续过夜培养。
兔骨髓间充质干细胞的提取与体外培养
文章来源： 2006-7-19 14:41:08
兔骨髓间充质干细胞的提取与体外培养
第二军医大学学报2000年第21卷第3期 徐青镭 吴海山 周维江
摘 要 目的：评价兔自体骨髓间充质干细胞作为半月板组织工程重建中种子细胞的可能性。方法：采用体外细胞培养技术将兔骨髓间充质干细胞自骨髓血中分离、纯化和和培养，并研究其增殖及生长特征。结果：原代培养及传代培养显示，兔自体骨髓间充质干细胞具有活跃的增殖倍增能力。结论：兔自体骨髓间充质干细胞生物年龄较为年轻，用作半月板组织工程重建的种子细胞具有较强的可行性。
关键词：间充质干细胞；骨髓；半月板
骨髓组织中除含有造血干细胞外，还含有多量的间充质干细胞（MSC）。如同多能造血干细胞的存在赋予骨髓组织以强大的造血功能以维系血液系统的新陈代谢一样，这些MSC的存在为骨软骨组织的损伤提供了潜在的修复能力。但是与造血干细胞相比，骨髓中MSC的含量并不丰富。本实验拟通过体外细胞培养的方法将MSC自骨髓血中分离出来并加以纯化，并进一步在体外培养条件下研究其增殖及生长特性，从而探讨为半月板的组织工程重建提供种子细胞的可能性。
1 材料和方法
1.1 兔骨髓MSC的分离 取成年新西兰兔10只，6个月龄，雌雄不拘，平均体质量3.2 kg (2.8～3.7 kg）；用3%戊巴比妥钠按1 mg/kg的剂量施以全身麻醉，另用1%利多卡因于手术部位施以局麻；无菌操作下于右胫骨上端内侧部用锐性穿刺锥于骨皮质上开出一直径约2～3 mm的孔，使通达髓腔；用18号硬膜外穿刺针接5 ml注射器，内含3000 U/ml的肝素0.1 ml，沿骨皮质上的孔穿入髓腔，抽出骨髓血约2 ml；抽出的骨髓血用平衡液洗涤两次后，离心180×g，5 min；弃去上清液，沉淀用Ham f12-10%FBS培养液重新打匀；用灭菌的0.17 mol/L饱和NH4Cl溶液按1∶5的体积比加入已重新打匀的悬液中，4℃下保留10 min，取出再离心180×g，5 min；弃去上清后，以几滴平衡液再悬浮后，用细胞计数板作细胞计数，确认有核骨髓细胞量达106～107后，即可进行原代培养接种用。
1.2 兔骨髓MSC的原代培养 将经上述培养分离所得的有核骨髓细胞按每孔3×104个细胞的密度接种于6孔培养板内，加入Ham f-12培养液，于37℃，10% CO2条件下培养；于接种5 d后进行第1次换液，以后隔日换液。每天随机抽取3只实验动物的MSC作细胞生长动力学分析，各取此三者的1个培养孔用0.25%胰酶-1 mmol/L EDTA液将贴壁细胞消化分离（37℃、3～5 min），并作贴壁细胞计数，直至贴壁细胞铺满整个培养孔的底部。将此3个实验动物MSC每天的细胞计数取平均值，作原代细胞培养的生长曲线分析。
1.3 兔骨髓MSC的传代培养 原代培养一旦铺满整个培养孔的表面，即可用0.25%胰酶-1 mmol/L EDTA液将贴壁细胞消化分离（37℃、3～5 min），然后按1∶3的比例进行传代接种培养，并记为P1；传代培养过程中隔日换液，直至贴壁细胞彼此融合，铺满整个培养孔的底面。再重复以上操作，用0.25%胰酶-1 mmol/L EDTA液将贴壁细胞消化分离（37℃、3～5 min），并按1∶3的比例进行下一代传代接种培养，并记为P2，余类推。将随机抽取作原代培养细胞生长动力学分析的3个实验动物MSC的P1代分为两组，一组连同其余样本的第1代一并留作后续实验用，另一组则用作传代培养的细胞动力学分析。传代培养的接种密度严格地控制于与原代培养接种密度相同的水平以便于对照。每天各取1个实验动物MSC的1个培养孔用0.25%胰酶-1 mmol/L EDTA液将贴壁细胞消化分离（37℃、3～5 min），并作贴壁细胞计数，直至贴壁细胞铺满整个培养孔的底面。将此3只实验动物MSC每天的细胞计数取均值，作传代细胞培养的生长曲线分析。
1.4 兔骨髓MSC的自我更新能力分析 将随机抽取作原代、传代培养细胞生长动力学分析的3只实验动物MSC由P1代开始，逐代进行传代培养，直至培养细胞出现衰老征象，停止传代培养。以细胞群体倍增值（population doublings,
PDs）作为分析兔骨髓MSC的自我更新能力的指标，每代细胞培养的PDs值按以下公式计算［5］：
PDs=lg（培养后细胞计数/培养前细胞计数）/lg2
将各代PDs值累加即得最终的累积细胞群体倍增值（cumulative population doublings, CPDs）。
1.5 数据分析 采用SPLM软件（线性拟合统计软件，第四军医大学统计学教研室）将以上3个样本的实验测定值取均数，作完全随机资料的方差分析，均数的两两比较采用SNK法。
2 结 果
2.1 兔骨髓MSC原代培养的生长曲线分析 兔骨髓MSC原代培养生长曲线（图1）显示，原代接种后的5～7 d为MSC生长的潜伏期，此期主要为MSC的贴壁生长阶段，培养细胞的有丝分裂活动不甚活跃；第8天开始，相差显微镜下可以观察到贴壁细胞已形成大小不一的多个细胞克隆，说明此时细胞的有丝分裂活动开始变得活跃起来；第8～10天这些细胞克隆进一步扩大，许多细胞克隆彼此相连，细胞生长曲线显示此阶段细胞数目呈指数级递增，此期为MSC原代培养生长的对数增殖期；第11～13天，细胞克隆彼此相连并铺满整个培养孔底面的大部分，细胞生长曲线显示MSC生长进入一个平台期；第14天，贴壁生长的MSC开始铺满整个培养孔底面，原代培养结束。
2.2 兔骨髓MSC传代培养的生长曲线分析 传代培养多数样本于P10代以后开始出现衰老征象。传代细胞的生长较原代要快些，多于接种后9 d即可铺满整个培养孔的底面。我们选择P1，P5，P10三代传代培养的生长曲线（图1）进行观察比较，发现早、中、晚三代传代培养具有以下共性特征：传代培养潜伏期约为24～36 h；传代培养对数增殖期约为4～6 d；对数增殖期结束后至接种后第9天，MSC生长逐渐缓慢，进入平台期。
图1 兔骨髓MSC的P1，P5及P10传代培养生长曲线
fig 1 The growth curve of P1, P5 and P10 passaged culture of rabbit bone marrow-derived MSC○: P1; □: P5; △: P10
2.3 兔骨髓MSC自我更新能力分析 随着传代培养代数的渐次增加，兔骨髓MSC的生长速度有逐渐缓慢的趋势。传代接种第5天后，P5、P10的MSC生长速度渐次减缓，至接种后第9天计算所得的MSC数目P10＜P5＜P1。统计学处理结果表明，此3组细胞的数目之间由第4天开始相差非常显著（表1）。
传代培养观察发现，所随机抽取的3个样本分别于P12、P12、P14出现衰老征象，故统计MSC的PDs及CPDs计算至P12。由图2可见，从P1至P10平均每代MSC的PDs值约为2，而P10之后的P11、P12 则仅为不足1；CPDs值为35.4±2.1，其中10.1的群体倍增发生于原代培养阶段，占平均CPDs值的28.5%，说明在原代培养及P1至P10阶段的体外培养分离中， mSC的有丝分裂活动旺盛，具有活跃的增殖倍增能力。
表1 兔骨髓MSC的P1，P5，P10传代培养的细胞增殖数目比较
tab 1 Comparison of the number of P1, P5 and P10 passaged culture of rabbit bone marrow-derived MSC
Day
Cell number of P1 Cell number of P5 Cell number of P10
F value P value
+s(n=3) +s(n=3) +s(n=3)
1 12.7±1.5 13.0±2.0 14.3±1.5 0.807 7 0.489 1
2 17.0±2.0 16.3±2.1 18.0±2.0 0.513 5 0.622 5
3 28.7±4.0 29.0±3.0 22.3±2.1 4.280 9 0.070 0
4 64.7±7.1 44.3±4.7 30.3±3.1 32.711 4 0.000 6
5 78.3±4.0 61.0±3.6 38.7±4.2 76.264 3 0.000 1
6 103.7±5.5 72.7±5.5 45.3±4.7 92.365 5 0.000 0
7 118.0±3.6 80.7±3.5 50.7±4.0 245.792 0 0.000 0
8 124.3±6.1 94.0±4.6 54.0±3.6 157.014 0 0.000 0
9 136.3±7.4 107.7±4.5 57.0±3.0 173.593 6 0.000 0
